黃星奕 葉偉濤 王成全 呂日琴 孫兆燕
(江蘇大學(xué)食品與生物工程學(xué)院, 鎮(zhèn)江 212013)
花生是我國產(chǎn)量豐富、食用廣泛的一種堅果[1]。在夏季高溫、高濕情況下,花生易發(fā)生霉變,在霉變過程中會產(chǎn)生黃曲霉毒素、赭曲霉毒素、伏馬毒素、黑曲霉毒素等霉菌毒素[2-4]。研究表明,在所有已知的霉菌毒素中,黃曲霉毒素B1(Aflatoxin B1,AFB1)的毒性、致畸性、致癌性均居于首位,其半數(shù)致死量(LD50)為0.294 mg/kg[5]。我國對農(nóng)產(chǎn)品中AFB1含量具有嚴(yán)格的限制,規(guī)定花生及其制品中AFB1的含量(質(zhì)量比)不得超過20 μg/kg[6]。農(nóng)產(chǎn)品中AFB1的檢測,對于減少霉菌毒素的危害具有重要的意義。
傳統(tǒng)的霉菌毒素檢測方法主要有生物學(xué)檢測法、薄層分析法、高效液相色譜法等[7],由于這些方法操作復(fù)雜、預(yù)處理繁瑣、處理時間長,研究者正不斷開發(fā)新的檢測方法[8]。納米材料由于其量子尺寸效應(yīng),表現(xiàn)出與其他傳統(tǒng)材料不同的特性,如光學(xué)性質(zhì)、磁學(xué)性質(zhì)、光催化作用等[9-11],國內(nèi)外學(xué)者嘗試使用納米材料檢測霉菌毒素。文獻(xiàn)[12]利用AFB1抗體包被納米金,制備了可用于小麥粉中AFB1快速檢測的新型安培免疫傳感器,檢測限為0.3 μg/L。文獻(xiàn)[13]通過合成的納米粒子與黃曲霉毒素人工抗原抗體的競爭免疫結(jié)合,實現(xiàn)了新型的AFB1檢測方法,檢測限為0.03 ng/mL。文獻(xiàn)[14]利用納米粒子建立了一種OTA(赭曲霉毒素A)檢測體系,通過溶液中游離的cDNA與加入的Ag+在NaBH4的存在下形成強熒光的納米粒子,從而實現(xiàn)OTA的檢測,檢測限為2 pg/mL。文獻(xiàn)[15]以磁性材料為載體,不同納米材料為信號探針,構(gòu)建磁控適配體比色、熒光、電化學(xué)傳感體系,成功檢測出花生中赭曲霉毒素A和伏馬毒素B1。
傳統(tǒng)的膠體金標(biāo)記技術(shù)的實驗步驟較為繁瑣,需要構(gòu)建人工抗原抗體,從而實現(xiàn)標(biāo)記[16]。本文以膠體金為介質(zhì),制備賴氨酸修飾的金膠體系,以實現(xiàn)對霉變花生中AFB1的快速檢測。
UV-2450型紫外可見分光光度計(日本島津公司);JEOL 2100型透射電鏡(日本JEOL公司);LA-20型高效液相色譜儀(日本島津公司),配有熒光檢測器;11830-RT型氮吹儀(美國Organomation公司);DF-101S型集熱式磁力加熱攪拌器(河南鞏義市予華儀器廠);TG16-WS型臺式高速離心機(長沙湘儀有限公司);XH-D型漩渦振蕩器(無錫杰瑞安儀器設(shè)備有限公司)。
AFB1、OTA、FB1(伏馬毒素B1)、氯金酸(HAuCl4)、檸檬酸三鈉,購于Sigma-Aldrich公司;L-賴氨酸、三氟乙酸、正己烷,購于薩恩化學(xué)技術(shù)有限公司;HgCl2,購于山東西亞化學(xué)股份有限公司;乙腈,購于美國TEDIA公司;試驗用水為二次去離子水。
本實驗采用檸檬酸三鈉還原法制備膠體金[17],首先,稱取8.9 mg的氯金酸固體粉末溶于100 mL的超純水中,加熱到沸騰,迅速加入12 mL的1%檸檬酸三鈉溶液,持續(xù)加熱。觀察溶液的顏色變化,當(dāng)溶液的顏色完全變?yōu)橥该鳌⒊吻宓木萍t色時,停止加熱。待溶液冷卻至室溫(20℃),4℃避光保存[18]。然后將5 mL的15 mol/L賴氨酸水溶液加入45 mL所制備的AuNPs(膠體金)中,150 r/min攪拌10 min,制備得到賴氨酸修飾的膠體金(Lys-AuNPs)溶液。利用紫外可見分光光度計和透射電鏡對其進(jìn)行表征。
Hg2+能夠與AFB1形成穩(wěn)定的螯合物。Hg是過渡金屬元素,并且容易形成配位數(shù)為6的絡(luò)合物。它的幾何構(gòu)型通常相當(dāng)于由6個配位原子形成的八面體,使得配合物AFB1-Hg2+的共軛平面增強,剛性結(jié)構(gòu)增加[19]。
本實驗通過檸檬酸三鈉還原HAuCl4制得膠體金,生成的溶液是一種膠體溶液,Lys-AuNPs粒子的表面覆蓋著賴氨酸,顆粒之間通過靜電排斥作用使得賴氨酸修飾的膠體金溶液保持著穩(wěn)定性[20]。如圖1所示,當(dāng)溶液中加入HgCl2時,Hg2+會與賴氨酸上的氨基發(fā)生作用,破壞膠體溶液的穩(wěn)定性,使溶液產(chǎn)生凝聚,顏色變成灰黑色。當(dāng)溶液中混入AFB1,則Hg2+會與AFB1發(fā)生螯合反應(yīng),生成穩(wěn)定的配合物,從而使破壞膠體溶液穩(wěn)定性的Hg2+減少,隨著AFB1濃度的升高,溶液中游離的Hg2+不斷減少,顏色逐漸變?yōu)榧t色。通過紫外可見分光光度計對溶液進(jìn)行吸光度測定,然后建立AFB1濃度與吸光度之間的相關(guān)關(guān)系。
圖1 賴氨酸修飾的膠體金溶液檢測AFB1原理示意圖Fig.1 Schematic of AFB1 detection by lysine-functionalized gold nanoparticles
在5 mL的離心管中加入15 μmol/L的HgCl2溶液100 μL和不同濃度的AFB1900 μL,漩渦振蕩3 min,混勻。在混合液中加入1 mL的Lys-AuNPs溶液,漩渦振蕩5 min。用紫外可見分光光度計測其吸收光譜,根據(jù)在725 nm和525 nm處吸光度比值建立AFB1濃度的校準(zhǔn)曲線。
本批次實驗花生仁樣本均產(chǎn)于江蘇省南通市,品種為冀花4號,并參考GB 5009.22—2016的方法進(jìn)行預(yù)處理。首先,將花生樣品研磨成粉末,稱取0.5 g試樣(精確至0.01 g)于50 mL離心管中。再加入20 mL質(zhì)量分?jǐn)?shù)25%的乙腈,漩渦混勻。然后用均質(zhì)機均質(zhì)3 min,在6 000 r/min下離心10 min,取其上清液備用。
色譜條件:流動相為25%乙腈;色譜柱為C18柱;流速1.0 mL/min;柱溫40℃;進(jìn)樣體積50 μL;檢測波長360 nm;發(fā)射波長440 nm。
柱前衍生:用移液管吸取4 mL的待測液于10 mL的離心管中,然后在50℃下用氮氣慢慢地吹至近干,再加入200 μL的正己烷與100 μL的三氟乙酸,漩渦振蕩30 s。在40℃的恒溫箱中衍生15 min,在50℃下用氮氣緩緩地吹至近干。用25%乙腈定容至1 mL,漩渦振蕩30 s溶解殘留物,最后過0.45 μm濾膜,收集濾液于進(jìn)樣瓶中備用。
將制備得到的賴氨酸修飾的膠體金溶液在透射電鏡下進(jìn)行觀察,Lys-AuNPs的粒徑大約為25 nm,圖2為膠體金溶液在不同狀態(tài)下的電鏡圖,圖2a為賴氨酸修飾的膠體金溶液,顆粒間分散性良好;圖2b中顆粒之間發(fā)生凝聚現(xiàn)象;圖2c中顆粒之間又重新分散開。如圖3所示,從紫外可見光譜圖中可以發(fā)現(xiàn)Lys-AuNPs溶液僅在525 nm處存在一個吸收峰;當(dāng)溶液中加入Hg2+時,溶液顏色會變成灰黑色,且溶液發(fā)生凝聚現(xiàn)象,會在525 nm和725 nm處形成2個吸收峰;當(dāng)溶液中加入Hg2+和20 ng/mL的AFB1時,溶液在525 nm處的吸光度增加,在725 nm處的吸光度減小。
圖2 膠體金溶液不同狀態(tài)下的透射電鏡圖Fig.2 TEM images of different states of gold nanoparticles solution
圖3 溶液中加入Hg2+和AFB1后Lys-AuNPs的紫外可見光譜Fig.3 UV-visible spectra of gold nanoparticles solution after adding Hg2+ and AFB1
在Lys-AuNPs和Hg2+離子濃度一致的情況下,向體系中加入不同質(zhì)量濃度(0、1、2.5、5、10、20、50、100、300、400、500 ng/mL)的AFB1溶液,混勻、平衡后觀察其在不同質(zhì)量濃度AFB1下Lys-AuNPs溶液的顏色變化和凝聚情況,并用紫外可見分光光度計測量混合后溶液的吸光度,其紫外可見光譜圖如圖4所示。
圖4 溶液在不同AFB1質(zhì)量濃度下的紫外可見光譜Fig.4 UV-visible spectrogram of different concentrations of AFB1
圖5 溶液在不同AFB1質(zhì)量濃度下的顏色Fig.5 Color of solutions with different concentrations of AFB1
當(dāng)AFB1的質(zhì)量濃度發(fā)生變化時,溶液的顏色也會產(chǎn)生相應(yīng)的變化,如圖5所示。當(dāng)溶液中沒有混入AFB1,只有Lys-AuNPs和Hg2+時,溶液呈灰黑色,此時溶液在525 nm處和725 nm處有兩個吸收峰;隨著AFB1質(zhì)量濃度的不斷增加,溶液的顏色由灰黑色逐漸變淡,最后向紅色轉(zhuǎn)變,Lys-AuNPs溶液在525 nm處的吸光度緩慢下降,而725 nm處的吸光度不斷增加;當(dāng)溶液中Hg2+全部與AFB1形成配合物時,溶液顏色變?yōu)榧t色,此時,紫外可見光譜圖中只剩下一個吸收峰。觀察溶液在525 nm和725 nm處雙峰吸光度與AFB1濃度之間的關(guān)系可知,Lys-AuNPs溶液在725 nm處的吸光度A725與在525 nm處的吸光度A525之間的比值A(chǔ)725/A525隨著AFB1質(zhì)量濃度的增加而減小,逐漸趨向0。通過分析Lys-AuNPs溶液中AFB1質(zhì)量濃度與A725/A525的相關(guān)關(guān)系發(fā)現(xiàn),當(dāng)溶液中AFB1質(zhì)量濃度在1~50 ng/mL時,A725/A525與AFB1質(zhì)量濃度有較好的線性關(guān)系,如圖6所示,線性回歸方程為y=-0.010 5x+1.144 7,決定系數(shù)R2=0.996,檢出限為0.2 ng/mL。
圖6 A725/A525與AFB1質(zhì)量濃度之間的關(guān)系Fig.6 Relationship between concentration of AFB1 and A725/A525 value
選取正?;ㄉ鷮⑵溲心コ煞勰?0 mL的離心管中稱取4份花生粉末,每份0.5 g,將等體積不同質(zhì)量濃度的AFB1(0.5、1、10、50 ng/mL),加入20 mL的50%乙腈,漩渦混合,用均質(zhì)機均質(zhì)3 min,在6 000 r/min下離心10 min。然后利用Lys-AuNPs溶液測AFB1的質(zhì)量濃度,得其加標(biāo)回收率分別為85.0%、97.2%、110%、95.5%,平均加標(biāo)回收率為96.9%,相對標(biāo)準(zhǔn)偏差為8.9%。
為了研究本實驗中制備的Lys-AuNPs溶液的特異性,通過選用霉變花生仁中其它霉菌毒素,如OTA和FB1作為干擾霉菌毒素,進(jìn)行驗證。取900 μL質(zhì)量濃度為5 ng/mL的AFB1、OTA、FB1分別加入3支10 mL的離心管內(nèi),在離心管中分別加入15 μmol/L的HgCl2溶液100 μL,漩渦振蕩3 min,使其充分混合。然后在每個離心管的混合液中分別加入1 mL的Lys-AuNPs溶液,漩渦振蕩5 min,并用紫外可見分光光度計測其吸收光譜。圖7為分別加入AFB1、FB1、OTA后的紫外可見光譜圖,與空白組相比,加入5 ng/mL AFB1的溶液在525 nm處的吸光度明顯上升,725 nm處的吸光度顯著降低,而加入OTA與FB1的溶液的吸光度幾乎沒有變化。數(shù)據(jù)表明,目標(biāo)物中混入AFB1時的吸光度變化率遠(yuǎn)高于混入OTA與FB1。由以上結(jié)果表明,此方法所構(gòu)建的賴氨酸修飾的膠體金體系有較好的選擇性,霉變花生仁中存在的OTA和FB1并不會影響AFB1質(zhì)量濃度的檢測,基于此建立的花生仁中AFB1含量的檢測方法具有良好的特異性。
圖7 AFB1、FB1、OTA的紫外可見光譜Fig.7 UV-visible spectrogram of AFB1, FB1 and OTA
用本研究提出的Lys-AuNPs溶液檢測AFB1的方法檢測溶液中AFB1的質(zhì)量濃度,并用高效液相色譜法(HPLC)對AFB1的質(zhì)量濃度進(jìn)行驗證。選取40個花生樣品對其AFB1質(zhì)量濃度進(jìn)行測定與比較,由圖8可知,用高效液相色譜法和Lys-AuNPs溶液測定的AFB1質(zhì)量濃度的均方根誤差為0.865 1 ng/mL,相關(guān)系數(shù)為0.996 1。結(jié)果表明由本實驗所建立的賴氨酸修飾的膠體金體系可用于花生中AFB1的檢測。
圖8 用Lys-AuNPs和HPLC測定AFB1濃度的比較Fig.8 Comparison of results for AFB1 concentration determined by Lys-AuNPs and HPLC methods
提出了一種新的霉變花生中AFB1檢測方法:用賴氨酸修飾的膠體金溶膠體系對霉變花生中AFB1進(jìn)行檢測。該方法無需使用光敏材料、酶試劑等,具有快速、簡單、特異性好等優(yōu)勢,并且無需制備復(fù)雜的特異性抗體來檢測黃曲霉毒素。Lys-AuNPs溶液檢測AFB1的線性范圍為1~50 ng/mL,決定系數(shù)0.996,檢出限為0.2 ng/mL,平均加標(biāo)回收率為96.9%,相對標(biāo)準(zhǔn)偏差為8.9%。該方法快速、準(zhǔn)確、靈敏,可用于霉變花生中AFB1的檢測。