楊金宏,孔衛(wèi)青
(安康學(xué)院 陜西省蠶桑重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,陜西 安康 725000)
家蠶(Bombyxmori)是一種重要的吐絲結(jié)繭的經(jīng)濟(jì)昆蟲,桑葉是家蠶唯一的食物,家蠶對桑葉的消化吸收效率,暨葉絲轉(zhuǎn)化率(繭層量/食下量)是蠶桑生產(chǎn)效益的重要指標(biāo)之一。腸道菌群定殖在宿主腸道內(nèi),與宿主相互依賴、互利共生,對宿主的消化吸收和生長發(fā)育有重要影響。家蠶腸道菌群豐富,高繪菊等對家蠶中腸菌群進(jìn)行分離培養(yǎng),顯示其中存在多種可以分泌蛋白酶、脂肪酶、纖維素酶、淀粉酶的菌種[1]。鄒昌瑞等分離培養(yǎng)柞蠶中腸菌,顯示芽孢桿菌是其主要菌群,可以產(chǎn)纖維素酶和蛋白酶[2]。但上述研究均未發(fā)現(xiàn)其中分泌果膠酶的菌株。
蠶沙是家蠶排泄物,含大量未被家蠶消化吸收的桑葉成分,其中果膠占風(fēng)干蠶沙的10%~12%,是家蠶不能吸收利用的桑葉成分之一。外源添食纖維素單胞菌、枯草芽孢桿菌或外源性芽孢桿菌等,給家蠶添食均對家蠶的生長發(fā)育、腸道優(yōu)勢菌群和經(jīng)濟(jì)性狀有一定影響[3-6]。因此,研究家蠶產(chǎn)果膠酶菌株,通過外源添加菌群,促進(jìn)家蠶對桑葉果膠的消化吸收,對提高家蠶葉絲轉(zhuǎn)化率具有重要意義。
中腸是家蠶分泌消化酶、消化吸收桑葉的主要場所,中腸腸液pH值在9.2以上,中腸中部的pH值甚至達(dá)10.5~11.0,強(qiáng)堿性環(huán)境抑制了果膠酶產(chǎn)生菌的發(fā)生。而中腸后部至排出蠶沙中的菌群研究鮮見報(bào)道。本研究擬分離家蠶蠶沙的果膠酶產(chǎn)生菌,為通過外源添加降解桑葉中果膠、提高家蠶對桑葉果膠成分的消化吸收和家蠶葉絲轉(zhuǎn)化率提供理論依據(jù)。
試驗(yàn)使用的5齡3 d家蠶871×872飼養(yǎng)于安康學(xué)院恒口蠶??蒲谢兀忧? h置于超凈工作臺(tái),用無菌樣品盒飼養(yǎng),取排出30 min內(nèi)的新鮮蠶沙。
取1.1新鮮蠶沙3 g,加入到50 mL 富集培養(yǎng)液中,無菌玻璃棒攪拌,30℃ 160 r·min-1振蕩培養(yǎng)2 d后,按10-6~10-9梯度對培養(yǎng)液進(jìn)行稀釋,并均勻涂布到分離培養(yǎng)基平板上,30 ℃培養(yǎng)2 d。后從平板上挑取較大的菌落,進(jìn)行再次分離純化,獲得單菌落。在菌落周圍加入幾滴1%的CTAB,靜置10 min, 若有透明圈產(chǎn)生則為堿性果膠酶產(chǎn)生菌。
提取菌株的基因組DNA,16S rDNA通用引物對27F和1492R擴(kuò)增菌株的16S rDNA,PCR擴(kuò)增條件參照Oliwa-Stasiak等[7]。PCR擴(kuò)增產(chǎn)物委托上海生工(生物工程)有限公司進(jìn)行測序。測序結(jié)果進(jìn)行在線BLASTN比對,同時(shí)下載克雷伯氏菌屬內(nèi)物種的同源系列,MEGA 6.0軟件的極大似然法(Maximum Likelihood)構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹,重復(fù)1 000次進(jìn)行Bootstrap檢驗(yàn),確定菌株歸屬[8]。
分別以淀粉、果膠、蔗糖、葡萄糖為碳源,配制濃度0.1 g·L-1,以硫酸銨、酵母粉、蛋白胨、蠶蛹粉為培養(yǎng)氮源,配制濃度0.05 g·L-1,正交設(shè)計(jì)配制菌株培養(yǎng)基100 mL,調(diào)節(jié)培養(yǎng)基初始pH值為8.0。1:100加入培養(yǎng)液,35℃培養(yǎng)2 d,3個(gè)重復(fù)篩選菌株生長最佳碳氮源。分別調(diào)節(jié)培養(yǎng)基初始pH為4.0,5.0,6.0,7.0,8.0,9.0,10.0,設(shè)定培養(yǎng)溫度為25 ℃,30℃,35℃,40℃,45℃,50 ℃,研究培養(yǎng)基pH值和培養(yǎng)溫度對菌株生長的影響。采用測定培養(yǎng)液OD600或細(xì)菌計(jì)數(shù)法(THAOMA)分析培養(yǎng)結(jié)果。最后利用最優(yōu)培養(yǎng)條件測定每隔5 h菌液的OD600,重復(fù)3次求平均值,繪制菌株生長曲線。
取培養(yǎng)2 d的菌液,無菌四層紗布過濾,濾液5 000 r·min-1離心15 min,上清液即為粗酶液。取粗酶液20 μL,與含0.2%聚半乳糖醛酸的甘氨酸-氫氧化鈉緩沖液(pH8.6)2 mL混合,后分別添加5 mmol·L-1鈣、鎂、錳、鋅等二價(jià)離子至不同測試管,以未添加金屬離子測試管為對照,檢測不同金屬離子對酶活性的影響。30℃反應(yīng)10 min,加入0.03 mol·L-1磷酸溶液3 mL終止反應(yīng),測定235 nm 處吸光度,記為A,以同樣體系加熱煮沸10 min的粗酶液做空白對照,每個(gè)樣品3個(gè)重復(fù)。
一個(gè)標(biāo)準(zhǔn)酶活單位(U)定義為:1 mL酶液每min使聚半乳糖醛酸裂解產(chǎn)生1 μmol的不飽和聚半乳糖醛酸的酶量。不飽和聚半乳糖醛酸在235 nm 處的摩爾吸光系數(shù)a為4 600 L·mol-1cm-1。根據(jù)公式:A=abc,其中b=1 cm,計(jì)算樣品濃度平均值c,計(jì)算標(biāo)準(zhǔn)酶活性。
菌株在分離培養(yǎng)基30 ℃培養(yǎng)2 d的菌落為圓形(圖1A),直徑1.5~2 mm,扁平,邊緣整齊,灰白色,稍微不透明,有淡淡的異味。利用CTAB顯色法對菌株進(jìn)行鑒定,產(chǎn)生明顯的透明圈(圖1B),初步確定該菌為堿性果膠酶產(chǎn)生菌。
圖1 菌株菌落形態(tài)(A)與水解圈鑒定(B)
對菌株的16S rDNA序列進(jìn)行的PCR擴(kuò)增和測序,獲得1408 bp的DNA序列(GenBank登錄號(hào):MH916560)。在線BLASTN比對,其與Klebsiellasp. SPC06的16S rDNA的一致性達(dá)99%。MEGA 6.0軟件構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹,結(jié)果顯示,本菌與產(chǎn)酸克雷伯氏菌(K.oxytoca)、格氏勒米諾克雷伯氏菌(K.grimontii)等優(yōu)先聚合在一起。結(jié)合菌株形態(tài)特性,確定該菌為克雷伯氏菌屬Klebsiellasp.,命名Klebsiellasp. AKB01。
圖2 基于16srDNA序列的系統(tǒng)發(fā)育樹,加粗分支為Klebsiellasp.AKB01;括號(hào)中字符為基因登錄號(hào)
不同碳氮源對菌株AKB01生長影響的研究顯示(圖3),葡萄糖和酵母粉組合條件下菌株生長最快,菌液活菌量8.58*108個(gè)·mL-1,其次是蔗糖和酵母粉組合(7.84*108個(gè)·mL-1),淀粉和硫酸銨組合條件下生長最慢(1.40*108個(gè)·mL-1)。因此葡萄糖和酵母粉是菌株生長的最適碳氮源。
進(jìn)一步研究培養(yǎng)溫度和初始pH值對菌株AKB01生長的影響,結(jié)果表明(圖4),菌株的最佳生長溫度為 35℃,低于25℃或高于40 ℃生長速度明顯下降。菌株生長的最適pH為8.0,pH小于5.0或大于9.5時(shí)生長幾乎停滯?;诖?,得到本研究菌株AKB01的最優(yōu)培養(yǎng)條件為:1%葡萄糖,0.5%酵母粉,pH 8.0,溫度35 ℃。最優(yōu)培養(yǎng)條件下,繪制菌種的生長曲線,發(fā)現(xiàn)15 h菌株進(jìn)入對數(shù)生長期,35 h后進(jìn)入穩(wěn)定生長(圖5)。
圖3 不同碳氮源組合對菌株生長的影響
圖4 不同溫度和起始pH對菌株AKB01生長的影響
以5 mmol·L-1二價(jià)金屬離子作為輔助劑,測定粗酶液的酶活性,結(jié)果對照中,菌株的酶活性僅0.98 U·mL-1,添加不同金屬離子酶活性存在差異(圖6),添加鈣離子酶活性最高為48.50 U·mL-1,鎂離子時(shí)最低為5.39 U·mL-1,符合果膠酸裂解酶的特點(diǎn)[9]。
圖5 菌株AKB01生長曲線
圖6 不同二價(jià)金屬離子對酶活性的影響
本試驗(yàn)以果膠為唯一碳源從蠶沙中的分離獲得果膠酶產(chǎn)生菌,并利用酶水解透明圈和16S rDNA序列對篩選獲得菌株進(jìn)行鑒定,命名為Klebsiellasp. AKB01,這也是首次從蠶沙中分離得到分泌果膠酶的菌株,說明在堿性較弱的家蠶中腸后部(pH值8.0-9.0左右),可能存在產(chǎn)果膠酶菌株,為進(jìn)一步家蠶對果膠的消化吸收以及家蠶腸道產(chǎn)果膠酶微生物菌群的研究提供了參考。
外源添加家蠶腸道的優(yōu)勢菌群,也可加強(qiáng)腸道優(yōu)勢菌群能力,對家蠶全繭量和繭層量等繭絲經(jīng)濟(jì)性狀具有顯著改善。本研究分離菌株AKB01在pH值大于9.5時(shí)生長緩慢或停滯,而中腸中部為強(qiáng)堿性環(huán)境,對菌株的生長具有抑制甚至滅活作用,因此目前很少有家蠶腸道產(chǎn)果膠酶相關(guān)菌的報(bào)道。
二價(jià)金屬離子是果膠酶發(fā)生作用的輔助因子,鈣離子可顯著提高菌株AKB01的堿性果膠酶的活性至48.50 U·mL-1,酶活性稍低于來源于史密斯桿菌產(chǎn)堿性果膠酶的菌株(88U·mL-1)[10],與枯草芽孢桿菌的酶活性相當(dāng)45 U·mL-1[11],高于芽孢桿菌 WSHB04-02(34 U·mL-1)[12],符合野生菌株的特征。該菌株發(fā)酵周期短,為堿性果膠酶的工業(yè)化生產(chǎn)奠定了一定的基礎(chǔ)。