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野生茄子原生質(zhì)體制備及電融合條件研究

2019-07-20 03:06郭歡歡陳鈺輝楊錦坤劉富中
中國蔬菜 2019年7期
關(guān)鍵詞:原生質(zhì)游離茄子

郭歡歡 陳鈺輝楊錦坤 劉富中 張 映 連 勇

(中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院蔬菜花卉研究所,農(nóng)業(yè)農(nóng)村部園藝作物生物學(xué)與種質(zhì)創(chuàng)制重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 100081)

原生質(zhì)體是指去除細(xì)胞壁后被細(xì)胞膜包圍的細(xì)胞,其應(yīng)用研究主要通過原生質(zhì)體融合即體細(xì)胞雜交創(chuàng)制新的植物種質(zhì)。原生質(zhì)體融合技術(shù)能夠克服有性雜交中只有親緣關(guān)系較近的物種間才能獲得雜交后代的局限性,轉(zhuǎn)移有性雜交方式中親本不能轉(zhuǎn)移的生物和非生物脅迫抗性,獲得包括植物種間、屬間及科間的體細(xì)胞雜種。原生質(zhì)體融合技術(shù)已在茄屬、煙草屬、柑橘屬、禾本科等植物中廣泛開展(喻艷,2013;常勝合 等,2018)。

茄子栽培種和大多數(shù)茄子近緣野生種都屬于茄科茄屬一年生草本植物。自然界中,茄子栽培種一般抗逆性(生物逆境和非生物逆境)較差,而野生茄子表現(xiàn)出較好的抗逆性和抗病性(Rotino et al,2014),因此常用作砧木使用,常用的砧木材料為刺天茄(Solanum indicum)、水茄(S. torvum)及赤茄(S. mammosum)等。但由于近年來單一砧木品種使用年限較長及不同地區(qū)病害生理小種發(fā)生變異等原因?qū)е抡枘酒贩N的抗病性下降,頻繁出現(xiàn)了嫁接苗發(fā)生大面積死秧現(xiàn)象(王爽 等,2013),因此需要?jiǎng)?chuàng)制出新的砧木資源。由于不同野生茄子品種抗病種類及抗病能力不同(張紅浩 等,2015),加上多數(shù)野生茄子間有性雜交不親和(Daunay,2008),制約了砧木資源的改良。利用原生質(zhì)體進(jìn)行體細(xì)胞雜交可以克服有性生殖的障礙,將不同抗病種類和抗病能力的野生材料融合成體細(xì)胞雜種植株,創(chuàng)制出新的野生砧木 材料。

研究人員通過原生質(zhì)體融合技術(shù)分別獲得茄子栽培種和野生茄子S. sisymbriifolium、S. khasianum、 S. torvum、S. nigrum、S. aethiopicum 體 細(xì)胞雜交四倍體株系,并部分轉(zhuǎn)移了野生資源中的優(yōu)良抗病 性(Gleddie et al.,1986;Guri & Sink,1988;Sihachakr et al.,1988,1989;Daunay et al.,1993;Jarl et al.,1999)。前人雖已建立了茄子原生質(zhì)體分離及融合的基本方法,但不同基因型原生質(zhì)體游離所需酶類和酶解時(shí)間等條件存在差異,對(duì)不同融合親本原生質(zhì)體游離及融合條件仍需進(jìn)一步探討。因此,本試驗(yàn)以蒜芥茄(S. sisymbriifolium)和水茄(S. torvum)為融合親本,主要探討不同酶類濃度、酶解時(shí)間和電融合基本參數(shù)對(duì)原生質(zhì)體游離及融合的影響,篩選出原生質(zhì)體游離及電融合最佳條件,以期為親本均為野生茄子的原生質(zhì)體游離及融合提供試驗(yàn)基礎(chǔ),并為創(chuàng)制茄子砧木種質(zhì)資源奠定 基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)材料

水茄(S. torvum)和蒜芥茄(S. sisymbriifolium)種子由中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院蔬菜花卉研究所茄子課題組提供。2017 年12 月于茄科實(shí)驗(yàn)室組培室開始進(jìn)行培養(yǎng),原生質(zhì)體游離材料為茄子試管苗嫩葉。

1.2 試驗(yàn)方法

1.2.1 外植體獲得 挑取飽滿健康種子,在無菌操作臺(tái)中用70%的酒精浸泡30 s,10% NaClO3滅菌15 min,無菌水沖洗3 遍,吸干水分,然后接種于MS(3%蔗糖,0.75%瓊脂)培養(yǎng)基中,培養(yǎng)瓶置于14 h 光照/10 h 黑暗、光照強(qiáng)度2 200 lx、溫度25~27 ℃的組培室中培養(yǎng)。植株采用節(jié)間繼代培養(yǎng),原生質(zhì)體游離使用的茄子苗在MS(2%蔗糖,0.75%瓊脂)培養(yǎng)基中培養(yǎng)21 d,取上部嫩葉進(jìn)行原生質(zhì)體的游離純化。

1.2.2 酶解液濃度對(duì)原生質(zhì)體游離的影響 在無菌操作臺(tái)中分別取水茄和蒜芥茄試管苗上部幼嫩真葉1~2 g,利用解剖刀將嫩葉切成1 mm 左右寬度,然后浸泡在酶液中,在(25±1)℃黑暗下酶解。纖維素酶(Onozuka R-10,Yakultv,Japan)設(shè)0.2%(m/V,下同)、0.3%、0.4% 3 個(gè)濃度梯度,離析酶(Macerozyme R-10,Yakultv,Japan) 設(shè)0.05%、0.1%、0.2% 3 個(gè)濃度梯度,9 個(gè)酶液組合,在不同酶液組合條件下對(duì)葉片原生質(zhì)體游離情況進(jìn)行顯微鏡觀察比較,每個(gè)酶液組合重復(fù)3 次觀測,選定最優(yōu)酶解液。

1.2.3 酶解時(shí)間對(duì)原生質(zhì)體游離的影響 選定最優(yōu)酶解液后,測定不同酶解時(shí)間(9、10、11、12、13、14、15、16 h)對(duì)不同基因型茄子葉片原生質(zhì)體產(chǎn)量的影響。每個(gè)酶解時(shí)間重復(fù)3 次,試驗(yàn)數(shù)據(jù)采用SAS 9.4 軟件進(jìn)行分析。通過比較不同酶解時(shí)間對(duì)原生質(zhì)體產(chǎn)量的影響,確定最優(yōu)酶解時(shí)間。

1.2.4 電融合參數(shù)對(duì)原生質(zhì)體融合的影響 用電融合儀(ECM2001,USA)對(duì)游離純化后的原生質(zhì)體進(jìn)行融合。對(duì)基本電融合參數(shù)進(jìn)行設(shè)定,其中交流電場強(qiáng)度分別為60、70、80、90、100、 110 V · cm-1,交流電場作用時(shí)間以大多數(shù)細(xì)胞成串為3~4 個(gè)為準(zhǔn),直流脈沖強(qiáng)度分別為1 200、1 250、1 300、1 350 V · cm-1,直流電場作用時(shí)間分別為40、45、50、55 μs,每次試驗(yàn)在研究某一參數(shù)時(shí),其他參數(shù)保持某個(gè)數(shù)值不變,通過顯微觀測細(xì)胞狀態(tài),確定最適電融合參數(shù)。每個(gè)處理重復(fù)3 次。

2 結(jié)果與分析

2.1 酶解液濃度對(duì)原生質(zhì)體游離的影響

試驗(yàn)結(jié)果表明(表1),水茄和蒜芥茄葉片原生質(zhì)體在0.3%纖維素酶+0.1%離析酶條件下鏡檢觀測到的單細(xì)胞數(shù)量最多,其余酶解液濃度組合顯微觀察存在葉片解離不完全、單細(xì)胞量少、細(xì)胞破碎等情況,不利于原生質(zhì)體的游離。顯微鏡下觀測到在適宜的酶液濃度組合下,酶解充分,游離單細(xì)胞較多(圖1-A),放大觀測可見球體形狀規(guī)則的、透亮的完整細(xì)胞(圖1-B);酶液濃度不適易造成細(xì)胞破碎,顯微鏡下觀測可見細(xì)胞呈不規(guī)則形狀,有細(xì)胞碎片(圖1-C、D)。

表1 部分酶解液組合下葉片原生質(zhì)體游離效果觀測

2.2 酶解時(shí)間對(duì)原生質(zhì)體游離的影響

在最優(yōu)酶解液濃度0.3%纖維素酶+0.1%離析酶條件下,對(duì)不同酶解時(shí)間下原生質(zhì)體產(chǎn)量進(jìn)行比較。結(jié)果表明(表2),蒜芥茄在13~15 h 酶解時(shí)間下的原生質(zhì)體產(chǎn)量較高,其中14 h 達(dá)到最大值15.06×106個(gè) · g-1。水茄在11~13 h 酶解時(shí)間下的原生質(zhì)體產(chǎn)量較高,其中13 h 達(dá)到最大值15.92×106個(gè) · g-1。酶解時(shí)間過短或過長都會(huì)影響原生質(zhì)體產(chǎn)量,酶解時(shí)間過短,酶解不充分,不利于原生質(zhì)體游離,影響原生質(zhì)體產(chǎn)量;酶解時(shí)間過長,原生質(zhì)體脫壁完全,導(dǎo)致質(zhì)膜受到損傷,從而使原生質(zhì)體死亡數(shù)量增加。

2.3 電融合參數(shù)對(duì)原生質(zhì)體融合的影響

顯微觀測表明,在交變電場作用下,雙親原生質(zhì)體沿電場方向形成很多平行排列的串珠,交變電場越大,串珠形成越快;交變電場作用時(shí)間越長,串珠形成也加長(圖2-A)。然后施加直流脈沖電壓后,串珠迅速解體,形成了很多長短不一的包括由兩個(gè)原生質(zhì)體形成的小串珠,部分小串珠很快融合在一起(圖2-B、C),直流脈沖電壓越大或作用時(shí)間越長,顯微觀測可見多核體多,原生質(zhì)體破裂的多(圖2-D、E)。本試驗(yàn)中確定基本電融合參數(shù)為交流電場強(qiáng)度80 V · cm-1,交流電場作用時(shí)間10 s,直流脈沖強(qiáng)度1 250 V · cm-1,直流電場作用時(shí)間 45 μs,次數(shù)1 次時(shí),顯微鏡觀測大多數(shù)細(xì)胞成串為3~4 個(gè),大多數(shù)為兩細(xì)胞之間發(fā)生融合,且細(xì)胞破碎少,融合效果好(圖2-B、C)。

圖1 野生茄子葉片原生質(zhì)體游離效果

表2 酶解時(shí)間對(duì)不同基因型野生茄子葉片的原生質(zhì)體產(chǎn)量的影響

圖2 野生茄子原生質(zhì)體在不同電融合參數(shù)條件下的融合效果

3 結(jié)論與討論

酶的種類、濃度是影響原生質(zhì)體游離的重要因素。纖維素酶用于在植物原生質(zhì)體中裂解細(xì)胞壁,離析酶用于從葉肉細(xì)胞中分離出單個(gè)細(xì)胞。酶濃度過低,會(huì)使細(xì)胞壁裂解不充分,游離不出原生質(zhì)體;酶濃度過高會(huì)損害原生質(zhì)體,導(dǎo)致其破碎、活性下降。前人研究顯示在喀西茄(S. khasianum)和癲茄(S. aculeatissimum)原生質(zhì)體融合試驗(yàn)中,其葉片原生質(zhì)體游離使用0.8%(m/V,下同)纖維素酶R-10 和0.2%離析酶R-10(Stattmann et al.,1994);栽 培 茄(S. melongena L.)分別 與 水茄 (S. torvum)和南美紅茄(S. aethiopicum)進(jìn)行原生質(zhì)體融合時(shí),其葉片原生質(zhì)體游離使用1.5%纖 維 素 酶R-10 和0.5% 離 析 酶R-10(Sihachakr et al.,1989;Daunay et al.,1993);栽培茄和紫色非洲茄屬(S. marginatum)葉片原生質(zhì)體游離使用0.1%纖維素酶R-10 和0.2%離析酶R-10(Borgato et al.,2007)。不同基因型的植物由于葉片組織結(jié)構(gòu)上的差異,從而使得在原生質(zhì)體分離去壁酶解過程中酶解條件存在一定差異(喻艷,2013)。本試驗(yàn)中水茄和蒜芥茄葉片原生質(zhì)體游離最適酶液濃度是0.3%纖維素酶R-10+0.1%離析酶R-10,在這個(gè)濃度下顯微鏡觀測到的單細(xì)胞數(shù)量最多。由此可見,對(duì)于不同基因型植物,即使是同一屬,其最適酶解濃度也不同,在進(jìn)行原生質(zhì)體游離時(shí)都需要研究確定最適酶解濃度。

酶解時(shí)間對(duì)植物原生質(zhì)體產(chǎn)量有很大影響。酶解時(shí)間過短,不能達(dá)到較好的分離效果;時(shí)間過長,酶對(duì)已分離出的原生質(zhì)體就會(huì)產(chǎn)生毒害作用。栽培茄(S. melongena L.)、水茄(S. torvum)和紫色非洲茄屬(S. marginatum)的酶解時(shí)間為16 h (Guri & Sink,1988;Borgato et al.,2007)。本試驗(yàn)結(jié)果顯示,蒜芥茄(S. sisymbriifolium)最適酶解時(shí)間是14 h,原生質(zhì)體產(chǎn)量達(dá)最大值15.06×106個(gè) · g-1,水茄(S. torvum)最適酶解時(shí)間是13 h,原生質(zhì)體產(chǎn)量達(dá)最大值15.92×106個(gè) · g-1。本試驗(yàn)結(jié)果和前人不同,說明不同基因型植物在相同酶種類和濃度條件下,獲得最大原生質(zhì)體產(chǎn)量所需要的酶解時(shí)間不同,選擇合適的酶解時(shí)間才能獲得大量高活性原生質(zhì)體。

原生質(zhì)體電融合可分解為兩步,首先是交流電場使得原生質(zhì)體3~4 個(gè)串在一起,然后給予直流脈沖使得串在一起的原生質(zhì)體發(fā)生融合,交變電壓過高,無論直流脈沖電壓多么低,原生質(zhì)體也會(huì)破裂,若交變電壓過低,無論脈沖電壓多么高,融合也很少發(fā)生,電融合參數(shù)影響融合效果(郭文武 等,1998;田國奎 等,2012)。不同基因型茄子原生質(zhì)體電融合參數(shù)不同,研究表明,栽培茄(S. melongena L.)和水茄(S. torvum)或南美紅茄(S. aethiopicum)使用電融合參數(shù)為交流電場強(qiáng)度125 V · cm-1,作用時(shí)間15 s,直流脈沖強(qiáng)度1 200 V · cm-1,作用時(shí)間20 μs,次數(shù)2 次(Sihachakr et al.,1989;Daunay et al.,1993); 栽 培 茄(S. melongena L.)和紫色非洲茄屬(S. marginatum)使用電融合參數(shù)為交流電場強(qiáng)度125 V · cm-1,作用時(shí)間15 s,直流脈沖強(qiáng)度1 500~2 000 V · cm-1,作用時(shí)間50 μs,次數(shù)3 次(Borgato et al.,2007)。本試驗(yàn)中,交流電場強(qiáng)度為80 V · cm-1,作用時(shí)間10 s,直流脈沖強(qiáng)度1 250 V · cm-1,作用時(shí)間 45 μs,次數(shù)1 次時(shí),顯微鏡觀測到大多數(shù)細(xì)胞成串為3~4個(gè),融合效果較好。與前人試驗(yàn)所用電融合參數(shù)相比,本試驗(yàn)所用電流強(qiáng)度和時(shí)間不同,說明不同基因型茄子在電融合時(shí)需要確定適當(dāng)?shù)碾娙诤蠀?shù),參數(shù)的確定對(duì)能否獲得大部分兩細(xì)胞融合是非常必要的。

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