周 佳,禹 潔,朱書強(qiáng),邵永華,黃 韡,祖 新
(甘肅省食品檢驗(yàn)研究院,甘肅 蘭州 730030)
我國允許添加的有機(jī)合成色素包括新紅、檸檬黃、日落黃、胭脂紅、莧菜紅、誘惑紅、酸性紅、亮藍(lán)、靛藍(lán)、赤蘚紅、喹啉黃等11種。其中,喹啉黃為2-(2-喹啉基)-茚滿基-1,3-二酮單磺酸鈉鹽和2-(2-喹啉基)-茚滿基-1,3-二酮二磺酸二鈉鹽的混合物,一鈉鹽和二鈉鹽各存在2個(gè)同分異構(gòu)體[1],所以喹啉黃的含量按照4種混合物的加和值進(jìn)行計(jì)算。
有機(jī)合成色素大多由萘酚、對(duì)氨基苯磺酸化合而成,在人體內(nèi)可代謝產(chǎn)生強(qiáng)致癌性物質(zhì),尤其是偶氮類合成色素,進(jìn)入人體后在偶氮還原酶的作用下會(huì)生成芳香胺類化合物,并與靶細(xì)胞作用引起癌癥[2-3]。研究表明,長(zhǎng)期攝入含有機(jī)合成色素的食品會(huì)引起過敏癥(哮喘、鼻炎等),導(dǎo)致兒童出現(xiàn)脾氣暴躁、注意力下降、多動(dòng)癥等癥狀,甚至?xí)绊懫渲橇4]。GB 2760-2014標(biāo)準(zhǔn)中規(guī)定了相關(guān)添加劑的使用范圍及限量[5]。但受利益的驅(qū)使,超范圍、超標(biāo)使用有機(jī)合成色素的情況時(shí)有發(fā)生。綜上,為了老百姓舌尖上的安全,檢測(cè)有機(jī)合成色素是非常有必要的。目前檢測(cè)有機(jī)合成色素的方法有高效液相色譜法[1,6-7]、液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[1,8-9]、分光光度法[10]和薄層色譜法[11]等。但上述方法存在前處理步驟繁瑣、耗時(shí)長(zhǎng)、試劑用量大、目標(biāo)物損失大等缺點(diǎn)。
綠色溶劑作為一種環(huán)境友好的新型萃取溶劑,近年來日益受到關(guān)注。其中,低共熔溶劑(DES)是由氫鍵受體(季銨鹽)與氫鍵供體(醇、酸等)通過氫鍵作用形成的液體混合物[12-14]。按照溶解性的不同,DES可分為親水性和疏水性。由于其具有生物降解性、不可燃性、價(jià)廉、易制備、環(huán)境友好等特點(diǎn)[15],受到了廣泛應(yīng)用[16]。例如,以氯化膽堿和乙二醇合成的DES萃取調(diào)味油中的酸性橙Ⅱ、堿性橙21和堿性橙22[17];以氯化膽堿和乳酸合成的DES萃取香茶藨子葉片中總酚酸、總黃酮[18];以氯化膽堿和甘油合成的DES萃取食用油中鉛和鎘[19-20]等。然而,上述研究多采用親水性DES進(jìn)行目標(biāo)物萃取,并不適用于水基樣品。
本研究以四丁基氯化銨和辛酸為原料合成疏水性DES,并將其作為萃取溶劑,建立了飲料、配制酒中新紅、檸檬黃等11種有機(jī)合成色素的高效液相色譜-二極管陣列檢測(cè)(HPLC-DAD)分析方法。與傳統(tǒng)方法相比,本方法操作步驟更簡(jiǎn)單、檢測(cè)損失更少、目標(biāo)物種類更多。
四辛基氯化銨、四甲基氯化銨、四丁基氯化銨、1-乙基-3-甲基咪唑氯鹽、1-己基-3-甲基咪唑氯鹽(上海成捷化學(xué)有限公司)。標(biāo)準(zhǔn)品:檸檬黃、日落黃、莧菜紅、胭脂紅、誘惑紅、酸性紅、亮藍(lán)、靛藍(lán)、赤蘚紅、新紅、喹啉黃(純度>98%,德國Dr.Ehrenstorfer公司),甲醇(色譜純,美國Fisher公司),癸酸、辛酸、水楊酸(分析純,上海安譜實(shí)驗(yàn)科技股份有限公司)。去離子水由GenPure UV-TOC/UF×CAD plus超純水機(jī)(美國賽默飛世爾科技公司)制備。
液體樣品均購于當(dāng)?shù)爻小L妓犸嬃?、茶飲料、配制酒樣品直接使用,果蔬汁飲料、蛋白飲料樣品稀?0倍,離心后取上清液作為樣品待測(cè)液。
Waters 2695高效液相色譜儀(美國沃特世公司,配DAD檢測(cè)器);控溫磁力攪拌器、Genius 3渦旋儀(德國IKA公司);玻璃注射器(10 mL,上海安譜實(shí)驗(yàn)科技股份有限公司);液相微量進(jìn)樣針(10 μL,日本島津公司)。
分別稱取適量11種目標(biāo)物的標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),以去離子水溶解配制成單一標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液(1 000 μg/mL),并于4 ℃儲(chǔ)存?zhèn)溆谩?/p>
分別吸取各單一標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液,以去離子水溶解配制成混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,其中檸檬黃、日落黃、胭脂紅、莧菜紅、誘惑紅、酸性紅、靛藍(lán)、赤蘚紅、新紅、喹啉黃3(QYNa Ⅰ)、喹啉黃4(QYNa Ⅱ)的質(zhì)量濃度為1.0 μg/mL,喹啉黃1(QYNa2Ⅰ)、亮藍(lán)為2.0 μg/mL,喹啉黃2(QYNa2Ⅱ)為4.0 μg/mL。
1.4.1 低共熔溶劑的制備按照表1制備低共熔溶劑,分別稱取氫鍵供體和氫鍵受體于25 mL圓底燒瓶中,在40 ℃油浴中加熱至兩種混合物變成透明澄清液體,自然冷卻至室溫后備用。
表1 低共熔溶劑的合成條件Table 1 Synthesis conditions of deep eutectic solvents
(續(xù)表1)
No.Hydrogen bond acceptorHydrogen bond donorMole ratioDES-6Tetraoctyl ammonium bromide(四辛基溴化銨)Octanoic acid(辛酸)DES-71-Ethyl-3-methylimidazolium chloride(1-乙基-3-甲基咪唑氯鹽)Octanoic acid(辛酸)DES-81-Ethyl-3-methylimidazolium chloride(1-乙基-3-甲基咪唑氯鹽)Decanoic acid(癸酸)DES-91-Ethyl-3-methylimidazolium chloride(1-乙基-3-甲基咪唑氯鹽)Salicylic acid(水楊酸)DES-101-Hexyl-3-methylimidazolium chloride(1-己基-3-甲基咪唑氯鹽)Octanoic acid(辛酸)DES-111-Hexyl-3-methylimidazolium chloride(1-己基-3-甲基咪唑氯鹽)Decanoic acid(癸酸)DES-121-Hexyl-3-methylimidazolium chloride(1-己基-3-甲基咪唑氯鹽)Salicylic acid(水楊酸)
1.4.2 目標(biāo)物的萃取將200 μL疏水性DES置于10 mL玻璃注射器中,準(zhǔn)確吸取5 mL混合標(biāo)準(zhǔn)溶液(或樣品待測(cè)液)注入上述玻璃注射器,渦旋2 min。靜置3 min,將油狀液滴推至注射器口,用微量進(jìn)樣針吸取疏水性DES于2 mL壓蓋離心管,以甲醇溶解并定容至0.5 mL,過0.45 μm微孔有機(jī)濾膜后,待測(cè)。
1.4.3 色譜條件色譜柱:CAPCELL PAK MGⅡ C18色譜柱(250 mm×4.6 mm×5 μm,日本資生堂);柱溫:35 ℃;進(jìn)樣體積:10 μL;檢測(cè)波長(zhǎng):254 nm;流動(dòng)相:A為0.02 mol/L乙酸銨水溶液,B為甲醇,流速為0.8 mL/min。梯度洗脫程序:0.01~7.00 min,20%~35%B;7.00~9.00 min,35%~80%B;9.00~19.00 min,80%~95%B;在0.01 min內(nèi)線性遞減至20%B,保持6 min。
采用表1中合成的12種DES對(duì)11種目標(biāo)物進(jìn)行特異性吸附試驗(yàn),結(jié)果顯示,DES-6無吸附效果;DES-4、DES-7與目標(biāo)物發(fā)生反應(yīng),進(jìn)而使溶液顏色消退;DES-8、DES-9、DES-11對(duì)目標(biāo)物有輕微的吸附效果,但DES析出并上浮;DES-3、DES-12對(duì)目標(biāo)物有輕微的吸附效果,但DES析出并沉淀;DES-1、DES-2、DES-5、DES-10對(duì)目標(biāo)物有明顯吸附,且呈油狀液體懸浮于樣品中。
進(jìn)一步對(duì)比了DES-1、DES-2、DES-5、DES-10的萃取效率,結(jié)果表明DES-1的萃取效率最佳且易于吸取,DES-2的萃取效率次之但不易吸取。DES-1的液體黏度及表面張力相對(duì)最低,有助于提高DES液滴在水中的分散性,從而提高目標(biāo)物的萃取率。這是因?yàn)镈ES烷基鏈長(zhǎng)度的增加會(huì)導(dǎo)致黏度增大,不利于其在水中分散;同時(shí)由于目標(biāo)物均為水溶性,按照相似相溶理論,DES碳鏈越長(zhǎng),則極性越弱越難萃取目標(biāo)物,因此萃取效率會(huì)下降。綜上,最終選用經(jīng)四丁基氯化銨和辛酸合成的DES-1作為特異性低共熔溶劑。
圖1 低共熔溶劑用量對(duì)11種目標(biāo)物萃取效率的影響Fig.1 Effect of deep eutectic solvent amount on the extraction efficiencies of 11 analytesa:lemon yellow;b:new red;c:amaranth;d:indigo;e:carmine;f:QYNa2 I;g:sunset yellow;h:QYNa2 Ⅱ;i:allura red;j:brilliant blue;k:acid red;l:QYNa I;m:QYNa Ⅱ;n:erythrosine
由于DES多為油狀液滴,易粘附在容器壁上,因此本實(shí)驗(yàn)對(duì)萃取容器進(jìn)行了考察。結(jié)果顯示,以塑料注射器為萃取容器時(shí),DES附著于器壁上,不利于目標(biāo)物的測(cè)定。而以玻璃注射器為萃取容器時(shí),DES吸附目標(biāo)物并凝結(jié)為油狀液滴浮于上層,易于分離測(cè)試。故選用玻璃注射器作為萃取容器。
參照GB 2760-2014[5]對(duì)有機(jī)合成色素的限量要求,并根據(jù)實(shí)際樣品中有機(jī)合成色素的含量,考察了DES用量對(duì)11種目標(biāo)物萃取效率的影響。由圖1可知,當(dāng)DES的用量為50 μL時(shí),檸檬黃的萃取率達(dá)98%;當(dāng)增加DES的用量至150 μL時(shí),新紅、胭脂紅、日落黃、亮藍(lán)、酸性紅、喹啉黃3、赤蘚紅的萃取率均達(dá)92%以上;增加DES用量至200 μL時(shí),莧菜紅、靛藍(lán)、喹啉黃1、喹啉黃2、誘惑紅、喹啉黃4 的萃取率均達(dá)97%;繼續(xù)增加DES用量時(shí),11種目標(biāo)物的萃取率無明顯增大。綜上,當(dāng)DES的用量為200 μL時(shí),11種有機(jī)合成色素(14種待測(cè)物質(zhì))的萃取率均達(dá)97%以上,故選擇DES的最佳用量為200 μL。
考慮到實(shí)際樣品的pH值不同,如碳酸飲料、果蔬汁飲料、葡萄酒、茶飲料、蛋白飲料等的pH值偏酸性,飲用水的pH值偏中性,因此對(duì)待測(cè)液的pH值(pH 3.0、4.0、5.0、6.0、7.0、8.0)進(jìn)行了考察。采用200 μL DES分別萃取3 min后進(jìn)行測(cè)定,結(jié)果顯示pH值對(duì)萃取效果的影響不大,因此不調(diào)節(jié)待測(cè)液的pH值。
采用200 μL DES對(duì)“1.3”中的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行萃取并上機(jī)測(cè)試,考察不同渦旋時(shí)間(1.0、1.5、2.0、2.5、3.0、4.0、5.0 min)對(duì)目標(biāo)物萃取效率的影響。萃取率的計(jì)算如下:X=(Ai/Astdi)×100% (X為萃取率;Ai為對(duì)混合標(biāo)準(zhǔn)溶液萃取后目標(biāo)物的峰面積;Astdi為混合標(biāo)準(zhǔn)溶液中目標(biāo)物的峰面積)。結(jié)果表明,檸檬黃、莧菜紅在渦旋時(shí)間為2 min時(shí)萃取率>98%,其余目標(biāo)物在渦旋時(shí)間為3 min時(shí)萃取率>98%,綜合考慮最終選擇最優(yōu)渦旋時(shí)間為3 min。
采用GB 5009.35-2016[6]及文獻(xiàn)[1]中的液相色譜條件對(duì)“1.3”中的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行檢測(cè),11種目標(biāo)物無法完全出峰,存在峰重合、峰前沿的情況。由于目標(biāo)物種類多,喹啉黃還需出4個(gè)色譜峰,故將流動(dòng)相流速調(diào)整為0.8 mL/min,以保證充足的色譜出峰時(shí)間??紤]到流動(dòng)相梯度對(duì)目標(biāo)物峰形、靈敏度的影響,對(duì)流動(dòng)相梯度進(jìn)行了優(yōu)化,具體梯度見表2。結(jié)果顯示,采用流動(dòng)相梯度a時(shí),混合標(biāo)準(zhǔn)溶液僅出10個(gè)色譜峰;采用梯度b 時(shí)出12個(gè)色譜峰;采用梯度c、d、e時(shí),均出了13個(gè)色譜峰;當(dāng)改用梯度f時(shí),14種物質(zhì)均得到有效分離,且峰形尖銳,能夠滿足定性定量的要求。因此,本實(shí)驗(yàn)選擇流動(dòng)相梯度f。
表2 不同流動(dòng)相梯度Table 2 Gradient of different mobile phases
2.7.1 線性關(guān)系與定量下限用0.02 mol/L乙酸銨水溶液-甲醇(80∶20)將各單一標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液進(jìn)行稀釋,其中喹啉黃1、亮藍(lán)的質(zhì)量濃度分別為2.0、5.0、10、20、50、100 mg/L,喹啉黃2的質(zhì)量濃度分別為4.0、10、20、50、100、160 mg/L,其余物質(zhì)的質(zhì)量濃度分別為1.0、2.0、5.0、10、20、40 mg/L,按照本方法進(jìn)行測(cè)定,以峰面積對(duì)質(zhì)量濃度繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。結(jié)果表明:11種有機(jī)合成色素均線性關(guān)系良好,相關(guān)系數(shù)均大于0.996(見表3)。
向空白樣品中添加混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,在最佳條件下進(jìn)行測(cè)定,根據(jù)3倍信噪比(S/N=3)計(jì)算檢出限(LOD),10倍信噪比(S/N=10)計(jì)算定量下限(LOQ),測(cè)得11種有機(jī)合成色素的檢出限為0.03~0.31 mg/kg,定量下限為0.08~1.02 mg/kg(見表3)。
2.7.2 回收率與相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差采用碳酸飲料進(jìn)行加標(biāo)實(shí)驗(yàn),向空白碳酸飲料樣品中添加3個(gè)水平的14種目標(biāo)物質(zhì)的單一標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液,其中喹啉黃1和亮藍(lán)的加標(biāo)水平為0.50、5.00、10.0 mg/kg,喹啉黃2為1.00、10.0、20.0 mg/kg,其余目標(biāo)物質(zhì)的加標(biāo)水平均為0.25、2.50、5.00 mg/kg。按照“1.4”進(jìn)行測(cè)定,每個(gè)水平平行測(cè)定3次。由表3可知,11種有機(jī)合成色素的回收率為92.6%~103%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為0.98%~4.3%,能滿足分析要求。
表3 11種有機(jī)合成色素的線性關(guān)系、檢出限、定量下限、回收率及相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差Table 3 Linear relations,LODs,LOQs,recoveries and relative standard deviations of 11 organic synthetic pigments
采用本方法對(duì)購自蘭州市超市的碳酸飲料(5份)、茶飲料(5份)、果蔬汁飲料(10份)、蛋白飲料(5份)、配制酒(5份)進(jìn)行測(cè)定,每個(gè)樣品平行測(cè)定5份。結(jié)果表明,有2份碳酸飲料、1份果蔬汁飲料、2份蛋白飲料、2份配制酒檢出有機(jī)合成色素,茶飲料未檢出。按照陽性樣品中有機(jī)合成色素的種類及含量添加相應(yīng)的單一標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液,進(jìn)行加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn),回收率為92.4%~103%(見表4)。
表4 實(shí)際樣品的含量及加標(biāo)回收率Table 4 Contents and recoveries of actual samples
圖2分別為陽性樣品(碳酸飲料2#)與11種有機(jī)合成色素標(biāo)準(zhǔn)品的色譜圖,其中喹啉黃=喹啉黃1+喹啉黃2+喹啉黃3+喹啉黃4。
將本文方法與GB 5009.35-2016[6]方法進(jìn)行比較,結(jié)果顯示,本方法具有耗時(shí)短、試劑友好、成本低、可檢測(cè)的目標(biāo)物數(shù)量多等特點(diǎn)(見表5)。
表5 本文方法與傳統(tǒng)方法的對(duì)比Table 5 Comparison between the method in this paper and the traditional method
本文以四丁基氯化銨和辛酸為原料合成了新型的疏水性低共熔溶劑,將其作為萃取溶劑,建立了快速、高效、同時(shí)檢測(cè)飲料、配制酒樣品中11種有機(jī)合成色素的HPLC-DAD法。結(jié)果表明,11種有機(jī)合成色素的檢出限為0.03~0.31 mg/kg,定量下限為0.08~1.02 mg/kg,回收率為92.6%~103%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為0.98%~4.3%。本方法操作簡(jiǎn)單、回收率高、快速高效、目標(biāo)物多,可以廣泛應(yīng)用于飲料、配制酒中有機(jī)合成色素的檢測(cè)。