陳建歐 王瑩瓊 李麗燕 鄭旭旭
p,p′-DDT是有機(jī)氯農(nóng)藥滴滴涕(dichlorodiphenytrichloroethane,DDT)的主要成分,曾廣泛用于農(nóng)業(yè)殺蟲和治療瘧疾等傳染病[1]。因DDT對環(huán)境和動物危害嚴(yán)重,現(xiàn)已被禁止使用。有研究表明我國食品中仍能檢測到殘留的DDT,含量遠(yuǎn)超過發(fā)達(dá)國家平均值[2]。殘余DDT可通過食物鏈和生物富集作用逐級放大到較高濃度,長期蓄積于人體內(nèi)可嚴(yán)重危害人類生命健康[3]。乳腺癌是女性最常見的惡性腫瘤之一,流行病學(xué)調(diào)查顯示影響乳腺癌發(fā)生的因素中73%歸因于環(huán)境,DDT可增加乳腺癌的發(fā)病風(fēng)險。Cohn等[4]研究發(fā)現(xiàn),母親接觸過高劑量p,p′-DDT的女性患乳腺癌的風(fēng)險比低劑量對照組提高3.7倍。胡大為等[5]證實(shí)p,p′-DDT是影響乳腺癌發(fā)生的高風(fēng)險因素,人體內(nèi)殘余p,p′-DDT呈明顯劑量-反應(yīng)關(guān)系,其負(fù)載量與乳腺癌的發(fā)生呈正相關(guān)。然而,目前p,p′-DDT暴露與乳腺癌發(fā)病的關(guān)系尚不清楚。造成乳腺癌高復(fù)發(fā)率和病死率的主要原因是癌細(xì)胞的侵襲轉(zhuǎn)移,細(xì)胞黏附(包括細(xì)胞間黏附和細(xì)胞與基質(zhì)間黏附)在此過程中發(fā)揮了重要作用。鈣黏附蛋白E(E-cadherin)是一種鈣依賴型細(xì)胞黏附分子,介導(dǎo)同型細(xì)胞間連接,在腫瘤早期浸潤中起調(diào)控作用[6-7]。整合素是一組細(xì)胞表面跨膜受體,識別細(xì)胞與胞外基質(zhì)組分。CD29為整合素βl鏈,是介導(dǎo)細(xì)胞與胞外基質(zhì)黏附的關(guān)鍵因子[8-10]。本研究旨在探討p,p′-DDT暴露對乳腺癌細(xì)胞MCF-7黏附能力及細(xì)胞黏附分子E-cadherin和CD29的影響。
1.1 主要試劑與儀器 p,p′-DDT干粉試劑購自中國Sigma公司,結(jié)晶紫染色液購自上海碧云天生物技術(shù)有限公司,All-in-OneTMFirst-Strand cDNA SynthesisKit User Manual試劑盒、PrimeScript All-in-One-qPCRMix試劑盒、抗E-cadherin抗體、抗α-tubulin抗體、抗CD29抗體購自廣州復(fù)能基因有限公司,二抗羊抗鼠IgG(H+L)、羊抗兔 IgG(H+L)購自美國英杰生命技術(shù)有限公司,常規(guī)試劑由本實(shí)驗室提供。倒置顯微鏡購自日本尼康公司。
1.2 細(xì)胞培養(yǎng) 人乳腺癌細(xì)胞株MCF-7購自上海美軒生物有限公司。將MCF-7置于含10%FBS、1%雙抗的完全培養(yǎng)基中,37℃、5%CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。取對數(shù)生長期細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗。
1.3 p,p′-DDT最適刺激濃度、時間條件的確定 將p,p′-DDT溶于DMSO配成100mmol/L儲備液。使用時用RPMI 1640培養(yǎng)基稀釋至室驗所需濃度。用不同濃度 p,p′-DDT(0、10-10、10-9、10-8、10-7、10-6、10-5mol/L)分別處理MCF-7 24和48h,選出促進(jìn)MCF-7遷移作用最明顯的適宜p,p′-DDT的濃度和時間,以此作為最佳條件來進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗。
1.4 細(xì)胞間黏附率測定 采用細(xì)胞聚集試驗。取對數(shù)生長期狀態(tài)良好的MCF-7,分為對照組和試驗組,對照組使用完全培養(yǎng)基,試驗組培養(yǎng)基中加入終濃度為10-7mol/L的p,p′-DDT。培養(yǎng)48h后接種于96孔板,37℃、80r/min搖床振蕩1h,統(tǒng)計細(xì)胞間成團(tuán)數(shù)N。試驗組相對于對照組的細(xì)胞間黏附率=N試驗組/N對照組×100%。實(shí)驗重復(fù)3次。
1.5 細(xì)胞與基質(zhì)間黏附率測定 采用結(jié)晶紫染色法。取對數(shù)生長期狀態(tài)良好的MCF-7,分為對照組和試驗組,對照組使用完全培養(yǎng)基,試驗組培養(yǎng)基中加入終濃度為10-7mol/L的p,p′-DDT。培養(yǎng)48h后接種于 96孔板,于接種后0.5、1、1.5和2h再用50μl甲醇固定 20min,50μl 0.5%結(jié)晶紫染色 20min,50μl 1%SDS溶解,室溫孵育10min,測定波長570nm處的吸光度值(A570)。試驗組相對于對照組的細(xì)胞與基質(zhì)間黏附率=(試驗組A570/對照組A570)×100%。實(shí)驗重復(fù)3次。
1.6 MCF-7中E-cadherin和CD29 mRNA表達(dá)水平檢測 采用RT-qPCR法。取對數(shù)生長期狀態(tài)良好的MCF-7接種于60mm培養(yǎng)皿中,試驗組培養(yǎng)基中加入終濃度為10-7mol/L的p,p′-DDT。培養(yǎng)48h后提取細(xì)胞總RNA,再反轉(zhuǎn)錄成cDNA后,操作按照試劑盒說明書進(jìn)行。以GAPDH為內(nèi)參。PCR反應(yīng)體系如下:cDNA 4μl,上游和下游引物 1μl,PrimeScript Mix 12.5μl,純凈水 6.5μl。反應(yīng)所用引物如下:GAPDH 上游引物:5′-GCACCGTCAAGGCTGAGAAC-3′,下游引物:5′-GGTGAAGACGCCAGTGGA-3′;E-cadherin 上游引物:5′-AGGACCAGGTGACCACCCTAGA-3′,下游引物:5′-TGCCCAAGATGGCAGGAAC-3′;CD29 上游引物:5′-AATGAAGGGCGTGTTGGTAG-3′,下游引物:5′-CTGCCAGTGTAGTTGGGGTT-3′。
1.7 MCF-7中E-cadherin和CD29蛋白表達(dá)水平檢測 采用Western blot法。取對數(shù)生長期狀態(tài)良好的MCF-7接種于60mm培養(yǎng)皿中,試驗組培養(yǎng)基中加入終濃度為10-7mol/L的p,p′-DDT。培養(yǎng)48h后提取細(xì)胞總蛋白,BCA法定量后蛋白變性于10%SDS-PAGE凝膠電泳,并轉(zhuǎn)移至PVDF膜。5%脫脂奶粉封閉1.5h,抗E-cadherin 抗體(1∶1 000)、抗 CD29 抗體(1∶1 000)和抗 α-tubulin抗體(1∶1 000)4℃孵育過夜,洗膜后 HRP標(biāo)記二抗(1∶1 000)室溫孵育 1h,HRP-ECL 顯影曝光。
1.8 統(tǒng)計學(xué)處理 采用SPSS 20.0統(tǒng)計軟件。計量資料以表示,組間比較采用兩獨(dú)立樣本t檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 p,p′-DDT最適刺激濃度、時間條件確定及其對MCF-7細(xì)胞間黏附率的影響 10-7mol/L的p,p′-DDT作用MCF-7 48h后,細(xì)胞遷移作用最明顯,MCF-7細(xì)胞間黏附能力明顯降低。與對照組相比,試驗組細(xì)胞間黏附能力降低,試驗組相對于對照組的細(xì)胞間黏附率為(59.7±8.15)%,見圖 1。
圖1 p,p′-DDT對MCF-7細(xì)胞間黏附率的影響(a:對照組細(xì)胞;b:試驗組細(xì)胞;倒置顯微鏡下,×200)
2.2 p,p′-DDT對MCF-7細(xì)胞與基質(zhì)間黏附率的影響與對照組相比,0.5、1、1.5和2h時試驗組細(xì)胞與基質(zhì)間的黏附能力均增強(qiáng)。0.5、1、1.5和2h時試驗組相對于對照組的細(xì)胞與基質(zhì)間黏附率分別為(212.8±0.20)%、(153.9±0.42)%、(174.5±0.18)%和(131.5±0.43)%,見圖 2。
圖2 p,p′-DDT對MCF-7細(xì)胞與基質(zhì)間黏附率的影響(a:0.5h對照組細(xì)胞;b:0.5h試驗組細(xì)胞;c:1h對照組細(xì)胞;d:1h試驗組細(xì)胞;e:1.5h 對照組細(xì)胞;f:1.5h 試驗組細(xì)胞;g:2h 對照組細(xì)胞;h:2h 試驗組細(xì)胞;倒置顯微鏡下,×200)
2.3 p,p′-DDT對 MCF-7中E-cadherin表達(dá)的影響10-7mol/L的p,p′-DDT作用MCF-7 48h后,試驗組E-cadherin mRNA和蛋白表達(dá)水平均低于對照組,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05),見表1和圖3。
表1 p,p′-DDT對MCF-7中E-cadherin表達(dá)的影響
圖3 p,p′-DDT對MCF-7中E-cadherin蛋白表達(dá)的電泳圖
2.4 p,p′-DDT對 MCF-7中 CD29表達(dá)的影響 經(jīng)10-7mol/L的p,p′-DDT作用MCF-7 48h后,試驗組CD29 mRNA和蛋白表達(dá)水平均高于對照組,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05),見表2和圖4。
以往研究證明,有機(jī)污染物p,p′-DDT具有一定的致癌性,與多種腫瘤的發(fā)生、發(fā)展密切相關(guān)[11]。趙君宇等[12]研究認(rèn)為p,p′-DDT可能通過影響癌細(xì)胞的黏附能力促進(jìn)其侵襲轉(zhuǎn)移,最終導(dǎo)致細(xì)胞游離出基底膜,這一過程是腫瘤浸潤和轉(zhuǎn)移的第一步。本研究發(fā)現(xiàn)p,p′-DDT能明顯減少M(fèi)CF-7細(xì)胞間黏附率但同時增加細(xì)胞與基質(zhì)間黏附率。此過程可能是p,p′-DDT促使乳腺癌發(fā)生、發(fā)展的機(jī)制之一。
表2 p,p′-DDT對MCF-7中CD29表達(dá)的影響
圖4 p,p′-DDT對MCF-7中CD29蛋白表達(dá)的電泳圖
細(xì)胞黏附分子是一類分布于細(xì)胞膜表面,介導(dǎo)同型細(xì)胞間及細(xì)胞與基質(zhì)間黏附的分子,其改變與腫瘤細(xì)胞黏附能力的改變密切相關(guān)。Liu等[13]報道當(dāng)黏附分子E-cadherin功能缺失后,會造成細(xì)胞間黏附能力喪失,導(dǎo)致腫瘤容易發(fā)生侵襲、轉(zhuǎn)移。E-cadherin可抑制腫瘤細(xì)胞的侵襲能力,在發(fā)生上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化的癌細(xì)胞系里E-cadherin呈現(xiàn)低表達(dá)[14]。而CD29能通過提高細(xì)胞與細(xì)胞外基質(zhì)的黏附來促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的侵襲、轉(zhuǎn)移[10,15]。
本文研究了p,p′-DDT暴露后 MCF-7中E-cad-h(huán)erin和CD29的表達(dá)水平。結(jié)果表明,經(jīng)10-7mol/L p,p′-DDT處理后,MCF-7中 E-cadherin的 mRNA和蛋白表達(dá)水平均呈明顯下降趨勢,細(xì)胞聚集試驗分析則顯示p,p′-DDT暴露降低了MCF-7細(xì)胞間黏附能力。由此說明p,p′-DDT可能通過下調(diào)細(xì)胞間黏附分子E-cadherin的表達(dá)水平來抑制MCF-7細(xì)胞間的黏附。而MCF-7中CD29的mRNA和蛋白表達(dá)水平均呈明顯上升趨勢,結(jié)晶紫染色法分析則顯示p,p′-DDT暴露升高了MCF-7細(xì)胞與基質(zhì)間的黏附能力。本研究表明p,p′-DDT可能通過上調(diào)細(xì)胞與基質(zhì)間黏附分子CD29的表達(dá)水平來促進(jìn)MCF-7細(xì)胞與基質(zhì)間的黏附。目前的研究僅從p,p′-DDT對MCF-7黏附能力的影響及機(jī)制探討其對乳腺癌發(fā)生、發(fā)展的影響。p,p′-DDT還可能通過影響乳腺癌的細(xì)胞增殖、分化、凋亡等多種因素促進(jìn)乳腺癌的侵襲和轉(zhuǎn)移,還需對此方面進(jìn)行深層次的研究。
綜上所述,p,p′-DDT對MCF-7的細(xì)胞黏附能力及細(xì)胞黏附分子E-cadherin和CD29的表達(dá)有較大影響。10-7mol/L的p,p′-DDT能明顯降低MCF-7同型細(xì)胞間的黏附,同時增強(qiáng)細(xì)胞與基質(zhì)間的黏附。p,p′-DDT可能是通過下調(diào)E-cadherin并上調(diào)CD29的表達(dá)水平,從而改變細(xì)胞黏附能力來促進(jìn)乳腺癌細(xì)胞的侵襲與轉(zhuǎn)移。