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用響應曲面法優(yōu)化豌豆蛋白酶解條件

2018-06-01 12:25王鑫爍周泉城
關鍵詞:物質量蒸餾水回歸方程

李 慧, 王 琪, 王鑫爍, 周泉城*

(1.山東理工大學農業(yè)工程與食品科學學院食品科學系,山東 淄博 255049;2.農產品功能化技術山東省高校重點實驗室, 山東 淄博 255049)

豌豆(PisumsativumLinn)是我國的主要農作物之一,在我國又被稱為青豆、荷蘭豆、回鶻豆、國豆和畢豆等。豌豆蛋白含有人體必需的所有氨基酸,屬于全價蛋白質。氨基酸比例均衡,其中賴氨酸含量較多,蛋氨酸含量較低,其余的含量均達到FAO/WHO推薦模式值[1]。 目前我國對于豌豆的深加工以淀粉制作粉絲為主,其中的蛋白質隨殘渣沖走,這不僅造成了極大的資源浪費還污染了環(huán)境[2]。研究[3]表明,隨著人們生活水平的不斷提高,蛋白質的需求量也不斷增加,但是卻有許多優(yōu)質的植物蛋白質不能得到有效的利用;因此,急需找到將這部分作為副產物的優(yōu)質植物蛋白資源加工為高附加值產品的方法[4]。

在豌豆的酶解產物中,存在著大量的生物活性肽。這些活性肽對于人體有著一定的益處,具有相當巨大的開發(fā)潛力[5]。豌豆酶解產物中的抗氧化肽、降血壓肽、降血脂肽和抑菌肽等作為純天然的添加劑,可以用于功能性食品的開發(fā),為豌豆蛋白的綜合利用提供新的研究方向,提高豌豆蛋白的利用率和使用價值[6-7],使豌豆的應用范圍進一步擴大。

本文以含水量為30%的豌豆蛋白為原料,用中性蛋白酶酶解豌豆蛋白,以DPPH和·OH自由基清除率為抗氧化評價指標,通過響應曲面試驗優(yōu)化豌豆蛋白的酶解條件并建立酶解產物自由基清除率預測模型,從而為豌豆的開發(fā)利用和加工拓寬思路、提供參考,以提高豌豆的經濟附加值。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

豌豆蛋白粉,主要組成為水分4.6%±0.02%,蛋白質73.2%±0.23%,粗脂肪0.22%±0.01%,灰分4.62%±0.03%,購自煙臺雙塔食品股份有限公司;所用試劑均為分析純。

RE200型旋轉蒸發(fā)儀,雅馬拓科技貿易(上海)有限公司;FD-C10N型臺式冷凍干燥機,冠森生物科技(上海)有限公司;WHZ-2 數(shù)顯水浴恒溫振蕩器,常州市萬豐儀器制造有限公司。

1.2 實驗方法

稱取2 kg豌豆蛋白粉加入一定質量的蛋白酶和一定pH值的磷酸鹽緩沖溶液,搖勻,置于恒溫振蕩水浴鍋中,振蕩酶解3 h,結束后,沸水浴滅酶10 min。冷卻后,將蛋白酶解液過濾,取濾液待測[8]。

1.3 豌豆蛋白酶解參數(shù)的響應面優(yōu)化

采用中性蛋白酶酶解豌豆蛋白,測定其抗氧活性,并利用響應曲面法優(yōu)化其酶解條件。在預實驗的基礎上,固定酶解時間3 h,選取加酶量(A)、溫度(B)、pH值(C)、底物質量分數(shù)(D)為變量進行實驗設計和分析。以豌豆蛋白酶解物的抗氧化活性(DPPH清除率和·OH清除率)為響應值,設計4因素5水平共26個試驗點的響應面分析實驗[9]。實驗方案、實驗條件及結果列于表1中,進而確定最優(yōu)水平,實驗因子及水平見表1。

表1 因素水平表

1.4 酶解產物自由基DPPH清除率的測定

實驗根據(jù)Dike Teng等[10]的方法,加以改動。實驗組取濾液1 mL,加入試管中。并加入4 mL濃度為0.1 mmol/L的DPPH溶液,其中DPPH溶液用V95%乙醇∶V蒸餾水=1 ∶1的混合溶液作為溶劑配制。避光靜置30 min后,在517 nm下測定吸光度(Asample)。

對照組以1 mL的蒸餾水代替濾液,實驗步驟與上述相同(Acontrol)。空白組以V95%乙醇∶V蒸餾水=1 ∶1的混合溶液來代替DPPH溶液,實驗步驟與上述相同(Ablank)。參比為1 mL蒸餾水和4 mL的V5%乙醇∶V蒸餾水=1 ∶1的混合溶液。

計算公式如下:

清除率=[1-(Asample-Ablank)/Acontrol]×100%。

1.5 酶解產物自由基·OH清除率的測定

根據(jù)鄰二氮菲法[11],做適當修改。實驗組取2 mL濾液置于試管中,加入2 mL的0.02 mol/L磷酸鹽緩沖溶液(pH為7.4),再加入1 mL 1.8 mmol/L的鄰二氮菲溶液和1 mL 1.8 mmol/L的FeSO4水溶液,迅速混勻。最后在混合液中加入1 mL質量分數(shù)為0.02%的雙氧水,于37 ℃下水浴60 min,冷卻后在536 nm下測定吸光度,記為As。

對照組以蒸餾水代替濾液,實驗步驟與上述相同(Ac)??瞻捉M用蒸餾水代替濾液和雙氧水,實驗步驟與上述相同(Ab)。參比為5 mL的磷酸鹽緩沖溶液與2 mL蒸餾水的混合溶液。

計算公式如下:

清除率%=[(As-Ac)/(Ab-Ac)]×100 %。

1.6 數(shù)據(jù)分析

每個操作3次平行。利用SAS 9.1軟件建立回歸模型方程,對數(shù)據(jù)進行ANOVA分析,Duncan test確定平均值差異。

2 實驗結果與分析

2.1 響應面試驗結果與分析

在預實驗的基礎上,選取加酶量(A)、溫度(B)、pH(C)、底物質量分數(shù)(D)為實驗因素,以酶解物的自由基清除率為評判指標,設計4因素5水平共26個試驗點的響應分析實驗進行二次回歸設計實驗和分析。實驗結果見表2。

表2 響應面試驗設計及結果

以DPPH清除率為響應值,經回歸擬合后,中性蛋白酶酶解豌豆蛋白的DPPH清除率的回歸方程為:

DPPH清除率=-2472.63366+30.33958·A+469.80509·B+102.95417·C+102.95417·D+0.13519·AB+0.95521·AC-1.35781·AD+0.17625·BC-0.44938·BD-5.93542·CD-1.56237·A2-0.24633·B2-31.75810·C2-2.10698·D2。

中性蛋白酶酶解豌豆蛋白的DPPH清除率的回歸方程方差分析如表3所示。

表3 DPPH清除率方差分析

由表3可以得出,所建模型是顯著的,失擬項是不顯著的,說明無失擬因子存在,該模型與真實測量值擬合良好,且加酶量(A)和pH的二次項(C2)影響顯著,加酶量的二次項(A2)、溫度的二次項(B2)影響極顯著。說明在中性蛋白酶酶解豌豆蛋白過程中,加酶量、pH、加酶量的二次方、溫度的二次方對DPPH清除率有顯著影響。由F值可知,F(xiàn)越大對豌豆蛋白酶解度的影響就越大,所以各因素對豌豆蛋白酶解液DPPH清除率的影響次序:加酶量(A)>底物質量分數(shù)(D)>酶解溫度(B)>pH(C)。加酶量和底物質量分數(shù)對酶解度的交互作用比其他交互作用更明顯。根據(jù)回歸方程作各因素及其交互作用對DPPH清除率影響的響應曲面圖(見圖1)。

通過響應曲面圖1,可以進一步看出加酶量、pH、溫度、底物質量分數(shù),任何兩因素對DPPH清除率的交互影響。由上圖可以看出4因素值選擇合理,驗證了實驗的準確性。DPPH清除率隨著底物質量分數(shù)的增加而增加最終趨于平緩;而隨著加酶量、pH、溫度的升高先升高后降低。

以·OH清除率為響應值,經回歸擬合后,中性蛋白酶酶解豌豆蛋白的·OH清除率的回歸方程為:

圖1 DPPH清除率響應曲面圖

·OH清除率=-2247.04903+30.15021·A+17.29758·B+438.60694·C+86.07625·D+0.14113·AB+0.46667·AC-1.19375·AD+0.39500·BC-0.47450·BD-4.67083·CD-1.44422·A2-0.22852·B2-30.39583·C2-1.57437·D2。

中性蛋白酶酶解豌豆蛋白的·OH清除率的回歸方程方差分析如表4所示。

由表4可知,所建模型是顯著的,失擬項是不顯著的,說明該模型與真實測量值擬合良好。且加酶量(A)和加酶量的二次項(C2)影響極顯著。由F值可知,各因素對豌豆蛋白酶解液·OH清除率的影響次序:pH(C)>底物質量分數(shù)(D)>酶解溫度(B)>加酶量(A)。根據(jù)回歸方程作各因素及其交互作用對·OH清除率影響的響應曲面圖見圖2。

表4 ·OH清除率方差分析

圖2 ·OH清除率響應曲面圖

由圖2可知加酶量、pH、溫度、底物質量分數(shù),任何兩因素對·OH清除率的交互影響。由圖2可以看出4因素值選擇合理,驗證了實驗的準確性。

2.2 最佳DPPH、·OH自由基清除率條件

以DPPH清除率、·OH清除率為評價指標,對回歸方程進行偏微分,得出最佳酶解條件:加酶量為10.60%、溫度40.30 ℃、pH 7.02、底物質量分數(shù)為6.80%。在此條件下,得到最佳DPPH清除率、·OH清除率分別為99.10%、97.60%。

2.3 驗證實驗

經驗證,在此條件下,得到最佳DPPH清除率、·OH清除率分別為97.8%±0.23%、96.2%±0.35%。

3 結論

中性蛋白酶酶解豌豆蛋白擠出物的最佳酶解條件:加酶量為10.60%、溫度40.30 ℃、pH 7.02、底物質量分數(shù)為6.80%。在此條件下,得到最佳DPPH清除率、·OH清除率分別為99.10%、97.60%。得到了豌豆蛋白酶解產物DPPH、·OH自由基清除率的預測模型,該模型預測準確可靠,可用于生產預測和工藝開發(fā)。

參 考 文 獻

[1] 郭興鳳, 莫重文. 豌豆蛋白粉的制取研究[J]. 鄭州糧食學院學報, 1995, 16(3):70-73.

[2] 郭興鳳. 豌豆蛋白的功能特性研究[J]. 鄭州糧食學院學報, 1996, 17(1):69-74.

[3] LIASET B, LIED E, ESPE M. Enzymatic hydrolysis of by-products from the fish-filleting industry; chemical characterisation and nutritional evaluation[J]. Journal of the Science of Food & Agriculture, 2000, 80(5):581-589.

[4] OVISSIPOUR M, SAFARI R, MOTAMEDZADEGAN A, et al. Chemical and biochemical hydrolysis of persian sturgeon ( Acipenser persicus ) visceral protein[J]. Food & Bioprocess Technology, 2012, 5(2):460-465.

[5] 張秋萍. 豌豆分離蛋白酶解產生物活性肽的研究 [D].無錫:江南大學, 2013.

[6] 梁晗妮, 唐傳核. 豌豆蛋白的功能特性研究[J]. 現(xiàn)代食品科技, 2012, 28(12):1640-1644.

[7] 李志平, 徐保明. 木瓜蛋白酶水解豌豆蛋白的工藝研究[J]. 食品研究與開發(fā), 2010, 31(10):78-80.

[8] 杜雙奎, 魏益民, 張波. 擠壓膨化過程中物料組分的變化分析[J]. 中國糧油學報, 2005, 20(3):39-43.

[9] 葛英亮, 馬艷秋. 響應曲面法優(yōu)化藍莓澄清果汁飲料工藝[J]. 食品科學, 2012, 33(12):52-57.

[10] TENG D, FANG Y, SONG X, et al. Optimization of enzymatic hydrolysis parameters for antioxidant capacity of peptide from goat placenta[J]. Food & Bioproducts Processing, 2011, 89(3):202-208.

[11] LI Y H, JIANG B, ZHANG T, et al. Antioxidant and free radical-scavenging activities of chickpea protein hydrolysate (CPH)[J]. Food Chemistry, 2008, 106(2):444.

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