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恩施鲊廣椒乳酸菌的分離鑒定及其對(duì)揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)的影響

2019-07-30 03:16:16馬佳佳張振東趙慧君
中國釀造 2019年7期
關(guān)鍵詞:響應(yīng)值電子鼻恩施

雷 炎,馬佳佳,雷 敏,趙 楠,郭 壯,3,張振東,趙慧君*

(1.湖北文理學(xué)院 食品科學(xué)技術(shù)學(xué)院 鄂西北傳統(tǒng)發(fā)酵食品研究所,湖北 襄陽 441053;

2.四川省農(nóng)業(yè)科學(xué)院 農(nóng)產(chǎn)品加工研究所,四川 成都 610066;

3.恩施市公共檢驗(yàn)檢測(cè)中心,湖北 恩施 445000)

鲊廣椒也稱為鲊尖椒、鲊金椒、酸面、面果子,是湖北宜昌、恩施地區(qū)漢族、土家族的特色發(fā)酵食品。鲊廣椒是以鮮紅辣椒醬和苞谷面(玉米面)為主要原料加工而成的,具有營養(yǎng)全面、開胃爽口的特點(diǎn),適合人們養(yǎng)生所用。乳酸菌(lactic acidbacteria,LAB)是指發(fā)酵糖類主要產(chǎn)物為乳酸的一類無芽孢、革蘭氏染色陽性細(xì)菌的總稱[1]。目前,主要通過傳統(tǒng)純培養(yǎng)法對(duì)發(fā)酵食品中的乳酸菌進(jìn)行研究,CHEN Y S[2-7]等已從臺(tái)灣腌桃子、印度泡菜、辣白菜、四川泡菜中成功分離出大量的乳酸菌。

電子鼻又稱氣味掃描儀,電子鼻技術(shù)是以特定的傳感器模擬人類嗅覺感官系統(tǒng),快速提供被測(cè)樣品的整體信息,從而指示樣品中隱含特征的技術(shù)[8]。電子鼻技術(shù)是新興的無損檢測(cè)方法之一,隨著科學(xué)技術(shù)的不斷進(jìn)步,電子鼻技術(shù)的研究越來越趨于完善,其已廣泛應(yīng)用于工業(yè)生產(chǎn)的各個(gè)部門。FAN Y等[9]利用電子鼻技術(shù)分析了中國傳統(tǒng)蝦醬中的特色風(fēng)味物質(zhì);LIN X等[10]利用電子鼻技術(shù)研究了4個(gè)不同酵母株系對(duì)蘋果酒風(fēng)味物質(zhì)的影響。

目前,關(guān)于鲊廣椒中乳酸菌及其對(duì)鲊廣椒揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)的影響的研究還很少。因此,本研究對(duì)恩施鲊廣椒中的乳酸菌進(jìn)行分離純化,采用分子生物學(xué)技術(shù)對(duì)其進(jìn)行鑒定;然后將優(yōu)勢(shì)乳酸菌應(yīng)用于鲊廣椒,并利用電子鼻技術(shù)研究不同乳酸菌對(duì)鲊廣椒中揮發(fā)性物質(zhì)的影響,為鲊廣椒的研究提供基礎(chǔ)的依據(jù),采用主成分分析(principal component analysis,PCA)篩選出適合鲊廣椒發(fā)酵的乳酸菌菌種,為鲊廣椒的工業(yè)化生產(chǎn)奠定基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

鲊廣椒樣品:采集自湖北恩施的農(nóng)戶家中,采集后的樣品放入采樣箱中低溫保存。

玉米粉、紅辣椒、鹽、花椒、白胡椒和白酒:市售;MRS瓊脂(液體)培養(yǎng)基:青島海博生物技術(shù)有限公司;Axygen聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)清潔試劑盒:康寧生命科學(xué)吳江有限公司;DL15000Marker、DL2000 Marker、PCR buffer、rTaq脫氧核糖核酸(deoxyribonucleic acid,DNA)聚合酶、pMD18-T克隆載體:寶生物工程(大連)有限公司;引物M13F(-47)、M13R(-48)、27F和1492R:武漢天一輝遠(yuǎn)生物科技有限公司。

1.2 儀器與設(shè)備

PTC-100 PCR儀:美國ABI公司;Fluor Chem FC3化學(xué)發(fā)光凝膠成像系統(tǒng):美國Protein Simple公司;DG250厭氧工作站:英國Don Whitley公司;PEN3電子鼻(配備W1C、W5S、W3C、W6S、W5C、W1S、W1W、W2S、W2W和W3S10個(gè)金屬氧化傳感器):德國Airsense公司。

1.3 實(shí)驗(yàn)方法

1.3.1 乳酸菌的分離

采用稀釋涂布平板法[11]對(duì)乳酸菌進(jìn)行分離,取10-4、10-5、10-6三個(gè)梯度的稀釋液涂布于含1.5%CaCO3的MRS固體培養(yǎng)基,于厭氧工作站30℃培養(yǎng)48h。挑取菌落形態(tài)不同和透明圈明顯的單菌落純化3次,純化后的菌株進(jìn)行革蘭氏染色[12]與過氧化氫酶實(shí)驗(yàn),初步確認(rèn)其為乳酸菌后保存于-80℃冰箱中。

1.3.2 乳酸菌的鑒定

將初步確認(rèn)為乳酸菌的菌株從-80℃冰箱中取出活化,收集菌體,采用十六烷基三甲基溴化銨(hexadecyl trimethyl ammoniumbromide,CTAB)法[13]提取DNA。以此為模板,采用引物27F(5′-AGAGTTT GATCCTGGCTCAG-3′)和1492R(5′-CTACGGCTACCTTGTTACGA-3′)對(duì)細(xì)菌的16S rDNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增。PCR擴(kuò)增體系[14](25 μL):DNA模板1 μL,rTaq酶0.5 μL,2.5 mmol/L脫氧核糖核苷三磷酸(deoxy-ri bonucleoside triphosphate,dNTP)2 μL,5 μmol/L27F0.5 μL,5 μmol/L 1495R 0.5 μL,10×PCR buffer 2.5 μL,用雙蒸水(ddH2O)將體系補(bǔ)充至25 μL。PCR擴(kuò)增條件:94℃預(yù)變性4 min;94℃變性1 min,55℃退火45 s,72℃延伸1 min,共30個(gè)循環(huán);72℃再延伸10min,4℃保存。采用瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)PCR擴(kuò)增產(chǎn)物,對(duì)符合目的片段大小的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行清潔并與pMD18-T載體進(jìn)行連接,轉(zhuǎn)化到大腸桿菌(Escherichia coli)TOP10中,利用引物M13F(-47)(5′-CGCCAGGGTTTTCCCAGTCACGAC-3′)和M13R(-48)(5′-AGCGGATAACAATTTCACACAGGA-3′)鑒定陽性克隆子,將陽性克隆子送往武漢天一輝遠(yuǎn)生物科技有限公司測(cè)序。測(cè)序結(jié)果去除引物序列后在美國國立生物技術(shù)信息中心(national center for biotechnology information,NCBI)的GenBank數(shù)據(jù)庫中進(jìn)行Blast搜索,選取同源性較高的模式菌株的16SrDNA序列,采用MEGA5軟件中的鄰接(neighbor joining,NJ)法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。

1.3.3 鲊廣椒的制作

選取鲊廣椒中的優(yōu)勢(shì)菌株進(jìn)行鲊廣椒的制作。將菌株從-80℃取出,取50μL菌液注入150mLMRS液體培養(yǎng)基中,37℃條件下培養(yǎng)24 h,進(jìn)行第1代活化,連續(xù)活化3代后,10 000 r/min離心5 min,去除上清后加入45 mL生理鹽水重懸菌體待用。

取750g玉米粉,225g切碎的紅辣椒(手工切碎3~5mm寬度),3.15 g粉碎的花椒、胡椒,45 mL待用菌液(對(duì)照組加入等量的生理鹽水),混合均勻,裝入壇中,用水封口后于30℃培養(yǎng)箱中發(fā)酵20 d。鲊廣椒發(fā)酵完成后,取300 g樣品裝入樣品瓶中,-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1.3.4 基于電子鼻技術(shù)恩施鲊廣椒風(fēng)味品質(zhì)的評(píng)價(jià)

取10 g鲊廣椒樣品置于電子鼻樣品瓶中,室溫下平衡30min,采用電子鼻技術(shù)對(duì)揮發(fā)性物質(zhì)進(jìn)行檢測(cè)。電子鼻參數(shù):進(jìn)樣吸氣流量200mL/min,傳感器清潔時(shí)間90s,調(diào)零時(shí)間5s,測(cè)定時(shí)間60s,每隔1s測(cè)量1個(gè)響應(yīng)值。電子鼻有10個(gè)金屬氧化傳感器,每個(gè)傳感器與其對(duì)應(yīng)的敏感物質(zhì)如表1所示[15]。

表1 金屬傳感器及其對(duì)應(yīng)的性能描述Table 1 Description of metal sensors and its corresponding performance

1.3.5統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

利用The SAS V8和Origin 2017進(jìn)行電子鼻統(tǒng)計(jì)分析。使用主成分分析(PCA)對(duì)加入不同乳酸菌的鲊廣椒的風(fēng)味進(jìn)行差異性分析。

2 結(jié)果與分析

2.1 菌株的分離純化

采用稀釋涂布平板法從恩施地區(qū)鲊廣椒樣品中共分離純化出15株乳酸菌,編號(hào)為HBUAS51131、HBUAS51132、HBUAS51133、HBUAS51134、HBUAS51135、HBUAS51136、HBUAS51137、HBUAS51141、HBUAS51142、HBUAS51143、HBUAS51144、HBUAS51145、HBUAS51146、HBUAS51147、HBUAS51148。

2.2 菌株的鑒定

采用CTAB法提取15株乳酸菌的DNA,結(jié)果如圖1所示。由圖1可知,各菌株基因組DNA均在15 000 bp之上,且條帶清晰明亮,證明提取的DNA可用于乳酸菌16S rDNA基因序列擴(kuò)增[16]。

圖1 乳酸菌基因組DNA瓊脂糖凝膠電泳圖Fig.1 Agarose gel electrophoretogram of lactic acid bacteriagenomic DNA

圖2 乳酸菌16S rDNA的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物瓊脂糖凝膠電泳圖Fig.2 Agarose gel electrophoretogram of PCR amplification products of lactic acid bacteria 16S rDNA

15株乳酸菌16S rDNA PCR擴(kuò)增產(chǎn)物瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)結(jié)果如圖2所示。由圖2可知,各泳道在1 500 bp左右都出現(xiàn)了一條明顯的亮帶,證明各菌株目標(biāo)片段均被成功擴(kuò)增。用清潔試劑盒對(duì)PCR擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行清潔,克隆后挑選陽性克隆子送往武漢天一輝遠(yuǎn)生物科技有限公司測(cè)序。

測(cè)序后所得序列進(jìn)行拼接,在NCBI上進(jìn)行同源性比對(duì),15株乳酸菌16S rDNA序列同源性比對(duì)分析結(jié)果見表2。有文獻(xiàn)報(bào)道[17],與模式菌株相比,同源性>98.65%的細(xì)菌被判定為同種。由表2可知,恩施地區(qū)鲊廣椒的15株乳酸菌與其對(duì)應(yīng)的模式菌株同源性均≥99%,表明乳酸菌均已鑒定到種的水平。

表2 乳酸菌16S rDNA序列同源性比對(duì)結(jié)果Table 2 Homology alignment results of 16S rDNA sequences of lactic acid bacteria

選取同源性較高的模式菌株,采用NJ法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,結(jié)果如圖3所示。由圖3可知,菌株HUBAS51131、HUBAS51132、HUBAS51133、HUBAS51134、HUBAS51135、HUBAS51136、HUBAS51141、HUBAS51145、HUBAS51146和HUBAS51147 10株乳酸菌與植物乳桿菌(Lactobacillus plantarum)聚于一支,同源性≥99%,親緣關(guān)系最近,因此鑒定這10株乳酸菌為植物乳桿菌(Lactobacillus plantarum);菌株HBUAS51142、HBUAS51144和HBUAS51148 3株乳酸菌與發(fā)酵乳桿菌(Lactobacillus fermentum)聚于一支,同源性≥99%,親緣關(guān)系最近,因此鑒定這3株乳酸菌為發(fā)酵乳桿菌(Lactobacillus fermentum);菌株HBUAS51137與副干酪乳桿菌(Lactobacillusparacasei)聚于一支,同源性≥99%,親緣關(guān)系最近,因此鑒定其為副干酪乳桿菌(Lactobacillus paracasei);菌株HBUAS51143與食品乳桿菌(Lactobacillus alimentarius)聚于一支,同源性≥99%,親緣關(guān)系最近,因此鑒定其為食品乳桿菌(Lactobacillus alimentarius)。由此可推斷,L.plantarum為恩施鲊廣椒中的優(yōu)勢(shì)菌,占分離菌株總數(shù)的66.67%。與王玉榮等[18-19]對(duì)當(dāng)陽地區(qū)鲊廣椒中細(xì)菌多樣性的研究結(jié)果相似,Lactobacillus屬是優(yōu)勢(shì)菌屬。

圖3 基于16S rDNA序列乳酸菌的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.3 Phylogenetic tree of lactic acid bacteria based on 16S rDNA sequences

2.3 基于電子鼻技術(shù)恩施鲊廣椒風(fēng)味品質(zhì)的評(píng)價(jià)

電子鼻有10根傳感器,不同時(shí)間鲊廣椒的電子鼻傳感器響應(yīng)值如圖4所示。由圖4可知,不同傳感器對(duì)鲊廣椒呈現(xiàn)不同的響應(yīng),W1W對(duì)鲊廣椒的響應(yīng)值最高,W1S、W5S、W2S和W2W響應(yīng)值次之,W2S、W6S、W3C、W5C和W1C響應(yīng)值偏低。隨著檢測(cè)時(shí)間的延長,傳感器W1C(對(duì)芳香類物質(zhì)靈敏)、W3C(對(duì)氨氣、芳香類物質(zhì)靈敏)和W5C(對(duì)烷烴、芳香類物質(zhì)靈敏)的響應(yīng)值呈下降趨勢(shì),傳感器W1W(對(duì)有機(jī)硫化物、萜類物質(zhì)靈敏)和W1S(對(duì)甲烷靈敏)響應(yīng)值呈明顯的上升趨勢(shì)。結(jié)果表明,鲊廣椒中揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)有機(jī)硫化物、萜類物質(zhì)以及甲烷等含量可能較高,芳香類揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)的含量可能較低。鲊廣椒的信號(hào)強(qiáng)度在45~55s趨于平穩(wěn),選取49 s、50 s、51 s的測(cè)量數(shù)據(jù)作為參考值,取3個(gè)數(shù)據(jù)的平均值進(jìn)行PCA。

PCA是將提取的傳感器響應(yīng)值信號(hào)進(jìn)行數(shù)據(jù)轉(zhuǎn)換和降維,對(duì)降維后的特征向量進(jìn)行線性分類,PC1和PC2上包含了在PCA轉(zhuǎn)換中得到的第一主成分和第二主成分的方差貢獻(xiàn)率。方差貢獻(xiàn)率越大,說明此主要成分可以較好地反映原來多指標(biāo)的信息[20]。一般情況下,總貢獻(xiàn)率超過70%~80%的方法即可使用[21]。對(duì)于一個(gè)具有多個(gè)變量的全局函數(shù)來說,因子圖分析法具有很大的通用性?;陔娮颖羌夹g(shù)PC1和PC2的因子載荷圖如圖5所示。

圖4 不同時(shí)間鲊廣椒的電子鼻傳感器時(shí)間-強(qiáng)度動(dòng)態(tài)響應(yīng)Fig.4 Time-intensity dynamic response of electronic nose sensor for Zhaguangjiao at different time

圖5 基于主成分分析的因子載荷圖Fig.5 Factor loading diagram based on PCA

由圖5可知,第一主成分貢獻(xiàn)率為83.46%,第二主成分的貢獻(xiàn)率為10.59%,總貢獻(xiàn)率為94.04%,大于80%,說明PC1和PC2已經(jīng)可以較好地反映樣品的整體信息。而且,由于PC1的方差貢獻(xiàn)率為83.46%,所以主要通過橫坐標(biāo)來反映10個(gè)樣品的信息。第一主成分包括W1C、W1W、W6S、W2W、W3S、W2S和W1S;第二主成分包括W2W、W5C、W3C和W5S?;陔娮颖羌夹g(shù)PC1和PC2的因子得分圖如圖6所示。

由圖6可知,添加植物乳桿菌組均分布于第一、二、三象限中,對(duì)照組則處于第四象限。由此可知,添加植物乳桿菌組與對(duì)照組的差異性較大。結(jié)合圖5分析可得,與對(duì)照組相比,添加植物乳桿菌組的鲊廣椒芳香性物質(zhì)含量更高,氮氧化物、氫化物、有機(jī)硫化合物和烷烴等物質(zhì)含量顯著降低。結(jié)合圖5、圖6分析可知,不同植物乳桿菌對(duì)鲊廣椒的影響也存在較為顯著的差異,植物乳桿菌HUBAS51132和HUBAS51141分布于第二象限,芳香類物質(zhì)含量更高;植物乳桿菌HUBAS51134、HUBAS51147、HUBAS51133和HUBAS51131分布于第一象限,氫氣、乙醇、烷烴、有機(jī)硫化物和萜類物質(zhì)等物質(zhì)含量更高。由此可見,利用HUBAS51132和HUBAS51141兩株植物乳桿菌制作的鲊廣椒芳香性更好。

圖6 基于主成分分析的因子得分圖Fig.6 Factor scores based on PCA

3 結(jié)論

本研究通過傳統(tǒng)培養(yǎng)分離方法,從湖北恩施地區(qū)采集的15個(gè)鲊廣椒樣品中共分離出15株乳酸菌,通過分子生物學(xué)技術(shù)鑒定10株為植物乳桿菌(Lactobacillus plantarum)、3株為發(fā)酵乳桿菌(Lactobacillus fermentum)、1株為副干酪乳桿菌(Lactobacillus paracasei)、1株為食品乳桿菌(Lactobacillus alimentarius),其中L.plantarum占分離菌株總數(shù)的66.67%,為恩施鲊廣椒中的優(yōu)勢(shì)乳酸菌。利用這10株植物乳桿菌制作鲊廣椒,并利用電子鼻及主成分分析(PCA)分析與不添加乳桿菌的鲊廣椒樣品揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)的差異。結(jié)果表明,與對(duì)照相比,添加L.plantarum的鲊廣椒芳香類物質(zhì)明顯增多,氮氧化物、氫化物、有機(jī)硫化合物和烷烴等物質(zhì)含量顯著降低,且植物乳桿菌HUBAS51132和HUBAS51141制作的鲊廣椒芳香性更好,在風(fēng)味上更迎合消費(fèi)者的喜好。

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