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(西南林業(yè)大學(xué)園林學(xué)院，園林植物與觀賞園藝省高校重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，　云南 昆明 650224)

總狀綠絨蒿(MeconopsisracemosaMaxim.Mel.Biol.)為罌粟科綠絨蒿屬(Meconopsis)一年生草本植物，為中國(guó)特有植物。生于海拔3 300～5 300 m的草坡或巖坡上。分布于西藏、云南、四川、青海和甘肅?；ㄋ{(lán)紫色或深藍(lán)色，為云南“八大名花”之一，頗具觀賞價(jià)值，是著名的高山野生花卉[1]?？偁罹G絨蒿是藏族、納西族民間常用的一種草藥，又稱“紅毛洋參”，其根具有補(bǔ)中益氣、止咳平喘之功效，全草有止痛作用。在《中國(guó)藏藥》、《云南省藥品標(biāo)準(zhǔn)》等本草書籍上均有記載[2-4]，具有很高的開發(fā)利用價(jià)值。然而由于較低的種子萌發(fā)率及幼苗補(bǔ)充，生境的破壞和過度采挖，導(dǎo)致總綠絨蒿屬植物以小種群分布于狹窄的范圍內(nèi)。有研究發(fā)現(xiàn)，將長(zhǎng)年生于高寒山區(qū), 生態(tài)幅度較小的綠絨蒿引種時(shí), 以種子進(jìn)行繁殖比移植效果更好[5]。因此研究總狀綠絨蒿種子的萌發(fā)特性將為這一珍貴園林與藥用資源的保護(hù)、栽培和引種馴化等提供重要依據(jù)。

總狀綠絨蒿常分布于高山流石灘，高山流石灘是高山特有的生態(tài)系統(tǒng)類型，是垂直分布的特殊地帶，植物形成了多種適應(yīng)策略[6]。高山植物種子具有休眠的特性，其萌發(fā)需要較低的溫度和赤霉素(GA3)的處理[7]。有學(xué)者研究了溫度、光照、土壤的凈提物、生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑以及貯存條件、種子的覆土情況等對(duì)錐花綠絨蒿和單葉綠絨蒿萌發(fā)率的影響，發(fā)現(xiàn)這2個(gè)種的種子在100 mg/L的GA3，10 h/d的光照以及(20±2)℃的條件下萌發(fā)最好。同時(shí)還發(fā)現(xiàn)，所觀察的種子不管它們對(duì)生境的選擇如何，都有相似的休眠方式；溫度、光照、黑暗條件或者這三者的結(jié)合都不能打破種子的休眠[8]。石慧珍等研究發(fā)現(xiàn)，采自高海拔的紅花綠絨蒿和五脈綠絨蒿只有通過5 ℃冷處理后才能萌發(fā)，表明種子的最佳萌發(fā)溫度與采集地海拔相關(guān)[9]。

對(duì)總狀綠絨蒿種子萌發(fā)的研究主要有最適溫度的選擇、不同濃度的GA3處理以及不同實(shí)驗(yàn)條件的影響。王朝文等對(duì)5～30 ℃溫度條件下總狀綠絨蒿種子的萌發(fā)特性進(jìn)行了研究，結(jié)果表明，20 ℃最有利于總狀綠絨蒿的萌發(fā)[10]。對(duì)采集于滇西北不同海拔梯度的3個(gè)總狀綠絨蒿居群種子，分別采用不同濃度的赤霉素(GA3)處理后，發(fā)現(xiàn)100～250 mg/L的GA3處理可提高種子的發(fā)芽率和發(fā)芽勢(shì)，且差異極顯著[11]。另外，通過溫度、濕度和光照設(shè)定條件和模擬自然條件對(duì)各居群種子進(jìn)行萌發(fā)實(shí)驗(yàn)，結(jié)果表明，除發(fā)芽啟動(dòng)時(shí)間的變化趨勢(shì)出現(xiàn)居群差異外，其它萌發(fā)指標(biāo)均表現(xiàn)為恒定條件更有利于種子萌發(fā)[12]。

雖然不同前處理對(duì)種子萌發(fā)的影響研究較多[13-15](如采用外源激素，如GA3、細(xì)胞分裂素6-芐氨基腺嘌呤(6-BA)、生長(zhǎng)素萘乙酸(NAA)等[15-16]，或采用物理方法，如清水浸泡、熱水浸泡、低溫處理等方法[17])，但除了用GA3對(duì)總狀綠絨蒿進(jìn)行前處理外，其它前處理方法均未見報(bào)道。因此，本研究擬對(duì)不同外源激素、熱水浸泡及不同時(shí)間的清水浸種及低溫處理等前處理方法進(jìn)行比較分析，以期篩選出打破總狀綠絨蒿種子休眠的最佳前處理方法，提高其種子的萌發(fā)率，為其引種栽培提供參考。

1　材料與方法

1.1　實(shí)驗(yàn)材料

本實(shí)驗(yàn)所采用的總狀綠絨蒿(MeconopsisracemosaMaxim.Mel.Biol.)種子，為2015年10月采自麗江玉龍雪山海拔4 200 m高山流石灘的野生群體。種子自然干燥后保存?zhèn)溆?。種子千粒重為(0.241 7±0.010 5)g。

1.2　研究方法

1.2.1種子吸水率的測(cè)定

分別稱取9組0.1 g總狀綠絨蒿的種子，置于加有蒸餾水的小燒杯中25 ℃進(jìn)行吸脹，分別于2，4，8，12，24，36，48，60，72 h后取出種子，用濾紙吸干種子表面的水分，進(jìn)行稱量，重復(fù)3次，計(jì)算吸水率。

吸水率(%)=(浸種后質(zhì)量-浸種前質(zhì)量)/浸種前質(zhì)量×100%。

1.2.2種子前處理方法

種子用2%的雙氧水消毒，再用蒸餾水清洗待用。設(shè)置3種不同質(zhì)量濃度外源激素，分別為赤霉素(GA3)(50，100，150，200，250，300 mg/L)、細(xì)胞分裂素6-芐氨基腺嘌呤(6-BA)(0.5，1，5，10，15 mg/L)、生長(zhǎng)素萘乙酸( NAA )(10，25，50，100 mg/L)浸種12 h、不同時(shí)間清水浸種(12，24，36 h)，不同溫度(40，60，80 ℃)熱水浸種30 min、不同時(shí)間(40，80，160 d)低溫貯藏等4種種子前處理方法。每處理設(shè)3次重復(fù)，每重復(fù)100粒種子，對(duì)照分別為未經(jīng)任何前處理的種子。

1.2.3種子萌發(fā)實(shí)驗(yàn)

將已進(jìn)行前處理的種子置于已高溫滅菌的培養(yǎng)皿中，放入恒溫培養(yǎng)箱進(jìn)行萌發(fā)實(shí)驗(yàn)，培養(yǎng)條件：溫度20 ℃，光照2 000 lx，濕度75%。

以芽長(zhǎng)與種子等長(zhǎng)作為發(fā)芽標(biāo)準(zhǔn)，每隔24 h記錄種子的發(fā)芽情況并及時(shí)移出。分別計(jì)算種子的發(fā)芽勢(shì)、發(fā)芽率、平均發(fā)芽時(shí)間和發(fā)芽啟動(dòng)時(shí)間。

發(fā)芽率為種子萌發(fā)結(jié)束時(shí)所有發(fā)芽種子數(shù)占供試種子總數(shù)的百分率。

發(fā)芽率(%)=(已發(fā)芽種子數(shù)/供試種子總數(shù))×100%。

發(fā)芽勢(shì)為種子發(fā)芽達(dá)到高峰時(shí)正常發(fā)芽種子數(shù)與供試種子總數(shù)的百分比。

平均發(fā)芽時(shí)間=∑(D×n)/∑n，式中，D為從種子置床起算的天數(shù)；n為相應(yīng)各天的發(fā)芽粒數(shù)。平均發(fā)芽時(shí)間是指供試種子發(fā)芽所需的平均時(shí)間。平均發(fā)芽速度是衡量種子發(fā)芽快慢的一個(gè)指標(biāo)，其值越小，表示種子發(fā)芽越迅速，發(fā)芽能力越強(qiáng)。

發(fā)芽啟動(dòng)時(shí)間為第1粒種子發(fā)芽所需天數(shù)。

1.3　數(shù)據(jù)分析

不同處理種子的各萌發(fā)指標(biāo)進(jìn)行單因素方差(One-way ANOVA)分析。文中所有數(shù)據(jù)處理均在SPSS 21.0中完成，p<0.05為顯著，p<0.01為極顯著。

2　結(jié)果與分析

2.1　種子吸水率測(cè)定

如表1所示，清水浸泡時(shí)間24 h,總狀綠絨蒿種子的吸水率達(dá)到峰值，為61.20%。在24 h內(nèi)，種子的吸水率隨著浸泡時(shí)間的增加而升高；24 h后呈現(xiàn)較為穩(wěn)定的狀態(tài)。

表1總狀綠絨蒿種子吸水率測(cè)定結(jié)果

時(shí)間(h)吸水率(%)時(shí)間(h)吸水率(%)223．40±3．363654．27±3．95426．13±3．334854．97±4．77838．63±2．356058．80±2．361244．00±3．867256．27±3．252461．20±3．58

2.2　不同濃度GA3處理對(duì)總狀綠絨蒿種子萌發(fā)的影響

從圖1和表2可看出，GA3100～300 mg/L處理的種子均高于對(duì)照組發(fā)芽率和發(fā)芽勢(shì)，其中100 mg/L處理后的種子發(fā)芽率最高，達(dá)97%；250 mg/L 處理后的種子發(fā)芽勢(shì)最高，達(dá)98.38%；而且GA3對(duì)總狀綠絨蒿種子的發(fā)芽率和發(fā)芽勢(shì)影響均為極顯著(p<0.01)。另外，GA3也可顯著縮短平均發(fā)芽時(shí)間(p<0.05)，其中50 mg/L GA3濃度處理后，可比對(duì)照組縮短21 d左右；但GA3對(duì)發(fā)芽啟動(dòng)時(shí)間影響不顯著(p>0.05)。

注：各萌發(fā)指標(biāo)單位，發(fā)芽率(%)；發(fā)芽率(%)；發(fā)芽啟動(dòng)時(shí)間(d)；平均發(fā)芽時(shí)間(d)。圖1　赤霉素濃度對(duì)總狀綠絨蒿種子萌發(fā)特性的影響

2.3　不同6-BA濃度處理對(duì)總狀綠絨蒿種子萌發(fā)的影響

如圖2和表2所示，雖然6-BA處理相對(duì)于對(duì)照組均能使發(fā)芽率提高，發(fā)芽平均時(shí)間均縮短，且1 mg/L 6-BA處理時(shí)發(fā)芽率可達(dá)90.95%；0.5 mg/L 6-BA處理時(shí)平均發(fā)芽時(shí)間最短，約為21 d，但影響均不顯著(p>0.05)。同時(shí)，6-BA處理降低了發(fā)芽勢(shì)，且影響極顯著(p<0.01)。6-BA使發(fā)芽啟動(dòng)時(shí)間提前或延后1～2 d，且6-BA處理對(duì)發(fā)芽啟動(dòng)時(shí)間影響顯著(p<0.05)。

表2不同前處理對(duì)總狀綠絨蒿種子萌發(fā)指標(biāo)影響的單因素方差分析(ANOVA)

萌發(fā)特性前處理方法GA36?BANAA清水低溫發(fā)芽率7．262??2．0054．667?1．56512．797??發(fā)芽勢(shì)4．634??10．815??8．466??2．7874．773?發(fā)芽啟動(dòng)時(shí)間2．4183．237?1．0634．863?8．833??平均發(fā)芽時(shí)間3．192?1．68610．755??3．8086．565?

注：表中為F值；“**”為p<0.01 差異極顯著；“*”為p<0.05差異顯著。

圖2　6-BA濃度對(duì)總狀綠絨蒿種子萌發(fā)特性的影響

2.4　不同NAA濃度處理對(duì)總狀綠絨蒿種子萌發(fā)的影響

如圖3和表2所示，與對(duì)照組種子相比，10～25 mg/L NAA能顯著提高發(fā)芽率。NAA 25 mg/L為最佳，達(dá)到84.43%。而10 mg/L NAA能顯著提高種子的發(fā)芽勢(shì)，達(dá)到74.34%，同時(shí)能縮短平均發(fā)芽時(shí)間(17 d左右。)而且，NAA處理對(duì)發(fā)芽率、發(fā)芽勢(shì)和平均發(fā)芽時(shí)間影響均為顯著(p<0.05)，但對(duì)發(fā)芽啟動(dòng)時(shí)間影響不顯著(p>0.05)。

圖3　NAA濃度對(duì)總狀綠絨蒿種子萌發(fā)特性的影響

2.5　不同時(shí)間清水浸泡對(duì)總狀綠絨蒿種子萌發(fā)的影響

如圖4和表2所示，與對(duì)照組種子相比，清水浸種雖能增加發(fā)芽率，浸種24 h，發(fā)芽率增至86.11%，但影響不顯著(p>0.05)。另外，清水浸種36 h，發(fā)芽勢(shì)可達(dá)77.51%。其它時(shí)間浸泡則小于對(duì)照組種子發(fā)芽勢(shì)，但影響仍不顯著(p>0.05)。從發(fā)芽啟動(dòng)時(shí)間和平均發(fā)芽時(shí)間兩方面來看，清水浸泡后均較對(duì)照組縮短。其中12 h浸種后可達(dá)最短，發(fā)芽啟動(dòng)時(shí)間和平均發(fā)芽時(shí)間分別為9.33 d和17.21 d。但清水浸種僅對(duì)發(fā)芽啟動(dòng)時(shí)間影響顯著(p<0.05)。

2.6　不同溫度熱水浸泡對(duì)總狀綠絨蒿種子萌發(fā)的影響

熱水浸種30 min處理后1周，60 ℃與80 ℃處理的總狀綠絨蒿種子在并未受到霉菌侵襲的情況下紛紛出現(xiàn)熟爛現(xiàn)象，無一萌發(fā)，只有40 ℃熱水處理的種子有少量萌發(fā)現(xiàn)象，因此該組未作統(tǒng)計(jì)。

2.7　低溫處理對(duì)總狀綠絨蒿種子萌發(fā)的影響

如圖5和表2所示，與對(duì)照組種子相比，低溫貯藏能增加種子發(fā)芽率、發(fā)芽勢(shì)，縮短發(fā)芽啟動(dòng)時(shí)間和平均發(fā)芽時(shí)間，且對(duì)發(fā)芽率和發(fā)芽啟動(dòng)時(shí)間影響極顯著(p<0.01)，對(duì)發(fā)芽勢(shì)和平均發(fā)芽時(shí)間影響顯著(p<0.05)。同時(shí)，隨貯藏時(shí)間增加，發(fā)芽率和發(fā)芽勢(shì)增加，發(fā)芽啟動(dòng)時(shí)間和平均發(fā)芽時(shí)間縮短。低溫貯藏160 d的種子發(fā)芽率和發(fā)芽勢(shì)最大，分別可達(dá)96.67%和85.33%。平均發(fā)芽時(shí)間比對(duì)照組可縮短25 d左右，發(fā)芽啟動(dòng)時(shí)間可提前4～5 d。

圖4　清水浸種對(duì)總狀綠絨蒿種子萌發(fā)特性的影響

圖5　低溫貯藏期對(duì)總狀綠絨蒿種子萌發(fā)特性的影響

2.8　各前處理結(jié)果綜合比較

選取前處理后，各萌發(fā)指標(biāo)綜合效果最佳的組進(jìn)行比較(圖6)。單因素方差分析表明，各處理使發(fā)芽率差異顯著(F=3.953,p<0.05);使發(fā)芽勢(shì)差異極顯著(F=15.888,p<0.01)；使發(fā)芽啟動(dòng)時(shí)間差異極顯著(F=10.722,p<0.01)；使平均發(fā)芽時(shí)間差異顯著(F=4.238,p<0.05)。

圖6　不同前處理下總狀綠絨蒿萌發(fā)特性

如圖6所示，發(fā)芽率和發(fā)芽勢(shì)均較對(duì)照組有所增加。其中GA3250 mg/L和低溫貯藏160 d效果最佳。發(fā)芽啟動(dòng)時(shí)間除GA3250 mg/L處理有所延遲外，其余處理均比對(duì)照組提前。其中，低溫處理160 d 可提前4～5 d。另外，平均發(fā)芽時(shí)間均較對(duì)照組縮短，低溫處理160 d 效果最為明顯。

3　結(jié)論與討論

使用外源植物激素提高種子發(fā)芽率，已在很多不同物種上得到了廣泛應(yīng)用。張瑞博等用GA3(100，400，800，1 200，1 600，2 000 mg/L)浸泡桔梗種子，結(jié)果顯示，6個(gè)濃度GA3處理均可促進(jìn)桔梗種子的萌發(fā)[18]。100～1 000 mg/L GA3處理可明顯縮短滇龍膽種子萌發(fā)時(shí)間，其中500 mg/L GA3處理可使種子發(fā)芽率提高至95%[19]；另外，劉建成等采用6-BA處理黑麥種子，結(jié)果表明，6-BA在一定程度上阻礙種子打破休眠的速度，但能提高黑麥種子的發(fā)芽率和發(fā)芽勢(shì)[15]。李旭等利用不同濃度NAA溶液浸泡苦瓜種子，結(jié)果表明，NAA 2 mg/L時(shí)苦瓜種子的發(fā)芽勢(shì)、發(fā)芽率、活力指數(shù)均最佳，而高濃度(>10 mg/L)處理會(huì)抑制苦瓜種子萌發(fā)[20]。本研究結(jié)果表明，3種外源激素能在一定程度上促進(jìn)種子萌發(fā)。其中GA3和NAA處理均能顯著提高總狀綠絨蒿種子的發(fā)芽率、發(fā)芽勢(shì)，同時(shí)縮短平均發(fā)芽時(shí)間(p<0.05)，但兩者均對(duì)發(fā)芽啟動(dòng)時(shí)間影響不顯著(p>0.05)。而6-BA處理雖能提高總狀綠絨蒿種子發(fā)芽率，但影響不顯著(p>0.05)。而且6-BA顯著降低了其發(fā)芽勢(shì)(p<0.05)，說明6-BA可能抑制種子的萌發(fā)。這與之前研究發(fā)現(xiàn)，6-BA在一定程度上阻礙黑麥種子打破休眠速度的研究結(jié)果相一致。

清水浸泡，熱水浸泡和低溫處理是比較常用的破除休眠的物理方法。房海靈等研究了清水浸種不同時(shí)間對(duì)薄荷種子萌發(fā)的影響，結(jié)果顯示，其中用清水浸種12～24 h可使薄荷種子提前1～3 d萌發(fā), 浸種時(shí)間過長(zhǎng)或過短均會(huì)延長(zhǎng)種子的發(fā)芽啟動(dòng)時(shí)間，浸種時(shí)間在24 h內(nèi), 薄荷種子的發(fā)芽率和發(fā)芽勢(shì)基本高于對(duì)照[21]。胡小文等研究表明，80 ℃熱水處理豆科種子，破除休眠的效果最好，60 ℃ 僅破除少部分種子休眠，而95 ℃則導(dǎo)致大部分種子死亡[22]。同時(shí)成仿云等研究表明，低溫處理對(duì)解除“鳳丹”種子上胚軸休眠有效；低溫天數(shù)增加，初萌期縮短，發(fā)芽指數(shù)和發(fā)芽率提高[23]。因此，不同物種要求的浸泡時(shí)間和溫度各不相同。本研究中，總狀綠絨蒿種子24 h吸脹后，最高吸水率達(dá)到61.20 %，吸水率較低，吸水時(shí)間較長(zhǎng)。吸水速率的大小與種子萌發(fā)有密切關(guān)系，吸水率低可能導(dǎo)致種子萌發(fā)速度較慢。因此，適當(dāng)?shù)那逅驕厮萦兄谲浕N皮，使得種子表面的蠟質(zhì)層變薄或者有部分蠟質(zhì)與種皮分離，提高透性和浸出種子內(nèi)的發(fā)芽抑制物，從而促進(jìn)種子的萌發(fā)[11]。清水浸種雖對(duì)發(fā)芽率、發(fā)芽勢(shì)和平均發(fā)芽時(shí)間影響不顯著(p>0.05)。但清水浸種24～36 h，均可增加種子發(fā)芽率和發(fā)芽勢(shì), 縮短發(fā)芽時(shí)間。且清水浸種后均對(duì)發(fā)芽啟動(dòng)時(shí)間影響顯著(p<0.05)。可比對(duì)照種子提前3～4 d萌發(fā)。而熱水處理導(dǎo)致了大部分種子的死亡。這可能與總狀綠絨蒿種皮較薄，40 ℃以上熱水浸泡，導(dǎo)致大部分種子失活所致。

值得注意的是，從各項(xiàng)指標(biāo)綜合來看，總體效果最好的是低溫貯藏。且隨低溫貯藏時(shí)間的增加，種子萌發(fā)的各項(xiàng)指標(biāo)達(dá)到最佳效果。寒冷是溫帶地區(qū)春季萌發(fā)的物種打破休眠的自然機(jī)制，對(duì)于寒冷有響應(yīng)的種子來說，寒冷長(zhǎng)度是一種重要的萌發(fā)暗示。有學(xué)者對(duì)一些薔薇科種子萌發(fā)特性研究發(fā)現(xiàn)，來自高海拔生境的種子萌發(fā)有較長(zhǎng)時(shí)期的寒冷需求[24]。同時(shí)，研究發(fā)現(xiàn)，來自各海拔生境的糙皮樺和紫果云杉種群種子萌發(fā)率和萌發(fā)速率隨低溫貯藏時(shí)間的延長(zhǎng)而增大[25]。本研究中，總狀綠絨蒿種子采的生境為海拔4 300 m左右的麗江玉龍雪山高山流石灘，種子成熟后較長(zhǎng)時(shí)間暴露在冬季低溫條件和積雪覆蓋下，因此，種子低溫貯藏滿足了其較長(zhǎng)時(shí)間的寒冷需求。這也是植物在長(zhǎng)期環(huán)境壓力下對(duì)環(huán)境的生態(tài)適應(yīng)，是高山地區(qū)特殊環(huán)境條件下的種子萌發(fā)對(duì)策[26]。

綜上，低溫貯藏是打破總狀綠絨蒿種子休眠的最有效方法，而外源激素GA3250 mg/L和NAA 10 mg/L處理后的種子也能達(dá)到較好的萌發(fā)效果。

參考文獻(xiàn):

[1]吳征縊主編.云南植物志(第二卷)[M].北京：科學(xué)出版社,1979.

[2]青海省藏醫(yī)藥研究所,青海省藥品檢驗(yàn)所主編.中國(guó)藏藥[M].上海：上?？萍汲霭嫔?1996.

[3]云南省衛(wèi)生廳主編.云南省藥品標(biāo)準(zhǔn)[M].昆明:云南大學(xué)出版社,1996.

[4]郭世民,趙遠(yuǎn),王曙光.總狀綠絨蒿藥效的初步研究[J].云南中醫(yī)中藥雜志,2003,24(1):25-27.

[5]董曉東.云南綠絨蒿植物種質(zhì)資源及評(píng)價(jià)[J].大理師專學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),1995,28(2):42-46.

[6]鄧敏,周浙昆.滇西北高山流石灘植物多樣性[J].云南植物研究,2004,26(1)：23-34.

[7]Vinay P,Hemlata B,Nautiyal MC.Seed germination Enhancement in high altitude medicinal plants of Garhwal himalaya by some pre-sowing treatments[J].Res J of Seed Sci,2011,4(4):199-205.

[8]Sulaiman IM.Seed germination studies in three species of threatened,ornamenta,Himalaya poppy,Meconopsis Vig.(Papaveraceae).Seed Sci Technol,1993,21 (3):593-603.

[9]石慧珍,劉明霞,許靜,等.青藏高原高寒草甸罌粟科植物種子萌發(fā)特性研究[J].西北植物學(xué)報(bào),2008,28(9):1 880-1 884.

[10]王朝文,李兆光,和壽星,等.不同溫度對(duì)總狀綠絨蒿種子萌發(fā)的影響[J].種子,2009,28(2):25-27.

[11]屈燕,區(qū)智,尤小婷,等.赤霉素對(duì)總狀綠絨蒿三個(gè)居群種子萌發(fā)特性的影響[J].植物生理學(xué)報(bào),2014,50(9):13 74-1 378.

[12]屈燕,區(qū)智,尤小婷,等.不同實(shí)驗(yàn)條件總狀綠絨蒿種子萌發(fā)特性的影響[J].種子,2015,34(2):90-93.

[13]張春平,何平,何俊星,等.不同處理對(duì)藥用紫蘇種子萌發(fā)特性的影響[J].中草藥,2010,41(8):1 361-1 365.

[14]葛淑俊,孟義江,甄瑞,等.不同處理方法對(duì)柴胡種子萌發(fā)的影響[J].中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào),2006,22(4):178-180.

[15]劉建成,龔衛(wèi)化,向芬,等.不同處理對(duì)魚香草種子萌發(fā)的影響[J].中草藥,2012,43(5):1 000-1 002.

[16]陳玉燕,李立芹.3種植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑對(duì)黑麥種子萌發(fā)的影響[J].種子,2011,30(7):91-94.

[17]單宇,趙海光,鄭玉紅,等.繁縷(Stellariamedia(L.)Vill.)種子萌發(fā)特性的研究[J].種子,2011,30(1):42-45.

[18]張瑞博,李思峰,黎斌,等.不同處理方法對(duì)桔梗種子萌發(fā)的影響[J].種子,2010,29(5):84-85.

[19]楊美權(quán),楊維澤,趙振玲,等.滇龍膽種子萌發(fā)特性研究[J].中國(guó)中藥雜志,2011,36(5):556-558.

[20]李旭,王垠敦,張衛(wèi)君,等.不同NAA,IAA,IBA處理對(duì)苦瓜種子萌發(fā)的影響[J].廣東農(nóng)業(yè)科學(xué),2008(12):47-48.

[21]房海靈,李維林,梁呈元,等.不同前處理?xiàng)l件對(duì)薄荷種子萌發(fā)的影響[J].植物資源與環(huán)境學(xué)報(bào),2009,18(4):53-57.

[22]胡小文,武艷培,王彥榮,等.豆科種子休眠破除方法初探[J].西北植物學(xué)報(bào),2009,29(3):568-573.

[23]成仿云,杜秀娟.低溫與赤霉素處理對(duì)‘鳳丹’牡丹種子萌發(fā)和幼苗生長(zhǎng)的影響[J].園藝學(xué)報(bào),2008,35(4):553-558.

[24]Pendleton BK,Meyer SE.Habitat-correlated variation in blackbrush (Coleogyneramosissima:Rosaceae) seed germination response[J].J of Arid Environment,2004,59:229-243.

[25]王桔紅,張勇,崔現(xiàn)亮,等.不同海拔梯度糙皮樺和紫果云杉種子的萌發(fā)變異[J].生態(tài)學(xué)雜志,2009,28(4):589-594.

[26]Cavieres LA,Arroyo MTK.Seed germination response to cold stratification period and thermal regime in Phacelia secunda (Hydrophyllaceae)-Altitudinal variation in the Mediterranean Andes of central Chilie[J].Plant Ecol,2000,149:1-8.