黃冬麗,何云富,何亞濤,丁功濤
(西北民族大學生命科學與工程學院,甘肅蘭州 730124)
固定化酶技術近年來廣泛應用于醫(yī)藥、食品加工等領域,由于其具有利用率高、酶活性好、節(jié)約資源等優(yōu)勢,因此成為研究的熱點。胰蛋白酶來源于動物的胰臟,一般用于消化細胞間的軟組織。當其水解蛋白質時,作用于與賴氨酸或精氨酸相連接的肽鍵,細胞間黏蛋白和糖蛋白被除去,影響細胞骨架,使細胞分離[1],在醫(yī)藥、食品工業(yè)等領域有著廣泛的應用[2]。由于胰蛋白酶在水溶液中會發(fā)生自身消化反應,存在利用率不高、無法回收利用、工業(yè)生產上成本高等問題,因此常采用固定化技術對胰蛋白酶進行固定化,提高了胰蛋白酶的利用率[3]。
戊二醛作為片狀載體與胰蛋白酶固定化反應體系中的交聯(lián)劑,具有2個反應性活性醛基,可與胰蛋白酶分子中的氨基酸殘基和片狀載體上暴露的活性位點發(fā)生反應,產生穩(wěn)定的交聯(lián)橋,從而在反應中達到胰蛋白酶固定化的目的。片狀載體是由高分子材料聚丙烯合成的紙片狀載體,用于動物細胞貼壁生長,半懸浮培養(yǎng)的載體,其內部含有網(wǎng)格結構,也便于在戊二醛處理后與胰蛋白酶發(fā)生交聯(lián)。張黎明等人[4]采用殼聚糖固定化胰蛋白酶,提高了胰蛋白酶的利用率,但固定化載體難回收。與傳統(tǒng)的固定化材料相比,片狀載體不僅提高了酶的利用率,還具有易回收的優(yōu)點[5],在生產中可以節(jié)約成本。由于其突出的優(yōu)勢,因此在今后的實際生產中具有更加廣泛的應用前景。試驗主要對胰蛋白酶的固定化時間、固定化溫度、固定化pH值和固定化胰蛋白酶質量分數(shù)進行初步探討,并對固定化效果進行評估,希望為以后的研究奠定基礎。
胰蛋白酶、片狀載體,民海生物有限公司提供;氫氧化鈉、無水乙醇、體積分數(shù)為38%的鹽酸溶液、體積分數(shù)為20%的戊二醛溶液、硫酸銨,煙臺市雙雙化工有限公司提供;氫氧化鈉、無水乙醇、硫酸銨,均為分析純。
Biomate 5型紫外可見分光光度計,上海智成有限公司產品;ISS-4075型立式水平搖床,上海沉匯儀器有限公司產品;MT90型磁力攪拌器,溫州邁騰機械科技有限公司產品;MP120-BLE型便攜式酸度計,梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司產品。
1.3.1 固定化活性載體的預處理
準確稱取試驗組片狀載體5.00 g,先分別加入到磨砂口三角瓶中,再加入小號磁性轉子,最后加入20 mL 70%乙醇,20 mL 0.5 mol/L的硫酸銨溶液,20 mL 4%HCl溶液,20 mL 4%NaOH溶液,加蓋,置于溫度15℃的磁力攪拌器中,設置轉速100 r/min,時間30 min,啟動攪拌器,待結束后將載體用蒸餾水水洗至中性,取出磁性轉子。
1.3.2 胰蛋白酶的固定化
紫外分光光度計測定不同濃度胰蛋白酶溶液的吸光度,設置吸收波長為280 nm,吸光度為0.2~0.8,繪制標準曲線,得到方程,R2≥0.9判定為可信。
稱取經(jīng)預處理的片狀載體,分別加入質量分數(shù)為1.0%,1.5%,2.0%,2.5%,3.0%的胰蛋白酶溶液,0.3%的戊二醛溶液,加蓋,置于水平搖床上,設置轉速、時間、溫度、pH值,結束后取出載體,將濾液轉移到試管中,并放在4℃冰箱中靜置1 h,取上清液測吸光度[6],以吸光度計算固定化載量。
1.3.3 酶活力的測定
測定胰蛋白酶活力可以采用Folin法[7]。具體方法如下:加入2%的卵清白質作為底物,然后加入一定量的胰蛋白酶液,在溫度35℃,pH值8的條件下恒溫振蕩10 min,終止反應后抽取濾液用Folin試劑顯色,于波長680 nm處測定吸光度。
不同質量分數(shù)戊二醛對固定化酶活力回收率的影響見圖1。
圖1 不同質量分數(shù)戊二醛對固定化酶活力回收率的影響
由圖1可知,酶活力回收率隨戊二醛質量分數(shù)的增加而逐漸下降。在質量分數(shù)達到0.3%之前,酶活力回收率隨戊二醛質量分數(shù)的增加下降的較慢;當質量分數(shù)達到0.3%之后,由于戊二醛質量分數(shù)過高,抑制了酶的活性,導致酶活力下降,故在戊二醛質量分數(shù)達到0.3%之后,酶活力回收率下降明顯[8]。
不同質量分數(shù)的戊二醛對酶固定化載量的影響見表1。
由表1可知,酶的固定化載量隨戊二醛質量分數(shù)的升高而增加。在戊二醛質量分數(shù)達到0.3%之前,酶的固定化載量隨戊二醛質量分數(shù)的升高增加明顯,當質量分數(shù)達到0.3%以后,酶的固定化載量基本不再增加。
結果表明,0.3%戊二醛和0.4%戊二醛作為交聯(lián)劑對固定化載量影響差異不顯著,對固定化酶活力回收率影響差異顯著。在研究中可以確定固定化反應體系中最佳戊二醛質量分數(shù)為0.3%。
表1 不同質量分數(shù)的戊二醛對酶固定化載量的影響
在固定化溫度35℃,固定化pH值8.0,固定化時間3 h,取相同量的載體5.00 g,只改變胰蛋白酶質量分數(shù)為1.0%,1.5%,2.0%,2.5%,3.0%,分別制備固定化胰蛋白酶。
不同質量分數(shù)胰蛋白酶對固定化率的影響見圖2。
圖2 不同質量分數(shù)胰蛋白酶對固定化率的影響
由圖2可知,在胰蛋白酶質量分數(shù)達到2.0%時,此時酶的固定化率最高。相同質量的片狀載體加入不同質量分數(shù)的胰蛋白酶,固定化率隨著胰蛋白酶質量分數(shù)的升高而增加。由于片狀載體可固定的胰蛋白酶的酶量是有限的,在胰蛋白酶質量分數(shù)增加到一定量之后,片狀載體對胰蛋白酶的固定化量已接近飽和,固定化率達到最高;此后,再增加酶質量分數(shù),固定化率基本不再變化[9]。結果表明,胰蛋白酶在質量分數(shù)達到2%時固定化率最高,在研究中可以確定反應體系中胰蛋白酶質量分數(shù)達到2%時固定化效果最好。
在固定化溫度35℃,固定化pH值8.0,胰蛋白酶質量分數(shù)2%,取相同量的載體5.00 g,只改變固定化時間為0.5,1.0,1.5,2.0,2.5 h,分別制備固定化胰蛋白酶。
不同固定化時間對固定化率的影響見圖3。
圖3 不同固定化時間對固定化率的影響
由圖3可知,在固定化時間為1.5 h時,酶的固定化率最高。片狀載體內部有網(wǎng)格狀結構,具有較大的比表面積。在反應的開始階段,胰蛋白酶的固定化速率較快,故固定化率隨著固定化時間的增加而升高較快;隨著固定化時間增加到1.0~1.5 h,固定化量逐漸達到飽和,此時固定化率的增長速度放緩;在固定化達到1.5h后,片狀載體對胰蛋白質量分數(shù)的固定化量已經(jīng)達到飽和,此后再增加固定化時間,對酶的固定化率影響不大[10]。結果表明,固定化時間達到1.5 h時固定化率最高,在研究中可以確定反應體系中固定化時間達到1.5 h時固定化效果最好。
在固定化pH值8.0,胰蛋白酶質量分數(shù)2%,固定化時間3 h,取相同量的載體5.00 g,只改變固定化溫度25,30,35,40,45,50℃,分別制備固定化胰蛋白酶。
不同固定化溫度對固定化率的影響見圖4。
圖4 不同固定化溫度對固定化率的影響
由圖4可知,在固定化溫度達到40℃時,固定化率最高。溫度對固定化率的影響主要通過影響酶的活力來調節(jié)。當固定化溫度較低時,酶的活力受到抑制,此時酶的固定化率較低;隨著固定化溫度的上升,酶的活力增加,故酶的固定化率升高;在達到酶的最適溫度時,酶的固定化率最高;此后再升高固定化溫度,反而會抑制酶的活性,導致酶的固定化率下降[11]。結果表明,固定化溫度達到40℃時固定化率最高,在研究中可以確定反應體系中固定化溫度達到40℃時固定化效果最好。
在固定化溫度35℃,胰蛋白酶質量分數(shù)2%,固定化時間3 h,取相同量的載體5.00 g,只改變固定化pH值6.5,7.0,7.5,8.0,8.5,9.0,分別制備固定化胰蛋白酶。
固定化pH值對固定化率的影響見圖5。
圖5 固定化pH值對固定化率的影響
由圖5可知,在固定化pH值達到8.0時,固定化率最高。固定化pH值對固定化率的影響主要通過影響酶的活力來調節(jié)。當固定化pH值較低時,酶的活力受到抑制,此時酶的固定化率較低;隨著固定化pH值的上升,酶的活力增加,故酶的固定化率升高;在達到酶作用的最適pH值時,酶的固定化率最高;此后pH值再增加,反而會抑制酶的活性,導致酶的固定化率下降[12]。結果表明,固定化pH值達到8時固定化率最高,在研究中可以確定反應體系中固定化pH值達到8.0時固定化效果最好。
固定化溫度,固定化pH值,固定化時間和胰蛋白酶質量分數(shù)都是影響胰蛋白酶固定化率的重要因素,通過控制這些固定化條件,同時選用合適的固定化載體,在溫和的反應條件下,可成功地制備性能優(yōu)良的固定化胰蛋白酶。
目前常采用的固定化材料有纖維素球、殼聚糖和磁納米材料,然而,試驗所選用的固定化材料為片狀載體。與傳統(tǒng)的固定化材料相比,片狀載體具有成本低、操作簡單、易回收、固定化率高等優(yōu)點。
同時固定化酶也解決了游離酶穩(wěn)定性低、易降解、難回收的缺點,為生產簡化了操作,節(jié)約了成本,也為以后關于固定化酶的研究提供了參考。