王 昆 張寶璽 張正海 曹亞從 于海龍 王立浩
(中國農(nóng)業(yè)科學院蔬菜花卉研究所,北京 100081)
辣椒番茄斑萎病毒病由番茄斑萎病毒(Tomato spotted wilt virus,TSWV)引起。TSWV 屬于布尼亞病毒目(Bunyavirales)番茄斑萎病毒科(Tospoviridae)正番茄斑萎病屬(Orthotospovirus),是一種檢疫性植物病毒,起源于澳大利亞(Brittlebank,1915;Samuel et al.,1930),隨后逐漸蔓延到歐洲、非洲、北美洲和南美洲(Culbreath et al.,1991;Peters et al.,1996;Rosales et al.,2007)。近些年,在伊朗、日本、韓國和中國等亞洲中東和遠東國家也發(fā)現(xiàn)了TSWV(Golnaraghi et al.,2001;Massumi et al.,2007;Lian et al.,2013)。TSWV 可侵染82 個科1 000 余種植物(Timmerman-Vaughan et al.,2014),20 世紀80、90 年代TSWV 在西班牙、美國、巴西、意大利等國家對番茄、萵苣、辣椒、花卉造成大面積減產(chǎn)甚至絕產(chǎn)(Cho et al.,1987;Epinosa et al.,2002)。由于對植物危害嚴重,TSWV 在世界十大重要植物病毒排名中已居第2 位(Scholthof et al.,2011)。我國自1984 年首次在廣州發(fā)現(xiàn)TSWV 為害花生后,1987 年四川省首次報道了TSWV 為害番茄(蘇大昆 等,1987),隨后又在煙草、辣椒、馬鈴薯等多種作物中發(fā)現(xiàn)了TSWV(許澤永 等,1989;姚革,1992;丁銘 等,2004;張仲凱 等,2004)。
從地理位置上來看,TSWV 的發(fā)生分布于熱帶、亞熱帶、溫帶等氣候帶(Accotto et al.,2000)。從發(fā)生季節(jié)來看,TSWV 在露地主要集中在夏季發(fā)生,在溫室內(nèi)呈現(xiàn)周年發(fā)生的趨勢,每年發(fā)病率差異不大,呈上升趨勢,但是增長緩慢(張仲凱 等,2004;Kwon et al.,2016)。
1984 年,TSWV 對巴西露地栽培的甜椒造成嚴重的為害,受害面積達69%以上(Cupertino et al.,1984)。1990 年意大利的Liguria 地區(qū)也因薊馬的發(fā)生導致辣椒TSWV 的大暴發(fā),與此同時,美國中西部也有TSWV 對辣椒嚴重為害的報道(Latin et al.,1990;Lisa et al.,1990)。隨后在韓國、黑山、委內(nèi)瑞拉、厄瓜多爾等國家的辣椒生產(chǎn)中,TSWV 也相繼被發(fā)現(xiàn)且造成巨大的經(jīng)濟損失(Mun et al.,2008;Zindovi? et al.,2011;Pérez-Colmenares et al.,2015;Sivaprasad et al.,2017)。目前,TSWV 已對南北美洲、歐洲、亞洲等地的辣椒生產(chǎn)造成嚴重威脅。此外,在辣椒中還存在TSWV 和其他病毒混合侵染的情況(Boiteux et al.,1993;Kenyon et al.,2015)。
21 世紀初,西花薊馬在我國蔬菜作物中大規(guī)模暴發(fā),一些專家提出應警惕TSWV 伴隨西花薊馬的發(fā)生(王立浩,2003;張友軍 等,2003)。在辣椒中,TSWV 已先后在臺灣、廣州、重慶、天津等地區(qū)大面積發(fā)生,造成巨大的經(jīng)濟損失(劉勇等,2010;Zheng et al.,2010;呂要斌 等,2011;郭思瑤 等,2015;高葦 等,2016)。近些年來,中國農(nóng)業(yè)科學院蔬菜花卉研究所辣椒遺傳育種課題組在北京周邊辣椒生產(chǎn)區(qū)多次檢出TSWV(未發(fā)表)。由于薊馬的大面積發(fā)生,TSWV 已經(jīng)在部分地區(qū)呈現(xiàn)高發(fā)信號(李飛,2013;鄭雪 等,2015)。
辣椒發(fā)生TSWV,其頂端葉片上有壞死的褪綠環(huán)斑或黃斑,沿葉柄或頂端表皮下的維管束變?yōu)楹稚珘乃阑蝽敹丝菟?,頂端生長受抑制,嚴重時節(jié)間短縮,葉片壞死,植株矮化、黃化明顯。成熟果實黃化,伴有同心環(huán)或壞死條紋(Boiteux,1995;Ronde et al.,2013)。辣椒TSWV 病癥的產(chǎn)生不僅與病毒的致病因子和寄主的抗性基因產(chǎn)生的防御機制的相互作用有關,環(huán)境溫度、薊馬傳播介體的群體大小等也會對其產(chǎn)生影響(Louren??o et al.,1997;Stumpf &Kennedy,2007)。
利用抗原與抗體的體外特異性結合可以檢測病毒的原理,開發(fā)了包括酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)、免疫膠體金技術(GICT)、雙抗體夾心法(DASELISA)、三抗酶聯(lián)反應吸附測定法(TAS-ELISA)和組織印跡法(Tissue blot-ELISA)等多種可應用于TSWV 檢測的方法。利用ELISA 法可在無癥狀植株的葉片和根部檢測出TSWV(Soler et al.,1999)。在病害監(jiān)測早期,常利用ELISA 法監(jiān)測帶毒介體薊馬進而提前控制病毒的傳播(Bandla et al.,1994;鄭寬瑜 等,2015;Huang et al.,2018)。
利用電鏡觀察病毒的形態(tài)結構及其寄主的細胞超微結構,可對TSWV 進行檢測。目前,主要通過負染色法、超薄切片法、免疫電鏡來實現(xiàn)TSWV的電鏡鑒定。利用電子顯微技術觀測寄主組織,確定病毒類型,在TSWV 鑒定上具有重要應用價值(張仲凱 等,2000;王健華 等,2005;鄭元仙和劉雅婷,2009)。
現(xiàn)已開發(fā)出逆轉錄PCR(RT-PCR)、多重RT-PCR 技術(multiple RT-PCR)、逆轉錄環(huán)介導等溫擴增技術(RT-LAMP)、免疫捕捉RT-PCR(IC-RT-PCR)、實時熒光PCR 技術、核酸分子雜交技術、核酸序列依賴性擴增技術(NASBA)等分子生物學方法,能夠實現(xiàn)病毒的快速檢測,且重復性好。RT-PCR 技術被認為是植物病原鑒定、植株病害診斷的革命性方法,可實現(xiàn)植株和薊馬上TSWV 的精準檢測(Boonham et al.,2002;楊英華等,2011;Serena et al.,2012;吳興海等,2016;馮黎霞等,2017;李潔等,2017)。
TSWV 在自然條件下主要通過薊馬進行傳播,此外也可通過機械摩擦、嫁接等方式傳播。
研究表明,薊馬是TSWV 傳播的主要媒介(Wijkamp et al.,1996)。目前有9 種薊馬可以傳播TSWV,包括西花薊馬(Frankliniella occidentalis)、番茄薊馬(F.schultzei)、褐花薊馬(F.fusca)、禾花薊馬(F.tenuicornis)、臺灣花薊馬(F.intonsa)、佛羅里達花薊馬(F.bispinosa)、首花薊馬(F.cephalica)、煙薊馬(Thrips tabaci)、豆薊馬(T.setosus)(Wijkamp et al.,1995;Naidu et al.,2001;Avila et al.,2006;Ohnishi et al.,2006),其中西花薊馬(F.occidentalis)是導致TSWV 在世界范圍內(nèi)大面積發(fā)生的主要媒介(Kirk &Terry,2003;Jones,2005;Riley et al.,2011;Rotenberg et al.,2015)。
西花薊馬屬纓翅目(Thysanoptera)薊馬科(Thripidae)花薊馬屬(Frankliniella),又稱苜蓿薊馬,分為卵、若蟲、蛹和成蟲4 個發(fā)育過程,生活史平均約為40 d,銼吸式口器,通過刮破植物表皮刺入組織內(nèi)部吸食汁液為害(Whitfield et al.,2005)。只能通過若蟲獲毒,獲取時間30 min,若蟲的蟲齡越小獲毒能力越強(Nagata et al.,1999)。TSWV 在寄主和介體體內(nèi)都有復制能力。通常,在若蟲體內(nèi)病毒需要經(jīng)過72 h 以上的復制后才能傳毒。病毒先存在于西花薊馬的中腸,然后進入唾腺,排毒時間為5 min 左右,屬于持久性排毒類型(許志剛,1978)。攜毒西花薊馬的傳毒能力可保持22~30 d(Wijkamp et al.,1996)。
利用小孢子、原生質(zhì)體融合、分子標記輔助育種、種間雜交等技術可實現(xiàn)抗病資源創(chuàng)新和新品種選育?,F(xiàn)已在甜椒中選育出抗性材料0516(Tsw),表現(xiàn)出良好的TSWV 抗性(王立浩 等,2016)。
由于薊馬對TSWV 的傳毒特性,對薊馬的防治也是非常的必要??刹捎梦锢矸乐危ㄗ贤夥瓷涔飧采w膜)、化學防治(吡蟲啉、阿克泰等內(nèi)吸性殺蟲劑)等消滅越冬蟲源,減少春季蟲源等方法控制薊馬的為害和暴發(fā)(Momol et al.,2004;Chatzivassiliou et al.,2008)。
田間雜草也是TSWV 的主要寄主植物,及時清除田間雜草、拔除發(fā)病植株等都是重要的防治方法(孔凡玉,2002)。
由于TSWV 的株系分化能力極強,因此尋找更多的抗性資源變得越來越迫切。目前報道的辣 椒TSWV 抗病材料有PI152225、PI159236、CNPH275、PI15、C00943 和7204 等(Black et al.,1991;Boiteux &Giordano,1993;Boiteux &ávila,1994;Hobbs et al.,1994;Nuez et al.,1994)。研究發(fā)現(xiàn),Capsicum baccatumPIM26-1 對TSWV 及其Tsw-RB 突變株系有更高的抗性(Persley et al.,2006;Hoang et al.,2013;Soler et al.,2015)。由于Tsw是單顯性基因遺傳、TSWV 分化變異頻率高、全球氣候變暖等原因,辣椒不同類型TSWV 抗病資源的挖掘十分重要(Farnham &Baulcombe,2006;Massimo et al.,2016)。
隨著生物信息學的發(fā)展及辣椒全基因組測序的完成,辣椒抗TSWV 基因定位及其分子標記的開發(fā)也取得了重要進展。Jahn 等(2000)利用BC4群體獲得了1 個與抗性基因共分離的RAPD 標記Q-06270,該標記位于辣椒10 號染色體,與抗性位點遺傳距離2.1 cM。Moury 等(2000)利用F2群體(PI52225×PI195301),獲得了4 個與抗性基因共分離的RAPD 標記,并將標記OPAC10593 轉化為CAPS 標記(SCAC568),與Tsw位點的遺傳距離為0.87 cM,可用于后期TSWV 抗性分子鑒定。Kim 等(2016)利用SNP 標記將Tsw位點定位于295 kb 區(qū)間內(nèi),并獲得了7 個與抗性基因Tsw緊密連鎖的SNP 標記(SNP246056-1、SNP246056-2、SNP246056-3、SNP246056-4、SNP653492-1、SNP653492-2、SNP653492-3),利用轉基因驗證,最終將CcNBARC575作為Tsw候選基因,該基因編碼CNL 型蛋白。
研究表明,辣椒植株通過對TSWV 產(chǎn)生過敏性壞死反應(hypersensitive response,HR),來實現(xiàn)TSWV 抗性(Boiteux,1995)。辣椒的Tsw基因抗性分子機制與番茄中Sw-5b介導的TWSV 抗性機制不同。Tsw的抗性需要NSs 蛋白編碼的無毒沉默抑制子來引發(fā)HR 反應。而番茄需要NSm編碼的運動蛋白作為無毒因子參與Sw-5的相互識別來誘導HR 反 應(Ronde et al.,2013;Hallwass et al.,2014;Ocampo et al.,2016;Jiang et al.,2017)。
在“TSWV-薊馬-寄主”模式中,基因、蛋白之間的互作以及防御機制信號通路的研究仍然不夠清楚,分子生物學、生物信息學技術的發(fā)展,對在分子層面揭示TSWV 感染經(jīng)濟作物的機制是一個重要的契機,這也將會為防治TSWV、消除TSWV 對經(jīng)濟作物的危害產(chǎn)生巨大的貢獻。
辣椒TSWV 株系分化快速。攜帶Tsw基因的品種推廣后,在巴西很快就有抗性菌株的報道,隨后在意大利、西班牙、澳大利亞等國家也有相關報道(Boiteux &Nagata,1993;Roggero et al.,2002;Thomas-Carroll &Jones,2003;Margaria et al.,2004,2007,2014;Sharman &Persley,2006;Karavina et al.,2016)。中國云南地區(qū)的辣椒中TSWV-YN18 和TSWV-YN53 株系可以免疫Tsw的抗性,發(fā)現(xiàn)其NSs 蛋白不能介導HR 反應(Jiang et al.,2017)。
TSWV 對國內(nèi)外的辣椒生產(chǎn)造成重大的經(jīng)濟損失,最有效的應對方法就是培育抗TSWV 的辣椒品種,而TSWV 突變株系的不斷產(chǎn)生又對當前的育種工作提出嚴峻的挑戰(zhàn),在辣椒育種中利用抗性基因Tsw,同時尋找廣譜抗性基因、培育抗性持久的品種是今后育種工作的一個重要方向。