王 鑫,袁金鳳,彭詩濤,張語凡,王 蕾,張先靈,李 飛
(北京中醫(yī)藥大學中藥學院 北京 102488)
黃連為毛茛科植物黃連(Coptis chinensis Franch.)、三角葉黃連(Coptis deltoidea C.Y.Cheng et Hsiao.)、云連(Coptis teeta Wall.)的干燥根莖。黃連生品味苦、性寒;具有清熱燥濕、瀉火解毒的作用[1]。姜黃連為黃連的炮制品之一,姜炙后可緩和生品的苦寒之性,善治胃熱嘔吐。歷版藥典和各地炮制規(guī)范[2-15]中姜黃連的炮制工藝不盡相同。其中輔料姜汁的制備工藝有榨生姜汁、煮干姜汁、煮生姜汁;輔料姜汁與黃連飲片有拌勻吸盡和潤至透心的不同。生姜味辛性溫,具有溫中止嘔,解表散寒之功;干姜性熱,長于溫中散寒,回陽通脈,有學者認為四川干姜為真正的“藥姜”,不同姜汁對黃連生物堿的影響未見報道。故本研究選擇生姜、四川干姜、同批次生姜切片曬干制得的干姜制備姜汁。由于傳統(tǒng)炙法全憑操作者的主觀判斷,不易量化,部分學者采用烘法替代炙法,兩種加熱方式對姜黃連的質量影響是否一致尚不明確,故采用文獻[16]報道的姜黃連最優(yōu)烘制工藝,對傳統(tǒng)炙法和烘法進行比較。本實驗通過查閱歷版藥典和各地炮制規(guī)范,發(fā)現(xiàn)姜炙法中姜汁的制備、悶潤節(jié)點等工序中各地各法,無規(guī)范化的炮制工藝,不能明確各工序中影響飲片質量的因素。這些問題的存在,使得姜黃連飲片的質量很難達到穩(wěn)定、可控,不能保證臨床用藥的安全、有效。故本研究采用同批次黃連片制備姜黃連,在2015版《中國藥典》規(guī)定的4種生物堿含量標準的基礎上,以6種生物堿含量作為評價指標,比較不同方法制備的姜汁、悶潤程度、姜的來源、加熱方式對黃連生物堿含量的影響,并采用多種統(tǒng)計方法進行分析,尋找姜制工序中影響姜黃連質量的因素,旨在為姜黃連炮制工藝及質量標準的完善提供依據(jù)。
表1 黃連炮制品的制備及外觀性狀
Waters 2695高效液相色譜儀(2489紫外檢測器,Empower色譜工作站);SB25-12DTDN型超聲波清洗器(寧波新芝生物科技股份有限公司);SHB-3型循環(huán)多用真空泵(鄭州長城科工貿有限公司);BT-25S型電子分析天平(北京賽多利斯儀器有限公司);AR882+型在線式紅外測溫儀(深圳市富蘭克儀器儀表有限公司)。
鹽酸藥根堿(上海詩丹德標準技術服務有限公司,批號:ST03080120MG,純度≥98%);非洲防己堿(上海源葉生物科技有限公司,批號:W30M7Z15501,純度≥98%);表小檗堿(批號:PRF8041721,純度≥98%)、鹽酸黃連堿(批號:PRF7091402,純度≥98%)、鹽酸巴馬?。ㄅ枺篜RF8030248,純度≥98%)、鹽酸小檗堿(批號:PRF8040742,純度≥98%)均購自成都普瑞法科技開發(fā)有限公司。乙腈(美國Fisher公司,色譜純),其余試劑均為分析純。
黃連購于北京市雙橋燕京中藥飲片廠,產地為湖北,批號:1604084。經北京中醫(yī)藥大學中藥學院楊瑤珺教授鑒定為毛茛科植物黃連(Coptis chinensis Franch)根莖切成的飲片;干姜購于北京市雙橋燕京中藥飲片廠,產地為四川,批號:1603060;生姜購于本地農貿市場。
黃連:取黃連飲片,凈制備用,得生品1。
姜汁的制備:分別取生姜、同批次生姜切片曬干制得的干姜(以下簡稱“干姜”)、四川干姜制備姜汁。三種輔料姜汁的制備方法如下:①榨生姜汁:按2015版《中國藥典》炮制通則制備[1];②煮干姜汁:按1988年版《全國中藥炮制規(guī)范》炮制通則制備[3];③煮生姜汁:按1990年版《山東省中藥飲片炮制規(guī)范》炮制通則[7]制備。即得不同方法制備的輔料姜汁,備用。
姜制品的制備方法:①姜汁潤炙品的制備[3]:取黃連片,加入姜汁拌勻,悶潤至透,文火加熱(溫度為95-105℃),炒干;②姜汁拌炙品的制備[1]:取黃連片,加姜汁拌勻至吸盡,置熱鍋內,文火(溫度為95-105℃)炒干;③姜汁拌烘品的制備[16]:取黃連片與生姜汁拌勻,悶潤60 min后于100℃下烘制3 h。對各個樣品進行炮制后,觀察其性狀(表1)。
上述炮制品所用的黃連生品均來自同一批次,并在相同溫度下炒干。在姜制品的炮制方法上,主要以1988年版《全國中藥炮制規(guī)范》的潤炙方法為主。同時,以姜汁拌炙品為對照比較加輔料潤透及吸盡有無區(qū)別;以川姜汁潤炙品比較不同來源的姜所制姜汁有無區(qū)別;以清水潤炙品為對照比較加與不加姜汁的黃連潤炙品有無區(qū)別;以姜汁拌烘品為對照比較加熱方式對黃連姜炙品的影響。分別將上述炮制品粉碎,過2號篩,備用。
2.2.1 色譜條件
XtimateTMC18色譜柱(4.6 mm×250 mm,5 μm);流動相A為30 mmol·L-1碳酸氫銨水溶液(每1 L碳酸氫銨溶液7 mL氨水及1 mL三乙胺),B相為純乙腈,線性梯度洗脫程序為0-15 min,10-25%B;15-25 min,25-30%B;25-40 min,30-45%B;流速為1 mL·min-1;檢測波長為270 nm;柱溫為30℃;進樣量為10 μL。在上述色譜條件下,理論塔板數(shù)按鹽酸藥根堿、鹽酸非洲防己堿、鹽酸表小檗堿、鹽酸黃連堿、鹽酸巴馬汀、鹽酸小檗堿峰計算均不低于10 000。分離度符合含量測定要求??瞻讓φ掌?、混合對照品及樣品色譜圖見圖1。
2.2.2 對照品溶液的制備
分別精密稱取鹽酸藥根堿、鹽酸非洲防己堿、鹽酸表小檗堿、鹽酸黃連堿、鹽酸巴馬汀、鹽酸小檗堿10.44、10.35、9.45、9.39、7.99、9.04 mg,分別置于 10、10、50、25、25、25 mL量瓶中,用甲醇-鹽酸溶液(100∶1)溶解并稀釋至刻度,即得各對照品儲備液。
分別吸取上述對照品儲備液鹽酸藥根堿0.5 mL、鹽酸非洲防己堿0.5 mL、鹽酸表小檗堿5.5 mL、鹽酸黃連堿5.0 mL、鹽酸巴馬汀4.5 mL、鹽酸小檗堿18.5 mL于50 mL量瓶中,用甲醇-鹽酸溶液(100∶1)定容至刻度(與儲備液一致),即得混合對照品儲備液。
2.2.3 供試品溶液的制備
將制備好的樣品粉末混合均勻,取供試品粉末約0.1 g,精密稱定,置100 mL錐形瓶中,精密加入甲醇-鹽酸溶液(100∶1)50 mL,密塞,稱定重量,超聲處理(功率:250 W,頻率:40 kHz)30 min,放冷,再稱定重量,用甲醇-鹽酸溶液(100∶1)補足減失的重量,搖勻,經0.45 μm微孔濾膜濾過,取續(xù)濾液,即得供試品溶液。
2.2.4 線性關系考察
分別精密量取混合貯備液0.5、1.0、2.5、5、10 mL置10 mL容量瓶中,加甲醇-鹽酸溶液(100∶1)稀釋至刻度,即得不同濃度的系列混合對照品溶液,分別精密吸取混合對照品儲備液及上述混合對照品溶液各10 μL,按上述色譜條件進行測定,以峰面積積分值(Y)對各生物堿濃度(mg·L-1)(X)進行線性回歸繪制標準曲線。鹽酸藥根堿:Y=3.06×107X-7 858.90,r=0.999 9;鹽酸非洲防己堿:Y=4.11×107X-898.49,r=0.999 8;鹽酸表小檗堿:Y=5.17×107X-24 177,r=1.000 0;鹽酸黃連堿:Y=3.89×107X-41 610,rr=0.999 9;鹽酸巴馬?。篩=4.29×107X-20 112,r=1.000 0;鹽酸小檗堿:Y=4.14×107X-84183,r=1.000 0。結果表明,上述生物堿分別在0.004 4-0.087 3、0.010 2-0.204 1、0.018 0-0.360 6、0.014 4-0.287 6、0.066 2-1.323 5 μg進樣量與峰面積呈良好的線性關系。
2.2.5 精密度試驗
精密吸取同一混合對照品溶液,在上述色譜條件下重復進樣6次,記錄6種生物堿峰面積。計算得鹽酸藥根堿、鹽酸非洲防己堿、鹽酸表小檗堿、鹽酸黃連堿、鹽酸巴馬汀、鹽酸小檗堿峰面積的RSD分別為2.2%,2.8%,1.8%,2.4%,2.4%,1.9%。表明儀器精密度良好。
圖1 空白對照品(A)、混合對照品(B)、姜黃連樣品(C)的液相色譜圖
2.2.6 穩(wěn)定性試驗
取同一供試品溶液,室溫放置,分別在0、2、4、8、12、24 h各進樣一次,記錄6種生物堿峰面積。計算得鹽酸藥根堿、鹽酸非洲防己堿、鹽酸表小檗堿、鹽酸黃連堿、鹽酸巴馬汀、鹽酸小檗堿峰面積RSD分別為2.4%、2.3%、2.8%、2.1%、1.6%、1.5%。表明供試品溶液在24 h內穩(wěn)定性良好。
2.2.7 重復性試驗
取黃連生品粉末,精密稱定6份,按照2.2.3項下方法平行制備6份供試品溶液,在上述色譜條件下進行測定。鹽酸藥根堿、鹽酸非洲防己堿、鹽酸表小檗堿、鹽酸黃連堿、鹽酸巴馬汀、鹽酸小檗堿峰面積RSD分別為2.2%、2.8%、1.8%、2.4%、2.4%、1.9%,重復性良好。
2.2.8 加樣回收率試驗
取已知含量的黃連生品粉末6份,每份0.05 g,精密稱定,分別精密加入一定量的生物堿混合對照品儲備溶液,按2.2.3項下方法制成供試品溶液,按上述色譜條件定量測定。鹽酸藥根堿、鹽酸非洲防己堿、鹽酸表小檗堿、鹽酸黃連堿、鹽酸巴馬汀、鹽酸小檗堿的平均回收率分別為97.37%、98.81%、98.03%、102.10%、96.80%、101.42%,RSD分別為2.22%、1.43%、1.59%、1.31%、0.85%、1.63%。
2.2.9 樣品測定
取黃連及各炮制品粉末,按2.2.3項下方法制備供試品溶液,按2.2.1項下色譜條件進行測定,外標法計算樣品含量,樣品測定結果見表2。
由表2可知,黃連經姜炙后,表小檗堿、黃連堿含量略有上升,藥根堿、非洲防己堿、巴馬汀、小檗堿含量略有下降。在6種生物堿含量上,傳統(tǒng)姜炙品均高于烘制品。
表2 黃連及各炮制品中6種生物堿的含量(n=3)
表3 黃連姜制品的特征根和方差貢獻率
表4 黃連姜制品的主成分向量
圖2 黃連及各炮制品樣品聚類圖
2.3.1 主成分分析
以6種生物堿為指標,將黃連姜制品數(shù)據(jù)輸入SAS 9.3進行主成分分析,相關系數(shù)的特征值和方差貢獻率見表3,各主成分對應的特征向量見表4。
由表3可以看出:第1、2、3的主成分的累計方差貢獻率為96.79%>85%。故選擇前3個主成分進行評價。它代表了姜黃連中6種生物堿信息量的96.79%。由表4可知,根據(jù)主成分所對應的特征向量,可得前3個主成分的表達式為:
由此可見,第一主成分Z1主要受表小檗堿(X3)的影響,第二主成分Z2主要受非洲防己堿(X3)的影響,第三主成分Z3主要受藥根堿(X1)的影響。黃連經姜制后各生物堿含量略有變化,經主成分分析,不同姜制品之間生物堿含量的差異主要體現(xiàn)在各樣品所含表小檗堿、非洲防己堿、藥根堿含量的不同,故以6種生物堿含量評價姜黃連質量具有一定科學性。
2.3.2 聚類分析
以6種生物堿的均值為指標,采用SAS 9.3分層聚類分析軟件對樣品進行聚類分析,運用歐氏距離(Euclidean)作為樣品的測度,結果見圖2。
由圖2可知,當歐氏距離λ=4時,烘法和傳統(tǒng)炙法具有明顯不同的聚類,說明烘品與炙品不同,這可能與加熱方式有關;λ=2時,生品和清水炙品為一類,姜炙品為一類,說明輔料姜汁的加入對黃連產生影響,加輔料與不加輔料是有區(qū)別的。
2.3.3 LSD檢驗
以6種生物堿之和為指標,采用LSD檢驗對生品及姜制品進行兩兩比較,各組數(shù)據(jù)均符合正態(tài)且方差齊。在多個樣本均數(shù)比較的方差分析中,F(xiàn)=6.28,P=0.000 7,P<0.05認為差異有統(tǒng)計學意義,總體均數(shù)不全相等。多個樣本均數(shù)間的多重比較見表5。
表5 黃連及姜制品中6種生物堿之和的多重比較
由表5可知,烘法與炙法具有顯著性差異,而采用傳統(tǒng)炙法炮制的姜炙品之間無顯著性差異。加熱方式可能是影響姜黃連生物堿含量的主要因素,而用不同方法制備的姜汁對姜黃連的6種生物堿之和影響不大,該結果與聚類分析的結果一致。
2.3.4 獨立t檢驗
為了更好的比較榨汁組“姜汁拌炙品”與“姜汁潤炙品”有無區(qū)別,選擇獨立t檢驗對各生物堿進行兩兩比較,結果見表6。
表6 兩組姜黃連中各生物堿的獨立t檢驗
由表6可見,各生物堿的P值均大于0.05,無顯著性差異。在輔料姜汁與黃連飲片拌潤的工序中,姜汁與黃連飲片“拌勻吸盡”或“潤至透心”在6種生物堿含量上沒有區(qū)別,該結果與聚類分析及LSD檢驗的結果一致。
黃連在姜炙時,飲片與姜汁悶潤至透心,其液體輔料稀釋時的加水量沒有明確規(guī)定。為保證實驗結果的準確性和可重復性。對悶潤工序中的加水量進行考察,即:取適量黃連飲片,重量為M,加適量水V1浸泡,待飲片全部潤透,內無干心時,過濾,未被吸收的水為V2。則飲片吸水率為:
重復3次,黃連飲片的平均吸水率為50%,即1 kg黃連飲片吸收的液體量大約為500 mL。根據(jù)黃連飲片吸水率測定的結果,量化出其“悶潤至透心”時的加水量,以保證水的加入對黃連影響的一致性。
有學者認為四川干姜為真正的“藥姜”,本實驗對四川干姜和生姜曬干姜進行比較,聚類分析與LSD檢驗均表明兩種姜汁制備的姜黃連在6種生物堿含量上無顯著性差異。
本實驗采用同一批次黃連炮制樣品,姜炙法達到傳統(tǒng)質量要求的炒干程度時,潤炙法所需時間較拌炙法長,但外觀性狀一致,均符合“表面棕黃色,略有姜的辛辣味”。烘制法炮制的姜黃連顏色較炙法顏色加深,姜辣味淡,焦香氣濃。本研究采用聚類分析、LSD檢驗、獨立t檢驗對6種生物堿含量進行分析,結果表明烘制品與傳統(tǒng)炙品具有明顯差異,烘制品的6種生物堿總量較姜炙品下降10%左右;而傳統(tǒng)炙法中姜的種類、不同方法制備的姜汁及悶潤程度對姜黃連的6種生物堿含量影響不大。鑒于炒炙溫度控制在95-105℃,烘制溫度為100℃,兩種加熱方式溫度基本一致,外觀性狀與成分的差異可能與烘制時間長達3 h有關。在沒有更多科學依據(jù)之前,仍應采用傳統(tǒng)的姜炙方法制備姜黃連??紤]到若加入姜汁潤至透心,則因需加水量大稀釋姜汁,炒干需要的工時長,故在加入輔料工序中,輔料姜汁與黃連飲片拌勻吸盡即可。
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