劉長(zhǎng)風(fēng) 李欣燕 賈春云
摘要:多環(huán)芳烴(polycyclic aromatic hydrocarbons,簡(jiǎn)稱PAHs)是由2個(gè)以上苯環(huán)連在一起的化合物,具有強(qiáng)烈的致癌、致畸、致突變作用,屬于持久性有毒有害有機(jī)污染物。由于胞外聚合物(extracellular polymeric substances,簡(jiǎn)稱EPS)的成分性質(zhì),EPS對(duì)PAHs有較高的降解效果。因而EPS在去除PAHs過(guò)程中的應(yīng)用越來(lái)越受到重視。為研究芘對(duì)毛霉EPS產(chǎn)生的影響,分析比較不同濃度芘誘導(dǎo)后毛霉EPS的特征、生化成分和生物降解效果。用濃度梯度為0、10、20、40、80、120 mg/L的芘誘導(dǎo)毛霉,提取EPS進(jìn)行表征及降解試驗(yàn)。結(jié)果表明,隨著芘濃度的增加,毛霉EPS粉末表面松散程度增強(qiáng),孔隙數(shù)量變多而且直徑變大;EPS的蛋白質(zhì)含量、多糖含量、類腐殖質(zhì)含量均逐漸增長(zhǎng),并且當(dāng)芘濃度達(dá)到80 mg/L時(shí),這些值均達(dá)到峰值(EPS提取量為1 561 mg/L,糖類含量為1 042 mg/L,蛋白質(zhì)含量為 562 mg/L,類腐殖質(zhì)含量為312 mg/L)。當(dāng)芘濃度為120 mg/L時(shí),毛霉EPS粉末又重新變成板結(jié)狀;EPS提取量和各種生化成分均減少,對(duì)芘的降解率也降低。與其他毛霉相比,以80 mg/L芘誘導(dǎo)后的毛霉EPS對(duì)芘有更強(qiáng)的生物降解能力。
關(guān)鍵詞:毛霉胞外聚合物;目標(biāo)污染物芘;生物降解;特性分析;污染土壤修復(fù)
多環(huán)芳烴(polycyclic aromatic hydrocarbons,簡(jiǎn)稱PAHs)污染是世界各國(guó)所面臨的重大環(huán)境與公共健康問(wèn)題之一,其對(duì)土壤的污染問(wèn)題尤為突出[1]。PAHs污染土壤的修復(fù)是當(dāng)前國(guó)內(nèi)外環(huán)境科學(xué)界的共同話題和主攻熱點(diǎn)。與物理、化學(xué)修復(fù)法相比,生物修復(fù)技術(shù)具有非破壞性、經(jīng)濟(jì)性和安全性等優(yōu)點(diǎn),可廣泛應(yīng)用于中低濃度大面積PAHs污染土壤的修復(fù),近年來(lái)在國(guó)內(nèi)外引起廣泛關(guān)注[2-3]。其中,微生物修復(fù)技術(shù)應(yīng)用最廣泛,主要是通過(guò)馴化土著微生物或人為投加外源微生物對(duì)土壤中PAHs進(jìn)行轉(zhuǎn)化、降解與去除[4]。微生物降解多環(huán)芳烴已成為最主要的多環(huán)芳烴污染土壤的修復(fù)技術(shù)。具有PAHs降解能力的細(xì)菌較多,如芽孢桿菌屬(Bacillus)、分枝桿菌屬(Mycobacterium)、假單胞菌屬(Pseudomohas)等[5]。真菌降解PAHs的效率通常高于細(xì)菌,在降解高環(huán)多環(huán)芳烴方面表現(xiàn)突出。研究表明,一些絲狀真菌、擔(dān)子菌、白腐菌和半知菌對(duì)四環(huán)或更高環(huán)數(shù)PAHs的降解具有一定的優(yōu)勢(shì)[6-7]。
PAHs污染土壤微生物修復(fù)過(guò)程中,胞外聚合物(extracellular polymeric substances,簡(jiǎn)稱EPS)承接細(xì)胞壁及土壤表面PAHs,具有重要的橋聯(lián)作用。EPS通過(guò)范德華力或乳化作用解吸土壤中的PAHs,增強(qiáng)PAHs的生物可利用性[8-10]。楊智臨等研究發(fā)現(xiàn),EPS與菌株聯(lián)用處理石油污染土壤時(shí),萘去除率達(dá)96%,菲去除率達(dá)100%[11]。EPS中的蛋白質(zhì)和糖類,特別是蛋白質(zhì)中色氨酸殘基,對(duì)有機(jī)污染物的去除起重要作用。Pan等通過(guò)熱力學(xué)計(jì)算得出活性污泥EPS與菲的作用是自發(fā)的、放熱的,疏水相互作用是主要作用方式,且蛋白峰中的色氨酸參與其中[12]。Zhang等報(bào)道,一羥基芘(PAHs的代謝生物標(biāo)記物)能與牛血清蛋白中的色氨酸殘基發(fā)生鍵合作用[13]。此外,EPS中多糖結(jié)合態(tài)PAHs的生物利用率較高[14]。
可見,EPS中蛋白和糖類參與PAHs的降解過(guò)程,有關(guān)EPS的提取和表征方法已比較成熟。EPS的提取方法包括物理、化學(xué)提取法。物理提取法主要是利用物理手段增加胞外聚合物在溶液中的溶解度,從而達(dá)到提取EPS的目的。如熱提取法、離心法、超聲波提取法等?;瘜W(xué)提取法是利用生物膜的內(nèi)傳質(zhì)作用使試劑中的離子或分子進(jìn)入生物膜并與胞外聚合物發(fā)生接觸,胞外聚合物的大分子會(huì)轉(zhuǎn)化成為水溶性成分進(jìn)而被提取出來(lái)。NaOH提取法是比較常用的方法,此外還有乙二胺四乙酸提取法、硫酸提取法、陽(yáng)離子交換樹脂法、甲醛超聲波法等[15-18]?;瘜W(xué)提取法雖然產(chǎn)率高,但樣品易被流出的胞內(nèi)物質(zhì)污染[19]。EPS的表征方法較多,EPS成分用色譜、質(zhì)譜及其組合進(jìn)行定性和定量分析[20];胞外聚合物的功能基團(tuán)和元素組成用X-射線光電子能譜、紅外光譜、三維熒光光譜、核磁共振等儀器解釋[21-25];EPS形貌一般用掃描電子顯微鏡、透射電子顯微鏡來(lái)表征。
為了深入研究EPS在PAHs污染土壤修復(fù)中的作用,本試驗(yàn)以毛霉EPS為研究對(duì)象,以芘為目標(biāo)污染物,通過(guò)室內(nèi)模擬試驗(yàn),聯(lián)合多種檢測(cè)技術(shù),探索芘對(duì)毛霉EPS的特征影響。
1 材料與方法
1.1 試驗(yàn)用菌種及培養(yǎng)
試驗(yàn)用毛霉(Mucor mucedo)菌種由中國(guó)科學(xué)院沈陽(yáng)應(yīng)用生態(tài)研究所土壤污染生態(tài)組提供。斜面培養(yǎng)基(PDA):馬鈴薯去皮后洗凈,稱取200 g切成小塊,加1 L水煮沸20 min,濾去馬鈴薯塊,冷卻后加入20 g葡萄糖,定容至1 L,pH值自然,在1×105 Pa滅菌30 min。種子培養(yǎng)基:4.000%蔗糖,0.400%(NH4)2HPO4,0.100% KH2PO4,0.050% MgSO4·7H2O,0.005%維生素B1,pH值為6.5。在250 mL三角瓶中裝入150 mL液體種子培養(yǎng)基,在1×105 Pa滅菌20 min,冷卻后接入菌種,在搖床(溫度為25 ℃,轉(zhuǎn)速為120 r/min)中振蕩培養(yǎng)。
1.2 毛霉EPS的提取方法
取40 mL生長(zhǎng)到穩(wěn)定期的菌體培養(yǎng)液,于2 000 r/min離心10 min,棄去上清液補(bǔ)充無(wú)菌水至原體積,于2 000 r/min離心3 min,棄去上清液補(bǔ)充無(wú)菌水至原體積,重復(fù)2次,去除液體培養(yǎng)基中的雜質(zhì),然后用加熱法提取EPS。將上述菌懸液放入60 ℃的水浴鍋中加熱30 min,然后把樣品在 8 000 r/min 離心10 min,上清液經(jīng)過(guò)0.22 μm濾膜過(guò)濾后,得到的無(wú)色透明溶液即為EPS溶液,濃度用總有機(jī)碳(total organic carbon,簡(jiǎn)稱TOC)來(lái)表示,TOC由mulit N/C3000 TOC測(cè)定儀測(cè)定。
1.3 毛霉對(duì)芘的降解試驗(yàn)
將真菌轉(zhuǎn)接到液體培養(yǎng)基中,在30 ℃培養(yǎng)3 d。將單株菌株按10%的接種量接種到芘濃度分別為10、20、40、80、120 mg/L 的20 mL液體無(wú)機(jī)鹽培養(yǎng)基(0.05% 酵母膏,0.50% NaCl,1.00% NH4NO3,0.50% K2HPO4,0.50% KH2PO4,0.02% MgSO4·7H2O,0.05%蔗糖)中,在30 ℃、130 r/min條件下振蕩培養(yǎng),取樣分析培養(yǎng)基中芘的殘留濃度。
1.4 芘濃度測(cè)定
芘的提取方法采用二氯甲烷萃取,首先將三角瓶中溶液過(guò)0.45 μm水相濾器,然后向?yàn)V后溶液中加入等體積的二氯甲烷,放入振蕩器(溫度為25 ℃,轉(zhuǎn)速為180 r/min)中振蕩 5 min,全部移入50 mL分液漏斗中,靜置5 min,分層后將下層有機(jī)相存入燒杯,每個(gè)樣品按此步驟重復(fù)萃取3次。將上述3次萃取液混勻,轉(zhuǎn)移至燒杯中使用普通氮?dú)獯抵两?,最后用甲醇定容,過(guò)0.22 μm有機(jī)濾膜后移入液相色譜專用進(jìn)樣瓶中[26-27]。芘的濃度采用高效液相色譜法測(cè)定,儀器為Agilent-1200高效液相色譜儀。色譜儀主要設(shè)定參數(shù):流動(dòng)相為100%甲醇,流速為0.8 mL/min,可變波長(zhǎng)檢測(cè)器(variable wavelength detector,簡(jiǎn)稱VWD)檢測(cè)波長(zhǎng)為254 nm,柱箱溫度為35 ℃,進(jìn)樣量為10 μL。
1.5 EPS化學(xué)成分分析
糖類含量的測(cè)定采用硫酸-苯酚法[28],蛋白質(zhì)和腐殖酸的測(cè)定采用修正的Folin-Lowry法[29],DNA的測(cè)定采用二苯胺法[30]。
1.6 EPS形態(tài)特征分析
EPS的形態(tài)特征采用環(huán)境掃描電子顯微鏡進(jìn)行檢測(cè),將準(zhǔn)備好的EPS樣品冷凍干燥成粉末狀,將制備好的EPS粉末粘在樣品臺(tái)上,鍍金后照相檢測(cè)。
1.7 EPS三維熒光光譜分析
提取的EPS樣品可直接進(jìn)行三維熒光測(cè)定。熒光光度計(jì)參數(shù)設(shè)定:發(fā)射掃描波長(zhǎng)為0.25~0.65 μm,激發(fā)掃描波長(zhǎng)為0.20~0.55 μm,激發(fā)和發(fā)射狹縫寬度為5×10-3 μm,掃描速度為12 μm/min,響應(yīng)時(shí)間為自動(dòng)方式,掃描光譜進(jìn)行儀器自動(dòng)校正。
1.8 EPS紅外光譜分析
將提取到的EPS樣品經(jīng)真空干燥(-60 ℃,24 h),取適量的粉末用傅里葉紅外光譜儀(型號(hào):NICOLET380)進(jìn)行測(cè)定,分辨率為4 cm-1,掃描次數(shù)為32次/min,測(cè)定范圍為 4 000~500 cm-1。
2 結(jié)果與分析
2.1 毛霉EPS釋放和芘降解的關(guān)系
由圖1可知,隨著污染物芘的濃度由0增加到 120 mg/L,毛霉EPS的含量呈先增大后減少的趨勢(shì)。不加污染物芘時(shí),提取的毛霉EPS含量為741 mg/L,10 mg/L芘誘導(dǎo)毛霉EPS的提取量增加到813 mg/L,隨著芘濃度的增加,提取到的EPS含量也在持續(xù)增加,直到芘的濃度增加到 80 mg/L 時(shí),EPS的提取量達(dá)到峰值,為1 561 mg/L,比原毛霉EPS的提取量增加了820 mg/L,而120 mg/L芘則明顯抑制了EPS的提取量,使其降低到403 mg/L,這說(shuō)明芘的濃度小于80 mg/L可以促進(jìn)毛霉EPS的分泌,而過(guò)高濃度的芘則起到抑制作用。隨著芘濃度由10 mg/L增加到80 mg/L時(shí),TOC值逐漸上升;芘濃度為120 mg/L時(shí),毛霉對(duì)多環(huán)芳烴的降解率明顯下降,其對(duì)芘的降解率由80%下降到43.8%。這與Machín-Ramírez等的研究結(jié)論[31-33]一致。Machín-Ramírez等以黑曲霉、木霉霉菌、釀酒酵母菌、粘質(zhì)沙雷氏菌、芽孢桿菌、假單胞菌屬等降解苯并芘,最大降解率為65%(初始濃度為50 mg/L)[31];Zafra等使用綠色木霉H15、曲霉H7、黃曲霉等多種真菌和細(xì)菌聯(lián)用降解芘,14 d后,芘的降解率為 48.18%[32];Jia等的研究表明,毛霉對(duì)芘(初始濃度為 37.9 mg/L)的最大降解率為86.5%[33]。這些數(shù)據(jù)證實(shí)了真菌和細(xì)菌對(duì)芘的生物降解能力。
2.2 芘對(duì)毛霉EPS生化成分的影響
2.2.1 不同芘濃度下毛霉EPS主要成分含量的變化 由圖2可知,毛霉EPS的4種主要成分中糖類的含量最高,其次為蛋白質(zhì),再次為類腐殖質(zhì),最后為DNA(由于提取EPS過(guò)程中沒(méi)有破壞細(xì)胞核,EPS中DNA含量極低),隨著污染物芘的濃度由0增加到120 mg/L,提取毛霉EPS中的糖類、蛋白質(zhì)、類腐殖質(zhì)含量呈先增大后減小的規(guī)律,而DNA的含量基本不變,這可能是因?yàn)槊篂檎婧宋⑸?,真核微生物的DNA一般多數(shù)在細(xì)胞核內(nèi),加熱法提取EPS為物理方法,對(duì)細(xì)胞破損較小,不會(huì)破壞細(xì)胞核結(jié)構(gòu),因此DNA含量基本保持不變。綜合不同濃度芘誘導(dǎo)毛霉EPS提取量的試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行分析,4種主要成分中除DNA外,隨著芘濃度增加的變化規(guī)律與毛霉EPS提取量的變化規(guī)律相同。80 mg/L芘誘導(dǎo)下,EPS的提取量與糖類、蛋白質(zhì)、類腐殖質(zhì)的含量均出現(xiàn)峰值。說(shuō)明微生物在芘的誘導(dǎo)下,細(xì)胞會(huì)分泌降解所需的酶和糖類,而高濃度的芘則會(huì)對(duì)細(xì)胞產(chǎn)生毒性,從而抑制了微生物的生長(zhǎng),進(jìn)而抑制其EPS的分泌。
毛霉EPS主要成分為糖類和蛋白質(zhì),其次為類腐殖質(zhì)等,這與李紹峰等的研究結(jié)論[34-35]一致。與污泥EPS的主要成分為多糖和蛋白質(zhì)的研究結(jié)果[36]也相似。加入芘誘導(dǎo)后蛋白質(zhì)和多糖含量發(fā)生變化,因此,污染物芘對(duì)EPS的成分產(chǎn)生影響。Yue等從污水處理廠中分離出脫硫弧菌(Desulfovibrio desulfuricans)菌株,培養(yǎng)過(guò)程中加入Cu2+、Zn2+、Cd2+,分析結(jié)果表明重金屬的存在增加了EPS表面官能團(tuán)的濃度[37]。
2.2.2 芘對(duì)毛霉EPS紅外光譜的影響 由圖3可知,光譜圖上均出現(xiàn)多個(gè)吸收峰,說(shuō)明EPS中存在較多官能團(tuán)。3 400~3 200 cm-1 處的譜峰可歸屬為細(xì)胞表面蛋白質(zhì)N—H鍵的伸縮振動(dòng)和碳水化合物中結(jié)合水的O—H鍵的伸縮振動(dòng)。1 650~1 620 cm-1處的譜峰來(lái)自典型的細(xì)胞蛋白質(zhì)酰胺Ⅰ帶(C—O的伸展振動(dòng))和酰胺Ⅱ帶(N—H的彎曲振動(dòng)與C—N伸展振動(dòng)的疊加)。1 380~1 330 cm-1處的譜峰是烷基C—H伸縮振動(dòng)的吸收帶。1 200~1 000 cm-1處的譜峰是C—O鍵伸展振動(dòng)的吸收帶,譜帶強(qiáng),主要是多糖C—O鍵的伸展振動(dòng)吸收,稱為多糖區(qū)。另外,指紋區(qū)(1 330~400 cm-1)出現(xiàn)多個(gè)吸收峰,是由于整個(gè)分子振動(dòng)轉(zhuǎn)動(dòng)引起的,表明毛霉EPS中存在著含硫、磷基團(tuán)。由光譜a與光譜b、c、d、e、f比較可知,由光譜a中 3 346 cm-1 處寬而大的蛋白峰在光譜b、c、d、e、f中分別為 3 345、3 278、3 255、3 282、3 355 cm-1,C—O鍵向低波數(shù)移動(dòng),C—O鍵鍵長(zhǎng)縮短,發(fā)生了紅移,且隨著芘濃度由10 mg/L增加到80 mg/L,移動(dòng)長(zhǎng)度由1 cm-1增加到 364 cm-1,當(dāng)芘濃度增加到120 mg/L時(shí),C—O鍵向高波數(shù)移動(dòng),C—O鍵鍵長(zhǎng)增長(zhǎng),發(fā)生了藍(lán)移,說(shuō)明在芘誘導(dǎo)毛霉時(shí)EPS中的蛋白質(zhì)參加了反應(yīng),且隨著芘濃度的增大毛霉EPS中蛋白質(zhì)對(duì)毛霉降解芘的促進(jìn)作用呈先增大后減小的趨勢(shì)。光譜a中1 555 cm-1處譜峰為酰胺(OCN—H)Ⅰ帶,是C=O鍵的伸縮振動(dòng),誘導(dǎo)前后從11 648 cm-1分別移動(dòng)到1 626、1 635、1 632、1 632、1 621 cm-1,這說(shuō)明毛霉降解芘時(shí),毛霉EPS中主要是羥基和酰胺基起主要作用。光譜a中 1 038 cm-1 處峰在不同濃度芘誘導(dǎo)后的光譜b、c、d、e、f中分別移至1 042、1 069、1 042、1 031、1 072 cm-1,發(fā)生紅移,說(shuō)明在毛霉降解芘時(shí),EPS中多糖上的—COO被消耗,減少了 —COO 的含量。說(shuō)明,在毛霉降解芘的過(guò)程中,EPS的主要成分糖類促進(jìn)了降解反應(yīng)的進(jìn)行,隨著芘濃度的增大蛋白質(zhì)的促進(jìn)作用呈現(xiàn)先增大后減小的規(guī)律。
紅外光譜分析結(jié)果中羥基、酯基是疏水基團(tuán),羥基、羧基、
醛基、氨基和磺酸基是親水基團(tuán)。眾所周知,蛋白質(zhì)和多糖影響微生物菌株EPS的物理化學(xué)性質(zhì)、疏水性和絮凝性[38]。EPS和污染物之間的驅(qū)動(dòng)力主要來(lái)自疏水相互作用、氫鍵或靜電相互作用[39]。由于EPS中存在一些疏水區(qū)域,許多有機(jī)污染物如菲、苯、染料(如甲苯胺藍(lán))等都可以被EPS吸收[40-41]。因此,在芘生物降解過(guò)程中,芘誘導(dǎo)后微生物EPS對(duì)芘降解效果的影響比原微生物的EPS更有效。
2.2.3 芘對(duì)毛霉EPS三維熒光光譜的影響 在0.230/0.350 μm 的激發(fā)/發(fā)射波長(zhǎng)(Ex/Em)處識(shí)別出第一主要熒光峰(峰1),而另一個(gè)主峰(峰2)位于Ex/Em=0.275/0.350 μm 處。根據(jù)Hudson的分類[42],這2個(gè)峰位于Ⅰ(芳香族蛋白質(zhì))和Ⅱ(芳香族蛋白質(zhì))的區(qū)域。它們與衍生自其中的芳香族氨基酸如酪氨酸和色氨酸蛋白質(zhì)的化合物相關(guān)。
由表1可知,污染物芘的濃度由10 mg/L增加到 80 mg/L,熒光強(qiáng)度逐漸增強(qiáng),色氨酸和酪氨酸含量隨之上升,說(shuō)明芘對(duì)毛霉向胞外分泌蛋白都有一定的促進(jìn)作用,其中芘的濃度為80 mg/L時(shí),蛋白峰的熒光強(qiáng)度達(dá)到最大值,色氨酸和酪氨酸含量最高。當(dāng)芘的濃度為120 mg/L時(shí),蛋白峰的熒光強(qiáng)度達(dá)到最小值,色氨酸和酪氨酸含量最低。也就是說(shuō),120 mg/L芘抑制了毛霉向胞外分泌蛋白。因此,適量芘誘導(dǎo)后,毛霉EPS中色氨酸含量增加。芘的加入使得EPS的峰1和峰2的熒光強(qiáng)度發(fā)生變化,這直接影響了EPS在芘去除過(guò)程中的作用。值得注意的是,經(jīng)0~80 mg/L芘誘導(dǎo),毛霉EPS在 0.230/0.350 μm的激發(fā)/發(fā)射波長(zhǎng)處的類蛋白1,熒光強(qiáng)度由86.45 a.u.上升至221.30 a.u.;在 0.275/0.350 μm 的激發(fā)/發(fā)射波長(zhǎng)處的類蛋白2,熒光強(qiáng)度由202.10 a.u.上升至243.10 a.u.;芘的濃度超過(guò)80 mg/L后峰1熒光強(qiáng)度減至 31.65 a.u.,峰2熒光強(qiáng)度減至180.10 a.u.。
芳香族蛋白質(zhì)物質(zhì)和類腐殖質(zhì)是提取的EPS樣品中的2種主要物質(zhì),特別是蛋白質(zhì)中色氨酸殘基,對(duì)有機(jī)污染物的去除起重要作用。通過(guò)熱力學(xué)計(jì)算得出,EPS對(duì)菲的降解是自發(fā)的、放熱的,疏水相互作用是主要作用方式,且蛋白峰中的色氨酸參與其中[12]。Zhang等報(bào)道,一羥基芘(PAHs的代謝生物標(biāo)記物)能與牛血清蛋白中的色氨酸殘基發(fā)生鍵合作用[13]。
2.3 芘對(duì)EPS表征的影響
圖4為不同濃度芘誘導(dǎo)下液體培養(yǎng)毛霉EPS粉末放大 5 000倍的掃描電鏡照片,由圖4-a可知,未經(jīng)馴化的毛霉EPS呈板結(jié)塊狀,四周凸起部分呈鋒利薄片狀。隨著芘的濃度由10 mg/L增加到80 mg/L,EPS粉末逐漸變得松散多孔,尤其是80 mg/L芘誘導(dǎo)下的毛霉EPS的照片呈毛絨狀,空隙量多
而且大,而120 mg/L芘誘導(dǎo)下的毛霉EPS沒(méi)粉末又重新變成板結(jié)狀。說(shuō)明芘誘導(dǎo)明顯影響毛霉EPS的結(jié)構(gòu),芘誘導(dǎo)后EPS具有更大的接觸面和吸附力,能更好地促進(jìn)芘的生物降解。
3 討論與結(jié)論
EPS是同時(shí)含有親水和疏水部分的兩親性化合物。因此,EPS可顯示可溶疏水底物的表面活性[43]。在相互作用的初始階段會(huì)產(chǎn)生使EPS和芘共聚的吸引力,如疏水相互作用[44-46]。在我國(guó)的報(bào)告中,EPS和PAHs之間的相互作用是自發(fā)的和放熱的,PAHs與EPS的結(jié)合主要由疏水相互作用[47]。一些研究報(bào)道引入化學(xué)物質(zhì),如合成表面活性劑、生物吸收劑、細(xì)菌聚合物等,可以增強(qiáng)PAHs從土壤表面的解吸[48-50]。Liu等認(rèn)為,細(xì)菌產(chǎn)生的細(xì)胞外聚合物可以增強(qiáng)吸收菲的釋放程度[8]。因此,可以推斷EPS可以增強(qiáng)芘在土壤表面的釋放,進(jìn)而增強(qiáng)PAHs的生物降解效果。
此外,馴化后EPS形態(tài)和成分的變化對(duì)PAHs的生物降解也有影響。電鏡下未經(jīng)馴化的黑曲霉EPS呈不規(guī)則塊狀,顆粒大且結(jié)塊,使用未經(jīng)馴化的黑曲霉降解芘,降解率達(dá) 56.61%[51],與馴化過(guò)的毛霉相比降解率略低(80 mg/L芘馴化降解率為80%),除去菌種自身降解能力外,未經(jīng)馴化的菌種EPS較為平滑,與馴化過(guò)的毛霉EPS相比,EPS與PAHs的接觸面積較小,因而降解能力略低。就成分而言,微生物分泌的胞外蛋白作為介質(zhì)為微生物攝入外來(lái)物質(zhì),胞外多糖起到對(duì)物質(zhì)的吸附和絮凝作用,腐殖酸與有機(jī)物產(chǎn)生吸附和配合作用,形成大分子絡(luò)合物[52-53]。幾種化合物相互配合使得EPS與生物體間發(fā)生離子架橋、靜電中和等反應(yīng)所表現(xiàn)出的黏結(jié)性,有利于對(duì)多環(huán)芳烴的溶解吸附,提高微生物對(duì)多環(huán)芳烴的去除能力[54],本試驗(yàn)結(jié)果與其基本一致。鑒于EPS的生物降解作用以及馴化后EPS形態(tài)和成分的變化,可以推測(cè)馴化后毛霉EPS對(duì)芘有更強(qiáng)的生物降解效果。
毛霉是高效的芘降解菌株,芘濃度為80 mg/L時(shí),芘誘導(dǎo)后毛霉產(chǎn)生的EPS量最大,為1 561 mg/L,其中糖類含量為 1 042 mg/L,蛋白質(zhì)含量為562 mg/L,類腐殖質(zhì)的含量為 312 mg/L。0~80 mg/L芘誘導(dǎo)后毛霉EPS熒光強(qiáng)度漸強(qiáng),這說(shuō)明色氨酸和類腐殖質(zhì)的蛋白質(zhì)樣物質(zhì)的量有所增加。因此,80 mg/L芘誘導(dǎo)后毛霉產(chǎn)生的EPS更能促進(jìn)芘的生物降解效果。80 mg/L芘誘導(dǎo)后的毛霉EPS呈毛絨狀,質(zhì)地疏松,接觸面更大,吸附力更強(qiáng),可以更好地促進(jìn)芘的生物降解。
參考文獻(xiàn):
[1]Barth J,Steidle D,Kuntz D,et al. Deposition,persistence and turnover of pollutants:first results from the EU project AquaTerra for selected river basins and aquifers[J]. Science of the Total Environment,2007,376(1/2/3):40-50.
[2]Teng Y,Luo Y M,Ping L F,et al. Effects of soil amendment with different carbon sources and other factors on the bioremediation of an aged PAH-contaminated soil[J]. Biodegradation,2010,21(2):167-178.
[3]Lors C,Damidot D,Ponge J F,et al. Comparison of a bioremediation process of PAHs in a PAH-contaminated soil at field and laboratory scales[J]. Environmental Pollution,2012,165:11-17.
[4]Janbandhu A,F(xiàn)ulekar M H. Biodegradation of phenanthrene using adapted microbial consortium isolated from petrochemical contaminated environment[J]. Journal of Hazardous Materials,2011,187(1/2/3):333-340.
[5]鄒德勛,駱永明,滕 應(yīng),等. 多環(huán)芳烴長(zhǎng)期污染土壤的微生物強(qiáng)化修復(fù)初步研究[J]. 土壤,2006,38(5):652-656.
[6]Bumpus J A,Tien M,Wright P,et al. Oxidation of persistent environmental pollutants by a white rot fungus[J]. Science,1985,228(4706):1434-1436.
[7]Asgher M,Bhatti H N,Ashraf M,et al. Recent developments in biodegradatipn of industrial pollutants by white rot fungi and their enzyme systemt[J]. Biodegradation,2008,19:771-783.
[8]Liu A,Ahn I S,Mansfield C,et al. Phenanthrene desorption from soil in the presence of bacterial extracellular polymer:observations and model predictions of dynamic behavior[J]. Water Research,2001,35(3):835-843.
[9]Jia C Y,Li P J,Li X J,et al. Degradation of pyrene in soils by extracellular polymeric substances (EPS) extracted from liquid cultures[J]. Process Biochemistry,2011,46(8):1627-1631.
[10]姜春陽(yáng). 微生物胞外聚合物在多環(huán)芳烴降解酶釋放過(guò)程中的作用[D]. 沈陽(yáng):沈陽(yáng)理工大學(xué),2015:3-4.
[11]楊智臨,陳 海,白智勇,等. 生物共代謝法降解石油污染土壤中的萘、菲[J]. 油氣田地面工程,2014(11):48-49.
[12]Pan X L,Liu J,Zhang D Y. Binding of phenanthrene to extracellular polymeric substances(EPS)from aerobic activated sludge:a fluerescence study[J]. Colloids and Surfaces B-Biointerfaces,2010,80(1):103-106.
[13]Zhang J,Chen W X,Zhang W,et al. Interaction of 1-hydroxypyrene with BSA using fluorescence anisotropy and synchronous fluorescence analysis methods[J]. Chemical Journal of Chinese Universities,2015,36(8):1511-1516.
[14]Johnsen A R,Karlson U. Evaluation of bacterial strategies to promote the bioavailability of polycyclic aromatic hydrocarbons[J]. Applied Microbiology and Biotechnology,2004,63(4):452-459.
[15]Jorand F,Zartarian F,Tomas F,et al. Chemical and structural (2D) linkage between bacteria within activated sludge flocs[J]. Water Research,1995,29(7):1639-1647.
[16]Bura R,Cheung M,Liao B,et al. Composition of extracellular polymeric substances in the activated sludge floc matrix[J]. Water Science and Technology,1998,37(4/5):325-333.
[17]Morgan J W,F(xiàn)orster C F,Evison L. A comparative study of the Nature of biopolymers extracted from anaerobic and activated sludge[J]. Water Research,1990,24(6):743-750.
[18]Houghton J I,Stephenson T. Effect of influent organic content on digested sludge extracellular polymer content and dewaterability[J]. Water Research,2002,36(14):3620-3628.
[19]Domínguez L,Rodríguez M,Prats D. Effect of different extraction methods on bound EPS from MBR sludges:Part II:influence of extraction methods over molecular weight distribution[J]. Desalination,2010,262(1/2/3):106-109.
[20]Dignac M F,Urbain V,Rybacki D,et al. Chemical description of extracellular polymers:implication on activated sludge floc structure[J]. Water Science and Technology,1998,38(8/9):45-53.
[21]Omoike A,Chorover J. Spectroscopic study of extracellular polymeric substances from Bacillus subtilis:aqueous chemistry and adsorption effects[J]. Biomacromolecules,2004,5(4):1219-1230.
[22]Morales O,Santiago G B,Chan M J,et al. Characterization of extracellular polymers synthesized by tropical intertidal biolfilm bateria[J]. Applied Microbiology Biotechnology,2007,102(1):254-264.
[23]Sheng G P,Yu H Q,Wang C M. FTIR-spectral analysis of two photosynthetic hydrhogen producing strains and their extracellular polymeric substances[J]. Applied Microbiology Biotechnology,2006,73(1):204-210.
[24]Akay O,zer A T,F(xiàn)ox G A,et al. Behavior of sandy slopes remediated by EPS-block geofoam under seepage flow[J]. Geotextiles and Geomembranes,2013,37:81-98.
[25]Lattner D,F(xiàn)lemming H C,Mayer C. 13C-NMR study of the interaction of bacterial alginate with bivalent cations[J]. International Journal of Biological Macromolecules,2003,33(1/2/3):81-88.
[26]謝重閣. 環(huán)境中石油污染物的分析技術(shù)[M]. 北京:中國(guó)環(huán)境科學(xué)出版社,1987:31-33.
[27]宋玉芳,區(qū)自清,孫鐵珩. 土壤、植物樣品中多環(huán)芳烴(PAHs)分析方法研究[J]. 應(yīng)用生態(tài)學(xué)報(bào),1995,6(1):92-96.
[28]Zhang Z,Xia S,Wang X,et al. A novel biosorbent for dye removal:extracellular polymeric substance (EPS) of Proteus mirabilis TJ-1[J]. Journal of Hazardous Materials,2009,163(1):279-284.
[29]Frolund B,Palmgren R,Keiding K,et al. Extraction of extracellular polymers from activated sludge using a cation exchange resin[J]. Water Research,1996,30(8):1749-1758.
[30]Domingues A. Composition,fate,and transformation of extracellular polymers in wastewater and sludge treatment processes[D]. New York:Cornell University,2000.
[31]Machín-Ramírez C,Morales D,Martínez-Morales M,et al. Benzo[a]pyrene removal by axenic- and co-cultures of some bacterial and fungal strains[J]. International Biodeterioration & Biodegradation,2010,64(7):538-544.
[32]Zafra G,Absalón A E,del Carmen-Cuevas M,et al. Isolation and selection of a highly tolerant microbial consortium with potential for PAH biodegradation from heavy crude oil-contaminated soils[J]. Water,Air,& Soil Pollution,2014,225:1826.
[33]Jia C Y,Li X J,Zhang L F,et al. Extracellular polymeric substances from a fungus than a bacterium are more effective in polycyclic aromatic hydrocarbon biodegradation[J]. Water,Air,& Soil Pollution,2017,228:195.
[34]李紹峰,崔崇威,黃君禮. 胞外聚合物EPS對(duì)MBR膜污染的影響[J]. 哈爾濱工業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2007,39(2):266-269.
[35]龍騰銳,龍向宇,唐 然,等. 胞外聚合物對(duì)生物絮凝影響的研究[J]. 中國(guó)給水排水,2009,25(7):30-34,40.
[36]田衛(wèi)東. 三種方法提取活性污泥胞外聚合物的比較[J]. 節(jié)能技術(shù),2009,154(2):184-186.
[37]Yue Z B,Li Q,Li C C,et al. Component analysis and heavy metal adsorption ability of extracellular polymeric substances (EPS) from sulfate reducing bacteria[J]. Bioresource Technology,2015,194:399-402.
[38]Guo W S,Ngo H H,Li J X. A mini-review on membrane fouling[J]. Bioresource Technology,2012,122(5):27-34.
[39]Xu J,Sheng G P,Ma Y,et al. Roles of extracellular polymeric substances (EPS) in the migration and removal of sulfamethazine in activated sludge system[J]. Water Research,2013,47(14):5298-5306.
[40]Spath R,F(xiàn)lemming H C,Wuertz S. Sorption properties of biofilms[J]. Water Science and Technology,1998,37(4/5):207-210.
[41]Sheng G P,Zhang M L,Yu H Q. Characterization of adsorption properties of extracellular polymeric substances (EPS) extracted from sludge[J]. Colloids and Surfaces B-Biointerfaces,2008,62(1):83-90.
[42]Hudson N,Baker A,Ward D,et al. Can fluorescence spectrometry be used as a surrogate for the biochemical oxygen demand (BOD) test in water quality assessment? An example from South West England[J]. Science of the Total Environment,2008,391(1):149-158.
[43]Desai J D,Banat I M . Microbial production of surfactants and their commercial potential[J]. Microbiology & Molecular Biology Reviews Mmbr,1997,61(1):47-64.
[44]Jorand F,Boue-Bigne F,Block J C,et al. Hydrophobic/hydrophilic properties of activated sludge exopolymeric substances[J]. Water Science and Technology,1998,37(4/5):307-315.
[45]Esparza-Soto M,Westerhoff P. Biosorption of humic and fulvic acids to live activated sludge biomass[J]. Water Research,2003,37(10):2301-2310.
[46]Hilliou L,F(xiàn)reitas F,Oliveira R,et al. Solution properties of an exopolysaccharide from a Pseudomonas strain obtained using glycerol as sole carbon source[J]. Carbohydrate Polymers,2009,78(3):526-532.
[47]Zhou W J,Zhu L Z. Efficiency of surfactant-enhanced desorption for contaminated soils depending on the component characteristics of soil-surfactant- PAHs system[J]. Environmental Pollution,2007,147(1):66-73.
[48]Nie M Q,Yin X H,Ren C Y,et al. Novel rhamnolipid biosurfactants produced by a polycyclic aromatic hydrocarbon-degrading bacterium Pseudomonas aeruginosa strain NY3[J]. Biotechnology Advances,2010,28(5):635-643.
[49]Lai C C,Huang Y C,Wei Y H,et al. Biosurfactant-enhanced removal of total petroleum hydrocarbons from contaminated soil[J]. Journal of Hazardous Materials,2009,167(1/2/3):609-614.
[50]姜春陽(yáng),賈春云,張麗芳,等. 微生物胞外聚合物對(duì)土壤中芘降解效果的促進(jìn)作用[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2015,43(6):303-306.
[51]Czaczyk K,Myszka K. Biosynthesis of extracellular polymeric substances (EPS) and its role in microbial biofilm formation[J]. Polish Journal of Environmental Studies,2007,16(6):799-806.
[52]Seo Y,Lee W H,Sorial G,et al. The application of a mulch biofilm barrier for surfactant enhanced polycyclic aromatic hydrocarbon bioremediation[J]. Environmental Pollution,2009,157(1):95-101.
[53]Zhou Z,Sun H,Zhang W. Desorption of polycyclic aromatic hydrocarbons from aged and unaged charcoals with and without modification of humic acids[J]. Environmental Pollution,2010,158(5):1916-1921.
[54]Mayer C,Moritz R,Kirschner C,et al. The role of intermolecular interactions:studies on model systems for bacterial biofilms[J]. International Journal of Biological Macromolecules,1999,26(1):3-16. 安佑志,黎郡英,張鳳太. 古鎮(zhèn)旅游地土地利用格局演變及其驅(qū)動(dòng)力研究——以貴州省青巖古鎮(zhèn)為例[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2019,47(6):273-279.