蔣韞博，郭 燕，周雨馨，張改生,2，馬守才， 王軍衛(wèi)，牛 娜，趙惠燕2,，宋瑜龍,2

(1.西北農(nóng)林科技大學(xué)農(nóng)學(xué)院/國(guó)家楊凌農(nóng)業(yè)生物技術(shù)育種中心/國(guó)家小麥改良中心楊凌分中心/小麥育種教育部工程研究中心/ 陜西省作物雜種優(yōu)勢(shì)研究與利用重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，陜西楊凌 712100；2.旱區(qū)作物逆境生物學(xué)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室， 陜西楊凌 712100；3.西北農(nóng)林科技大學(xué)植物保護(hù)學(xué)院，陜西楊凌 712100)

小麥?zhǔn)鞘澜缛笾饕Z食作物之一，是人類(lèi)賴(lài)以生存的重要食物來(lái)源。2015 年我國(guó)小麥實(shí)際播種面積在 2 400.0萬(wàn)hm2以上，約占糧食作物總面積比重的 21.30%，是僅次于玉米、水稻的第三大糧食作物[1]。近年來(lái)，我國(guó)的小麥內(nèi)需超出了自身的產(chǎn)能，以致于不得不大量進(jìn)口國(guó)外小麥以滿(mǎn)足國(guó)內(nèi)需求。2007-2016 年間，我國(guó)小麥消費(fèi)總量以年均 0.2% 的增長(zhǎng)率整體平穩(wěn)低速增長(zhǎng)，于 2016 年達(dá)到 1.16 億 t，約占世界消費(fèi)量的 1/5；小麥進(jìn)口量則在 2013 年達(dá)到最高為 609 萬(wàn) t，約占世界當(dāng)年小麥進(jìn)口總量的 3.2%[2]。隨著國(guó)內(nèi)經(jīng)濟(jì)的高速發(fā)展，大量耕地用途被改變，導(dǎo)致農(nóng)田總面積減少[3]。為確保小麥生產(chǎn)滿(mǎn)足逐年穩(wěn)步增長(zhǎng)的消費(fèi)需求，減少對(duì)進(jìn)口小麥的依賴(lài)，最安全途徑就是提高單產(chǎn)。

目前，美國(guó)是雜種小麥種植面積最大的國(guó)家，雜種小麥面積占小麥種植總面積的 1%；英國(guó)、阿根廷、印度、法國(guó)和澳大利亞等國(guó)也積極推動(dòng)雜交小麥育種工作，年均累計(jì)推廣面積約 20 萬(wàn)～30 萬(wàn) hm2[4]。小麥雜種優(yōu)勢(shì)利用被認(rèn)為是今后小麥單產(chǎn)水平大幅度提高的有效途徑之一[5]，而小麥雜種優(yōu)勢(shì)利用的關(guān)鍵是獲得優(yōu)良的雄性不育系?，F(xiàn)階段，小麥雄性不育系主要包括三大類(lèi)：一是遺傳型不育系；二是光溫敏雄性不育系；三是化學(xué)雜交劑誘導(dǎo)的生理型雄性不育系[6]。基于上述三類(lèi)雄性不育系，目前已形成了兩種不同的小麥雜種優(yōu)勢(shì)利用途徑，分別是“三系法途徑”和“二系法途徑”。因恢復(fù)系缺乏有效的育性恢復(fù)基因和雜交種干癟等因素嚴(yán)重限制了“三系法途徑”小麥雜種優(yōu)勢(shì)在生產(chǎn)中的應(yīng)用[7-8]。另外，“二系法途徑”中光溫敏雄性不育系受環(huán)境因素影響較大，育性穩(wěn)定性較差[9-10]，在一定程度上限制了光溫敏二系雜交小麥的制種和大面積應(yīng)用?；瘹⒍捣瓤朔爽F(xiàn)有遺傳型雄性不育系(核質(zhì)互作雄性不育系和光溫敏雄性不育系)對(duì)不育基因和環(huán)境條件的依賴(lài)，又?jǐn)U大了雜種優(yōu)勢(shì)親本的選配范圍，加快了雜交種選育進(jìn)程，還簡(jiǎn)化了不育基因轉(zhuǎn)育的繁瑣程序[11-12]。因此，化殺二系法小麥雜種優(yōu)勢(shì)利用被認(rèn)為是眾多雜種優(yōu)勢(shì)利用途徑中最具應(yīng)用前景的類(lèi)型之一。

小麥化學(xué)雜交劑 SQ-1 是我國(guó)具有自主知識(shí)產(chǎn)權(quán)、兼具高效、穩(wěn)定和廣譜等特征的小麥化學(xué)雜交劑，其誘導(dǎo)小麥產(chǎn)生雄性不育率可達(dá)到 95%～100%，飽和授粉結(jié)實(shí)率達(dá) 85% 以上，具有巨大的產(chǎn)業(yè)化應(yīng)用潛力[13-15]。近年來(lái)，關(guān)于化學(xué)雜交劑 SQ-1 的研究多集中在不育機(jī)理研究[16-19]和殺雄嗪酸殘留[14,20]等方面，對(duì)其生態(tài)安全性評(píng)價(jià)一直未有深入研究，已逐漸成為限制 SQ-1 大面積應(yīng)用的瓶頸，同時(shí)也是化控二系雜交小麥強(qiáng)優(yōu)勢(shì)雜交組合創(chuàng)制與大面積推廣的重要限制因素。因此，本研究以 5 kg·hm-2的 SQ-1 處理過(guò)的小麥和對(duì)照小麥(等量清水處理)作為食材分別飼喂麥長(zhǎng)管蚜，通過(guò)分析蚜蟲(chóng)生命表重要參數(shù)變化及其體內(nèi)SOD、POD、CAT 和AchE的活性變化，分別從昆蟲(chóng)生態(tài)學(xué)、昆蟲(chóng)生理學(xué)和昆蟲(chóng)毒理學(xué)層面解析 SQ-1 的生態(tài)安全性，為 SQ-1 的應(yīng)用提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)材料

供試蟲(chóng)源麥長(zhǎng)管蚜來(lái)自西北農(nóng)林科技大學(xué)植物保護(hù)學(xué)院趙惠燕教授實(shí)驗(yàn)室；供試小麥材料西農(nóng) 1376 和化學(xué)雜交劑 SQ-1 均由西北農(nóng)林科技大學(xué)張改生教授實(shí)驗(yàn)室提供；酶活性測(cè)定所需試劑及試劑盒均購(gòu)自南京建成生物工程研究所。

1.2 生命表研究

挑選顆粒飽滿(mǎn)、大小基本一致的西農(nóng) 1376種子種植于盛有相同基質(zhì)的穴盤(pán)中，置于恒溫 20 ℃、光照正常的溫室中培養(yǎng)。待小麥發(fā)育至四葉期，將第 1 代麥長(zhǎng)管蚜接于正常小麥植株上進(jìn)行飼養(yǎng)，待產(chǎn)仔后將同齡第 2 代麥長(zhǎng)管蚜分成兩組：一組接于苗期均勻噴施過(guò) 5 kg·hm-2化學(xué)雜交劑 SQ-1 的小麥植株(30株)上，作為處理組；另一組接于苗期均勻噴施過(guò)等量清水的小麥植株(30株)上，作為對(duì)照組。每株小麥上僅接一頭麥長(zhǎng)管蚜，其中每 10 頭作為 1 個(gè)重復(fù)，共 3 個(gè)重復(fù)。自接種第二天開(kāi)始，每日上午 8:00-10:00觀察、記錄麥長(zhǎng)管蚜的蛻皮、生長(zhǎng)及產(chǎn)仔情況，直至第 2 代蚜蟲(chóng)全部死亡。與此同時(shí)，逐個(gè)收集第 2 代麥長(zhǎng)管蚜成蟲(chóng)，液氮冷凍后于 -80 ℃保存，供酶活性測(cè)定。分別做好處理組和對(duì)照組蚜蟲(chóng)的續(xù)代工作，連續(xù)飼喂直至第 11 代，并以相同的方法記錄第 6 代和第 11 代麥長(zhǎng)管蚜的生命表數(shù)據(jù)和收集成蟲(chóng)。

1.3 總酶液制備

分別稱(chēng)取第2、第6、第11 代處理組和對(duì)照組麥長(zhǎng)管蚜成蟲(chóng) 0.02 g，加入 0.18 mL 預(yù)冷的生理鹽水，于冰浴中機(jī)械勻漿；將勻漿液全部轉(zhuǎn)入離心管，2 500 r·min-14 ℃離心 10 min，取上清液作為待測(cè)酶液。 3次重復(fù)。

1.4 保護(hù)酶及解毒酶活性測(cè)定

1.4.1 總蛋白濃度測(cè)定

總蛋白濃度測(cè)定參照總蛋白定量測(cè)定試劑盒說(shuō)明書(shū)(A045-3)并有所改動(dòng)。將表1體系渦旋混勻， 37 ℃孵育 30 min。雙蒸餾水調(diào)零酶標(biāo)儀，在 562 nm 波長(zhǎng)、0.5 cm 光徑下測(cè)定各管 OD 值(光密度)。重復(fù)3次。按下列公式計(jì)算總蛋白濃度( μg·mL-1)：

表1 總蛋白濃度測(cè)定操作表Table 1 Measurement of total protein concentration μL

總蛋白濃度=(樣本OD值-空白OD值)/(標(biāo)準(zhǔn)OD值-空白OD值)×標(biāo)準(zhǔn)品濃度×樣本稀釋倍數(shù)

1.4.2 超氧化物歧化酶(SOD)活性測(cè)定

SOD活性測(cè)定參照SOD測(cè)定試劑盒說(shuō)明書(shū)(A001-3)并做少量修改。將表 2體系渦旋混勻，于 37 ℃孵育 20 min，用酶標(biāo)儀在 450 nm 波長(zhǎng)下測(cè)定各管 OD 值(光密度)。重復(fù)3次。按下列公式計(jì)算 SOD 活性(U·g-1)：

SOD抑制率=[(對(duì)照OD值-對(duì)照空白OD值)-(樣本OD值-樣本空白OD值)]/(對(duì)照OD值-對(duì)照空白OD值)×100%

SOD活性=SOD抑制率÷50%×樣本稀釋倍數(shù)÷樣本蛋白濃度

表2 SOD活性測(cè)定體系Table 2 Mixture for determining SOD activity μL

1.4.3 過(guò)氧化物酶(POD)活性測(cè)定

POD活性測(cè)定參照POD測(cè)定試劑盒說(shuō)明書(shū)(A084-1)并有所改動(dòng)。將表 3 中配制的各體系渦旋混勻，3 500 r·min-1離心 10 min，取上清液。雙蒸餾水調(diào)零酶標(biāo)儀，在 420 nm 波長(zhǎng)、1 cm 光徑下測(cè)定各管 OD 值(光密度)。重復(fù)3次。并用下列公式計(jì)算 POD 活性(U·mg-1)：

POD活性=(樣本OD值-空白OD值)/(12×比色光徑)×反應(yīng)液總體積/樣本量÷反應(yīng)時(shí)間÷樣本蛋白濃度×1 000

1.4.4 過(guò)氧化氫酶(CAT)活性測(cè)定

CAT活性測(cè)定參照CAT測(cè)定試劑盒說(shuō)明書(shū)(A007-1)并稍作改動(dòng)。將表 4 中配制的各體系渦旋混勻，用雙蒸餾水調(diào)零酶標(biāo)儀，在 405 nm 波長(zhǎng)、0.5cm 光徑下測(cè)定各管 OD 值。重復(fù)3次。并用下列公式計(jì)算 CAT 活性(U·mg-1)：

CAT活性=(對(duì)照OD值-樣本OD值)×235.65×(1/60×取樣量)÷樣本蛋白濃度

1.4.5 乙酰膽堿酯酶(AchE)活測(cè)定

AchE活性測(cè)定參照AchE測(cè)定試劑盒說(shuō)明書(shū)(A024)并有所修改。將表 5 中配制的各體系渦旋混勻，靜置 15 min。雙蒸餾水調(diào)零酶標(biāo)儀，在412 nm 波長(zhǎng)、0.5 cm 光徑下測(cè)定各管OD值。并用下列公式計(jì)算 AchE 活性 (U·mg-1)：

表3 POD 活性測(cè)定體系Table 3 Mixture for determining POD activity mL

AchE活性=(樣本OD值-對(duì)照OD值)/(標(biāo)準(zhǔn)OD值-空白OD值)×標(biāo)準(zhǔn)品濃度×樣本蛋白濃度

表4 CAT 活性測(cè)定體系配制Table 4 Mixture for determining CAT activity mL

1.5 數(shù)據(jù)處理及分析

生命表數(shù)據(jù)錄入 TWOSEX—MSChart[21]軟件，用 Bootstrap 方法[22]計(jì)算麥長(zhǎng)管蚜各種群參數(shù)和繁殖參數(shù)。隨后對(duì)獲得的生命表參數(shù)如：內(nèi)稟增長(zhǎng)率rm、周限增長(zhǎng)率λ、凈增值率R0、平均世代周期T、產(chǎn)仔前總時(shí)間 TPOP、產(chǎn)仔天數(shù)和壽命等數(shù)據(jù)運(yùn)用 Paired bootstrap test(成對(duì)自助檢驗(yàn))[22]進(jìn)行差異顯著性檢驗(yàn)，同時(shí)對(duì)處理組和對(duì)照組不同世代蚜蟲(chóng)體內(nèi)各保護(hù)酶及解毒酶活性進(jìn)行單因素方差分析(One-way ANOVA)，并采用 Duncan 多重比較檢驗(yàn)法對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行差異顯著性比較。最后，利用雙變量相關(guān)分析對(duì)各個(gè)酶之間的相關(guān)性進(jìn)行分析，相關(guān)系數(shù)選擇 Spearman。成對(duì)自助檢驗(yàn)使用 TWOSEX—MSChart，方差分析和相關(guān)性分析均使用SPSS Statistics 20。

表5 AchE 活性測(cè)定體系Table 5 Mixture for determining AchE activity μL

2 結(jié)果與分析

2.1 SQ-1 對(duì)麥長(zhǎng)管蚜生命表重要參數(shù)的影響

2.1.1 SQ-1 對(duì)麥長(zhǎng)管蚜種群參數(shù)的影響

麥長(zhǎng)管蚜取食化學(xué)雜交劑 SQ-1 處理過(guò)的小麥后，其同一世代種群參數(shù)與對(duì)照組相比較，均受到了不同程度的影響，具體表現(xiàn)為：處理組麥長(zhǎng)管蚜的內(nèi)稟增長(zhǎng)率rm和周限增長(zhǎng)率λ在第 2 代和第 11 代高于對(duì)照組，而處理組凈增值率R0在第 2 代和第 11 代分別高于和低于對(duì)照組，但差異均不顯著；處理組內(nèi)稟增長(zhǎng)率rm、周限增長(zhǎng)率λ和凈增值率R0均在第 6 代低于對(duì)照組(P<0.05)；處理組平均世代周期T在第 2 代、第 6 代和第 11 代均與對(duì)照無(wú)顯著差異(表 6)。

處理組麥長(zhǎng)管蚜內(nèi)稟增長(zhǎng)率rm和周限增長(zhǎng)率λ隨世代增加呈遞減趨勢(shì)，世代間差異均不顯著。對(duì)照組內(nèi)稟增長(zhǎng)率rm和周限增長(zhǎng)率λ均呈先增加后減少趨勢(shì)，內(nèi)稟增長(zhǎng)率rm和周限增長(zhǎng)率λ在第 2 代與第 11 代無(wú)顯著差異，而在第 6 代分別顯著高于第 2 代和第 11 代(P< 0.05)。處理組凈增值率R0隨世代推移呈遞減趨勢(shì)，且第 2 代高于第 6 代和第 11 代(P<0.05)，第 6 代與第 11 代間無(wú)顯著差異。對(duì)照組凈增值率R0隨世代增加呈先增加后減少的趨勢(shì)，第 2 代與第 6 代和第 11 代無(wú)顯著差異，但第 6 代凈增值率R0顯著高于第 11 代(P<0.05)。麥長(zhǎng)管蚜平均世代周期T隨世代增加，處理組呈遞減趨勢(shì)，第 2 代顯著高于第 11 代(P<0.05)，而第 6 代與第 2 代和第 11 代無(wú)顯著差異；對(duì)照組呈先減少后增加的趨勢(shì)，第 2 代平均世代周期T顯著高于第 6 代 (P<0.05)，而第 11 代與第 2 代和第 6 代無(wú)顯著差異(表 6)。

說(shuō)明麥長(zhǎng)管蚜可以適應(yīng)一定劑量的 SQ-1 脅迫，即一定劑量的化學(xué)雜交劑 SQ-1 具有一定的生態(tài)安全性，可適量應(yīng)用于大面積雜交種的 生產(chǎn)。

表6 化學(xué)雜交劑 SQ-1 對(duì)麥長(zhǎng)管蚜成蟲(chóng)種群參數(shù)的影響Table 6 Effect of chemical hybridization agent SQ-1 on population parameters in Sitobion avenae adults

數(shù)據(jù)后不同小寫(xiě)字母表示同一世代下處理組與對(duì)照組間存在顯著差異(P<0.05)，不同大寫(xiě)字母表示同一處理下不同世代間存在顯著差異(P<0.05)。下同。

Different lower-case letters following the data indicate significant difference between the treatment group and the control group within same generation at 0.05 level,while different capital letters following the data indicate significant difference among different generations within same treatment at 0.05 level.The same below.

2.1.2 SQ-1 對(duì)麥長(zhǎng)管蚜繁殖參數(shù)的影響

用化學(xué)雜交劑 SQ-1 處理后的小麥飼喂的麥長(zhǎng)管蚜，其產(chǎn)仔前總時(shí)間(TPOP)、產(chǎn)仔天數(shù)和壽命在第 2 代、第 6 代和第 11 代均與對(duì)照組無(wú)顯著差異(表 7)。隨世代推移，麥長(zhǎng)管蚜各繁殖參數(shù)變化趨勢(shì)不同，處理組TPOP 隨世代增加呈先減少后增加趨勢(shì)，其中第 2 代TPOP與第 6 代和第 11 代無(wú)顯著差異，第 6 代TPOP 顯著低于第 11 代(P< 0.05)；對(duì)照組TPOP 呈先減少后增加趨勢(shì)，第 2 代 TPOP 與第 11 代無(wú)顯著差異，而第 6 代TPOP 顯著低于第 2 代和第 11 代(P<0.05)。處理組麥長(zhǎng)管蚜產(chǎn)仔天數(shù)呈遞減趨勢(shì)，各世代間均存在顯著性差異(P<0.05)；對(duì)照組產(chǎn)仔天數(shù)隨世代增加先增加后減少，第2代與第 6 代無(wú)顯著差異，而第 2 代和第6代顯著高于第 11 代(P<0.05)。處理組麥長(zhǎng)管蚜壽命隨世代推移呈遞減趨勢(shì)，但各世代間均無(wú)顯著差異；對(duì)照組麥長(zhǎng)管蚜壽命呈遞減趨勢(shì)，第2代顯著高于第 11 代(P<0.05)，第6代與第2代和第 11 代無(wú)顯著差異(表 7)。說(shuō)明一定劑量的化學(xué)雜交劑 SQ-1 對(duì)麥長(zhǎng)管蚜的種群繁殖能力無(wú)顯著影響，進(jìn)一步佐證了小麥化學(xué)雜交劑 SQ-1 具有一定的生態(tài)安全性。

表7 化學(xué)雜交劑 SQ-1 對(duì)麥長(zhǎng)管蚜成蟲(chóng)繁殖參數(shù)的影響Table 7 Effect of chemical hybridization agent SQ-1 on fecundity parameters in Sitobion avenae adults d

2.2 SQ-1 對(duì)麥長(zhǎng)管蚜體內(nèi)保護(hù)酶及解毒酶活性的影響

2.2.1 保護(hù)酶和解毒酶活性分析

處理組的SOD活性在第 2 代、第 6 代和第 11 代均顯著高于對(duì)照組(P< 0.05)。處理組 SOD 活性隨蚜蟲(chóng)世代的增加依次遞減，而對(duì)照組 SOD 活性隨蚜蟲(chóng)世代的增加呈先增加后減少的趨勢(shì)，相同處理麥長(zhǎng)管蚜各世代間 SOD 活性均無(wú)顯著差異(圖 1A)。

與對(duì)照組相比，處理組各世代麥長(zhǎng)管蚜 POD 活性均顯著高于對(duì)照組(P<0.05)。處理組 POD 活性隨蚜蟲(chóng)世代的增加先增加后減少，第 6 代顯著高于第 2 代(P<0.05)，第 11 代與第 2 代和第6代間均無(wú)顯著性差異。對(duì)照組 POD 活性表達(dá)趨勢(shì)與處理組相反，第 6 代顯著低于第 2 代和第 11 代(P< 0.05)(圖 1B)。

圖柱上不同小寫(xiě)字母表示顯著差異(P<0.05)。

Different lower-case letters above columns indicate significant difference at 0.05 level.

圖1 化學(xué)雜交劑 SQ-1 對(duì)麥長(zhǎng)管蚜成蟲(chóng)體內(nèi)保護(hù)酶及解毒酶活性的影響

Fig.1Effect of chemical hybridization agent SQ-1 on protective enzyme activitiesand detoxifying enzyme activity inSitobionavenaeadults

與對(duì)照組相比，處理組麥長(zhǎng)管蚜 CAT 活性在第 2 代和第 11 代顯著升高(P<0.05)，第 6 代與對(duì)照組差異不顯著。處理組CAT 活性隨蚜蟲(chóng)世代增加先減少后增加，第 6 代和第 11 代顯著低于第 2 代(P<0.05)，第 6 代與第 11 代間無(wú)顯著性差異。CAT 活性在對(duì)照組隨蚜蟲(chóng)世代增加依次遞減，第11代與第6代間無(wú)顯著差異，但第 11 代較第2代顯著降低(P<0.05)(圖 1C)。

各世代處理組 AchE活性均顯著高于對(duì)照組(P<0.05)。處理組和對(duì)照組 AchE 活性變化趨勢(shì)相同，均先增加后減少(圖 1D)。上述結(jié)果表明，SQ-1 對(duì)蚜蟲(chóng)有一定的脅迫效應(yīng)，但隨著世代的增加其脅迫效應(yīng)逐漸減小，具體表現(xiàn)為保護(hù)酶及解毒活隨世代增加而呈先顯著升高后降低的趨勢(shì)。進(jìn)一步說(shuō)明，化學(xué)雜交劑 SQ-1 在蚜蟲(chóng)體內(nèi)不具有富集效應(yīng)；麥長(zhǎng)管蚜可以通過(guò)調(diào)節(jié)自身的生理代謝過(guò)程對(duì) SQ-1 的脅迫損傷進(jìn)行修復(fù)[23]。

表8 保護(hù)活性和解毒活性間相關(guān)性分析Table 8 Correlation analysis of protective enzyme activities and detoxifying enzyme activity

*:P<0.05,**:P<0.01.

2.2.2 被測(cè)酶活性的相關(guān)性分析

由表8可知，SOD 活性、POD 活性、CAT 活性和 AchE 活性間均存在正相關(guān)關(guān)系，具體表現(xiàn)為：SOD 活性與 POD 活性及 CAT 活性呈顯著正相關(guān)，與 AchE 活性呈極顯著正相關(guān)；POD 活性與 CAT 活性相關(guān)性不顯著，但與 AchE 活性呈顯著正相關(guān)；CAT 活性與 AchE 活性呈顯著正相關(guān)。上述結(jié)果表明，SOD、POD、CAT 和 AchE 之間，可能存在某種相互促進(jìn)的機(jī)制，但 POD 和 CAT 相互促進(jìn)作用較小。

3 討 論

小麥?zhǔn)钱愒戳扼w自花授粉純系作物，其新品種同質(zhì)化是目前小麥產(chǎn)量實(shí)現(xiàn)突破的瓶頸。利用化學(xué)殺雄途徑實(shí)現(xiàn)小麥雜種優(yōu)勢(shì)利用是提高小麥單產(chǎn)和實(shí)現(xiàn)糧食安全的重要途徑之一。SQ-1 是我國(guó)自主研制的一種殺雄效果優(yōu)良的化學(xué)雜交劑，在小麥發(fā)育的特定時(shí)期，以 5 kg·hm-2的 SQ-1 可誘導(dǎo)甘肅河西走廊、山西省晉南麥區(qū)、青海高原、四川等地小麥產(chǎn)生 95% 以上的雄性不育率[24-27]，且雌蕊發(fā)育及其他農(nóng)藝性狀均不受影響，表明該化學(xué)雜交劑具有廣譜性、高效性及器官專(zhuān)屬性。

本研究利用生命表對(duì)化學(xué)雜交劑 SQ-1 的安全性進(jìn)行了初步研究，結(jié)果表明，麥長(zhǎng)管蚜在取食 SQ-1 處理后小麥的種群參數(shù)平均世代周期T在各世代間均無(wú)顯著變化，而內(nèi)稟增長(zhǎng)率rm、周限增長(zhǎng)率λ和凈增值率R0僅在第 6 代顯著低于對(duì)照組，繁殖參數(shù)產(chǎn)仔前總時(shí)間 TPOP、產(chǎn)仔天數(shù)和壽命在各世代間均與對(duì)照無(wú)顯著差異。說(shuō)明一定劑量的 SQ-1 對(duì)麥長(zhǎng)管蚜種群參數(shù)存在一定影響，但隨著世代的增加麥長(zhǎng)管蚜可逐漸適應(yīng) SQ-1 的脅迫，與 Luo等[28]研究結(jié)果不一致。差異的主要原因可能是本研究是在活體小麥上接蟲(chóng)，并統(tǒng)計(jì)生命表代數(shù)高達(dá) 11 代，而 Luo 等[28]研究統(tǒng)計(jì)生命表的蚜蟲(chóng)代數(shù)較低，且其主要用培養(yǎng)基保鮮麥葉飼喂蚜蟲(chóng)，存在一定的環(huán)境脅迫。此外，SQ-1 濃度過(guò)高或噴施均勻程度是否會(huì)對(duì)蚜蟲(chóng)生命表參數(shù)產(chǎn)生影響、 SQ-1 對(duì)田間益蟲(chóng)以及進(jìn)化地位更高的家畜和人類(lèi)是否會(huì)產(chǎn)生負(fù)面效應(yīng)等仍需進(jìn)一步探究。

綜上所述，化學(xué)雜交劑 SQ-1 對(duì)麥長(zhǎng)管蚜正常的生命活動(dòng)和種群繁殖能力無(wú)顯著影響，可能依賴(lài)體內(nèi)的保護(hù)酶系統(tǒng)和解毒代謝的協(xié)同工作。進(jìn)一步說(shuō)明，生物自身保護(hù)酶系統(tǒng)和解毒代謝途徑可以修復(fù)一定劑量的化學(xué)雜交劑 SQ-1 對(duì)生物造成的脅迫損傷，因此認(rèn)為小麥化學(xué)雜交劑 SQ-1 具有一定的生態(tài)安全性。有關(guān)麥長(zhǎng)管蚜體內(nèi)解毒代謝和保護(hù)酶系統(tǒng)的相互作用、SQ-1 對(duì)蚜蟲(chóng) AchE 活性影響的分子機(jī)理、不同劑量 SQ-1 和不同噴施方法對(duì)蚜蟲(chóng)的影響、SQ-1 對(duì)其他小麥害蟲(chóng)和有益生物的影響乃至對(duì)家畜和人類(lèi)的影響等還有待進(jìn)一步研究。