譚淑娜,馮津萍,馮超,田翠燕,陳樹濤
心力衰竭(心衰)是心臟各種疾病的終末階段,5年生存率只有50%左右,尋找新的治療方案成為亟待解決的問題[1]。自噬是依賴溶酶體途徑對體內(nèi)受損細(xì)胞器及大分子物質(zhì)進(jìn)行降解的過程,受多個自噬相關(guān)基因(Atg)如 Beclin-1、Atg7、Atg5、Atg14 等的調(diào)控。自噬相關(guān)蛋白LC3BⅡ與P62的表達(dá)水平反映自噬水平的高低,其中自噬底物蛋白P62與自噬活性呈負(fù)相關(guān)[2]。最近研究表明,自噬亦存在于心衰心肌細(xì)胞中,但其對心臟的影響尚不明確[3]。曲美他嗪為長鏈3-酮酰輔酶A硫解酶(3-KAT)抑制劑,可用于心力衰竭的治療[4],但其與自噬關(guān)系的研究較少。本研究通過檢測心衰及應(yīng)用曲美他嗪后大鼠心功能、心肌組織病理及自噬指標(biāo)等的變化,探討自噬對心肌細(xì)胞的作用及曲美他嗪對心肌自噬水平的影響。
1.1 材料 健康SPF級成年雄性Wistar大鼠30只,體質(zhì)量210~250 g,購自北京華阜康生物科技股份有限公司。曲美他嗪(天津施維雅制藥有限公司);水合氯醛(索萊寶化學(xué)試劑公司);超聲系統(tǒng)氣體麻醉裝置、Vevo2100小動物超聲儀(加拿大VisualSonics公司);PV-Loop壓力-容積系統(tǒng)(上海然哲儀器設(shè)備有限公司);酶聯(lián)免疫吸附試驗(ELISA)試劑盒(武漢優(yōu)爾生科技股份公司);兔抗鼠LC3B、GAPDH、P62一抗(Abcam公司),山羊抗兔LC3B、GAPDH、P62二抗(武漢三鷹生物技術(shù)有限公司);TUNEL試劑盒、Transcriptor First Stand cDNA Synthesis Kit試劑盒、SYBR Green PCR Master Mix試劑盒(羅氏公司);DAPI染料、Trizol(Invitrogen公司);PCR引物[生工生物工程(上海)股份有限公司]。
1.2 方法
1.2.1 心衰模型的制作及動物分組 取雄性Wistar大鼠,依照傳統(tǒng)方法[5]建立由心肌梗死(MI)誘發(fā)的大鼠心衰模型,術(shù)后24 h超聲評價左室射血分?jǐn)?shù)(LVEF)小于0.50即MI模型制備成功,4周后超聲檢查LVEF小于0.35即心衰造模成功。簡單隨機抽樣法從中抽取20只分為模型組(M組)、曲美他嗪組(Q組),每組各10只。另設(shè)假手術(shù)組(S組)10只,除未結(jié)扎冠狀動脈外,余步驟與M組相同。Q組給予曲美他嗪15 mg·kg-1·d-1灌胃4周,其余2組給予等量生理鹽水灌胃4周。
1.2.2 左室超聲評價左心室功能 大鼠用異氟烷麻醉成功后,用Vevo2100小動物超聲儀于胸骨旁左室長軸和短軸采集左心室圖像,并在二維引導(dǎo)下獲得M型超聲心動圖,測量LVEF、左室短軸縮短率(FS)、左室收縮末期內(nèi)徑(LVESD)、左室舒張末期內(nèi)徑(LVEDD)以及收縮末期左室后壁厚度(LPWS)、舒張末期左室后壁厚度(LPWD)。
1.2.3 有創(chuàng)血液動力學(xué)測定評價左心室功能 大鼠用5%水合氯醛按6 mL/kg腹腔注射麻醉后,于右側(cè)頸總動脈用PE10導(dǎo)管向近心端緩慢插入左心室,通過PV-Loop壓力-容積系統(tǒng)記錄大鼠心輸出量(CO)、左室收縮壓(LVSP)、左室舒張壓(LVDP)、左室舒張末壓(LVEDP)、等容收縮期左室內(nèi)壓最大上升速率(+dp/dtmax)以及等容舒張期左室內(nèi)壓最大下降速率(-dp/dtmax)。
1.2.4 酶聯(lián)免疫吸附試驗(ELISA)法檢測血清N-末端腦鈉肽前體(NT-proBNP)和超敏肌鈣蛋白T(hs-TnT)水平 血液動力學(xué)測定結(jié)束后,在大鼠腹主動脈處取血,獲取血清標(biāo)本,按ELISA試劑盒說明書操作,檢測血清NT-proBNP和hs-TnT水平。
1.2.5 HE染色和Masson染色觀察心肌病理學(xué)改變 經(jīng)腹主動脈用磷酸鹽緩沖液(PBS)灌流,留取心臟組織,部分用于制備石蠟切片,行HE染色和Masson染色,觀察心肌組織細(xì)胞結(jié)構(gòu)及膠原纖維的變化。
1.2.6 TUNEL染色觀察心肌凋亡情況 應(yīng)用石蠟切片進(jìn)行TUNEL熒光染色,實驗步驟參照試劑盒說明書。染色后應(yīng)用DAPI進(jìn)行細(xì)胞核復(fù)染,觀察心肌細(xì)胞凋亡情況。
1.2.7 Western blot法測定LC3B、P62的蛋白表達(dá) 剪取大鼠部分心肌組織包裹于錫箔紙中,液氮速凍30 min后,放入-80℃冰箱保存,后剪取30 mg心肌組織,剪碎,加入組織裂解液,使用細(xì)胞破碎儀進(jìn)行組織破碎。4℃以12 000 r/min離心15 min提取總蛋白,BCA法測定蛋白濃度,10%SDSPAGE電泳分離,上樣30μg/孔,恒壓120 V,3 h轉(zhuǎn)膜,5%脫脂奶粉封閉 2 h,一抗 LC3B、p62、GAPDH(稀釋濃度均為 1∶1 000)4℃孵育過夜,二抗(稀釋濃度為1∶10 000)室溫孵育2 h,ECL化學(xué)發(fā)光顯色,用凝膠成像儀對膠片進(jìn)行掃描,用VersaDoc凝膠成像分析系統(tǒng)對目標(biāo)帶的灰度值進(jìn)行分析,計算LC3及P62與GAPDH灰度值比值即為LC3及P62蛋白的相對表達(dá)量。
1.2.8 RT-PCR 檢測 Beclin-1、Atg7、Atg5、Atg14 的 mRNA表達(dá) 將超低溫保存的上述組織樣本50 mg采用Trizol一步法提取總RNA,用紫外分光光度計定量,取少量進(jìn)行RNA含量及純度測定,要求其OD260/OD280值處在1.7~2.0范圍。應(yīng)用Transcriptor First Stand cDNA Synthesis Kit試劑盒進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄得到相應(yīng)cDNA產(chǎn)物,條件:25℃10 min,48℃30 min,95℃5 min。應(yīng)用SYBR Green PCR Master Mix試劑盒進(jìn)行PCR反應(yīng),各基因上、下游引物見表1。擴增條件:95℃10 min;95℃ 15 s,60℃ 1 min,40個循環(huán)。應(yīng)用 Bio-Rad實時定量PCR儀分析軟件調(diào)整閾值后,查看并分析數(shù)據(jù),得到每個樣品反應(yīng)的Ct值,計算得到ΔCt,ΔCt=待測基因Ct值-內(nèi)參照基因(GAPDH)Ct值,并與對照組比較,取 2-ΔΔCt值進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計。
Tab.1 The sequence of detected gene primers表1 各檢測基因及內(nèi)參照引物序列
1.3 統(tǒng)計學(xué)方法 采用SPSS 22.0軟件進(jìn)行分析。符合正態(tài)分布的計量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,多組間比較采用單因素方差分析(one-way ANOVA),組間多重比較用LSD-t檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 曲美他嗪對心衰大鼠心臟超聲相關(guān)指標(biāo)的影響 M型超聲心動圖檢測結(jié)果顯示,與S組相比,M組 LVEF、FS、LPWD、LPWS 下降,LVEDD、LVESD 增大,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),大鼠心室腔擴張,左室室壁運動減弱,心功能下降。經(jīng)曲美他嗪治療4周后,與 M 組相比,Q 組 LVEF、FS、LPWD、LPWS升高,LVEDD、LVESD降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),大鼠心室腔擴張及左室室壁運動狀態(tài)得到改善,心功能有所提高,見圖1、表2。
2.2 曲美他嗪對心衰大鼠血流動力學(xué)的影響 PVLoop左室插管檢測大鼠左室壓力容積變化結(jié)果顯示,與 S組相比,M 組 CO、LVSP、LVDP 及±dp/dtmax降低,LVEDP升高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),大鼠心功能降低。與M組相比,Q組CO、LVSP、LVDP及±dp/dtmax升高,LVEDP降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),大鼠心功能改善,見表3。
Fig.1 M type echocardiography of ventricular wall motion in three groups of rats圖1 各組大鼠室壁運動M型超聲心動圖
Tab.2 Comparison of ultrasound related indexes of left ventricle in rats of each group表2 各組大鼠左室超聲相關(guān)指標(biāo)比較 (n=10,±s)
Tab.2 Comparison of ultrasound related indexes of left ventricle in rats of each group表2 各組大鼠左室超聲相關(guān)指標(biāo)比較 (n=10,±s)
*P<0.05,**P<0.01;a與 S 組比較,b與 M 組比較,P<0.05;表 3~5 同
?
Tab.3 Hemodynamic indexes in three groups of rats表3 各組大鼠血液動力學(xué)相關(guān)指標(biāo) (n=10,±s)
Tab.3 Hemodynamic indexes in three groups of rats表3 各組大鼠血液動力學(xué)相關(guān)指標(biāo) (n=10,±s)
?
2.3 曲美他嗪對心衰大鼠心肌組織的影響 HE染色結(jié)果(心臟橫切圖)顯示,與S組相比,M組大鼠左室擴張,左室前壁變薄,梗死區(qū)較大;與M組相比,Q組此病理情況得到改善。高倍鏡下,S組心肌細(xì)胞大小、結(jié)構(gòu)正常,排列整齊;M組左室梗死區(qū)心肌細(xì)胞排列紊亂,界限不清,呈現(xiàn)明顯水腫和壞死,且大量炎性細(xì)胞浸潤,心肌細(xì)胞損傷嚴(yán)重;與M組相比,Q組明顯改善,細(xì)胞排列略不整齊,略腫脹,部分壞死,有少量炎性細(xì)胞浸潤,見圖2。Masson染色結(jié)果顯示,與S組相比,M組大鼠左室梗死區(qū)存在大片藍(lán)色膠原沉積;與M組相比,Q組梗死區(qū)藍(lán)色膠原沉積明顯減少,曲美他嗪可減少心肌梗死后的膠原沉積,改善左室病理性重構(gòu),見圖3。
Fig.2 Results of HE staining in myocardial tissues of three groups of rats圖2 各組大鼠心肌組織HE染色結(jié)果
Fig.3 Results of Masson staining in myocardial tissues of three groups of rats(×40)圖3 各組大鼠心肌組織Masson染色結(jié)果(×40)
Fig.4 Results of TUNEL/DAPI staining in myocardial tissues of three groups of rats(TUNEL/DAPI,×50)圖4 各組大鼠心肌組織TUNEL/DAPI染色結(jié)果(TUNEL/DAPI,×50)
2.4 曲美他嗪對心力衰竭大鼠NT-proBNP、hs-TnT的影響 ELISA法檢測結(jié)果顯示,與S組相比,M組血清NT-proBNP、hs-TnT水平明顯升高,與M相比,Q組NT-proBNP和hs-TnT水平下降,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),曲美他嗪可減輕心衰心肌細(xì)胞損傷,見表4。
Tab.4 Indexes of NT-proBNP and hs-TnT in three groups of rats表4 各組大鼠NT-proBNP、hs-TnT指標(biāo) (ng/L,±s)
Tab.4 Indexes of NT-proBNP and hs-TnT in three groups of rats表4 各組大鼠NT-proBNP、hs-TnT指標(biāo) (ng/L,±s)
組別S組M組Q組F n 10 10 10 NT-proBNP 134.88±24.21 357.08±29.79a 235.12±15.49b 130.100**hs-TnT 58.27±19.23 199.71±74.57a 102.53±36.34b 10.830**
2.5 曲美他嗪對心衰大鼠心肌細(xì)胞凋亡的影響 TUNEL/DAPI染色結(jié)果顯示,與S組相比,M組中綠色熒光所指示的凋亡小體數(shù)量較多,MI后心衰大量心肌細(xì)胞凋亡。與M組相比,Q組綠色熒光明顯減少,經(jīng)曲美他嗪治療后心肌細(xì)胞凋亡明顯減少,見圖4。
2.6 曲美他嗪對LC3B、P62蛋白和Beclin-1、Atg7、Atg5、Atg14的mRNA表達(dá)的影響 Western blot及RT-PCR檢測結(jié)果顯示,與S組相比,M組LC3B蛋白和Beclin-1、Atg5、Atg7及Atg14的mRNA表達(dá)水平降低,P62蛋白表達(dá)水平升高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);與M組相比,Q組LC3B蛋白和Beclin-1、Atg5、Atg7及Atg14的mRNA表達(dá)水平升高,P62蛋白的表達(dá)水平下降,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),曲美他嗪可以抑制心肌梗死后心衰引起的自噬體合成量減少,并且增加自噬流的暢通性,見表5。
Tab.5 Comparison of autophagy related protein and autophagy related gene expressions between three groups表5 各組大鼠自噬相關(guān)蛋白及自噬相關(guān)基因相對表達(dá)水平的比較 (n=10,±s)
Tab.5 Comparison of autophagy related protein and autophagy related gene expressions between three groups表5 各組大鼠自噬相關(guān)蛋白及自噬相關(guān)基因相對表達(dá)水平的比較 (n=10,±s)
組別LC3B P62Beclin-1 S組M組Q組F 3.78±0.38 1.03±0.07a 2.21±0.49b 29.730**1.94±0.22 3.97±0.56a 2.48±0.51b 10.980**1.02±0.06 0.38±0.04a 0.69±0.06b 64.900**組別S組M組Q組F Atg5 0.95±0.07 0.54±0.07a 0.70±0.03b 24.220**Atg7 1.09±0.10 0.40±0.12a 0.77±0.08b 21.760**Atg14 0.90±0.04 0.53±0.04a 0.62±0.04b 49.570**
心力衰竭是多種病因引起心肌損害的最終結(jié)果,隨著發(fā)病率增加,雖然出現(xiàn)了干細(xì)胞移植、左室輔助裝置(LVAD)等新的治療方法,其死亡率仍逐年增加[6-7],是否有除神經(jīng)內(nèi)分泌、細(xì)胞因子外的其他機制參與其發(fā)生發(fā)展成為當(dāng)前研究的新方向[8]。在心衰心肌細(xì)胞內(nèi)發(fā)現(xiàn)自噬后,對其研究成為熱點,但自噬是作為一種保護(hù)性機制抑或損傷性機制尚不明確。Lu等[9]在阿霉素誘導(dǎo)的心衰大鼠中,應(yīng)用自噬抑制劑3-甲基腺嘌呤后,發(fā)現(xiàn)大鼠Beclin-1表達(dá)降低,伴隨心肺血流動力學(xué)改善,線粒體膜通透性降低,Na+-K+-ATP酶活性增高,推測自噬在阿霉素誘導(dǎo)的心力衰竭中發(fā)揮致病作用,可能通過損傷線粒體實現(xiàn)。Kassiotis等[10]檢測了待移植擴張型心肌病患者植入LVAD后心功能及自噬相關(guān)基因、相關(guān)蛋白的表達(dá)水平,發(fā)現(xiàn)植入LVAD后自噬水平下降,心功能改善,推測自噬為心力衰竭的適應(yīng)性機制,植入LVAD后可減弱該現(xiàn)象。上述兩項實驗僅研究阿霉素誘導(dǎo)的心力衰竭及擴張型心肌病的心功能與自噬水平之間的關(guān)系,未涉及心肌梗死后心衰自噬水平的變化、曲美他嗪干預(yù)實驗及對心肌組織病理方面的研究。本研究通過觀察梗死后心衰及應(yīng)用曲美他嗪后心肌自噬水平及心功能、病理等指標(biāo)變化,探討自噬對心肌細(xì)胞的作用及曲美他嗪對心肌自噬水平的影響。
本研究結(jié)果顯示,大鼠心肌梗死后心功能惡化、間質(zhì)纖維化加重、心肌細(xì)胞大量凋亡、損傷加重、炎性細(xì)胞浸潤并伴隨自噬水平下降、自噬流被阻斷;應(yīng)用曲美他嗪后,自噬水平升高、自噬流恢復(fù)暢通,伴隨心肌細(xì)胞凋亡減少,損傷減輕,炎性細(xì)胞浸潤減少,間質(zhì)纖維化減弱,心功能改善,提示自噬對心肌細(xì)胞有保護(hù)作用,可能與其抑制心肌細(xì)胞凋亡及間質(zhì)纖維化、減輕心肌細(xì)胞損傷、減少炎性細(xì)胞浸潤,進(jìn)而抑制心肌重構(gòu)有關(guān);應(yīng)用曲美他嗪后,心功能改善,與其上調(diào)自噬水平,增加自噬流暢通有關(guān)。
本研究為心衰的治療提供了新思路,但由于樣本量較小,僅限于動物研究,未對自噬改善心功能的機制進(jìn)行基因水平的分析,有待進(jìn)一步深入探討。
[1]WRITING COMMITTEE MEMBERS,Yancy CW,Jessup M,et al.2016 ACC/AHA/HFSA Focused update on new pharmacological therapy for heart failure:An updateof the 2013 ACCF/AHA Guideline for the Management of Heart Failure:A report of the American College of Cardiology/American Heart Association Task Force on Clinical practice Guidelines and the Heart Failure Society of America[J].Circulation,2016,134(13):e282-e293.doi:10.1161/CIR.0000000000000435.
[2]Orogo AM,Gustafsson AB.Therapeutic targeting of autophagy:potentialandconcernsintreatingcardiovasculardisease[J].CircRes,2015,116(3):489-503.doi:10.1161/CIRCRESAHA.116.303791.
[3]Delbridge LMD,Mellor KM,Taylor DJ,et al.Myocardial stress and autophagy:mechanisms and potential therapies[J].Nat Rev Cardiol,2017,14(7):412-425.doi:10.1038/nrcardio.2017.35.
[4]McCarthy CP,Mullins KV,Kerins DM.The role of trimetazidine in cardiovascular disease:beyond an anti-anginal agent[J].Eur Heart J Cardiovasc Pharmacother,2016,2(4):266-272.doi:10.1093/ehjcvp/pw051.
[5]Xu K,George I,Klotz S,et al.Erythropoietin derivate improves left ventricular systolic performance and attenuates left ventricular remodeling in rats with myocardial infarct-induced heart failure[J].J Cardiovasc Pharmacol,2010,56(5):506-512.doi:10.1097/FJC.0b013e3181f4f05a.
[6]Fisher SA,Doree C,Mathur A,et al.Meta-analysis of cell therapy trials for patients with heart failure[J].Circ Res,2015,116(8):1361-1377.doi:10.1161/CIRCRESAHA.116.304386.
[7]Vernooy K,van Deursen CJ,Strik M,et al.Strategies to improve cardiac resynchronization therapy[J].Nat Rev Cardiol,2014,11(8):481-493.doi:10.1038/nrcardio.2014.67.
[8]Dick SA,Epelman S.Chronic heart failure and inflammation:what do we really know?[J].Circ Res,2016,119(1):159-176.doi:10.1161/CIRCRESAHA.116.308030.
[9]Lu L,Wu W,Yan J,et al.Adriamycin-induced autophagic cardiomyocyte death plays a pathogenicrole in a rat model of heart failure[J].Int J Cardiol,2009,134(1):82-90.doi:10.1016/j.ijcard.2008.01.043.
[10]Kassiotis C,BallalK,Wellnitz K,et al.Markers of autophagy are downregulated in failing human heart[J].Circulation,2009,120(11):191-197.doi:10.1161/CIRCULATIONAHA.108.842252.