高 飛,張 明,朱紹玲,熊 洋
(1遵義醫(yī)學(xué)院物理教研室,貴州遵義562503;2遵義醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院檢驗科,貴州遵義562500;3楚雄師范學(xué)院光譜技術(shù)應(yīng)用研究所,云南 楚雄 675000)
近些年來,肺癌這種常見惡性腫瘤的死亡率以及發(fā)病率均迅速攀升,極大地威脅著各國人民的生命健康[1]。 數(shù)據(jù)[2]顯示,我國每年死于肺癌的人數(shù)高達(dá)60余萬,這種疾病的累計危險性已經(jīng)迅速攀升至首位。一直以來,醫(yī)學(xué)界均尚未探索出比較高效且完善的肺癌診斷治療方案,因此很難及時發(fā)現(xiàn)并診斷肺癌。這種情況直接導(dǎo)致了許多肺癌患者被誤診或病情延誤,往往在就診時已經(jīng)發(fā)展至晚期。就現(xiàn)階段而言,支氣管鏡檢查、放射性核素檢查、細(xì)胞學(xué)檢查、X射線檢查、剖胸探查術(shù)、ECT檢查、縱膈鏡檢查等為臨床常見的肺癌診斷檢查方法[3-4],不過從客觀上來講,上述方法都不是完善的,均存在著一定的缺陷與不足,如費用高昂,操作復(fù)雜度較高,靈敏度較低,會對患者造成創(chuàng)傷等。與此同時,應(yīng)用這些方法診斷肺癌還存在著檢測盲區(qū)、假陰性等問題[5]。在這一背景下,想要有效提升肺癌患者的生存率,當(dāng)務(wù)之急在于探索出一套安全、簡便的早期肺癌檢測方法。
利用靈敏度高、簡單快捷、生物兼容性好等優(yōu)點的近紅外表面增強(qiáng)拉曼散射(near infrared surface?en?hanced Raman scattering,NIR?SERS)光譜技術(shù)可以直觀地獲取分子含量以及轉(zhuǎn)動、振動信息[6]。目前,這種技術(shù)在臨床領(lǐng)域已經(jīng)有了基本的應(yīng)用。醫(yī)學(xué)診斷領(lǐng)域也逐步引入了此項技術(shù)。在本研究中,將NIR?SERS基底定為二維納米銀膜,對肺癌患者以及健康人進(jìn)行NIR?SERS光譜檢測分析,主要通過785 nm近紅外激光波長來檢測并分析研究氧合血紅蛋白,有利于提高肺癌SERS光譜技術(shù)診斷效率以及可行性。從一定程度上來講,NIR?SERS技術(shù)具備應(yīng)用于肺癌臨床診斷領(lǐng)域的潛力與價值。
1.1 實驗材料 血液樣品:2015年5月至7月在遵義醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院采集血液,從健康人和肺癌患者胳膊抽靜脈血液樣本各25例,樣品規(guī)格均為3 mL。
1.2 實驗方法
1.2.1 提取氧合血紅蛋白 第一步,血液樣本編號。完成編號后分別提取每個樣本各2 mL,37℃室溫放置使其自然凝結(jié),放置時間為1 h,血樣凝結(jié)后利用小型臺式離心機(jī)進(jìn)行5000 r/min,5 min的離心處理,待樣品分層后將下層血紅細(xì)胞提取出并分裝至新的離心管中,提取量為200 μL。向提取的紅細(xì)胞中加入九倍體積的去離子水,緩慢混合后再次進(jìn)行5000 r/min,
5min的離心處理,溶液分層后的中間層便是氧合血紅蛋白。抽取500 μL中間層溶液置于4°C保存,用于后續(xù)檢測處理。
1.2.2 氧合血紅蛋白 NIR?SERS光譜測定 測定方案參照劉仁明等制備二維納米銀膜的方法[7],在納米銀膜基底上均勻涂覆制備好的氧合血紅蛋白樣品,涂覆量為60 μL,使其均勻覆蓋在基底上并形成直徑約1 cm的液體薄膜。待其自然干燥后利用美國海洋光學(xué)公司生產(chǎn)的便攜式拉曼光譜儀(R?2500TM)進(jìn)行檢測。NIR?SERS光譜的測定選取了785 nm激光波長,采用垂直照射的方法,參數(shù):激光功率密度J=103W·cm-2,每次掃描16 s,掃描次數(shù)為2次。為了降低實驗誤差,各樣品分別測試三條譜線并取平均值。
1.3 數(shù)據(jù)處理 數(shù)據(jù)分析與處理采用的工具包括2007excel、Origin 8.0、SPSS19.0、Raman Spectrum 等。
2.1 氧合血紅蛋白NIR-SERS光譜 將NIR?SERS基底定為二維納米銀膜,對肺癌患者以及健康人進(jìn)行NIR?SERS光譜檢測分析,每組研究對象的樣本數(shù)量均為25名,圖1A為25名健康人氧合血紅蛋白NIR?SERS光譜,圖1B為25名肺癌患者氧合血紅蛋白NIR?SERS 光譜。
圖1 氧合血紅蛋白NIR?SERS光譜
將25名健康人(A)和25名肺癌患者(B)氧合血紅蛋白NIR?SERS光譜求出平直曲線,并將譜線平均值向上/下平移處理,進(jìn)而獲取到直觀的對比結(jié)果。圖2為25名健康人(A)和25名肺癌患者(B)氧合血紅蛋白平均NIR?SERS光譜比對,由圖2可知,就氧合血紅蛋白NIR?SERS光譜分析結(jié)果而言,兩組樣品具備明顯差異。相比于健康人,肺癌患者的氧合血紅蛋白 NIR?SERS光譜強(qiáng)度相對較小。 在 473、662、723、816、1126、1208、1336、1425、1583 cm-1均出現(xiàn)了兩組研究樣本氧合血紅蛋白NIR?SERS光譜共有的譜峰;圖中健康人和肺癌患者光譜譜峰強(qiáng)度有明顯區(qū)別,相比于肺癌患者,在 662、723、816 cm-1等位置處健康人氧合血紅蛋白NIR?SERS光譜譜峰強(qiáng)度相對較大;473、816、1583 cm-1處健康人的氧合血紅蛋白NIR?SERS光譜出現(xiàn)的拉曼譜峰較肺癌患者更為明顯。另外,在1583 cm-1處,健康人氧合血紅蛋白平均NIR?SERS 光譜出現(xiàn)藍(lán)移現(xiàn)象,藍(lán)移至 1579 cm-1,肺癌患者在1208、1425 cm-1處譜峰出現(xiàn)紅移現(xiàn)象,移動至 1212、1432 cm-1。
圖2 25名健康人(a)和25名肺癌患者(b)氧合血紅蛋白平均NIR?SERS光譜比對
2.2 t檢驗結(jié)果分析 對25名健康人和25名肺癌患者氧合血紅蛋白NIR?SERS光譜扣除熒光背景,由于光譜中信息主要來自譜峰的相對強(qiáng)度和形狀,故將在400~1800 cm-1范圍內(nèi)的譜峰進(jìn)行面積歸一化,面積歸一化可以消除由于實驗條件的微小差異對實驗結(jié)果的影響。本實驗采用的面積歸一法就是指把氧合血紅蛋白NIR?SERS光譜的譜峰面積逐個算出來(采用 Origin作圖軟件計算譜峰面積),如 S1、S2、S3.....Sn,然后把每個譜峰的面積相加得 S 總,再用每個譜峰的面積 S1、S2、S3.....Sn 除以總面積 S 總得到每個譜峰所占的面積比 A1、A2、A3...An,即An=Sn/S總。表1是 25名健康人和 25名肺癌患者在 473、662、723、816、1126、1208、1336、1425、1583 cm-19處譜峰面積的顯著性分析。
通過表1顯著性分析可以看出肺癌患者相對正常人在473 cm-1處譜峰面積 A1和1583 cm-1處譜峰面積A9有所減小,達(dá)到顯著水平。肺癌患者相對正常人在816 cm-1處譜峰面積A4明顯減小,達(dá)到極顯著水平。對25名健康人和25名肺癌患者在473、662、723、816、1126、1208、1336、1425、1583 cm-19 處譜峰面積的顯著性分析得出的結(jié)果與上述NIR?SERS光譜分析基本吻合,從而更加驗證了上述分析結(jié)論。
表1 25 例健康人和 25 例肺癌患者在 473、662、723、816、1126、1208、1336、1425、1583 cm-19 處譜峰面積的顯著性分析
從表1氧合血紅蛋白拉曼譜峰的初步歸屬[9-12]中能夠清晰直觀地了解生物分子變化所導(dǎo)致的肺癌患者血紅蛋白NIR?SERS光譜變化的具體機(jī)理,氧合血紅蛋白分子乙烯基團(tuán)(CaCm)的對稱和反對稱伸縮振動分別是引發(fā)處于1425、1583 cm-1附近的拉曼譜峰的根本原因;吡咯環(huán)間CmH基團(tuán)的變形振動是引發(fā)處于1208 cm-1附近的拉曼譜峰的根本原因;吡咯半環(huán)的反對稱以及對稱伸縮振動分別是引發(fā)處于1126、1336 cm-1附近的拉曼譜峰的根本原因。
由圖2可知,相比于健康人而言,在1583、816、473 cm-1處肺癌患者的氧合血紅蛋白NIR?SERS光譜譜峰強(qiáng)度較小,從表2氧合血紅蛋白拉曼譜峰的初步歸屬得知上述三個譜峰的產(chǎn)生原因分別為氧合血紅蛋白分子乙烯基團(tuán)(CaCm)的反對稱和對稱伸縮振動、氧合血紅蛋白吡咯環(huán)的對稱和反對稱變形振動、氧合血紅蛋白水合高鐵血紅蛋白吡咯環(huán)折疊振動,上述結(jié)果的依據(jù)為血紅蛋白拉曼譜峰的初步歸屬分析結(jié)果。肺癌患者的譜峰之所以小于正常人,主要原因是上述三種振動模式數(shù)量的減少。另外,由于氧合血紅蛋白吡咯環(huán)以及氧合血紅蛋白分子乙烯基團(tuán)的振動會影響人氧合血紅蛋白平均 NIR?SERS光譜在1583 cm-1的譜峰變化,因此,當(dāng)肺癌患者新陳代謝紊亂、惡性腫瘤組織異常增大后,其氧合血紅蛋白分子乙稀基團(tuán)、氧合血紅蛋白吡咯環(huán)的構(gòu)象以及模式往往會產(chǎn)生變化,進(jìn)而異于健康人的譜峰移動情況[12]。
通過NIR?SERS光譜分析并對比兩組研究對象的氧合血紅蛋白情況,結(jié)果表明,兩組樣本氧合血紅蛋白NIR?SERS光譜以及譜峰強(qiáng)度均存在明顯差異。相比于健康人,肺癌患者的氧合血紅蛋白NIR?SERS光譜以及譜峰強(qiáng)度均相對較小。對上述現(xiàn)象的內(nèi)在原理加以分析后發(fā)現(xiàn),肺癌患者的氧合血紅蛋白NIR?SERS光譜以及譜峰強(qiáng)度之所以會減小,可能是由于惡性腫瘤組織異常增大所引發(fā)的,在這一過程中,患者上皮粘膜組織微血管的增生會直接引發(fā)其微血管含氧量的下降,進(jìn)而誘使腫瘤組織中氧合血紅蛋白含量降低[8]。上述變化能夠通過氧合血紅蛋白NIR?SERS光譜情況來加以表征。
表2 氧合血紅蛋白的譜峰歸屬[8-11]
在本研究中,將NIR?SERS基底定為二維納米銀膜,對肺癌患者以及健康人進(jìn)行NIR?SERS光譜檢測分析。結(jié)果顯示,兩組研究對象的NIR?SERS光譜和譜峰強(qiáng)度均具備顯著差異,相比于健康人,在1583、816、473 cm-1處肺癌患者的氧合血紅蛋白 NIR?SERS光譜譜峰強(qiáng)度較小,正常人的氧合血紅蛋白平均NIR?SERS 光譜在 1208、1425 cm-1譜峰處肺癌患者分別紅移至1212、1432 cm-1,通過對氧合血紅蛋白平均NIR?SERS光譜分析,觀察到健康人在1583 cm-1的譜峰藍(lán)移到1579 cm-1。上述譜峰均與氧合血紅蛋白吡咯環(huán)和乙烯基團(tuán)(CaCm)的振動有關(guān)。對于肺癌患者的氧合血紅蛋白NIR?SERS光譜以及譜峰強(qiáng)度減小。因此通過肺癌組和對照組的譜峰強(qiáng)度變化揭示了氧合血紅蛋白NIR?SERS用于診斷肺癌的潛力。利用氧合血紅蛋白的NIR?SERS進(jìn)行肺癌或其他疾病的診斷是一項簡單快捷、生物兼容性好的技術(shù),從一定程度上來講,NIR?SERS技術(shù)具備應(yīng)用于肺癌或其他疾病臨床診斷領(lǐng)域的潛力與價值。
[1]Cerfolio RJ,Bryant AS,Ojha B.Restaging patients with N2 (stageⅢa) non?small cell lung cancer after neoadjuvant chemoradiothera?py:a prospective study[J].J Thorac Cardiovasc Surg,2006,131(6):1229-1235.
[2]Liu Y,Wang M.Advances in early diagnosis of lung cancer[J].Zhongguo Fei Ai Za Zhi,2011,14(5):429-434.
[3]Lee SM,Park CM,Paeng JC,et al.Accuracy and predictive fea?tures of FDG?PET /CT and CT for diagnosisof lymph node metastasis of T1 non?small?cell lung cancer manifesting as a subsolid nodule[J].Eur Radiol,2012,22(7): 1556-1563.
[4]劉振華,徐美金.惡性腫瘤研究的現(xiàn)狀和對策[J].人民軍醫(yī),2002,45(5):269-270.
[5]Liu R,Xiong Y,Tang W,et al.Near?infrared surface?enhanced Ramanspectroscopy (NIR?SERS) studieson oxyheamoglobin(OxyHb) of liver cancer based on PVA?Ag nanofilm[J].J Raman Spectrosc,2013,44(3): 362-369.
[6]Feng SY,Pan JJ,Wu YA,et al.Study on gastric cancer blood plasma based on surface?enhanced Raman spectroscopy combined with multivariate analysis [J].Sci China Life Sci,2011,54(9):828-834.
[7]劉仁明,自興發(fā),武延春,等.二維納米結(jié)構(gòu)銀膜表面增強(qiáng)拉曼散射基底的制備與研究[J].中國激光,2009,36(10):2657-2661.
[8]Jain RK.Determinants of Tumor Blood Flow:A Review [J].Cancer Res,1988,48(10):2641-2658.
[9]Abe M,Kitagawa T,Kyogoku Y.Resonance Raman spectra of octa?ethylporphyrinato?Ni(II) and meso?deuterated and 15N substituted derivatives.II.A normal coordinate analysis[J].J Chem Phys,1978,69(10):4526-4534.
[10]Hu S,Smith KM,Spiro TG.Assignment of Protoheme Resonance Raman Spectrum by Heme Labeling in Myoglobin[J].J Am Chem Soc.,1996,118(50):12638-12646.
[11]Geβner R,Winter C,R?sch P,et al.Identification of biotic and abiotic particles by using a combination of optical tweezers and in situ raman spectroscopy[J].Chem Phys Chem,2004,5(8):1159-1170.
[12]Yammoto T,Palmer G.The valence and spin state of iron in oxyhem?oglobin as inferred from resonance Raman spectroscopy[J].J Biol Chem,1973,248(14):5211-5213.