王興龍,蔡 強,桂文鋒,蔡增軒,許嬌嬌,任一平*
(1.浙江清華長三角研究院 分析測試中心,浙江 嘉興 314000;2.上海師范大學(xué) 環(huán)境與地理科學(xué)學(xué)院,上海 200233;3.浙江省疾病預(yù)防控制中心,浙江 杭州 310000)
赭曲霉毒素(Ochratoxin)是一類主要由曲霉菌屬(Aspergillus)和青霉菌屬(Penicillium)的真菌產(chǎn)生的次級代謝產(chǎn)物,根據(jù)化學(xué)結(jié)構(gòu),可分為赭曲霉毒素A(Ochratoxin A,OTA)、赭曲霉毒素B(Ochratoxin B,OTB)和赭曲霉毒素C(Ochratoxin C,OTC)。其中OTA的毒性最強,化學(xué)性質(zhì)穩(wěn)定,半衰期較長,可產(chǎn)生致畸[1]、致癌、腎毒性[2]、免疫毒性、肝細胞毒性[3]、神經(jīng)毒性[4]等毒性。由于受葡萄生長條件和釀制工藝的影響,葡萄酒易造成赭曲霉毒素的污染。近年來,Yusefi等[5]對伊朗的70個葡萄汁樣本進行評估研究,發(fā)現(xiàn)55.7%的樣本中OTA濃度高于0.125 μg/L,平均污染水平為0.5 μg/L,最高達2.6 μg/L。劉青等[6]對9個國家11種不同種類的葡萄酒中赭曲霉毒素進行篩查,OTA的檢出率高達45.4%,檢出濃度為1.1~11.5 μg/L,有4個樣本超過2 μg/L。為有效控制葡萄酒中OTA 對人類健康產(chǎn)生危害,國內(nèi)外相繼制定了限量標(biāo)準(zhǔn),如我國GB 2761-2017標(biāo)準(zhǔn)[7]及歐盟法規(guī)[8]均規(guī)定OTA在葡萄酒中的最大殘留量為2 μg/kg。隨著葡萄酒中OTA風(fēng)險評估研究的深入,對其檢驗方法不僅要求結(jié)果更加精準(zhǔn),而且要求前處理技術(shù)更加簡單、高效。
目前,酒類產(chǎn)品中真菌毒素的定量檢測方法主要有酶聯(lián)免疫吸附法[9]、高效液相色譜法[10-11]、液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[12-13]等。其中,酶聯(lián)免疫吸附法的前處理相對簡單,主要用于快速篩查,但易出現(xiàn)假陽性。高效液相色譜法的準(zhǔn)確度高、穩(wěn)定性好,但對前處理要求較高,抗干擾能力較差。而液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法具有靈敏度高、選擇性好、分析效率高等優(yōu)勢,逐漸成為赭曲霉毒素檢測的首選方法。目前,液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法檢測葡萄及其制品中真菌毒素的前處理技術(shù)主要有固相萃取柱凈化[14-15]、免疫親和柱凈化[5,16]、分散液-液微萃取[17-18]以及QuEChERS[19-20]等方法。然而,上述前處理技術(shù)成本較高,過程相對復(fù)雜,易造成目標(biāo)物損失,且無法滿足大批量樣本的同時檢測需求。
本研究將樣品直接稀釋、過濾膜處理,利用穩(wěn)定同位素稀釋技術(shù)消除基質(zhì)效應(yīng),建立了超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜(UPLC-MS/MS)檢測葡萄酒中OTA的方法。本方法簡單、高效、成本低,適用于大批量葡萄酒樣品中OTA的快速、準(zhǔn)確定量檢測,可為葡萄酒中OTA的安全風(fēng)險評估提供技術(shù)支持。
Acquity H 超高效液相色譜儀、Waters TQD 三重四極桿串聯(lián)質(zhì)譜儀(美國Waters公司);Milli-Q超純水儀(美國Millipore公司)。
OTA(C20H18ClNO6,CAS號:303-47-9)及其穩(wěn)定同位素13C20-OTA標(biāo)準(zhǔn)品:質(zhì)量濃度均為 10 μg/L,購自Romer國際貿(mào)易(北京)有限公司。色譜純乙腈、甲酸,以及0.22 μm親水PTFE針式濾膜購于上海安譜實驗科技股份有限公司;實驗用水為超純水,由Milli-Q超純水儀制備。
1.2.1 OTA標(biāo)準(zhǔn)儲備液移取適量的OTA標(biāo)準(zhǔn)品溶液,用乙腈稀釋至10 mL,配制成100 μg/L的標(biāo)準(zhǔn)儲備液,于-20 ℃保存。
1.2.213C20-OTA工作溶液移取適量的13C20-OTA標(biāo)準(zhǔn)品溶液,用乙腈稀釋至5 mL,配制成5 μg/L的穩(wěn)定同位素工作溶液,于-20 ℃避光保存。
1.2.3 OTA標(biāo)準(zhǔn)工作溶液準(zhǔn)確移取適量的OTA標(biāo)準(zhǔn)儲備液,用乙腈-水-甲酸( 29.8∶70∶0.2,體積比)溶液逐級稀釋,分別配成0.05、0.1、0.2、0.5、1 μg/L的OTA標(biāo)準(zhǔn)工作溶液。移取20 μL13C20-OTA工作溶液與180 μL OTA 標(biāo)準(zhǔn)工作溶液于300 μL進樣小瓶中,充分混勻,待測。
準(zhǔn)確移取100 μL試樣于1.5 mL離心管中,加入900 μL乙腈-水-甲酸(29.8∶70∶0.2)溶液,渦旋混勻后,過0.22 μm PTFE針式濾膜。移取20 μL13C20-OTA工作溶液于300 μL進樣小瓶中,加入180 μL樣品濾液,充分混勻后,待測。
1.4.1 液相色譜條件ACQUITY BEH C18色譜柱(100 mm×2.1 mm,1.7 μm);柱溫為40 ℃;進樣體積為10 μL;流速為0.3 mL/min;流動相:A為0.1%甲酸水,B為0.1%甲酸乙腈。洗脫條件:0~1.0 min,70%A;1.0~4.5 min,70%~5%A;4.5~6.5 min,5%A;6.5~9.5 min,5%~70%A。
1.4.2 質(zhì)譜條件電噴霧離子源(ESI);正離子掃描;毛細管電壓為3.0 kV;離子源溫度為150 ℃;脫溶劑氣溫度為500 ℃;脫溶劑氣流速為800 L/h,錐孔反吹氣流速為30 L/h;多反應(yīng)監(jiān)測模式(MRM)采集。
在ESI+模式下,采用MS Scan模式,對500 ng/mL的OTA及13C20-OTA分別進行一級質(zhì)譜全掃描分析,得到每種目標(biāo)物的母離子。比較不同錐孔電壓下母離子的響應(yīng)強度,以最大響應(yīng)值時為最佳錐孔電壓。采用Daughter模式,在不同碰撞能量下,對目標(biāo)物母離子分別進行二級質(zhì)譜全掃描,得到每種母離子的碎片離子,比較不同碰撞能量下碎片離子的響應(yīng)強度,選擇響應(yīng)強度較高的兩個子離子作為定量離子和定性離子,優(yōu)化的質(zhì)譜參數(shù)見表1。在上述優(yōu)化條件下,OTA及13C20-OTA的總離子流圖見圖1。
表1 OTA及其同位素的質(zhì)譜參數(shù)Table 1 Mass spectrometric parameters of OTA and its isotope
*quantitative ion
葡萄酒基質(zhì)相對復(fù)雜,含多種抗氧化劑、色素、葡萄糖與果糖等成分。在ESI+模式下,OTA及13C20-OTA的離子化效率易受到基質(zhì)干擾,從而影響定量檢測。本實驗按照下式評估基質(zhì)效應(yīng):ME=|C-A|/B×100%[21],式中,C為樣品加標(biāo)1 μg/L測定的峰面積,A為樣品本底的峰面積,B為OTA濃度為1 μg/L的溶劑標(biāo)準(zhǔn)品的峰面積。若ME=100%,說明無基質(zhì)效應(yīng);ME>100%,說明存在基質(zhì)增強效應(yīng);ME<100%,說明存在基質(zhì)抑制效應(yīng)。將葡萄酒樣品經(jīng)乙腈-水-甲酸(29.8∶70∶0.2)溶液分別稀釋5、10、20倍后按照本方法進行分析,結(jié)果顯示,3種稀釋倍數(shù)下的基質(zhì)效應(yīng)均接近100%,說明直接稀釋可基本消除基質(zhì)效應(yīng)。綜合考慮方法靈敏度與儀器污染,本實驗將稀釋倍數(shù)設(shè)為10倍,同時加入穩(wěn)定同位素作為內(nèi)標(biāo)[22- 23],以降低質(zhì)譜儀器波動的影響,保證實驗結(jié)果更加可靠。
2.3.1 線性關(guān)系、檢出限與定量下限在優(yōu)化條件下,采用內(nèi)標(biāo)法對質(zhì)量濃度為0.05~1 μg/L的OTA標(biāo)準(zhǔn)工作溶液進行測定,以O(shè)TA與13C20-OTA的峰面積比值為縱坐標(biāo)(Y),OTA的質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)(X,μg/L)進行線性擬合。結(jié)果表明,13C20-OTA的質(zhì)量濃度為 0.5 μg/L時,OTA在0.05~1 μg/L范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,回歸方程為Y=18.264 5X+0.105 421,相關(guān)系數(shù)(r2)為0.999 6。在空白樣品中加入一系列不同濃度的標(biāo)準(zhǔn)品,按本方法進行前處理后進樣分析,得到OTA的檢出限(LOD,S/N≥3)和定量下限(LOQ,S/N≥10)分別為0.1、0.3 μg/L。
2.3.2 準(zhǔn)確度與精密度針對紅葡萄酒和白葡萄酒2種空白樣品進行1.00、2.00、5.00 μg/L 3個水平的加標(biāo)回收實驗,每個加標(biāo)水平測定6 次,通過內(nèi)標(biāo)法計算加標(biāo)回收率,并計算同一濃度水平的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD),作為日內(nèi)精密度。按照以上操作連續(xù)測定3 d,以每天對應(yīng)濃度的平均值計算RSD,作為日間精密度。結(jié)果如表2所示,OTA的回收率為102%~113%,日內(nèi)、日間的RSD均小于10%,說明該方法的準(zhǔn)確度和精密度良好。
表2 OTA的加標(biāo)回收率及相對標(biāo)準(zhǔn)偏差Table 2 Recoveries and relative standard deviations of OTA
為驗證本方法的可行性,以空白葡萄酒為基質(zhì),OTA的加標(biāo)濃度設(shè)為 2 μg/L,參考GB 5009.96-2016[24]第三法,采用免疫親和柱凈化法與本實驗建立的直接稀釋法,在相同的分析條件下進行測定,比較加標(biāo)回收結(jié)果是否存在顯著性差異,結(jié)果如表3所示。經(jīng)計算,t值為0.71,小于t(0.05,10)=2.23,說明兩種前處理方法的結(jié)果一致。
通過市場采購,選取橡木桶、白楊河、長城、威龍、香格里拉、天然、赤霞珠、梅洛等國產(chǎn)品牌的15種紅葡萄酒和5種白葡萄酒,采用本方法進行檢測。結(jié)果顯示,所有樣本中均未檢出OTA,表明上述樣品滿足歐盟和我國食品安全標(biāo)準(zhǔn)對于葡萄酒中OTA的限量要求。
本文建立了葡萄酒中OTA的超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜檢測方法,通過直接稀釋的前處理方法,并結(jié)合穩(wěn)定同位素內(nèi)標(biāo)定量技術(shù),避免了目標(biāo)物損失,保證了測定結(jié)果準(zhǔn)確、可靠。本方法前處理簡單、高效、靈敏度高、成本低,適合大批量葡萄酒中OTA的快速、準(zhǔn)確定量檢測,同時還可用于葡萄酒中多種真菌毒素的檢測。