江 茜 王 英 黃 誠(chéng)
(1贛南醫(yī)學(xué)院護(hù)理學(xué)院,贛州341000;2贛南醫(yī)學(xué)院,贛州341000;3贛南醫(yī)學(xué)院生理教研室,贛州341000)
神經(jīng)病理性疼痛 (neuropathic pain,NP) 是由外周或中樞神經(jīng)系統(tǒng)的疾病、損傷及功能障礙所導(dǎo)致的疼痛[1]。其臨床表現(xiàn)特點(diǎn)為痛覺(jué)過(guò)敏、痛覺(jué)超敏和炎癥區(qū)域持續(xù)性的自發(fā)痛[2]。它是臨床上的常見(jiàn)病和慢性病,在人群中患病率約為6.9%~10%[3]。神經(jīng)病理性疼痛發(fā)病機(jī)制至今未完全明了,目前仍無(wú)有效的治療手段。臨床上多數(shù)NP病人未能有效緩解疼痛,這給病人及其家庭帶來(lái)了沉重的心理、生理及經(jīng)濟(jì)負(fù)擔(dān)[4]。有證據(jù)表明促炎細(xì)胞因子如interleukin-6 (IL-6)、interleukin-1β (IL-1β) 和 tumor necrosis factor-α (TNF-α)等在神經(jīng)病理性疼痛的發(fā)生發(fā)展過(guò)程中發(fā)揮重要作用,最終引起中樞敏化,形成持續(xù)性疼痛[5,6]。此外,在促炎因子 (TNF-α、IL-1β、IL-6等)、細(xì)菌和病毒等刺激下,NF-κB被激活,活化的 NF-κB 可調(diào)控 IL-1β、IL-6和 TNF-α等基因的表達(dá)[7,8],兩者構(gòu)成一種反饋機(jī)制共同促進(jìn)神經(jīng)病理性疼痛的維持與發(fā)展。
臭牡丹 (clerodendron bungei steud,CBS) 是傳統(tǒng)中草藥,屬馬鞭草植物,具有活血散瘀,消腫解毒等功用[9]。研究表明臭牡丹根提取液具有較強(qiáng)的鎮(zhèn)痛作用[10];但它的作用機(jī)制仍不甚清楚,目前國(guó)內(nèi)外尚無(wú)探討臭牡丹治療NP機(jī)制的研究報(bào)道。我們的前期實(shí)驗(yàn)結(jié)果提示,劑量為30 g/kg的臭牡丹緩解神經(jīng)病理性疼痛模型大鼠所致的機(jī)械痛敏效果最明顯[11]。根據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道和我們的前期結(jié)果,推測(cè)臭牡丹可能是通過(guò)抑制致炎細(xì)胞因子激活的NF-κB信號(hào)途徑來(lái)發(fā)揮鎮(zhèn)痛作用。因此,本實(shí)驗(yàn)擬從細(xì)胞因子及NF-κB信號(hào)通路入手,采用SNI大鼠模型,選擇30 g/kg的CBS濃度持續(xù)灌胃治療28天,應(yīng)用Von-Frey設(shè)備測(cè)定大鼠機(jī)械縮足反射閾值,觀察CBS能否緩解SNI大鼠的機(jī)械痛敏;通過(guò)qPCR和Western blot等實(shí)驗(yàn)探討臭牡丹干預(yù)神經(jīng)病理性疼痛的作用機(jī)制。
SPF級(jí)雄性成年SD大鼠,體重180~220 g,購(gòu)自湖南斯萊克景達(dá)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限公司[動(dòng)物中心許可證號(hào):SCXK (湘) 2013-0004]。動(dòng)物飼養(yǎng)環(huán)境為每天12小時(shí)光照/12小時(shí)黑暗,50%~55%濕度,23 ± 1℃。實(shí)驗(yàn)期間所有大鼠均自由攝食飲水。大鼠實(shí)驗(yàn)和飼養(yǎng)符合相關(guān)規(guī)定。
參考王春娟等[12]的方法提取藥材。800 g臭牡丹根(購(gòu)自亳州市安東藥業(yè)有限責(zé)任公司)剪碎,加3 200 ml 80%乙醇(藥材和水1:4比例),用恒溫電熱套100℃煮沸后調(diào)低溫度至60℃ 煮30分鐘,倒出藥液并用四層紗布過(guò)濾;臭牡丹根殘?jiān)凑盏谝槐樘崛》椒ㄔ俜謩e提取2次;合并三次濾液,用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀濃縮并蒸發(fā)濾液中的乙醇至無(wú)醇味,加適量生理鹽水配置成6 g/ml (即30 g/kg) 濃度。藥液提取成功后分裝置于冰箱-20℃保存。
NF-κB p65亞基多克隆抗體(貨號(hào):4767S)、組蛋白H 3 (D1H2) 抗體(貨號(hào):4499S)購(gòu)自美國(guó)CST公司,TNF-α多克隆抗體 (貨號(hào):ab6671)、IL- 1β多克隆抗體(貨號(hào):ab9722)和β-actin抗體(貨號(hào)ab49900)購(gòu)自英國(guó)Abcam公司,IL-6多克隆抗體(貨號(hào):SC-7884)購(gòu)自美國(guó)Santa Cruz公司,HRP標(biāo)記兔二抗(貨號(hào):7074)購(gòu)自美國(guó)CST公司,亞細(xì)胞蛋白質(zhì)組抽提試劑盒(貨號(hào):539790)和PVDF膜購(gòu)自美國(guó)Millipore公司,青霉素(貨號(hào):16051411)購(gòu)自江西東風(fēng)藥業(yè)股份有限公司,A SYBR? Select Master Mix(貨號(hào):4472908)購(gòu)自美國(guó)Life technologies公司。
2390型Electronic Von Fery觸覺(jué)測(cè)痛儀(TC美國(guó)),Western Blot(電泳、電轉(zhuǎn)移)系統(tǒng)(美國(guó)Bio-Rad),Lightcycler 480IIReal-Time PCR儀(德國(guó)Roche),MK3型酶標(biāo)儀(美國(guó)Thermo),ZNHW-Ⅱ型恒溫電熱套 (上??旗Z儀器有限公司),SB-1000旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 (上海愛(ài)郎儀器有限公司)。
參照Decosterd和Woolf等[13]方法制備SNI模型。1%戊巴比妥鈉 (按0.5 ml/100 g注射)腹腔麻醉后,左大腿側(cè)邊剪毛,酒精棉球消毒皮膚,劃開(kāi)皮膚,鈍性分離股二頭肌,暴露出坐骨神經(jīng)分支:腓腸神經(jīng),腓總神經(jīng)和脛神經(jīng),用5.0絲線把脛神經(jīng)和腓總神經(jīng)緊緊結(jié)扎(結(jié)扎松緊以結(jié)扎的大鼠左后肢微微抽搐為宜),在脊髓遠(yuǎn)側(cè)端剪斷,保留大約2~4 mm的遠(yuǎn)側(cè)殘端,注意術(shù)中保持腓腸神經(jīng)完整,傷口局部撒射青霉素粉末預(yù)防感染,肌肉和皮膚分兩層縫合。
假手術(shù)組(Sham組)只暴露坐骨神經(jīng),不進(jìn)行結(jié)扎剪斷處理,其他手術(shù)操作同前;正常對(duì)照組(Ctrl組)不接受手術(shù)。
將符合實(shí)驗(yàn)要求的大鼠按隨機(jī)數(shù)字表法隨機(jī)分為四組 (n = 8):① Ctrl組;② Sham組;③ SNI組;④ SNI+CBS組。從術(shù)后第7天開(kāi)始,SNI + CBS治療組大鼠灌胃給予30 g/kg 的CBS,連續(xù)灌胃28天,Ctrl組、Sham組和SNI組大鼠則均給予同體積生理鹽水。于術(shù)前1 天和術(shù)后第7、14、21、28和35天分別測(cè)定其行為學(xué)變化。并于灌胃28天后,處死大鼠,立即取材。
在安靜環(huán)境下,將實(shí)驗(yàn)大鼠放置于透明的有機(jī)玻璃箱中(底為1 cm×1 cm的鐵絲網(wǎng)),使大鼠適應(yīng)15 min。待其安靜后,采用測(cè)痛儀由下往上垂直刺激大鼠足底正中皮膚(SNI大鼠術(shù)后則刺激大鼠足底外側(cè)皮膚),逐漸加大刺激強(qiáng)度,大鼠出現(xiàn)縮足反應(yīng)(如舔足、抬腿等)時(shí)屏幕上自動(dòng)顯示探針?biāo)毫Υ笮 T搲毫χ导礊闄C(jī)械縮足反射閾值 (paw withdrawal threshold,PWT)。最大刺激強(qiáng)度不超過(guò)90 g,每只大鼠重復(fù)5次,每次間隔5 min,取平均值。實(shí)驗(yàn)環(huán)境要求溫度22±1℃,濕度55%~65%。
30 g/kg CBS灌胃給藥4周后處死大鼠,快速取手術(shù)側(cè)L4、L5DRG和脊髓腰膨大部分。按照亞細(xì)胞蛋白質(zhì)組抽提試劑盒說(shuō)明書(shū)提取蛋白:將樣本組織 (50 mg) 剪切成小塊,加入預(yù)冷的1 ml BufferⅠ后勻漿,4℃旋轉(zhuǎn)混合10 min后4℃離心,1 000 ×g,10 min,小心吸取上清液,此為細(xì)胞質(zhì)蛋白;加入預(yù)冷的1 ml BufferⅡ,最大轉(zhuǎn)速渦旋劇烈振蕩10 s后,4℃旋轉(zhuǎn)混合30 min,4℃離心,6 000×g,10 min,小心吸取上清液,此為細(xì)胞膜蛋白;加入預(yù)冷的500 μl Buffer Ⅲ,最大轉(zhuǎn)速渦旋劇烈振蕩10 s后,4℃旋轉(zhuǎn)混合10 min,4℃離心,7 000 × g,10 min,小心吸取上清液,即得到核蛋白。提取蛋白后,應(yīng)用BCA方法測(cè)量總蛋白濃度。將分裝的蛋白樣本 (50 μg) 進(jìn)行SDS-PAGE (10%、12%) 電泳,電轉(zhuǎn)移至PVDF膜上,5%脫脂牛奶室溫封閉約1 h,按1:200比例稀釋一抗孵育過(guò)夜;1:1 000比例稀釋用辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的與一抗對(duì)應(yīng)的二抗,室溫孵育2 h。最后,使用化學(xué)成像發(fā)光成像系統(tǒng)照相,通過(guò)Image tool圖像分析軟件讀取目的以及內(nèi)參條帶在PVDF膜上測(cè)得的光密度值,計(jì)算出目的蛋白量。
各引物序列由上海生工生物工程公司合成。采用A SYBR? Select Master Mix試劑盒提取總RNA并配制20 μl逆轉(zhuǎn)錄體系合成cDNA。反轉(zhuǎn)錄條件:65 ℃ 5 min,37 ℃ 2 min,37℃ 10 min×5 個(gè)循環(huán),70 ℃ 15 min。采用qPCR法進(jìn)行擴(kuò)增,qPCR反應(yīng)體系 20 μl:雙蒸水 (ddH2O)7 μl,上、下游引物各1 μl,cDNA 1 μl,SYBR? Select Master Mix 10 μl。反應(yīng)條件:變形95℃ 10 min;95℃ 10 s,退火61℃20 s,延伸72℃ 25 s,40個(gè)循環(huán)。PCR反應(yīng)后,采用以下的程序進(jìn)行熔解曲線分析:72 ℃~95 ℃,0.5 ℃,10 s/each。每組重復(fù)檢測(cè)3次。采用2-ΔΔCt法分析NF-κB、TNF-α、IL-1β和IL-6的mRNA表達(dá)水平。引物序列如下:
基因Gene引物Primer sequence 5' to 3'TNF-α Forward CCACCACGCTCTTCTGTCTACTG Reverse GGGCTACGGGCTTGTCACTC IL-1β Forward CACCTCAATGGACAGAACATAAGC Reverse TCTTCTTTGGGTATTGTTTGGGA IL-6 Forward AAGACAAAGCCAGAGTCATTCAGAG Reverse GTTGGATGGTCTTGGTCCTTAGC NF-κB p65 Forward CTGTGCGAGTGTCCATGCAG Reverse TTCTTCATGATGCTCTTGAAGGTC Actin Forward CCAACCGTGAAAAGATGACC Reverse ACCAGAGGCATACAGGGACA
應(yīng)用SPSS 17.0、GraphPad Prism 5.0軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行處理并統(tǒng)計(jì)分析;計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±SD)表示,qPCR和Western blot的結(jié)果采用one-way ANOVA檢驗(yàn),機(jī)械縮足反射閾值 (PWT)的結(jié)果采用two-way ANOVA和Bonferroni' s post hoc 檢驗(yàn)。P< 0.05認(rèn)為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,Ctrl組、Sham組、SNI組和SNI + CBS組在造模前的PWT差異無(wú)顯著性。與Sham組相比,SNI組在造模后第7天出現(xiàn)PWT下降 (P< 0.001),提示造模成功,且在造模后的第14、21、28和35天內(nèi)均持續(xù)低于Sham組 (P< 0.001)。與SNI組相比,給予劑量為30 g/kg CBS干預(yù)后的第 14、21和28天,PWT顯著上升 (P< 0.05,見(jiàn)圖1)。
在CBS (30 g/kg) 灌胃治療28天后,與Sham組比較,SNI組大鼠脊髓和DRG中NF-κB p65 mRNA表達(dá)明顯增加(P< 0.05);與SNI組比較,SNI +CBS組大鼠脊髓和DRG中NF-κB p65 mRNA表達(dá)明顯減少 (P< 0.05,見(jiàn)圖 2)。
在CBS (30 g/kg)灌胃治療28天后,與Sham組相比,SNI組大鼠脊髓和DRG中IL-1β、IL-6和TNF-α的mRNA表達(dá)均明顯增加 (P< 0.05,P< 0.01);與SNI組相比,SNI + CBS組脊髓及DRG的IL-1β、IL-6和TNF-α的 mRNA表達(dá)顯著降低 (P< 0.05,P< 0.01,見(jiàn)圖 3)。
在CBS (30 g/kg) 灌胃治療28天后,與Sham組比較,SNI組大鼠脊髓及DRG中NF-κB蛋白表達(dá)明顯增加 (P< 0.05);與SNI組相比,SNI + CBS組脊髓及背根神經(jīng)節(jié)的NF-κB蛋白表達(dá)均顯著下降(P< 0.05,P< 0.01,見(jiàn)圖 4)。
CBS (30 g/kg)灌胃治療28天后,與Sham組相比,SNI組大鼠脊髓和DRG中IL-1β、IL-6和TNF-α蛋白表達(dá)均明顯增加 (P< 0.05,P< 0.01);與 SNI組相比,SNI + CBS組脊髓及DRG的IL-1β、IL-6和 TNF-α蛋白表達(dá)顯著降低 (P< 0.05,P< 0.01,見(jiàn)圖 5)。
神經(jīng)病理性疼痛是臨床常見(jiàn)病,其病因多樣,發(fā)病機(jī)制復(fù)雜,臨床治療并無(wú)有效根治方法。進(jìn)一步闡明神經(jīng)病理性疼痛的致痛信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)機(jī)制,并以此研發(fā)新型有效治療藥物已成為目前國(guó)內(nèi)外疼痛醫(yī)學(xué)基礎(chǔ)及臨床研究亟待解決的難題。
臭牡丹是一種傳統(tǒng)中草藥,具有祛風(fēng)解毒,消腫止痛的功效。已有實(shí)驗(yàn)顯示臭牡丹根提取液具有較強(qiáng)的鎮(zhèn)痛作用,且該作用不能被納絡(luò)酮所阻斷,提示臭牡丹是通過(guò)非阿片受體來(lái)發(fā)揮鎮(zhèn)痛效應(yīng)的[10]。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)臭牡丹正丁醇提取物可顯著抑制佐劑性關(guān)節(jié)炎大鼠的急性和繼發(fā)性足腫脹[14],且明顯抑制NP大鼠IL-1β、TNF-α的表達(dá)[11]。因此,我們?cè)赟NI所致的神經(jīng)病理性疼痛模型上探討臭牡丹對(duì)其痛敏行為的影響及可能的作用機(jī)制。
SNI模型是外周神經(jīng)損傷所誘導(dǎo)神經(jīng)病理性疼痛的經(jīng)典模型之一,該模型因可高度反映臨床疼痛綜合征的一些特點(diǎn)而得到廣泛運(yùn)用[13]。我們實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)SNI術(shù)后動(dòng)物均存在術(shù)側(cè)后肢明顯的痛覺(jué)超敏,表現(xiàn)為對(duì)機(jī)械刺激的異常敏感。給予30 g/kg CBS持續(xù)灌胃28 天后PWT顯著上升,提示CBS可緩解SNI所致的神經(jīng)病理性疼痛大鼠機(jī)械痛敏。
圖1 CBS對(duì)SNI模型大鼠機(jī)械縮足反射閾值 (PWT) 的影響(±SD)與Sham組比較,***P < 0.001;與SNI組比較,#P < 0.05Fig.1 Effects of CBS on mechanical paw withdrawal threshold (PWT) in rats with spared nerve injury (SNI)(±SD)***P < 0.001,compared to Sham group,#P < 0.05,compared to SNI group.
圖2 CBS對(duì)SNI大鼠脊髓及DRG中NF-κB mRNA表達(dá)的影響 (n = 5,±SD)與Sham組比較,*P < 0.05;與SNI組比較,#P < 0.05Fig.2 qPCR analysis of NF-κB mRNA expression in the L4-L6 spinal cord and DRG (n = 5,±SD)*P < 0.05,compared to Sham group,#P < 0.05,compared to SNI group.
圖3 CBS對(duì)SNI大鼠脊髓及DRG中IL-1β、IL-6和TNF-α mRNA表達(dá)的影響 (n = 5,±SD)與 Sham 組比較 ,*P < 0.05,**P < 0.01;與 SNI組比較 ,#P < 0.05,##P < 0.01Fig.3 qPCR analysis of IL-1β,IL-6 and TNF-α mRNA expression in the L4-L6 spinal cord and DRG (n = 5,±SD)*P < 0.05,**P < 0.01,compared to Sham group,#P < 0.05,##P < 0.01,compared to SNI group.
圖4 CBS對(duì)SNI大鼠脊髓及DRG中核內(nèi)NF-κB蛋白表達(dá)的影響(n = 8,±SD)與 Sham 組比較 ,*P < 0.05;與 SNI組比較 ,#P < 0.05,##P < 0.01Fig.4 Western blot analysis of NF-κB protein expression in the L4-L6 spinal cord and DRG (n = 8,±SD)*P < 0.05,compared to Sham group,#P < 0.05,##P < 0.01,compared to SNI group.
圖5 CBS對(duì)SNI大鼠脊髓及DRG中核內(nèi)IL-1β,IL-6和TNF-α蛋白表達(dá)的影響 (n = 8,±SD)與 Sham 組比較 ,*P < 0.05,**P < 0.01;與 SNI組比較 ,#P < 0.05,##P < 0.01Fig.5 Western blot analysis of IL-1β、IL-6 and TNF-αprotein expression in the L4-L6 spinal cord and DRG (n = 8,±SD)*P < 0.05,**P < 0.01,compared to Sham group,#P < 0.05,##P < 0.01,compared to SNI group.
神經(jīng)病理性疼痛的形成和發(fā)展是多個(gè)因素相互級(jí)聯(lián)的復(fù)雜過(guò)程。多重證據(jù)表明促炎細(xì)胞因子參與神經(jīng)病理性疼痛的發(fā)生與維持過(guò)程,其中IL-1β、IL-6、TNF-α與疼痛關(guān)系尤為密切[5]。研究表明,在傷害性刺激作用下,組織受損傷后神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞激活后釋放相應(yīng)促炎細(xì)胞因如IL-1β、IL-6和TNF-α的表達(dá)顯著升高[15~17],在實(shí)驗(yàn)研究中我們觀察到SNI大鼠脊髓和DRG中 IL-1β、IL-6和TNF-α的mRNA表達(dá)水平均明顯升高;而給予30 g/kg CBS持續(xù)28天灌胃后可顯著降低IL-1β、IL-6 和TNF-α的mRNA及蛋白的表達(dá),這與Wang X、Gopalsamy等學(xué)者的研究結(jié)果具有一致性[15~17]。以上我們的研究結(jié)果提示CBS可能通過(guò)下調(diào)IL-1β、IL-6以及TNF-α的基因和蛋白表達(dá)來(lái)抑制外周和中樞炎癥反應(yīng),減輕中樞敏化,從而緩解NP的痛敏行為。
此外,在促炎細(xì)胞因子(TNF-α、IL-1β、IL-6等)、細(xì)菌和病毒等刺激下,NF-κB被激活,活化的NF-κB又可調(diào)控IL-1β、IL-6和TNF-α等基因的表達(dá)[7,8],兩者構(gòu)成一種反饋機(jī)制共同促進(jìn)神經(jīng)病理性疼痛的維持與發(fā)展[18,19]。為觀察CBS對(duì)SNI誘導(dǎo)的神經(jīng)病理性疼痛大鼠NF-κB的變化影響,我們采用qPCR和Western Blot方法檢測(cè)大鼠脊髓和DRG NF-κB的mRNA及細(xì)胞核內(nèi)蛋白表達(dá)變化情況。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明經(jīng)大鼠術(shù)側(cè)坐骨神經(jīng)分支部分結(jié)扎剪斷后,脊髓和DRG NF-κB的mRNA及蛋白表達(dá)均顯著增加,而CBS灌胃給藥28天后,NF-κB的mRNA及蛋白表達(dá)顯著下調(diào),為此,我們認(rèn)為CBS可能是通過(guò)抑制NF-κB信號(hào)通路來(lái)發(fā)揮對(duì)NP的鎮(zhèn)痛作用。緣由神經(jīng)病理性疼痛的發(fā)病機(jī)制是多因素、多條信號(hào)通路相互級(jí)聯(lián)的復(fù)雜過(guò)程,要完全明確CBS對(duì)神經(jīng)病理性疼痛的鎮(zhèn)痛機(jī)制,仍需進(jìn)一步的實(shí)驗(yàn)研究加以證實(shí)。
綜上所述,基于文獻(xiàn)報(bào)道和我們的實(shí)驗(yàn)結(jié)果,提示CBS作用于神經(jīng)病理性疼痛的可能機(jī)制是通過(guò)抑制NF-κB信號(hào)途徑,進(jìn)而抑制NF-κB信號(hào)分子所誘導(dǎo)的炎癥介質(zhì)致炎細(xì)胞因子(TNF-α,IL-1β,IL-6)的mRNA和蛋白表達(dá)來(lái)實(shí)現(xiàn)的。
參 考 文 獻(xiàn)
[1]邢國(guó)剛.神經(jīng)病理性疼痛的新定義.中國(guó)疼痛醫(yī)學(xué)雜志 ,2011,17(10): 595 ~ 596.
[2]JensenTS,FinnerupNB.Allodynia and hyperalgesia in neuropathic pain: Clinical manifestations and mechanisms.Lancet Neurol,2014,13: 924 ~ 935.
[3]van Hecke O,Austin SK,Khan RA,et al.Neuropathic pain in the general population: a systematic review of epidemiological studies.Pain,2014,155:654 ~ 662.
[4]Attal N,Bouhassira D.Pharmacotherapy of neuropathic pain: Which drugs,which treatment algorithms? Pain,2015,156: S104 ~ S114.
[5]Hung AL,Lim M,Doshi TL.Targeting cytokines for treatment of neuropathic pain.Scand J Pain,2017,17:287 ~ 293.
[6]Nadeau S,Filali M,Zhang J,et al.Functional recovery after peripheral nerve injury is dependent on the proinflammatory cytokines IL-1β and TNF: implications for neuropathic pain.J Neurosci,2011,31:12533-12542.
[7]Su P,Liu X,Pang Y,et al.The archaic roles of the lamprey NF-κB (lj-NF-κB) in innate immune responses.Mol Immunol,2017 ,92: 21 ~ 27.
[8]Zhang Q,Yu J,Wang J,et al.The Red Nucleus TNF-a Participates in the Initiation and Maintenance of Neuropathic Pain Through Different Signaling Pathways.Neurochem Res,2015,40:1360 ~ 1371.
[9]中國(guó)科學(xué)院中國(guó)植物志編輯委員會(huì).中國(guó)植物志.科學(xué)出版社,2004,65: 176.
[10]劉建新,周俐,周青,等.臭牡丹根正丁醇提取物鎮(zhèn)痛作用的研究.中國(guó)疼痛醫(yī)學(xué)雜志,2007,13(6): 349 ~ 352.
[11]鄒曉琴,歐陽(yáng)娟,黃誠(chéng),等.臭牡丹根提取物對(duì)神經(jīng)病理性疼痛的鎮(zhèn)痛作用.時(shí)珍國(guó)醫(yī)國(guó)藥,2013,24(1):12 ~ 14.
[12]王春娟,左國(guó)營(yíng),王根春,等.26種云南中草藥的體外抗菌活性篩選.中華中醫(yī)藥雜志,2014,29:113 ~ 116.
[13]Decosterd I,Woolf CJ.Spared nerve injury: an animal model of persistent peripheral neuropathic pain.Pain,2000,87:149 ~ 158.
[14]劉建新,周青,周俐,等.不同劑量臭牡丹根對(duì)大鼠佐劑性關(guān)節(jié)炎不同時(shí)點(diǎn)的干預(yù)效應(yīng): 與氫化可的松相比較.中國(guó)臨床康復(fù),2005,9: 144 ~ 145.
[15]Wang X,Zhang G,Qiao Y,et a1.Crocetin attenuates spared nerve injury-induced neuropathic pain in mice.J Pharmacol Sci,2017,135:141 ~ 147.
[16]Gopalsamy B,Farouk AAO,Tengku Mohamad TAS,et a1.Antiallodynic and antihyperalgesic activities of zerumbone via the suppression of IL-1β,IL-6,and TNF-α in a mouse model of neuropathic pain.J Pain Res,2017,10: 2605 ~ 2619.
[17]Carballo-Villalobos AI,González-Trujano ME,Pellicer F,et al.Central and peripheral anti-hyperalgesic effects of diosmin in a neuropathic pain model in rats.Biomed Pharmacother,2018,97: 310 ~ 320.
[18]Quint?o NL,Balz D,Santos AR,et al.Long-lasting neuropathic pain induced by brachial plexus injury in mice: Role triggered by the pro-in fl ammatory cytokine,tumour necrosis factor alpha.Neuropharmacology,2006,50: 614 ~ 620.
[19]St Jacques B,Ma W.Role of prostaglandin E2 in the synthesis of the pro-in fl ammatory cytokine interleukin-6 in dorsal root ganglion neurons: an in vivo and in vitro study.J Neurochem,2011,118: 841 ~ 854.