国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

原人參二醇空心金納米藥物載體的制備及體外抗喉癌研究

2018-05-30 11:33:16李賀杰劉哲鄧曉然林君馬平安滕博
分析化學(xué) 2018年5期
關(guān)鍵詞:細(xì)胞凋亡喉癌

李賀杰 劉哲 鄧曉然 林君 馬平安 滕博

摘 要 原人參二醇(PPD)對多種腫瘤細(xì)胞具有抑制作用。但由于水溶性差、利用度低,限制了其在臨床上的應(yīng)用?;诖耍狙芯恳钥招慕鸺{米顆粒為PPD的運輸載體,合成PPD空心金納米顆粒,采用高效液相色譜分析PPD空心金納米藥物載體的緩釋效應(yīng)性、MTT法檢測對Hep-2細(xì)胞增殖的抑制作用、流式細(xì)胞術(shù)研究對Hep-2細(xì)胞凋亡的影響,以考察原人參二醇(PPD)空心金納米藥物載體的體外抗喉癌細(xì)胞Hep-2效應(yīng)。結(jié)果表明,PPD空心金納米藥物載體具有緩釋效應(yīng)性,與空白對照組、HAuNs組及PPD組相比,HAuNs-PEG-PPD組的Hep-2細(xì)胞生存率下降更顯著, 細(xì)胞凋亡率增加更顯著 (p<0.01)。PPD空心金納米載體可顯著增強PPD的體外抗喉癌細(xì)胞效應(yīng),促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的凋亡,有望成為PPD新型納米藥物,并應(yīng)用于喉癌的治療研究。

關(guān)鍵詞 原人參二醇;空心金納米顆粒;喉癌;細(xì)胞凋亡

1 引 言

原人參二醇(PPD)作為中國傳統(tǒng)中草藥人參的主要成分,對多種腫瘤具有抑制作用[1~8]。然而PPD水溶性差,臨床生物利用度很低。納米藥物系統(tǒng)作為一種新型給藥系統(tǒng),由于其副作用較小、藥物生物利用度與療效較好,受到研究者的廣泛關(guān)注。在各種納米藥物系統(tǒng)中,含有高Z元素 (金,銀,碘,釓等)的各種納米材料作為藥物運輸載體[9~11]引起研究者的廣泛關(guān)注。金納米顆粒 (AuNPs)由于其良好的生物相容性、生物惰性、高原子序數(shù)、易于合成和表面修飾等,在納米藥物系統(tǒng)中表現(xiàn)出明顯的優(yōu)勢,是藥物運輸載體的優(yōu)良材料[12~20]。You等[21]將DOX負(fù)載到PEG 修飾的空心金納米顆粒上,考察該藥物傳遞系統(tǒng)(DOX@ PEG-HAuNS) 的光熱治療-化療的聯(lián)合治療效果,結(jié)果表明,相比于游離DOX 和DOX 脂質(zhì)體,DOX@ PEG-HAuNS 具有更強的抗腫瘤活性和更低的心臟毒性。

基于空心納米金顆粒的獨特性質(zhì),本研究將空心金納米顆粒用于小分子PPD的負(fù)載輸送。將具有空心結(jié)構(gòu)、體積大、外殼薄而堅固等優(yōu)點的空心金納米顆粒和PPD結(jié)合起來,構(gòu)建了一種新型PPD給藥系統(tǒng);PPD經(jīng)過空心金納米顆粒的負(fù)載,提高了藥物的水溶性及生物利用度,更利于腫瘤的治療。將PEG分子修飾到空心金納米顆粒表面,提高了納米材料的生物相容性; 空心金納米顆粒負(fù)載PPD,起到了緩釋作用,使得PPD的藥效更加持久。本研究還考察了其體外抗喉癌細(xì)胞的作用。

2 實驗部分

2.1 儀器與試劑

FEITecnai G2 F20 S-Twin透射電子顯微鏡 (美國FEI公司); X'Pert Pro X射線衍射儀 (荷蘭帕納科公司); Vertex Perkine-Elmer 580BIR傅立葉變換紅外光譜儀 (美國瓦里安公司); Prominenece UFLC高效液相色譜儀 (日本島津公司); U-3310紫外可見近紅外光譜(HPLC)儀 (日本日立公司); M630多功能酶標(biāo)儀 (美國Hercules公司); FACSCan流式細(xì)胞儀 (美國Becton Dickinson公司); MCO-20AIC CO2培養(yǎng)箱 (中國Sanyo公司)。

氯金酸 (分析純,上海薩恩化學(xué)技術(shù)有限公司); CoCl2·6H2O、檸檬酸三鈉和NaBH4 (分析純,北京化學(xué)有限公司); PEG-SH (美國Nanocs 公司); Hep-2細(xì)胞株 (中國科學(xué)院上海生命科學(xué)研究院);PPD (純度>99%,吉林大學(xué)有機(jī)化學(xué)實驗室合成); RPMI-1640培養(yǎng)基、胎牛血清(美國 Hyclone公司); 二甲亞砜(DMSO)、青霉素和鏈霉素(上海鼎國生物技術(shù)有限公司); MTT(美國Sigma公司); TUNEL凋亡檢測試劑盒(瑞士羅氏公司)。實驗用水為Milli-Q純水儀(美國Millipore公司) 制備的超純水(18.2 MΩ·cm)。

2.2 空心金納米顆粒 (HAuNs)的合成

參照文獻(xiàn)[22]的方法合成空心金納米顆粒(HAuNs)。首先制備鈷納米顆粒,將氯化鈷溶液 (0.1 mL, 0.4 mol/L)加入到含有新制備的硼氫化鈉溶液 (0.1 mL,1 mol/L)和檸檬酸鈉溶液 (0.4 mL,0.1 mol/L)中,混合溶液在氮氣氛下反應(yīng)60 min。將上述制備的無硼氫化鈉的鈷納米顆粒溶液 (30 mL)注入脫氧氯金酸溶液 (10 mL, 1 μmol/L)中,在氮氣氛下反應(yīng)10 min后,將溶液暴露于空氣中至鈷完全氧化。以10000 r/min離心,收集沉淀, 用超純水洗滌3次。

2.3 HAuNs-PEG的合成

通過配體交換法制備HAuNs-PEG[23]。將合成的HAuNs分散在去離子水中 (1.0 mg/mL),將150 mg PEG-SH加入到40 mL上述水溶液中,在室溫下攪拌過夜。反應(yīng)結(jié)束后,用超純水洗滌產(chǎn)物3次, 除去未反應(yīng)的PEG,產(chǎn)物分散在40 mL乙醇中。

2.4 PPD的負(fù)載和體外藥物釋放

將40 mL 1.0 mg/mL PPD乙醇溶液加入到40 mL 1.0 mg/mL HAuNs-PEG的乙醇溶液中,在37℃下攪拌24 h。離心,沉淀用乙醇洗滌3次。合并上清液,通過檢測上清液中PPD減少的重量(m)計算PPD的實際負(fù)載量,負(fù)載率LE (%)= [(初始mPPD-上清液中的mPPD)/mHAuNs-PEG]×100%,測得PPD負(fù)載率為30%。

色譜條件:CORTECS C18色譜柱(100 mm×4.6 mm, 2.7 μm); 流動相A為0.1%冰醋酸,流動相B為乙腈,以A∶B=20∶80(V/V)等度洗脫; 流速0.5 mL/min,室溫分離; 進(jìn)樣量:10 μL;線性關(guān)系考察:精密稱取PPD,用乙醇定容至10 mL,用流動相分別稀釋成 5、10、25、40、100和200 μg/mL系列濃度,4℃保存?zhèn)溆?。進(jìn)樣量10 μL,測定峰面積,以PPD的濃度為橫坐標(biāo),峰面積為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,計算回歸方程;待測樣品的制備:將500 μL的HAuNs-PEG-PPD復(fù)合藥物加入4 mL的1640培養(yǎng)基中,置于37℃、5%(V/V) CO2培養(yǎng)箱中,分別于30、60、120、180和240 min各取100 μL 上清液,于4℃保存,待測。

數(shù)據(jù)處理:將峰面積帶入回歸方程,得出藥物的劑量,以500 μL復(fù)合藥物中PPD的量為100%,計算出藥物隨時間變化的PDD釋放率。

2.5 實驗分組和體外細(xì)胞培養(yǎng)

空白對照組、HAuNs組、PPD組、HAuNs-PEG-PPD組 (藥物暴露時以PPD、HAuNs-PEG-PPD濃度、以及相應(yīng)負(fù)載濃度單純HAuNs計量為統(tǒng)一濃度單位)Hep-2細(xì)胞,采用RPMI-1640培養(yǎng)基(含10%胎牛血清,100 IU/mL青霉素,鏈霉素100 mg/mL), 在37℃、5% (V/V) CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

2.6 細(xì)胞毒性實驗

將PPD溶于無水乙醇中制備成64 mmol/L溶液。將細(xì)胞接種于96孔板中(0.3×104細(xì)胞/孔),培養(yǎng)過夜,然后將其暴露于不同濃度的HAuNs、PPD、HAuNs-PEG-PPD (2.30、4.61、9.21、18.43和36.87 μg/mL) 24 h后,將20 μL MTT (0.5 mg/mL)加入到96孔板和細(xì)胞繼續(xù)培養(yǎng)4 h。然后棄MTT與培養(yǎng)基混合液,每孔加入150 μL二甲基亞砜,置搖床上低速振蕩10 min,用酶標(biāo)儀在490 nm處測各孔吸光度。計算細(xì)胞增殖抑制率 (Inhibitory rate,IR), IR =[1-(用藥組OD值-空白組OD值)/(對照組OD值-空白組OD值)]×100%。

2.7 流式細(xì)胞術(shù)檢測腫瘤細(xì)胞凋亡

將Hep-2細(xì)胞接種于六孔板中 (2×105細(xì)胞/孔),并分別暴露于HAuNs-PEG-PPD (IC50)、HAuNs (聯(lián)合組IC50所對應(yīng)Au濃度)、PPD (聯(lián)合組IC50所對應(yīng)PPD濃度)和空白對照組。培養(yǎng)24 h后,收集培養(yǎng)液,并用不含EDTA的胰酶消化細(xì)胞后,1000 r/min離心5 min,棄上清液。再用1 mL在4℃預(yù)冷的PBS洗滌細(xì)胞兩次。將400 μL 1×Annexin V結(jié)合液懸浮細(xì)胞,濃度為1×106 cells/mL。在細(xì)胞懸浮液中加入5 μL Annexin V-FITC染色液,混勻后于2~8℃避光條件下孵育5 min,然后采用流式細(xì)胞儀分析。

3 結(jié)果與討論

3.1 空心金納米顆粒的結(jié)構(gòu)與表征。

HAuNs和HAuNs-PEG透射電子顯微鏡 (TEM)圖如圖1所示。HAuNs的平均直徑約為50 nm,平均金殼厚度約為8 nm(圖1A),可以清楚地看出空心金納米顆粒殼表面上的PEG層(圖1B)。

Au的標(biāo)準(zhǔn)數(shù)據(jù)如圖2所示,結(jié)果表明,合成的HAuNs結(jié)晶性良好。

FT-IR光譜圖如圖3所示。 圖3A中,3424 cm1處的寬帶歸屬于樣品中吸收的H2O的H振動和PEG中的OH伸縮振動,1384和1559 cm1處的峰由于在制備過程中加入Cit3離子而歸屬于(CO)拉伸模式[24] 。在圖3B中,1665和1047 cm1 峰分別歸屬于酯基中的CO伸縮振動和PEG中的CH伸縮振動。如圖3C所示,加載PPD后,可以觀察到PPD在2922和2868 cm1處的特征峰值,分別歸屬于甲基中的CH伸縮振動和亞甲基的CH伸縮振動。上述結(jié)果表明PEG的成功修飾和PPD的加載。

3.2 HPLC檢測HAuNs-PEG-PPD的緩釋性

藥物釋放體系的研究與應(yīng)用對臨床治療有著重要意義。本研究將PPD與空心金納米顆粒共價連接,制備HAuNs-PEG-PPD,構(gòu)筑了一種靶向Hep-2細(xì)胞的藥物控釋體系,采用高效液相色譜檢測HAuNs-PEG-PPD在體外隨時間的釋放率。

在所建立的色譜條件下,PPD的濃度 (x)在5~200 μg/L之間與峰面積 (y)呈良好的線性關(guān)系,線性回歸方程為y=36696x -14104 (R2=0.9996)。如圖4所示,初期0~0.5 h,藥物快速釋放,釋放量占總量的60%,這段區(qū)間釋放出來的藥物主要是吸附在納米粒表面的藥物;0.5~4 h, 釋放速率有所減慢,藥物釋放量約占40%,這是因為藥物從納米粒內(nèi)部釋放出來,釋放速率比較緩慢。這說明了藥物負(fù)載于空心納米粒載體時,既可分布在載體的孔道和空腔內(nèi)部,也可存在于載體的外部表面區(qū)域。同時也說明本研究所制備的HAuNs-PEG-PPD具有較好的藥物緩釋效果,有望作為一種優(yōu)良的抗腫瘤藥物。

3.3 細(xì)胞體外暗場散射成像

為了驗證體外細(xì)胞中HAuNs-PEG的分布和細(xì)胞對HAuNs-PEG吞噬,測量了不同時間HAuNs-PEG納米復(fù)合材料孵育的Hep-2細(xì)胞的暗場散射圖像(圖5)。如圖5H所示,不添加HAuNs-PEG納米復(fù)合材料的Hep-2細(xì)胞在暗場中呈現(xiàn)灰色。用HAuNs-PEG納米復(fù)合材料 (圖5E~5F)培育后,Hep-2細(xì)胞的暗場散射圖像由于其在紅光頻率區(qū)域的強烈的縱向表面等離子體振蕩而顯示散射橙光[25],散射光的強度隨著孵育時間的延長而增強。這些結(jié)果提示了納米復(fù)合材料通過非特異性內(nèi)吞途徑[26]而進(jìn)入細(xì)胞的過程比較緩慢。

3.4 HAuNs-PEG-PPD對Hep-2細(xì)胞生長的抑制作用

研究證實,PPD對肝癌細(xì)胞HepG2有一定的細(xì)胞毒性作用[27],適量濃度的PPD對Hep-2細(xì)胞的生長有一定抑制作用[28]。低劑量的PPD可提高細(xì)胞存活率,保護(hù)細(xì)胞,而高劑量的PPD可抑制細(xì)胞增殖[29]。本研究采用MTT法檢測不同濃度的HAuNs、PPD、HAuNs-PEG-PPD對Hep-2細(xì)胞生長的抑制作用。

如圖6所示,在共培養(yǎng)24 h后,PPD、HAuNs-PEG-PPD對Hep-2細(xì)胞的抑制作用均呈劑量依賴性,低劑量PPD (≤4.61 μg/mL)對Hep-2細(xì)胞無明顯抑制作用,而低劑量HAuNs-PEG-PPD對Hep-2細(xì)胞具有明顯的抑制作用。

同等濃度的PPD與HAuNs-PEG-PPD相比較,HAuNs-PEG-PPD的抑制作用更明顯。而單純HAuNs對Hep-2細(xì)胞本身沒有明顯的細(xì)胞毒性作用。單純PPD組IC50為67.38 μg/mL,HAuNs-PEG-PPD的IC50為 39.29 μg/mL,與單純PPD組別相比較,HAuNs-PEG-PPD組IC50降低了1.71倍, 顯著降低了PPD對Hep-2細(xì)胞的IC50。這與圖6的結(jié)論一致,HAuNs-PEG-PPD增強了體外PPD對Hep-2細(xì)胞生長的抑制作用。

3.5 HAuNs-PEG-PPD對 Hep-2 細(xì)胞凋亡率的影響

研究證實PPD對多種癌細(xì)胞具有促凋亡作用,如神經(jīng)膠質(zhì)瘤、肝癌、胰腺癌、乳腺癌和前列腺癌[30]。本研究采用流式細(xì)胞術(shù) (FCM)檢測HAuNs、PPD、HAuNs-PEG-PPD粒子對Hep-2細(xì)胞凋亡率的影響。

圖7為Control 組、HAuNs組、PPD組、HAuNs-PEG-PPD組四組的FCM凋亡圖像。HAuNs-PEG-PPD的FCM 檢測結(jié)果圖8顯示,應(yīng)用IC50濃度的HAuNs-PEG-PPD 組 Hep-2 細(xì)胞凋亡率 (34.10%±3.24%) 明顯高于單純PPD組 (12.69%±2.48%),且與之前細(xì)胞毒實驗中半數(shù)致死量細(xì)胞凋亡率相符,差異有統(tǒng)計學(xué)意義 (p<0.01),且二者均高于單純HAuNs組 (6.06%±1.17%,p<0.01) 及對照組(1.69%±0.14%)。上述結(jié)果說明,HAuNs-PEG-PPD和PPD都可以誘導(dǎo)Hep-2細(xì)胞凋亡,HAuNs-PEG-PPD可以增強PPD誘導(dǎo)的Hep-2 細(xì)胞的凋亡率,并通過誘導(dǎo)凋亡使得細(xì)胞活性降低。這與上節(jié)中HAuNs-PEG-PPD加強了體外PPD對Hep-2細(xì)胞生長的抑制作用的結(jié)論,都證實了HAuNs-PEG-PPD與小分子PPD相比有更高的抗腫瘤活性。這可能是因為HAuNs-PEG-PPD納米粒子復(fù)合物通過胞吞作用,更好地被腫瘤細(xì)胞攝取。由于HAuNs-PEG-PPD納米粒子中的PEG具有羧基端,與PPD鏈接形成酯鍵,酯鍵具有pH敏感性,在細(xì)胞質(zhì)的酸性環(huán)境中能發(fā)生斷裂,釋放出PPD[31],導(dǎo)致細(xì)胞凋亡,從而高效地殺死細(xì)胞。

4 結(jié) 論

本研究將PPD負(fù)載到HAuNs-PEG,合成了HAuNs-PEG-PPD,采用HAuNs-PEG-PPD培育Hep-2細(xì)胞,并研究了HAuNs-PEG、HAuNs-PEG-PPD的特性以及HAuNs-PEG-PPD對 Hep-2細(xì)胞生存率、細(xì)胞凋亡率和PPD的釋放的影響,證實HAuNs-PEG-PPD在體外可顯著增強PPD的抗喉癌細(xì)胞效應(yīng),有望作為抗喉癌藥物PPD新型給藥系統(tǒng),為探索更多新劑型抗腫瘤藥物提供了參考。

References

1 Zhao C, Su G, Wang X, Zhang X, Guo S, Zhao Y. Biotechnol. Lett., 2016, 38(1): 43-50

2 Lin G, Yu X, Wang J, Qu S, Sui D. Exp. Ther. Med., 2013, 5(2): 443-447

3 Chen Y, Zhu J, Zhang W. Anticancer Drugs, 2014, 25(9): 983-991

4 Wang W, Zhang X, Qin J J, Voruganti S, Nag S A, Wang M H, Wang H, Zhang R. PLoS One, 2012, 7(7): e41586

5 Xu F Y, Shang W Q, Yu J J, Sun Q, Li M Q, Sun J S. Am. J. Transl. Res., 2016, 8(4): 1708-1718

6 Wang C Z, Zhang Z, Wan J Y, Zhang C F, Anderson S, He X, Yu C, He T C, Qi L W, Yuan C S. Nutrients, 2015, 7(2): 799-814

7 Wang W, Rayburn E R, Zhao Y, Wang H, Zhang R. Cancer Lett., 2009, 278(2): 241-248

8 Gao J L, Lv G Y, He B C, Zhang B Q, Zhang H, Wang N, Wang C Z, Du W, Yuan C S, He T C. Oncol. Rep., 2013, 30(1): 292-298

9 Ma M, Huang Y, Chen H, Jia X, Wang S, Wang Z, Shi J. Biomaterials, 2015, 37: 447-455

10 He L, Lai H, Chen T. Biomaterials, 2015, 51: 30-42

11 Wang J, Tan X, Pang X, Liu L, Tan F, Li N. ACS Appl. Mater. Interfaces, 2016, 8(37): 24331-24338

12 Al Zaki A, Joh D, Cheng Z, De Barros A L, Kao G, Dorsey J, Tsourkas A. ACS Nano, 2014, 8(1): 104-112

13 Chithrani D B, Jelveh S, Jalali F, van Prooijen M, Allen C, Bristow R G, Hill R P, Jaffray D A. Radiat. Res., 2010, 173(6): 719-728

14 Zhang X D, Wu D, Shen X, Chen J, Sun Y M, Liu P X, Liang X J. Biomaterials, 2012, 33(27): 6408-6419

15 Zhang A W, Guo W H, Qi Y F, Wang J Z, Ma X X, Yu D X. Nanoscale Res. Lett., 2016, 11(1): 279

16 Huang P, Bao L, Zhang C, Lin J, Luo T, Yang D, He M, Li Z, Gao G, Gao B, Fu S, Cui D. Biomaterials, 2011, 32(36): 9796-9809

17 Geng F, Song K, Xing J Z, Yuan C, Yan S, Yang Q, Chen J, Kong B. Nanotechnology, 2011, 22(28): 285101

18 Hainfeld J F, Slatkin D N, Smilowitz H M. Phys. Med. Biol., 2004, 49(18): N309-N315

19 Hainfeld J F, Dilmanian F A, Slatkin D N, Smilowitz H M. J. Pharm. Pharmacol., 2008 , 60(8): 977-985

20 Rahman W N, Bishara N, Ackerly T, He C F, Jackson P, Wong C, Davidson R, Geso M. Nanomedicine, 2009, 5(2): 136-142

21 You J, Zhang R, Zhang G, Zhong M, Liu Y, Van Pelt C S, Liang D, Wei W, Sood A K, Li C. J. Control Release, 2012, 158(2): 319-328

22 Deng X, Chen Y, Cheng Z, Deng K, Ma P, Hou Z, Liu B, Huang S, Jin D, Lin J. Nanoscale, 2016, 8(12): 6837-6850

23 Brias R P, Maetani M, Barchi J J Jr. J. Colloid Interface Sci., 2013, 392: 415-421

24 Gambinossi F, Chanana M, Mylon S E, Ferri J K. Langmuir, 2014, 30(7): 1748-1757

25 Lu J, Li Z, Zink J I, Tamanoi F. Nanomedicine, 2012, 8(2): 212-220

26 Cho E C, Xie J, Wurm P A, Xia Y. Nano Lett., 2009, 9(3): 1080-1084

27 Yang J, Li X, Sun T, Gao Y, Chen Y, Jin Y, Li Y. Steroids, 2016, 106: 26-34

28 Teng B, Jiang J, Zhao L, Gao J, Chen J, Liu Z, Wang H, Lu B. Molecules, 2017, 22(3): 486

29 Wang W, Wang H, Rayburn E R, Zhao Y, Hill D L, Zhang R. Br. J. Cancer, 2008, 98(4): 792-802

30 Zhu G Y, Li Y W, Tse A K, Hau D K, Leung C H, Yu Z L, Fong W F. Eur. J. Pharmacol., 2011, 668(1-2): 88-98

31 Gao W, Chan J M, Farokhzad O C. Mol. Pharm., 2010, 7(6): 1913-1920

猜你喜歡
細(xì)胞凋亡喉癌
木犀草素對對乙酰氨基酚誘導(dǎo)的L02肝細(xì)胞損傷的保護(hù)作用
傳染性法氏囊病致病機(jī)理研究
科技視界(2016年15期)2016-06-30 12:27:37
G—RH2誘導(dǎo)人肺腺癌A549細(xì)胞凋亡的實驗研究
缺氧誘導(dǎo)因子-1α在喉癌中的表達(dá)及意義
端粒酶逆轉(zhuǎn)錄酶與轉(zhuǎn)錄激活蛋白-1在喉癌組織中的表達(dá)及相關(guān)性研究
山東體育學(xué)院學(xué)報(2015年3期)2015-08-14 20:30:25
Fas/FasL對糖尿病心肌病的影響
聯(lián)合金雀異黃素和TRAIL處理對SMMC—7721肝癌干細(xì)胞樣細(xì)胞凋亡的影響
喉癌組織中Survivin、MMP—2的表達(dá)、臨床意義及相關(guān)性研究
ABCG2及其在喉癌中的研究進(jìn)展
岳池县| 贵港市| 德惠市| 庆元县| 西乌| 射洪县| 青冈县| 甘洛县| 肇庆市| 巍山| 黄浦区| 安义县| 凤山县| 秀山| 怀安县| 玉环县| 虞城县| 屯昌县| 德保县| 博湖县| 贵阳市| 桃源县| 江阴市| 乐平市| 金湖县| 乾安县| 大名县| 武山县| 江口县| 通河县| 水城县| 内黄县| 时尚| 邳州市| 合川市| 屏东县| 东阿县| 禹州市| 高安市| 右玉县| 张家港市|