陳露露 王會 柴志欣 鐘金城 王吉坤 陳智華 姬秋梅信金偉
(1. 西南民族大學(xué) 青藏高原動物遺傳資源保護(hù)與利用教育部重點實驗室,成都 610041;2. 西南民族大學(xué) 青藏高原研究院,成都 610041;3. 西藏自治區(qū)農(nóng)牧科學(xué)院省部共建青稞和牦牛種質(zhì)資源與遺傳改良國家重點實驗室,拉薩 850009)
牦牛(Bos grunniens)是偶蹄目、牛科、牛亞科動物,牛屬中的一個獨立物種,體型龐大,肺臟發(fā)達(dá),氣管較短,是青藏高原特有的大型反芻動物,享有“高原之舟”美譽,是游牧民生活所依賴的重要生產(chǎn)資料。目前,全世界的家牦牛約 1 400萬頭,野牦牛約15 000 頭(具體數(shù)量會不斷上升),其中在中國的數(shù)量和品種是全世界最多的[1-2]。牦牛長時間生活在海拔2 000 m-5 000 m的高寒地帶造就了它耐低溫低氧的特性。因為汗腺不發(fā)達(dá),所以不宜生活在海拔相對較低,環(huán)境溫度相對較高的地區(qū)。牦牛肉及奶具有很高的營養(yǎng)價值,其肉中蛋白含量高出黃牛的1/3,乳脂率是奶牛的兩倍[3]。
蘋果酸脫氫酶(Malate dehydrogenase,MDH)基因?qū)儆谕っ讣易?,在氧化還原反應(yīng)的催化過程中發(fā)揮著重要功能。在高等生物中分為細(xì)胞質(zhì)蘋果酸脫氫酶(Cytoplasmic malate dehydrogenase,MDHI)和線粒體蘋果酸脫氫酶(Mitochondrial malate dehydrogenase,MDHII),它們均是 2個相同亞基組成的同源二聚體,是NAD+依賴性脫氫酶,每個亞基都有相應(yīng)的催化功能,是三羧酸循環(huán)中重要的氧化還原酶,在動物體各個組織中廣泛表達(dá),控制著動物體的能量代謝。近年來,關(guān)于MDH基因參與機體調(diào)節(jié)的研究有很多,如蜜蜂的MDH基因分MDHI、MDHII和MDHIII三個區(qū)帶[4-6];雞的MDH基因5'側(cè)翼區(qū)235 bp處有一個SNP位點,可作為影響雞的生長性狀的主效基因[7];張沅等[8]認(rèn)為豬背膘外層脂肪中MDH活性會影響肉用性狀的選育。前人對該基因在牦牛上的研究結(jié)果表明:牦牛心肌MDH/LDH活力比顯著高于水牛和黃牛,但在不同牛種骨骼肌之間無顯著差異,這說明盡管牦牛生活在高海拔的缺氧環(huán)境中,但心肌仍以有氧代謝占明顯優(yōu)勢,牦牛心肌組織中高的MDH/LDH活力比反映了其正常的有氧能量代謝狀況[9]。本研究首次對牦牛MDHI基因進(jìn)行克隆,結(jié)合生物信息學(xué)分析和組織表達(dá)分析,旨為進(jìn)一步研究該基因的遺傳特性、生理機制提供理論依據(jù)。
于西藏自治區(qū)昌都市類烏齊縣,選取4.5歲健康的類烏齊牦牛3頭,分別采集心臟、肝臟、肺臟、臀肌和臀脂,DEPC沖洗,錫箔紙包裝迅速置于液氮保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.1 總RNA的提取及反轉(zhuǎn)錄 Trizol法提取RNA,使用紫外分光光度計和瓊脂糖凝膠檢測RNA的濃度和純度,于-80℃保存?zhèn)溆?。根?jù)反轉(zhuǎn)錄試劑盒(TaKaRa公司)說明書,對總RNA進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄合成cDNA,標(biāo)記后于-20℃保存。
1.2.2 引物設(shè)計及PCR擴增 根據(jù)GenBank中公布的預(yù)測野牦牛MDHImRNA序列(XM005901271.2), 利 用 Primer Premier5.0 設(shè)計引物擴增牦牛MDHI基因CDS區(qū),引物序列為 F:5'-GAGTCGGTTCCACGATAGAGG-3',R:5'-CTTTGGGGCATTTAGTAACATC-3',由英濰捷基(上海)生物科技有限公司合成。
PCR 反 應(yīng) 體 系 為 25 μL。 其 中 ddH2O 9.5 μL,上下游引物各為 1 μL(10 pmol/μL),cDNA 模版為1 μL(200-600 ng/μL),Taq Green PCR Master Mix 12.50 μL(0.625 U)。PCR擴增條件:95℃預(yù)變性2 min;95℃變性30 s,55.2℃退火30 s,72℃延伸1 min 30 s,33次循環(huán),72℃終延伸5 min,4℃保存。
1.2.3 目的基因測序 將PCR擴增產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測,使用DNA純化試劑盒(TianGen公司)進(jìn)行純化膠回收,連接到pMD19-T載體(TaKaRa公司)上,16℃過夜連接后轉(zhuǎn)化到DH5α感受態(tài)細(xì)胞(大腸桿菌)中,涂于含有Amp+的LB固體培養(yǎng)基上,37℃培養(yǎng)10-12 h。篩選出陽性克隆在7 mL含Amp+的LB液體培養(yǎng)基中,37℃震蕩培養(yǎng)10-12 h,對菌液進(jìn)行PCR鑒定后(PCR體系與擴增體系相同),利用質(zhì)粒提取盒(TianGen公司)提取質(zhì)粒并送至英濰捷基(上海)生物科技有限公司進(jìn)行測序鑒定。
1.2.4 組織表達(dá)分析 根據(jù)克隆得到的目的片段設(shè)計實時熒光定量特異性引物,序列為F:5'-ATTCTCGTGCTGTTGGA-3',R :5'-TCTTTGAAGGCAATCTCC-3'。內(nèi)參(GADPH)引物為F:5'-CCACGAGAAGTATAACAACACC-3',R :5'-GTCATAAGTCCCTCCACGAT-3'。
反應(yīng)體系 10 μL :5 μL SYBR premix Dimer Eraser(2×),上下引物各 0.4 μL,無菌去離子水 3.2 μL,cDNA(稀釋 2-3 倍)1.0 μL。
定量程序:95℃預(yù)變性30 s,95℃變性5 s,60℃退火30 s,72℃延伸30 s,39個循環(huán)。
采用2-△△CT法計算目的基因表達(dá)量,GAPDH作為內(nèi)參基因?qū)颖径拷Y(jié)果進(jìn)行處理,結(jié)果表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤(±s)。選擇One-way ANOVA和t-檢驗進(jìn)行顯著性分析。
1.2.5 生物信息學(xué)在線分析 牦牛MDHI基因克隆序列進(jìn)行生物信息學(xué)分析,所用軟件如表1所示。
表1 在線軟件網(wǎng)址
PCR產(chǎn)物由1%瓊脂糖凝膠電泳分析得到條帶單一、大小與目的條帶相符合的片段,如圖1測序結(jié)果表明克隆到的MDHI基因DNA序列長為1 169 bp。
圖1 牦牛MDHI基因PCR擴增產(chǎn)物
利用NCBI的 ORF Finder 在線程序?qū)寺〉玫降年笈DHI基因序列進(jìn)行開放性閱讀框分析,得到MDHI基因CDS區(qū)序列長為1 005 bp,編碼334 個氨基酸,起始密碼為ATG,終止密碼為TGA(圖 2)。
MDHI基因氨基酸序列理化性質(zhì)分析結(jié)果表明:氨基酸總數(shù)為334,其中Leu、Ala和Lys含量最多,分別為9.6%、9.3%和9.3%,不含Pyl和Sec,帶負(fù)電的殘基總數(shù)(Asp + Glu)為43,帶正電的殘基總數(shù)(Arg + Lys)為41,分子式為 C1628H2628N428O487S14,分子量為 36 438.19,理論等電點為6.61,親水性平均值(GRAVY):-0.033,脂肪指數(shù)為98.98,半衰期為30 h,不穩(wěn)定指數(shù)為19.93,為穩(wěn)定蛋白。
利用位于 Expasy 的 ProtScale 在線軟件進(jìn)行疏水性/親水性分析,Window size設(shè)置為9(圖3)。通過對圖3的分析可以得到:ASIP在40位處有最大值2.767,在96位處有最小值-2.933,MDHI蛋白表現(xiàn)為親水性。
利用軟件SignalP 4.1在線分析蛋白質(zhì)的信號肽,發(fā)現(xiàn)無信號肽,說明MDHI不是分泌蛋白,如圖4。MDHI基因編碼蛋白跨膜區(qū)如圖4所示,由圖可知,o-> i(膜外跨到膜內(nèi))有兩個區(qū)域,分別是6-22位和34-54位,i->o(膜內(nèi)跨到膜外)有兩個區(qū)域,分別是7-25位和35-55位,其中從7位-25位為拓?fù)浣Y(jié)構(gòu),分?jǐn)?shù)為1 221(大于500)。
圖2 牦牛MDHI基因編碼的蛋白序列
圖3 牦牛MDHI基因的親水性/疏水性區(qū)分析
使用Interpro在線軟件預(yù)測MDHI基因編碼蛋白結(jié)構(gòu)域,發(fā)現(xiàn)該蛋白屬于保守蛋白結(jié)構(gòu)域家族。3-328位氨基酸具有MDH蛋白結(jié)構(gòu)域活性,是檸檬酸循環(huán)中的關(guān)鍵酶之一,促進(jìn)蘋果酸轉(zhuǎn)化為草酰乙酸,并通過丙酮酸的還原羧化來補充草酰乙酸水平,該亞族的成員是定位于細(xì)胞質(zhì)和胞質(zhì)溶膠的真核MDHs,如圖5。
利用NetPhos2.0預(yù)測其磷酸化位點,在牦牛MDHI基因編碼的氨基酸中共發(fā)現(xiàn)有11個Ser磷酸化位點、11個Thr磷酸化位點、4個Tyr磷酸化位點,如圖5。
圖4 牦牛MDHI編碼蛋白的信號肽(A)和跨膜區(qū)(B)分析
蛋白質(zhì)的理化性質(zhì)和各功能取決于其空間結(jié)構(gòu),利用SOPMA對MDHI蛋白二級結(jié)構(gòu)進(jìn)行預(yù)測,得到該蛋白主要以α-螺旋,無規(guī)卷曲為主,其中:α-螺旋有152個,占總鏈的45.51%;無規(guī)卷曲有110個,占總鏈的32.93%;延伸鏈有58個,占總鏈的17.37%;β-轉(zhuǎn)角有14個,占總鏈的4.19%(圖6)。利用SWISS-MODEL預(yù)測軟件分析發(fā)現(xiàn)該模型與豬細(xì)胞質(zhì)蘋果酸脫氫酶,α-酮丙二酸和四氫NAD的三元復(fù)合物的晶體結(jié)構(gòu)具有98.50%的相似性,三級結(jié)構(gòu)預(yù)測與二級結(jié)構(gòu)預(yù)測結(jié)果一致(圖6)。
利用PSORT II Prediction軟件分析牦牛MDHI蛋白亞細(xì)胞定位:該蛋白在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的分布最多,為33.3%;在高爾基體和細(xì)胞核內(nèi)分布最少,分別為11.1%,細(xì)胞質(zhì)和線粒體分別為22.2%。
利用DNAstar軟件對牦牛MDHI基因與其他物種進(jìn)行多序列同源比較。由表2可知,牦牛MDHI基因在核苷酸水平上及進(jìn)化過程中表現(xiàn)較為保守。其中,牦牛MDHI基因與黑猩猩(NM_001243069.1)、家貓(NM_001009329.1)、獼猴(NM_001320104.1)、普通牛(NM_001034628.3)、人(NM_005917.3) 和 野 豬(NM_213874.1) 的同源性較高,分別是93.5%、94.4%、93.1%、99.2%、93.1%和94.6%,普通牛最高;其次是原雞(NM_001006395.2)和小家鼠(NM_001316675.1),同源性為80.8%和87.6%;同源性較低的是非洲爪蛙(NM_001006693.2)、 果 蠅(NM_001298874.1)和青鱂(NM_001163134.2),同源性分別為78.8%、62.8%和71.2%,其中果蠅同源性最低。
圖5 牦牛MDHI結(jié)構(gòu)域預(yù)測(A)及磷酸化位點(B)分析
圖6 牦牛MDHI基因編碼蛋白的二級(A)和三級(B)結(jié)構(gòu)預(yù)測分析
表2 牦牛與11個物種MDHI基因的序列同源性比對
利用MEGA5.2對牦牛MDHI基因和其他不同物種進(jìn)行系統(tǒng)進(jìn)化樹分析,發(fā)現(xiàn)牦牛和普通牛的親緣性最近;其次為野豬和家貓,與青鱂親緣性最遠(yuǎn);其中牦牛、普通牛、野豬、家貓、獼猴、黑猩猩和人形成一個分支,而小家鼠、原雞、非洲爪蛙、果蠅和青鱂形成其他分支,如圖7。
圖7 牦牛MDHI基因核苷酸序列系統(tǒng)進(jìn)化樹分析
結(jié)果(圖8)表明:MDHI基因在牦牛臀脂和肺臟組織中表達(dá)水平最高,在肝臟中最低,在臀脂中的表達(dá)水平顯著高于其他組織(P<0.05),肺臟組織中的表達(dá)水平也顯著高于臀肌、心臟和肝臟(P<0.05)。
圖8 牦牛MDHI基因的mRNA組織表達(dá)分析
青藏高原地域廣闊,物種多樣性豐富,具有寶貴的畜種資源和基因庫,牦牛遺傳資源豐富。中國牦牛遺傳資源是世界上最多的,關(guān)于牦牛的研究也很多,如低氧適應(yīng)性、肉質(zhì)性狀相關(guān)性、生殖性狀相關(guān)性等一系列研究。
MDH具有氧化還原酶活性,作用于供體的CH-OH基團(tuán),其中NAD或NADP作為受體,CH-OH基團(tuán)充當(dāng)氫或電子供體用于減少NAD 或NADP氧化還原反應(yīng)的催化活性;具有蘋果酸脫氫酶活性,能夠催化丙酮酸或草酰乙酸向蘋果酸發(fā)生可逆轉(zhuǎn)化,并在生理溫度下對生物化學(xué)反應(yīng)進(jìn)行催化,是TCA(三羧酸)循環(huán)和乙醛酸循環(huán)的組成部分,重要的代謝中間體,控制著動物體呼吸代謝等一系列生命活動。近年來,關(guān)于MDH基因能抑制癌細(xì)胞代謝,也可以作為腫瘤中的潛在治療靶標(biāo)[10-12]。GhcMDHI可能參與棉花纖維快速伸長過程,6-芐基腺嘌呤處理對葡萄果實中MDH基因的表達(dá)表現(xiàn)為抑制[13-14]。不同濃度的丁香酚可降低金黃色葡萄球菌MDH酶活性,戈壁異常球菌能夠有效保護(hù) MDH酶活性[15-16]。但該基因在牛羊等家畜上的研究較少,為補充牦?;驇欤虼丝寺×薓DHI基因,并對其進(jìn)行了相關(guān)生物信息學(xué)分析。
本研究成功克隆了牦牛MDHI基因,為進(jìn)一步研究牦牛MDHI基因提供了理論參考。該基因序列全長為1 159 bp,CDS序列長1 056 bp,編碼334個氨基酸,屬于親水性序列,編碼的蛋白質(zhì)沒有信號肽,不屬于分泌蛋白和結(jié)構(gòu)蛋白。該蛋白帶負(fù)電的殘基總數(shù)(Asp + Glu 為43)大于帶正電的殘基總數(shù)(Arg + Lys 為41),故該蛋白帶負(fù)電。MDHI基因編碼的蛋白質(zhì)包含26 個磷酸位點,為以后蛋白磷酸化研究提供了幫助,具有兩個跨膜區(qū),說明該基因有幫助膜蛋白附著在膜上的功能和信號傳導(dǎo)功能,其他功能還有待研究。同時該蛋白有1 個保守功能結(jié)構(gòu)域,為NADB Rossmann superfamily結(jié)構(gòu)域,通過Rossmann折疊與NADPH結(jié)合。在糖酵解等許多代謝途徑的脫氫酶中均發(fā)現(xiàn)這種結(jié)構(gòu)域,說明該蛋白可能參與動物體內(nèi)的糖代謝途徑。對同源性預(yù)測結(jié)果顯示與系統(tǒng)進(jìn)化樹結(jié)果基本一致,表明牦牛MDHI基因在長期的進(jìn)化發(fā)育過程中保持高度保守性。高級結(jié)構(gòu)預(yù)測該蛋白二級結(jié)構(gòu)和三級結(jié)構(gòu)主要以無規(guī)卷曲和-螺旋為基礎(chǔ)進(jìn)一步在空間上延伸,其中-螺旋高達(dá)45.51%,作為一種混合類蛋白,推測這種結(jié)構(gòu)影響該蛋白在糖酵解或氧化還原等過程中的信息傳遞。另外,亞細(xì)胞定位發(fā)現(xiàn)MDHI蛋白在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)、高爾基體和線粒體上的表達(dá)最高,分別為33.3%、22.2%和22.2%。內(nèi)質(zhì)網(wǎng)是真核細(xì)胞中重要細(xì)胞器,參與糖類、脂類合成,蛋白合成及折疊與分泌,主要的合成蛋白為跨膜蛋白和分泌蛋白,而MDHI為跨膜蛋白;線粒體是機體的“能量工廠”,是細(xì)胞有氧呼吸的重要場所,因此推測MDHI基因編碼的蛋白質(zhì)參與了細(xì)胞有氧呼吸;細(xì)胞質(zhì)是細(xì)胞質(zhì)膜以內(nèi),細(xì)胞核以外的部分,由胞質(zhì)溶膠和細(xì)胞器組成,大部分物質(zhì)的中間代謝和一些蛋白修飾都是在胞質(zhì)溶膠中進(jìn)行。因此,該蛋白可能參與糖酵解等代謝途徑。
MDH的活性影響著動物體的代謝及生長。有研究發(fā)現(xiàn),MDH在血清中的活性在不同性別的豬中有差異,雄性體內(nèi)MDH活性隨著年齡的增長而增長,而雌性則不然[17],由此推測,牦牛MDHI基因是否也有此差異,有待下一步實驗驗證。NADPH是動物體內(nèi)重要的脂肪合成輔酶,而MDH能夠催化動物體內(nèi)蘋果酸轉(zhuǎn)變?yōu)楸岵a(chǎn)生NADPH,因此MDH在脂肪合成中起到重要作用[18]。同時,MDH基因編碼的氧化還原酶在機體內(nèi)部調(diào)節(jié)及肌肉和脂肪組織的能量代謝中發(fā)揮重要功能[19],這一觀點在豬[20-21]和雞[22]中得到證實。在本研究中的熒光定量分析可知,MDHI基因在臀脂的表達(dá)量最高,推測該基因能夠控制牦牛的脂肪合成及能量代謝。同時,肉質(zhì)柔韌性和肌肉內(nèi)脂肪含量是牛肉感官品質(zhì)的關(guān)鍵屬性,脂肪形成分化可以通過MDH1的乙?;瘉碚{(diào)節(jié),并且MDH1的乙酰化是脂肪生成和細(xì)胞內(nèi)能量水平之間的串?dāng)_機制之一[23-24],如果進(jìn)一步探究該基因在牦牛脂肪沉積方面的功能,將促進(jìn)優(yōu)質(zhì)牦牛品種的培育。牦牛主要生活在高海拔氧含量低的高寒地區(qū),肺臟作為機體呼吸的重要器官之一,為適應(yīng)高原極端氣候條件而發(fā)生顯著改變,本研究表明,牦牛MDHI基因在肺臟中具有較高的表達(dá)水平,可推測該基因可與牦牛低氧適應(yīng)性具有調(diào)控作用,就此可作進(jìn)一步研究。
本研究克隆了牦牛MDHI基因,并進(jìn)行序列分析,得到該基因CDS區(qū)全長1 005 bp,編碼334個氨基酸,編碼的蛋白為親水性穩(wěn)定蛋白,在進(jìn)化水平上較為保守;對不同組織表達(dá)進(jìn)行分析得到MDHI在臀脂中表達(dá)量最高,在臀肌中表達(dá)量較低,說明該基因參與機體脂肪沉積調(diào)控。