国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

元胡的根際細(xì)菌群落組成及種源差異

2019-09-10 07:22經(jīng)灑灑郁吉鋒宋騰蛟楊蔣舜高建莉袁小鳳
海外文摘·學(xué)術(shù) 2019年6期

經(jīng)灑灑 郁吉鋒 宋騰蛟 楊蔣舜 高建莉 袁小鳳

摘要:目的:分析元胡的根際細(xì)菌多樣性及組成,以探究元胡根際微生物組成與種源的關(guān)系。方法:選取6個(gè)種源的元胡種植在道地產(chǎn)區(qū)同一類(lèi)型土壤中,在收獲期采集元胡根際土,利用Miseq測(cè)序檢測(cè)根際細(xì)菌群落,并分析其種源差異。結(jié)果:不同種源之間元胡根際細(xì)菌多樣性水平整體差異不大,細(xì)菌的結(jié)構(gòu)在門(mén)水平也無(wú)顯著性差異,均由變形菌、酸桿菌、放線菌、厚壁菌、擬桿菌門(mén)、疣微菌和芽單胞菌等組成。道地性產(chǎn)區(qū)中,所有種源的元胡根際優(yōu)勢(shì)菌基本相同,均含有Gp16,Saccharibacteria等優(yōu)勢(shì)菌,劣勢(shì)菌有一定差異。PCoA主成分分析顯示,6個(gè)種源間距離相當(dāng),均沒(méi)有體現(xiàn)差異性。結(jié)論:元胡細(xì)菌群落的組成無(wú)種源差異,種源與土壤類(lèi)型、氣候等因素共同決定元胡根際細(xì)菌多樣性組成。

關(guān)鍵詞:元胡;道地性;土壤細(xì)菌群落;Miseq測(cè)序

中圖分類(lèi)號(hào):S56 ? ? ?文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A 文章編號(hào):1003-2177(2019)06-0119-06

0 引言

元胡Corydalis turtschaninovii 又名延胡索、玄胡,為罌粟科紫堇屬多年生草本植物,與白術(shù)、芍藥、貝母等并稱(chēng)“浙八味”,為大宗常用中藥。性溫,味辛苦,是活血化瘀、行氣止痛的良藥。在我國(guó),元胡主要分布在安徽、江蘇、浙江、陜西等地,其中,在浙江省東陽(yáng)市已有1200多年的種植歷史,逐漸形成了特有的品質(zhì)和地道產(chǎn)區(qū),中藥材向來(lái)注重道地性[1],然而隨著產(chǎn)業(yè)的需求和種植規(guī)模的擴(kuò)大,就需要不斷的引入新種源,這勢(shì)必會(huì)對(duì)藥材的產(chǎn)量和品質(zhì)造成不同程度的影響。中藥材質(zhì)量可因產(chǎn)地不同而存在明顯差異,這些與植物、土壤和微生物所構(gòu)建的土壤生態(tài)系統(tǒng)密切相關(guān)。

土壤微生物是土壤生態(tài)系統(tǒng)中重要的組成部分,在土壤養(yǎng)分的轉(zhuǎn)化循環(huán)、系統(tǒng)穩(wěn)定性、抗干擾能力以及可持續(xù)利用中占據(jù)主導(dǎo)地位[2]。有研究表明,土壤微生物不僅能促進(jìn)植物對(duì)礦質(zhì)元素的吸收[3],還具有增強(qiáng)植物抵抗生物和非生物脅迫能力等作用[4-6]。因此,中藥材道地性應(yīng)研究不可忽視的根際微生物。本文選擇元胡道地產(chǎn)區(qū) (浙江東陽(yáng)) 和非道地產(chǎn)區(qū) (陜西漢中、浙江磐安) 藥用元胡為研究對(duì)象,運(yùn)用Miseq測(cè)序技術(shù),研究不同種源藥用元胡根際土壤細(xì)菌菌的多樣性,旨在為中藥材道地性理論提供科學(xué)的實(shí)驗(yàn)證據(jù)。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)與樣品采集

試驗(yàn)田設(shè)在東陽(yáng)市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究所實(shí)驗(yàn)基地。本實(shí)驗(yàn)選擇不同種源的元胡種,主要包括金華市東陽(yáng)市老區(qū)-東門(mén)村、金華市東陽(yáng)市老區(qū)-馬宅鎮(zhèn)、金華市東陽(yáng)市新區(qū)-南馬鎮(zhèn)、金華市東陽(yáng)市老區(qū)-龍泉村、金華市磐安-冷水鎮(zhèn)、陜西-漢中市6個(gè)種源。于2017年9月25日將元胡種植在實(shí)驗(yàn)田中,按上述不同種源將實(shí)驗(yàn)分為6組,即道地-東門(mén),道地-馬宅,道地-南馬,道地-龍泉,非道地-冷水,和非道地-漢中組。每組10株,每個(gè)處理6個(gè)重復(fù)。于2018年5月4日元胡采挖時(shí),采集其塊莖,收集根際土。

1.2 土壤細(xì)菌多樣性檢測(cè)

采用Omega試劑盒提取土壤DNA,具體步驟按其說(shuō)明書(shū)進(jìn)行。得到的DNA 做為模板,采用Ependorf 的PCR system2700 型基因擴(kuò)增儀,以Miseq測(cè)序平臺(tái)的V3-V4通用引物(融合341F引物:CCTACACGACGCTCTTCCGATCTN (barcode) CCTACGGGNGGCWGCAG融合805R引物:GACTGGAGTTCCTTGGCACCCGAG AATTCCAGACTACHVGGGTATC TAATCC),進(jìn)行擴(kuò)增。采用普通PCR策略:94℃預(yù)變性3min,94℃變性30s,45℃退火20 s,65℃延伸20s(重復(fù)5個(gè)循環(huán)) ;再以94℃變性20s,55℃退火20s,72℃延伸30s (重復(fù)5個(gè)循環(huán)) 最后再72℃延伸5min。PCR擴(kuò)增產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)。將目的產(chǎn)物用凝膠回收試劑盒進(jìn)行割膠回收,回收產(chǎn)物用Qubit2.0定量,根據(jù)測(cè)得的DNA濃度,將所有樣品按照1:1的比例進(jìn)行混合;混合后充分震蕩均勻。送上海生工生物工程有限公司進(jìn)行Miseq測(cè)序。

1.3 數(shù)據(jù)處理及分析

Miseq數(shù)據(jù)采用Flash軟件融合雙末端序列,而后通過(guò)各樣品barcode使數(shù)據(jù)回歸樣品,并對(duì)各樣本序列做QC,去除非靶區(qū)域序列及嵌合體。物種分類(lèi),采用RDP classifier將序列進(jìn)行物種分類(lèi),對(duì)每個(gè)樣本和每個(gè)物種單元分類(lèi)進(jìn)行序列豐度計(jì)算構(gòu)建樣本和物種分類(lèi)單元序列豐度矩陣。OTU聚類(lèi),將多條序列根據(jù)其序列之間的距離來(lái)對(duì)它們進(jìn)行聚類(lèi),后根據(jù)序列之間的相似性作為域值分成操作分類(lèi)單元(OTU)。α多樣性分析,計(jì)算各種物種多樣性指數(shù),衡量樣本物種多樣性。β多樣性分析,β多樣性指標(biāo)用來(lái)比較多組樣本之間的差別度量,將代表性序列比對(duì)參考核心16S rDNA序列,根據(jù)多序列隊(duì)列構(gòu)建代表性序列為節(jié)點(diǎn)的進(jìn)化樹(shù),利用Unifrac算法計(jì)算樣本距離、樣本聚類(lèi)、樣本PCOA。

2 結(jié)果

2.1 根際土壤細(xì)菌豐度及多樣性的種源差異

基于Miseq測(cè)序結(jié)果,根據(jù)OTU的豐度信息,使用稀疏曲線對(duì)元胡根際細(xì)菌群落多樣性進(jìn)行評(píng)估。稀疏曲線顯示當(dāng)樣本測(cè)序的序列較少時(shí),OTU數(shù)劇增,而隨著測(cè)序量的不斷增大,OTU數(shù)目趨于平緩,表示各個(gè)樣本達(dá)到了環(huán)境樣品的取樣深度,測(cè)到了絕大多數(shù)種類(lèi)的微生物。

利用Miseq測(cè)序技術(shù)檢測(cè)元胡根際土壤細(xì)菌多樣性及組成(表1),OTUs和ACE是菌群豐度的評(píng)估指標(biāo),Shannon指數(shù)是細(xì)菌多樣性的評(píng)估指標(biāo)[7]。從表 1 可知,道地各種源之間細(xì)菌豐度及多樣性水平無(wú)顯著性差異,而陜西漢中種引種到東陽(yáng)后,其細(xì)菌多樣性水平與豐度相對(duì)磐安種源有所下降,但與東陽(yáng)種源之間無(wú)顯著性差異,而磐安冷水相對(duì)于東陽(yáng)南馬種源的細(xì)菌豐度及多樣性水平無(wú)顯著性差異。由此可知,不同種源之間元胡根際細(xì)菌多樣性水平整體差異不大,影響元胡細(xì)菌多樣性或許有其他相關(guān)因素。

2.2 根際土壤細(xì)菌結(jié)構(gòu)的種源差異

2.2.1 門(mén)水平上的差異

對(duì)元胡根際細(xì)菌門(mén)的多樣性進(jìn)行分析發(fā)現(xiàn),本研究共有34個(gè)菌門(mén)被鑒定,結(jié)果如表2所示。在所有樣品中,變形菌是豐度最高的門(mén)類(lèi),分別占有總序列數(shù)的37.4%-42.5%,其次為酸桿菌、放線菌和厚壁菌;24個(gè)菌門(mén)為6個(gè)種源共有,占總菌門(mén)的70%,分別為擬桿菌、疣微菌、芽單胞菌、厚壁菌、浮霉菌、綠彎菌等。分析發(fā)現(xiàn),這些共有菌門(mén)在不同種源間均無(wú)顯著性差異。當(dāng)然,有些種源亦有特有菌,如梭桿菌門(mén)為非道地漢中組特有,泉古菌為非道地冷水組特有,不過(guò)這些特有菌的豐度極低,所占比例均為0.01%??傊?,不同種源元胡根際細(xì)菌門(mén)水平上無(wú)顯著性差異。

2.2.2 屬水平上的差異

從屬水平上分析可知,6個(gè)種源分別具有637、580、604、652、620及680個(gè)屬,每個(gè)種源屬組成差異不大,選取每個(gè)處理組中排名前20的屬作為優(yōu)勢(shì)菌屬(表3)。對(duì)優(yōu)勢(shì)菌屬進(jìn)行分析發(fā)現(xiàn),10個(gè)優(yōu)勢(shì)菌屬為其共有,分別為Gp1、芽單胞菌屬(Gemmatimonas)、Rhizomicrobium、Gaiella、芽孢桿菌屬(Bacillus)、鞘氨醇單胞菌屬(Sphingomonas)、Gp3、Gp2、Rudaea和伯克氏菌屬 (Burkholderia),其中,Gp1含量最高,所占比例為7.3%-8.1%,其次為芽單胞菌屬、鞘氨醇單胞菌屬和Gaiella,所占比例分別為4.4%-4.8% 、2.9%-3.6%和2.8%-3.7%,分析發(fā)現(xiàn),排名前三的Gp1、芽單胞菌屬和鞘氨醇單胞菌屬在6個(gè)種源間所占比例均無(wú)顯著性差異;除上述含量相對(duì)較高的優(yōu)勢(shì)菌屬之外,我們發(fā)現(xiàn),假單胞菌、伯克氏菌屬和固氮菌慢生根瘤菌屬(Bradyrhizobium)也是他們的優(yōu)勢(shì)菌屬,對(duì)比之后發(fā)現(xiàn),這些菌屬在不同種源之間均無(wú)顯著性差異;而6個(gè)種源間優(yōu)勢(shì)菌屬的組成也存在一定的差異,這主要體現(xiàn)在不同種源之間擁有其特有屬,如:Rhodoplanes、Nitrosospira為道地產(chǎn)區(qū)特有,Dongia、Tumebacillus、Aquisphaera只出現(xiàn)在磐安種中,而Chitinophaga和Thermosporothrix卻僅在漢中組出現(xiàn),但這些優(yōu)勢(shì)菌屬豐度較低,所占的比例均小于1%。由此可知,不同種源元胡根際細(xì)菌多樣性在屬水平上整體差異不大。

2.3 主成分分析不同處理組根際細(xì)菌的差異

主成分分析(PCoA)結(jié)果如圖1所示。P1和P2分別解釋了40.1%和12.6%的變異率。由圖可知,6個(gè)種源之間聚為一類(lèi),沒(méi)有體現(xiàn)差異性,這與OUTs和Shannon指數(shù)一致。

3 討論

道地藥材是傳統(tǒng)的、公認(rèn)的且來(lái)源于特定產(chǎn)地的名優(yōu)正品藥材,是中藥材精粹之所在,也是歷代醫(yī)家防病治病最有力的武器之一。元胡有1200多年的栽培歷史,傳統(tǒng)認(rèn)為浙江東陽(yáng)為元胡的道地產(chǎn)區(qū),目前認(rèn)為元胡主要產(chǎn)地位于浙江東陽(yáng)和磐安、陜西漢中,而湖北、湖南、江蘇等省區(qū)也有栽培。目前,關(guān)于元胡土壤微生物的研究較少,而圍繞中藥材道地性方面的研究更加缺乏。因此,本研究采用Miseq測(cè)序技術(shù),研究6個(gè)種源元胡根際細(xì)菌群落的多樣性,以期為中藥材的道地性與根際土壤微生物的相關(guān)性研究奠定基礎(chǔ)。

通過(guò)對(duì)元胡根際細(xì)菌多樣性進(jìn)行分析,我們發(fā)現(xiàn),OTU及Shannon指數(shù)均表明元胡根際細(xì)菌多樣性整體差異不大,在門(mén)水平上亦無(wú)顯著性差異,屬水平上整體差異不大,因此,我們得出結(jié)論,不同種源元胡根際細(xì)菌多樣性整體無(wú)顯著性差異,種源對(duì)土壤根際微生物的影響微乎其微。

而不同種源間土壤根際微生物的無(wú)差異性在以往的研究中亦有體現(xiàn)。李國(guó)斌[8]等研究了不同種源蒙古黃芪根際微生物的變化,結(jié)果表明,不同種源根際細(xì)菌及真菌豐度均無(wú)顯著性差異;邵士成等[9]研究了云南元江印楝植物內(nèi)生真菌的種類(lèi)組成,結(jié)果表明,不同地理種源印楝植物內(nèi)生真菌的種類(lèi)組成沒(méi)有明顯差異,但王戈[10]等研究發(fā)現(xiàn),不同品種的烤煙根際微生物存在差異,苗則彥[11]等人同樣發(fā)現(xiàn)不同品種的黃瓜根際真菌、放線菌數(shù)量存在明顯差異,與我們的研究結(jié)果不同,由此可知,種源對(duì)微生物多樣性的影響會(huì)因物種的不同而產(chǎn)生不同的作用,這可能和物種與微生物的根際互作有關(guān),值得進(jìn)一步研究。微生物可以成為藥材植株的內(nèi)生菌,影響藥材植株的次生代謝,如參與合成次生代謝產(chǎn)物[13-14]或是植株在內(nèi)生菌的刺激下合成更多的防御性化合物[15],最終成為影響藥材道地性的一個(gè)因素。

同樣的種植環(huán)境,種源的不同并未對(duì)元胡根際細(xì)菌的多樣性產(chǎn)生影響,由此可見(jiàn),土壤與環(huán)境等相關(guān)因素的作用或許是造成元胡根際細(xì)菌多樣性的主要原因。相關(guān)研究發(fā)現(xiàn),土壤理化特性如顆粒大小、pH值及有機(jī)質(zhì)的含量等因素均會(huì)影響根際微生物的種群結(jié)構(gòu)與功能[12],而土壤pH值的增加還能在一定程度上改善植物根際微生物的結(jié)構(gòu),如增加生防菌熒光假單胞菌的數(shù)量[16] ;苗翠蘋(píng)[17]等人分析了三七根際土壤中微生物群落的變化與環(huán)境因子之間的關(guān)系,結(jié)果表明,真菌和細(xì)菌的數(shù)量變化均與環(huán)境因子有顯著性關(guān)系,細(xì)菌群落受到了更大的影響,而土壤中的總磷、有效磷、水解氮及pH是影響細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)的重要因素。同樣,本課題組前期研究發(fā)現(xiàn),浙貝母菌群結(jié)構(gòu)和組成是浙貝母物種與土壤共同作用的結(jié)果[18] ;Berg[19]等人同樣認(rèn)為植物物種和土壤類(lèi)型共同決定著根際微生物的結(jié)構(gòu)和功能。因此,我們推測(cè),種源對(duì)元胡根際細(xì)菌多樣性影響不大,而土壤環(huán)境等因素是決定元胡根際細(xì)菌多樣性的主要因素。

除此之外,通過(guò)對(duì)不同種源的優(yōu)勢(shì)菌屬分析發(fā)現(xiàn),不同種源間的優(yōu)勢(shì)菌屬假單胞菌(Pseudomonas)、伯克氏菌屬 (Burkholderia)和固氮菌慢生根瘤菌屬(Bradyrhizobium)等所占比例并未產(chǎn)生顯著影響。有研究表明,假單胞菌(Pseudomonas)能產(chǎn)生活性物質(zhì),抗多種植物病害[21] ;伯克氏菌屬 (Burkholderia)為根系促生菌(PGPR),其作用在番茄、美洲商陸和籽粒莧等植物中都已證實(shí)[21-22];慢生根瘤菌屬(Bradyrhizobium)是豆科植物主要的固氮菌,可和豆科植物形成共生體,是陸生系統(tǒng)中固氮主要來(lái)源[23],這些細(xì)菌對(duì)藥用元胡的生長(zhǎng)乃至元胡的藥材品質(zhì)有著怎樣的影響有待進(jìn)一步研究。

綜上所述,基于Miseq測(cè)序的方法顯示,東陽(yáng)產(chǎn)區(qū)元胡根際細(xì)菌具有豐富的多樣性,不同種源間元胡根際細(xì)菌多樣性在門(mén)及屬水平上均無(wú)顯著性差異。因此我們得出結(jié)論,種源并不是影響元胡根際細(xì)菌多樣性的主要因素,而土壤環(huán)境等因子的作用或許是決定元胡根際細(xì)菌多樣性的關(guān)鍵因素。除此之外,為了更好地闡明植物-土壤-微生物三者之間的關(guān)系,種源對(duì)元胡產(chǎn)量及品質(zhì)的影響還需進(jìn)一步的研究。

參考文獻(xiàn)

[1] Huang LQ, Guo LP, Ma CY, et al. Top-geoherbs of traditional Chinese medicine: commom traits, quality characteristics and formation [J]. Front Med, 2011,5(8):185-194.

[2] 納小凡,鄭國(guó)琦,彭勵(lì),等.不同種植年限寧夏枸杞根際微生物多樣性變化[J].土壤學(xué)報(bào),2016,53(1):241-251.

[3] Kuczynski J,Lauber C L,Walters W A. Experimental and analytical tools for studying the human microbiome[J].Nature Reviews Genetics,2012,13(1):47-58.

[4] Caporaso J G, Bittinger K, Bushman F D, et al.PyNAST:A flexible tool for aligning sequences to a template alignment[J]. Bioinformatics,2010,26(2):266-267.

[5] Caporaso J G,Kuczynski J,Stombaugh J,et al.QIIME allows analysis of high-throughput community sequencing data[J].NatureMethods,2010,7(5):335-336.

[6] McDonald D,Price M N,Goodrich J,et al. An improved Greengenes taxonomy with explicit ranks for ecological and evolutionary analyses of bacteria and archaea[J].The ISME Journal,2012,6(3):610-618.

[7] Maria G,Dominguez-Bello,Elizabeth K,et al. Delivery mode shapes the acquisition and structure of the initial microbiota across multiple body habitats in newborns[J]. Proc Natl Acad Sci USA,2010,107(26):11971-11975.

[8] 李國(guó)斌.蒙古黃巧根際微生物多樣性及其黃酮類(lèi)成分含量動(dòng)態(tài)變化研究[D].呼和浩特:內(nèi)蒙古大學(xué),2016:1-74.

[9] 邵士成,吳少華,陳有為,等.云南元江印楝植物內(nèi)生真菌的種類(lèi)組成[J].生物多樣性, 2008,16(1):63-67.

[10] 王戈,楊煥文,趙正雄,等.不同抗性烤煙品種根際微生物數(shù)量及多樣性差異研究[J].植物營(yíng)養(yǎng)與肥料學(xué)報(bào),2012,18(2):451-458.

[11] 苗則彥,趙奎華,劉長(zhǎng)遠(yuǎn),等.不同抗、感枯萎病黃瓜品種不同生育時(shí)期根際微生物數(shù)量消長(zhǎng)動(dòng)態(tài)分析[J].沈陽(yáng)農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2004,35(1):13-15.

[12] 江曙,段金廒,錢(qián)大瑋,等.根際微生物對(duì)藥材道地性的影響[J].土壤,2009,41(3):344-349.

[13] Jia M, Chen L, Xin H L, et al. A friendly relationship between endophytic fungi and medicinal plants: a systematic review[J]. Frontiers in Microbiology,2016,7.

[14] 冷慕嬋,董誠(chéng)明,喬毅琳,等.金銀花中產(chǎn)綠原酸內(nèi)生真菌的分離與鑒定[J].河南農(nóng)業(yè)科學(xué),2014,43(7):107-111.

[15] Pan F, Su X, Hu B, et al. Fusarium redolens 6WBY3, an endophytic fungus isolated from Fritillaria unibracteata var. wabuensis,produces peimisine and imperialine-3β-d-glucoside[J].Fitoterapia,2015,103:213-221.

[16] Ownley B H, Duffy B K, Weller D M. Identification and manipulation of soil properties to improve the biological control performance of phenazine-producing Pseudomonas fluorescens.Appl EnvironMicrobiol,2003,69(5):3333-3343.

[17] 苗翠蘋(píng).三七根際土壤微生物的群落特征[D].昆明:云南大學(xué),2015:1-127.

[18] 袁小鳳,彭三妹,王博林,等.利用DGGE 和454 測(cè)序研究不同浙貝母種源對(duì)根際土壤真菌群落的影響[J].中國(guó)中藥雜志,2014,39(22):4304-4310.

[19] Berg G, Smalla K. Plant species and soil type cooperatively shape the structure and function of microbial communities in the rhizosphere[J]. Fems Microbiol Ecol, 2009,68(1):1-13.

[20] 張偉瓊,聶明,肖明.熒光假單胞菌生防機(jī)理的研究進(jìn)展[J].生物學(xué)雜志,2007,24(3):9-11.

[21] Guo Jk, Tang Sh R, Ju XH, et al. Effects of inoculation of a plant growth promoting rhizobacterium Burkholderia sp. D54 on plant growth and metal uptake by a hypera ccumulator Sedum alfredi ihance grown on multiple metal contaminated soil[J]. World J Microbiol Biotechnol,2011,27(1):2835-2844.

[22] 廖上強(qiáng),郭軍康,王芳麗,等.美洲商陸和籽粒莧對(duì)接種伯克氏菌的生理生化響應(yīng)及其對(duì)富集銫的影響[J].環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào),2012,32(1):213-223.

[23] 聶剛,陳衛(wèi)民,韋革宏.神木地區(qū)耐旱灌木和草本豆科植物根瘤菌遺傳多樣性[J].應(yīng)用生態(tài)學(xué)報(bào),2014,25(6):1674 -1680.