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實(shí)時(shí)熒光環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)檢測土壤中的類鼻疽伯克霍爾德菌

2019-04-11 06:57,,,,,,
關(guān)鍵詞:爾德靈敏度核酸

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類鼻疽伯克霍爾德菌(Burkholderiapseudomallei)又稱類鼻疽桿菌,隸屬于伯克霍爾德菌屬(Burkholderia),是借鞭毛而運(yùn)動的革蘭陰性桿菌,無芽孢[1];分布廣泛,主要存在于水及土壤中,其耐受力極強(qiáng),可在土壤中存活幾十年之久;類鼻疽伯克霍爾德菌污染的土壤和水被人和動物接觸后,可引起人和動物的類鼻疽,是一種典型的熱帶疾病致病菌,能感染機(jī)體幾乎任何器官,被美國CDC列為B類生物恐怖劑[2]。類鼻疽臨床表現(xiàn)多樣且缺乏特異性,易被誤診為肺炎、肺結(jié)核、肺膿腫或其他化膿菌所致的菌血癥,有似“百樣病”之稱[3];此外,類鼻疽伯克霍爾德菌表現(xiàn)出對多類抗生素的固有耐藥,包括β-內(nèi)酰胺類、氨基糖苷類、大環(huán)內(nèi)酯類和多粘菌素等,給臨床治療帶來很大的困難,導(dǎo)致患者死亡率高[4]。類鼻疽主要流行于澳大利亞北部、泰國等熱帶地區(qū),我國自1990年首次報(bào)道皮膚類鼻疽病例以來,陸續(xù)有類鼻疽病例的報(bào)道,且死亡率高達(dá)50%以上;廣東、廣西、海南等地也是其重災(zāi)區(qū),就目前而言,類鼻疽已經(jīng)成為了嚴(yán)重的公共衛(wèi)生問題[5]。

目前,檢測類鼻疽伯克霍爾德菌的主要方法有細(xì)菌分離培養(yǎng)[6]、生化鑒定[7]、抗原檢測[8]、抗體檢測[9]、氣液相色譜分析[10]和分子檢測[11]等。雖然鑒定臨床標(biāo)本中分離培養(yǎng)的的類鼻疽伯克霍爾德菌是診斷類鼻疽的標(biāo)準(zhǔn)方法,但是培養(yǎng)和鑒定耗費(fèi)時(shí)間長,易錯過最佳治療時(shí)間;傳統(tǒng)的生化培養(yǎng)常常出現(xiàn)錯誤;抗體檢測在類鼻疽流行地區(qū)的應(yīng)用存在背景抗體的干擾;近年來,分子診斷類鼻疽伯克霍爾德菌引起了研究學(xué)者的關(guān)注,但是傳統(tǒng)的PCR技術(shù)耗費(fèi)時(shí)間較長、操作繁瑣。2000年,Notomi[12]等發(fā)明了一種新型的核酸等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)-環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)(Loop-mediated isothermal amplification,LAMP),利用具有鏈置換活性的BstDNA聚合酶(BstDNA polymerase)提供反應(yīng)的動力,在恒溫條件下幾十分鐘即可完成靶基因的高效擴(kuò)增。該方法規(guī)避了常規(guī)PCR反應(yīng)的變性、退火、延伸等一系列復(fù)雜的過程,大大節(jié)省了反應(yīng)時(shí)間和成本,已被廣泛應(yīng)用于對細(xì)菌、病毒、寄生蟲的快速檢測和動物胚胎性別鑒定等領(lǐng)域[13]。本文根據(jù)類鼻疽伯克霍爾德菌filc基因片段設(shè)計(jì)LAMP引物[14],同時(shí)利用反應(yīng)產(chǎn)物與熒光染料結(jié)合發(fā)出熒光的特點(diǎn),向反應(yīng)體系中加入熒光染料EvaGreen,隨著反應(yīng)產(chǎn)物的增加,與其結(jié)合的熒光染料也越來越多,熒光信號強(qiáng)度也隨之增強(qiáng),通過實(shí)時(shí)熒光定量儀對熒光信號進(jìn)行搜集,實(shí)現(xiàn)實(shí)時(shí)定性檢測,建立實(shí)時(shí)熒光環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)檢測類鼻疽伯克霍爾德菌的方法。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1菌株 類鼻疽伯克霍爾德菌、土拉弗朗西斯氏菌、布魯氏菌、鼠疫菌和蜱蟲DNA、副溶血弧菌、腸出血性大腸桿菌O157∶H7型、單核細(xì)胞增生李斯特氏菌、沙門氏桿菌、金黃色葡萄球菌、肺炎克雷伯菌、脆弱擬桿菌、雙歧桿菌、乳酸桿菌DNA均由生物應(yīng)急與臨床POCT北京市重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室提供。

1.1.2主要試劑與儀器 PCR擴(kuò)增試劑盒(上海生工生物工程股份有限公司);BstDNA聚合酶大片段(New England Biolabs);EvaGreen染料(上海開放生物科技有限公司);細(xì)菌核酸提取試劑盒(北京開景基因技術(shù)有限公司);甜菜堿(Sigma-Aldrich);Line-Gene 9600 Plus 實(shí)時(shí)熒光PCR儀(杭州博日科技有限公司);XMTD-6000電熱恒溫水浴鍋(北京市長風(fēng)儀器儀表公司);DYY-8C型電泳儀(北京市六一儀器廠);質(zhì)粒提取試劑盒(天根生化科技有限公司,北京)。

1.2 方法

1.2.1引物的設(shè)計(jì)與合成 根據(jù)類鼻疽伯克霍爾德菌filc基因序列(GenBank accession no.: KJ814953.1),利用軟件PrimerExplorer V5 (日本榮研化學(xué)株式會社)在線設(shè)計(jì)特異的LAMP引物對(包括外引物F3/B3,內(nèi)引物FIP/BIP,環(huán)引物L(fēng)F/LB),序列如表1所示。

表1 引物序列Tab.1 Information of the primers

1.2.2細(xì)菌DNA模板的制備 采用熱裂解法制備細(xì)菌DNA模板。取培養(yǎng)過夜的類鼻疽伯克霍爾德菌菌液1 mL,8 000×g離心1 min棄上清液。加入100 μL無菌水充分懸浮菌體,沸水浴中煮沸10 min,10 000×g離心2 min,上清液即可作為擴(kuò)增模板,保存溫度為-20 ℃。

1.2.3RealAmp反應(yīng)體系 10×Thermopol buffer(1 μL),EvaGreen(0.2 μL), 2 mmol/L MgSO4(0.2 μL),10 mmol/L dNTPs Mix(0.4 μL),5 mmol/L Betaine(2 μL),10 pmol/μL外引物(F3 / B3)各0.1 μL,10 pmol/μL內(nèi)引物(FIP / BIP)各0.6 μL,10 pmol/μL環(huán)引物(LF / LB)0.4 μL,128 U/mL Bst DNA Polymerase(0.4 μL),模板(2 μL),H2O補(bǔ)足至10 μL。擴(kuò)增反應(yīng)條件:63 ℃,60 min。

1.2.4產(chǎn)物電泳驗(yàn)證 取以類鼻疽伯克霍爾德菌核酸為模板的RealAmp擴(kuò)增產(chǎn)物5 μL,與1 μL的10×loading buffer混合均勻,于2%瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳分析,觀察階梯狀條帶,證實(shí)是否發(fā)生了反應(yīng)。

1.2.5RealAmp的特異性驗(yàn)證 依據(jù)基于類鼻疽伯克霍爾德菌filc基因建立的RealAmp技術(shù),配制反應(yīng)體系,將類鼻疽伯克霍爾德菌、土拉弗朗西斯氏菌、布魯氏菌、鼠疫菌、副溶血弧菌、腸出血性大腸桿菌O157∶H7型、單核細(xì)胞增生李斯特氏菌、沙門氏桿菌、金黃色葡萄球菌、肺炎克雷伯菌、脆弱擬桿菌、雙歧桿菌、乳酸桿菌以熱裂解法提取細(xì)菌DNA為模板,于63 ℃進(jìn)行RealAmp反應(yīng),驗(yàn)證該檢測方法的特異性。

1.2.6 RealAmp的靈敏度實(shí)驗(yàn)

1.2.6.1細(xì)菌核酸檢測靈敏度 采用熱裂解法,提取過夜培養(yǎng)的類鼻疽伯克霍爾德菌菌液的DNA,用無菌水進(jìn)行10倍倍比稀釋至1×101CFU/mL~1×108CFU/mL,分別取2 μL作為反應(yīng)模板,進(jìn)行RealAmp擴(kuò)增,檢測方法的靈敏度。

1.2.6.2克隆質(zhì)粒檢測靈敏度 采用熱裂解法,提取類鼻疽伯克霍爾德菌克隆株質(zhì)粒,用無菌水進(jìn)行10倍倍比稀釋至1×101copies/μL~1×109copies/μL,分別取2 μL作為反應(yīng)模板,進(jìn)行RealAmp擴(kuò)增。

1.2.7 普通LAMP的靈敏度實(shí)驗(yàn)

1.2.7.1普通LAMP反應(yīng)體系 10×Thermopol buffer(1 μL),2 mmol/L MgSO4(0.2 μL),10 mmol/L dNTPs Mix(0.4 μL),5 mmol/L Betaine(2 μL),10 pmol/μL外引物(F3 / B3)各0.1 μL,10 pmol/μL內(nèi)引物(FIP / BIP)各0.6 μL,10 pmol/μL環(huán)引物(LF/ LB)0.4 μL,128 U/mL Bst DNA Polymerase(0.4 μL),模板(2 μL),H2O補(bǔ)足至10 μL。擴(kuò)增反應(yīng)條件:63 ℃,60 min。

1.2.7.2細(xì)菌核酸檢測靈敏度 采用熱裂解法,提取過夜培養(yǎng)的類鼻疽伯克霍爾德菌菌液的DNA,用無菌水進(jìn)行10倍倍比稀釋至1×100CFU/mL~1×107CFU/mL,分別取2 μL作為反應(yīng)模板,進(jìn)行LAMP擴(kuò)增,檢測方法的靈敏度。

1.2.7.3克隆質(zhì)粒檢測靈敏度 采用熱裂解法,提取類鼻疽伯克霍爾德菌克隆株質(zhì)粒,用無菌水進(jìn)行10倍倍比稀釋至1×101copies/μL~1×109copies/μL,分別取2 μL作為反應(yīng)模板,進(jìn)行LAMP擴(kuò)增。

1.2.8 人工污染土壤

1.2.8.1人工污染土壤模擬樣本的制備 篩除大顆粒雜質(zhì)的土壤,用蒸餾水制成懸濁液(0.25 g土壤加0.5 mL蒸餾水),取濃度為1×102CFU/mL~1×109CFU/mL類鼻疽伯克霍爾德菌克隆株菌懸液1 mL加入到9 mL的土壤懸液中,振蕩混勻,4 ℃放置過夜,使細(xì)菌與土壤充分吸附,即為污染土壤。每個(gè)濃度污染3份標(biāo)本,共制備污染土壤24份,同時(shí)制備只加滅菌蒸餾水的陰性對照。

1.2.8.2RealAmp檢測人工污染土壤的靈敏度實(shí)驗(yàn) 以類鼻疽伯克霍爾德菌終濃度為4.4×10-1CFU/g~4.4×1010CFU/g CFU/g的土壤模擬樣本,分別取2 μL作為反應(yīng)模板,進(jìn)行RealAmp擴(kuò)增。

1.2.9人工污染土壤RealAmp與實(shí)時(shí)熒光定量PCR的對比檢測 以類鼻疽伯克霍爾德菌終濃度為4.4×101CFU/g~4.4×108CFU/g的土壤模擬樣本,通過RealAmp技術(shù)和熒光定量PCR對比檢測,比較分析這兩種方法的檢出率和實(shí)際應(yīng)用價(jià)值。

2 結(jié) 果

2.1RealAmp檢測類鼻疽伯克霍爾德菌方法的建立 如圖1所示,當(dāng)反應(yīng)進(jìn)行至25個(gè)循環(huán)(1 min/循環(huán))時(shí),陽性對照管的熒光強(qiáng)度大幅度增加,熒光曲線斜率增加,當(dāng)反應(yīng)進(jìn)行至40個(gè)循環(huán),熒光信號增加強(qiáng)度逐漸變緩,直至反應(yīng)結(jié)束,儀器判定為陽性結(jié)果,說明發(fā)生了擴(kuò)增反應(yīng)。陰性對照管熒光曲線一直處于平滑的狀態(tài),直到反應(yīng)終止也沒有曲線斜率的變化,儀器判定為陰性結(jié)果,說明沒有發(fā)生擴(kuò)增反應(yīng)。

1:陽性對照 2:陰性對照

2.2產(chǎn)物的電泳結(jié)果分析 如圖2所示,1泳道有階梯狀條帶產(chǎn)生,說明陽性對照管發(fā)生了擴(kuò)增反應(yīng),2泳道沒有條帶,說明沒有發(fā)生擴(kuò)增反應(yīng),檢測結(jié)果與圖1所示檢測結(jié)果一致。

M:100 bp marker;1:陽性對照;2:陰性對照

2.3RealAmp檢測類鼻疽伯克霍爾德菌方法的特異性 如圖3所示,類鼻疽伯克霍爾德菌有明顯的擴(kuò)增出現(xiàn),其他12株細(xì)菌和脾的DNA均未產(chǎn)生擴(kuò)增峰,表明基于類鼻疽伯克霍爾德菌filc基因建立的RealAmp技術(shù)特異性強(qiáng)。

1:類鼻疽伯克霍爾德菌;2:土拉弗朗西斯氏菌;3:布魯氏菌;4:鼠疫菌;5:副溶血弧菌;6:腸出血性大腸桿菌O157:H7型;7:單核細(xì)胞增生李斯特氏菌;8:沙門氏桿菌;9:金黃色葡萄球菌;10:乳酸桿菌;11:肺炎克雷伯菌;12:脆弱擬桿菌;13:雙歧桿菌;14:蜱蟲DNA;15:陰性對照

2.4RealAmp與普通LAMP檢測類鼻疽伯克霍爾德菌方法靈敏度的比較

2.4.1普通LAMP檢測類鼻疽伯克霍爾德菌方法的靈敏度 類鼻疽伯克霍爾德菌核酸的終濃度為1×107CFU/mL,10倍倍比稀釋后,進(jìn)行普通LAMP擴(kuò)增,如圖4(A)所示,1~5泳道出現(xiàn)明顯的階梯狀條帶,為陽性結(jié)果,即普通LAMP檢測類鼻疽伯克霍爾德菌的靈敏度為1×103CFU/mL;類鼻疽伯克霍爾德菌質(zhì)粒終濃度為1×108copies/μL,10倍倍比稀釋后,進(jìn)行普通LAMP擴(kuò)增,如圖5(B)所示,1~7泳道管出現(xiàn)明顯的階梯狀條帶,為陽性結(jié)果,即普通LAMP檢測類鼻疽伯克霍爾德菌質(zhì)粒的靈敏度為1×102copies/μL。

M:100 bp marker;A:普通LAMP檢測類鼻疽伯克霍爾德菌核酸的靈敏度 1~8:類鼻疽伯克霍爾德菌核酸的終濃度依次為 1×107、1×106、1×105、1×104、1×103、1×102、1×101、 1×100 CFU/mL;9:陰性對照;B:普通LAMP檢測類鼻疽伯克霍爾德菌質(zhì)粒的靈敏度 1~10:類鼻疽伯克霍爾德菌質(zhì)粒的終濃度依次為 1×108、1×107、1×106、1×105、1×104、1×103、1×102、1×101、1×100、1×10-1 copies/μL;11:陰性對照

2.4.2RealAmp檢測類鼻疽伯克霍爾德菌方法的靈敏度 以2.4.1中的類鼻疽伯克霍爾德菌核酸,進(jìn)行RealAmp擴(kuò)增,如圖5(A)所示,1~6號管出現(xiàn)明顯的擴(kuò)增峰,為陽性結(jié)果,即RealAmp檢測類鼻疽伯克霍爾德菌的靈敏度為1×102CFU/mL;同樣以2.4.1中的類鼻疽伯克霍爾德菌克隆質(zhì)粒,進(jìn)行RealAmp擴(kuò)增,如圖5(B)所示,1~8號管出現(xiàn)明顯的擴(kuò)增峰,為陽性結(jié)果,即RealAmp檢測類鼻疽伯克霍爾德菌的靈敏度為1×101copies/μL。綜上所述,RealAmp靈敏度是普通LAMP的10倍。

A:RealAmp檢測類鼻疽伯克霍爾德菌核酸的靈敏度 1~8:類鼻疽伯克霍爾德菌核酸的終濃度依次為 1×107、1×106、1×105、1×104、1×103、1×102、1×101、 1×100 CFU/mL;9:陰性對照;B:RealAmp檢測類鼻疽伯克霍爾德菌質(zhì)粒的靈敏度 1~10:類鼻疽伯克霍爾德菌質(zhì)粒的終濃度依次為 1×108、1×107、1×106、1×105、1×104、1×103、1×102、1×101、1×100、1×10-1 copies/μL;11:陰性對照

2.5RealAmp檢測人工污染土壤的檢出限 人工污染的土壤中類鼻疽伯克霍爾德菌核酸的終濃度為4.4×10-1CFU/g~4.4×1010CFU/g,分別以每個(gè)稀釋度的核酸為模板,進(jìn)行RealAmp擴(kuò)增,結(jié)果見圖6,1~10號管均出現(xiàn)了明顯的擴(kuò)增峰,為陽性結(jié)果,即RealAmp檢測人工污染土壤中的類鼻疽伯克霍爾德菌的檢出限為4.4×101CFU/g。

1~12:人工污染模擬土壤樣本中類鼻疽伯克霍爾德菌核酸的終濃度依次為 4.4×1010、4.4×109、4.4×108、4.4×107、4.4×106、4.4×105、4.4×104、4.4×103、4.4×102、4.4×101、4.4×100、4.4×10-1 CFU/g;13:陰性對照

2.6RealAmp與實(shí)時(shí)熒光定量PCR的對比檢測人工土壤中的類鼻疽伯克霍爾德菌 如圖7(A)所示,實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測24份靈敏度范圍內(nèi)的人工污染土壤模擬樣本,出現(xiàn)了明顯的擴(kuò)增信號,為陽性結(jié)果,檢出率為100%,但檢出時(shí)間較長;如圖7(B)

所示,以RealAmp技術(shù)檢測相同的樣本,也均出現(xiàn)了擴(kuò)增信號,為陽性結(jié)果,檢出率為100%,且在30 min左右即可查看檢測結(jié)果。結(jié)果表明,RealAmp檢測土壤模擬樣本的檢測結(jié)果與預(yù)期完全一致,與行業(yè)認(rèn)可的標(biāo)準(zhǔn)方法實(shí)時(shí)熒光定量PCR的檢測結(jié)果說明相吻合,且檢測時(shí)間僅為熒光定量PCR檢測時(shí)間的1/5,既節(jié)省了大量時(shí)間,又達(dá)到了熒光定量PCR的檢測效果。

A:qPCR檢測人工污染土壤模擬樣本:人工污染模擬土壤樣本中類鼻疽伯克霍爾德菌核酸的終濃度依次1~3:為4.4×108 CFU/g;4~6:4.4×107 CFU/g;7~9:4.4×106 CFU/g;10~12:4.4×105 CFU/g;13~15:4.4×104 CFU/g;16~18:4.4×103 CFU/g;19~21:4.4×102 CFU/g;22~24:4.4×101 CFU/g;25:陰性對照;B:Real Amp檢測人工污染土壤模擬樣本:人工污染模擬土壤樣本中類鼻疽伯克霍爾德菌核酸的終濃度依次1~3:為4.4×108 CFU/g;4~6:4.4×107 CFU/g;7~9:4.4×106 CFU/g;10~12:4.4×105 CFU/g;13~15:4.4×104 CFU/g;16~18:4.4×103 CFU/g;19~21:4.4×102 CFU/g;22~24:4.4×101 CFU/g;25:陰性對照

3 討 論

類鼻疽伯克霍爾德菌與土拉桿菌、炭疽芽孢桿菌皆具有強(qiáng)致病性,可引起高死亡率的類鼻疽。類鼻疽初期的癥狀與肺炎類似,合并菌血癥、多器官損傷和和敗血癥的患者病死率可高90%,且發(fā)病范圍廣、傳播途徑多、臨床治療困難,從而導(dǎo)致類鼻疽已經(jīng)成為亟待解決的公共衛(wèi)生安全問題,類鼻疽伯克霍爾德菌也被視為經(jīng)典的生物恐怖劑。

鞭毛蛋白(flagellin,F(xiàn)ilC)作為類鼻疽伯克霍爾德菌表面主要抗原,其氨基酸序列高度保守,是引起免疫反應(yīng)的重要抗原成分之一,由filc基因編碼。本次研究針對類鼻疽伯克霍爾德菌filc基因設(shè)計(jì)一套環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增引物,于反應(yīng)體系中加入熒光染料EvaGreen,利用實(shí)時(shí)熒光監(jiān)測儀進(jìn)行核酸擴(kuò)增,成功建立了快速檢測類鼻疽伯克霍爾德菌的RealAmp技術(shù)。在研究過程中,采用建立后的RealAmp技術(shù)檢測類鼻疽伯克霍爾德菌、布魯氏菌等13忠細(xì)菌和蜱蟲DNA,僅類鼻疽伯克霍爾德菌呈陽性結(jié)果,特異性強(qiáng)。靈敏度測試采用了類鼻疽伯克霍爾德菌核酸和克隆株質(zhì)粒進(jìn)行測試,從類鼻疽伯克霍爾德菌活菌中提取的類鼻疽伯克霍爾德菌核酸保證了實(shí)驗(yàn)的可靠性;為了避免活菌裂解不完全,影響靈敏度檢測結(jié)果,采用構(gòu)建質(zhì)粒的方式進(jìn)一步精確計(jì)算靈敏度。RealAmp檢測類鼻疽伯克霍爾德菌的核酸和克隆株質(zhì)粒靈敏度分為100 CFU/mL、10 copies/μL,達(dá)到文獻(xiàn)報(bào)道[15]的實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測類鼻疽伯克霍爾德菌的靈敏度10 copies/μL,且為普通LAMP技術(shù)檢測類鼻疽伯克霍爾德菌靈敏度的10倍。土壤資源是生態(tài)基礎(chǔ)中非常重要的部分,在進(jìn)行類鼻疽伯克霍爾德菌自然疫源地進(jìn)行調(diào)查時(shí),該菌在水源和土壤中的數(shù)量與人的類鼻疽的發(fā)病率有一定的相關(guān)性[16];同時(shí),土壤也是各種生物生存發(fā)展的基礎(chǔ),土壤環(huán)境中存在成千上萬種微生物,環(huán)境復(fù)雜,進(jìn)行類鼻疽伯克霍爾德菌的檢測時(shí),易受土壤環(huán)境中其他微生物和其他物質(zhì)的干擾。優(yōu)化后的RealAmp技術(shù)可直接對土壤中的類鼻疽伯克霍爾德菌進(jìn)行檢測,且檢出限達(dá)44 CFU/g,與對照方法實(shí)時(shí)熒光定量PCR同時(shí)檢測24份涵蓋超低濃度和高濃度的樣本,檢出率均為100%,驗(yàn)證了RealAmp技術(shù)檢測類鼻疽伯克霍爾德菌的實(shí)用價(jià)值。此外,該方法可直接讀取反應(yīng)結(jié)果,并在結(jié)果讀取后可直接終止反應(yīng),節(jié)約了時(shí)間,同時(shí)避免了普通LAMP技術(shù)觀察沉淀的不確定性和用電泳檢測的繁瑣;上機(jī)檢測過程中,每管封閉式檢測避免了反應(yīng)過程中由于溫度升高而易導(dǎo)致氣溶膠污染的現(xiàn)象。

但由于RealAmp技術(shù)建立的時(shí)間不長,依然存在有不足之處:檢測結(jié)果只有陽性與陰性兩種,只能定性,不能準(zhǔn)確定量;設(shè)計(jì)類鼻疽伯克霍爾德菌的環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增引物時(shí),采用了6條引物,雖在恒溫條件下進(jìn)行擴(kuò)增,但引物之間仍可能形成互補(bǔ)而擴(kuò)增出非特異性的條帶,造成假陽性;RealAmp擴(kuò)增效率極高,過于靈敏和產(chǎn)物量大,實(shí)驗(yàn)室一旦遭到擴(kuò)增產(chǎn)物氣溶膠污染,易出現(xiàn)假陽性,因此在操作的過程中應(yīng)劃分區(qū)域,陰性樣本和陽性樣本應(yīng)在不同的密閉實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行添加,實(shí)驗(yàn)器材不能混用,試劑分裝后再進(jìn)行使用;RealAmp實(shí)驗(yàn)需要在反應(yīng)體系中加入熒光染料EvaGreen,其濃度對反應(yīng)影響很大,濃度過高會抑制反應(yīng)的進(jìn)行,濃度過低則會導(dǎo)致熒光信號不明顯,不易被儀器搜集,因此熒光染料EvaGreen的添加濃度需要經(jīng)過實(shí)驗(yàn)摸索后確定。

綜上所述,此次研究針對類鼻疽伯克霍爾德菌filc基因建立的RealAmp技術(shù)具有特異性強(qiáng)、靈敏度高、簡便高效等特點(diǎn),為類鼻疽伯克霍爾德菌的快速檢測提供了新的發(fā)展方向,有望成為常規(guī)的快速檢測手段,具有良好的應(yīng)用價(jià)值和發(fā)展前景。

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