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宿主細(xì)胞感染支原體后的“宿命”

2018-04-04 01:03吳習(xí)習(xí)羅海霞郝秀靜馬春驥
畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào) 2018年3期
關(guān)鍵詞:宿命宿主支原體

吳習(xí)習(xí),羅海霞,郝秀靜,馬春驥,3,李 敏*

(1.西部特色生物資源保護(hù)與利用教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室(寧夏大學(xué)),銀川 750021;2.寧夏大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,銀川 750021;3.寧夏職業(yè)技術(shù)學(xué)院生物與制藥技術(shù)系,銀川 750021)

支原體(Mycoplasma)是介于細(xì)菌與病毒之間、無(wú)細(xì)胞壁的一類(lèi)原核微生物。這類(lèi)微生物最早是1898年由法國(guó)E. Nocard及E. R. Roux從患肺疫的牛中分離出來(lái),當(dāng)時(shí)命名為類(lèi)胸膜肺炎微生物(pleuropneumonia like organism,PPLO),1956年正式命名為支原體[1]。支原體種類(lèi)眾多,可引起動(dòng)物和人類(lèi)多種疾病,嚴(yán)重影響畜牧業(yè)的發(fā)展,威脅人類(lèi)健康?,F(xiàn)有研究發(fā)現(xiàn),支原體作為一種病原菌,感染宿主細(xì)胞后通過(guò)黏附于宿主細(xì)胞表面,干擾宿主細(xì)胞膜功能導(dǎo)致細(xì)胞損傷。細(xì)胞凋亡、自噬能抵抗病原微生物入侵,是維持細(xì)胞內(nèi)環(huán)境穩(wěn)態(tài)的基本生理過(guò)程,可以緩解病原菌感染早期對(duì)宿主細(xì)胞的損傷。隨著病原菌與細(xì)胞互作研究的深入,發(fā)現(xiàn)支原體感染宿主細(xì)胞后對(duì)細(xì)胞的損傷影響不容忽視。因此,本文從支原體感染宿主細(xì)胞引發(fā)的細(xì)胞凋亡、自噬、癌變方面進(jìn)行概述。

1 支原體感染與細(xì)胞凋亡

支原體通過(guò)黏附宿主細(xì)胞表面侵染細(xì)胞[2],引起細(xì)胞凋亡,有利于菌體的入侵和毒素的釋放,為支原體的定植和致病提供有利條件。支原體的莢膜、脂質(zhì)相關(guān)膜蛋白(lipid-associated membrane proteins,LAMPs)等表面結(jié)構(gòu)和支原體感染宿主細(xì)胞后產(chǎn)生的代謝物在誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡過(guò)程中發(fā)揮重要作用。

1.1 支原體莢膜介導(dǎo)的細(xì)胞凋亡

莢膜是多種支原體細(xì)胞膜外的一層黏性結(jié)構(gòu),其化學(xué)成分主要是多糖。支原體的莢膜結(jié)構(gòu)與其致病性密切相關(guān),是致病支原體重要的毒力因子[3]。

劉紫玲等[4]在研究人肺炎支原體(Mycoplasmapenumoniae,MP)的過(guò)程中發(fā)現(xiàn)莢膜多糖可以通過(guò)與樹(shù)突細(xì)胞(dendritic cell,DC)表面的樹(shù)突細(xì)胞特異性細(xì)胞間黏附分子-3-結(jié)合非整合素分子(dendritic cell-specific intercellular adhesion molecule-3-grabbing nonintegrin,DC-SIGN)結(jié)合促進(jìn)抑制性細(xì)胞因子IL-10的分泌,進(jìn)而啟動(dòng)相應(yīng)的凋亡信號(hào)。M. Niang等[5]利用釕紅染色技術(shù),在綿羊肺炎支原體(Mycoplasmaovipneumoniae,MO)菌株中首先觀察到莢膜的存在,并證實(shí)了莢膜在介導(dǎo)菌體與宿主黏附過(guò)程中發(fā)揮重要作用。Z. J. Jiang等[6]在研究MO與綿羊氣管上皮細(xì)胞間的互作時(shí)首次分離和純化了MO莢膜多糖,深入研究發(fā)現(xiàn)莢膜多糖感染宿主細(xì)胞可以破壞線粒體膜的完整性,引起細(xì)胞線粒體膜電位的降低。同時(shí)莢膜通過(guò)上調(diào)FAS/FASL信號(hào)蛋白和半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶-8(caspase-8)誘導(dǎo)外源性細(xì)胞凋亡,并通過(guò)激活絲裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinases,MAPKs)JNK和p38信號(hào)促進(jìn)活性氧(reactive oxygen species,ROS)依賴(lài)的內(nèi)源性細(xì)胞凋亡(圖1)。莢膜作為支原體重要的毒力因子,還可以通過(guò)誘導(dǎo)宿主細(xì)胞免疫損傷,對(duì)宿主細(xì)胞造成一定的毒害作用。Z. J. Jiang等[7]研究還發(fā)現(xiàn),MO莢膜感染綿羊氣管上皮細(xì)胞后激活TLRs/MYD88信號(hào)介導(dǎo)的炎癥反應(yīng),誘導(dǎo)宿主細(xì)胞的免疫損傷。

圖1 CPS誘導(dǎo)綿羊支氣管上皮細(xì)胞凋亡的caspase-3依賴(lài)性途徑示意[6]Fig.1 Scheme showed a possible mechanism of CPS-induced caspase-dependent apoptosis in ALI cultures of sheep bronchial epithelial[6]

1.2 支原體LAMPs介導(dǎo)的細(xì)胞凋亡

LAMPs是支原體細(xì)胞膜內(nèi)在蛋白和外周膜蛋白的統(tǒng)稱(chēng)[8]。LAMPs是支原體的一種重要的毒力蛋白,具有很強(qiáng)的抗原性,在很大程度上決定著支原體對(duì)細(xì)胞的毒害作用[9]。

研究發(fā)現(xiàn)豬肺炎支原體(Mycoplasmahyopneumoniae,Mhp)LAMPs可誘導(dǎo)豬外周血單個(gè)核細(xì)胞(PBMC)外源性途徑和半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶-3(caspase-3)途徑的細(xì)胞凋亡,LAMPs通過(guò)促炎細(xì)胞因子NO和ROS的釋放,激活p38 MAPK信號(hào)通路,經(jīng)過(guò)Bax/Bcl-2信號(hào)進(jìn)而激活caspase-3;同時(shí)LAMPs介導(dǎo)外源性途徑通過(guò)caspase-8激活caspase-3,隨后激活的caspase-3將PARP切割成兩個(gè)片段以招募ATP,進(jìn)而與相應(yīng)底物作用執(zhí)行凋亡活動(dòng)[10]。汪洋[11]在建立的雞毒支原體(MycoplasmaGalliscepticum,MG)LAMPs與雞胚成纖維細(xì)胞(DF1)相互作用的模型中,確定了LAMPs具有誘導(dǎo)DF1細(xì)胞凋亡的作用,進(jìn)一步研究證實(shí)LAMPs可以激活DF1細(xì)胞中caspase-3的活性,裂解PARP,啟動(dòng)凋亡信號(hào)。此外,LAMPs作為T(mén)LR2的主要識(shí)別受體,可以直接與宿主細(xì)胞膜上的TLR2相互作用,通過(guò)分泌TNFα、IL-1β等凋亡啟動(dòng)因子參與細(xì)胞凋亡[12],例如在MP感染過(guò)程中[13],LAMPs可通過(guò)作用于單核細(xì)胞TLR2、TLR6激活NF-κB通路,誘導(dǎo)促炎因子TNFα、IL-1β、IL-6的表達(dá),進(jìn)而啟動(dòng)細(xì)胞凋亡活動(dòng);在牛肺炎支原體(Mycoplasmabovis,Mb)[14]中同樣發(fā)現(xiàn)LAMPs通過(guò)TLR2、MYD88途徑激活NF-κB通路過(guò)表達(dá)IL-1β,調(diào)控細(xì)胞凋亡;絲狀支原體(Mycoplasmamycoidessubsp.mycoides,Mmm)的LAMPs[15]亦可通過(guò)TLR2、MyD88、IRAK4途徑激活NF-κB介導(dǎo)IL-1β的高表達(dá),即通過(guò)誘發(fā)宿主系列炎癥反應(yīng),進(jìn)而啟動(dòng)相應(yīng)的凋亡信號(hào)傳導(dǎo)。

1.3 支原體代謝產(chǎn)物介導(dǎo)的細(xì)胞凋亡

支原體感染宿主后的代謝產(chǎn)物也是導(dǎo)致宿主細(xì)胞損傷的重要誘因。當(dāng)支原體突破宿主屏障在呼吸道富集時(shí),可以產(chǎn)生大量的H2O2和ROS,同時(shí)H2O2的沉積也會(huì)造成紅細(xì)胞裂解、支氣管纖毛運(yùn)動(dòng)被抑制,同時(shí)誘導(dǎo)細(xì)胞產(chǎn)生ROS,進(jìn)而抑制抗氧化物酶的產(chǎn)生,造成細(xì)胞損傷[16]。

在MP引發(fā)的特發(fā)性間質(zhì)性肺炎(idiopathic interstitial pneumonias,IIP)中發(fā)現(xiàn),MP可以導(dǎo)致肺部上皮細(xì)胞的細(xì)胞色素C(cytochrome C,Cyc-C)從線粒體釋放,從線粒體釋放到細(xì)胞質(zhì)的Cyc-C易與凋亡蛋白激活因子1(apoptotic protease activating facter-1,Apaf-1)形成凋亡小體,并在ATP作用下激活caspase-3和caspase-9,通過(guò)線粒體途徑導(dǎo)致肺部上皮細(xì)胞凋亡[17]。在MO感染氣管上皮細(xì)胞后發(fā)現(xiàn),其可產(chǎn)生大量的ROS并激發(fā)宿主氧化應(yīng)激,從而造成線粒體損傷進(jìn)而釋放Cyc-C[18],ROS作為MAPK通路重要的激活因子[19],可通過(guò)氧化磷酸化激活MEK1/2/ERK1/2信號(hào)通路,進(jìn)而導(dǎo)致細(xì)胞抗凋亡能力下降,同時(shí)線粒體釋放Cyc-C活化caspase的級(jí)聯(lián)反應(yīng),最終導(dǎo)致宿主細(xì)胞發(fā)生凋亡(圖2)。此外,MO感染產(chǎn)生的ROS還可以激活氣管上皮細(xì)胞的p38-MAPK和caspase-3信號(hào)傳導(dǎo),通過(guò)caspase-3/PRAP信號(hào)通路誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡[20],即MO可以通過(guò)激活MAPK信號(hào)通路,同時(shí)伴隨著caspase級(jí)聯(lián)反應(yīng)的活化誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡[21-22]。此外,ROS還可以直接激活NF-κB或通過(guò)氧化還原因子(Ref-1)間接激活NF-κB,激活的NF-κB進(jìn)入細(xì)胞核與c-myc等凋亡相關(guān)因子結(jié)合,誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡[23-24]。

圖2 MO感染誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡的線粒體途徑示意[18]Fig.2 Schematic diagram of an apoptotic cell death induced by M. ovipneumoniae infection via signalling pathways converging at mitochondria[18]

2 支原體感染與細(xì)胞自噬

細(xì)胞自噬是一種溶酶體依賴(lài)性降解途徑,通過(guò)降解胞內(nèi)衰老損傷的細(xì)胞器維持細(xì)胞內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定,是細(xì)胞應(yīng)對(duì)惡劣環(huán)境的一種主動(dòng)反應(yīng)[25],同時(shí)細(xì)胞自噬在抵抗病原菌感染過(guò)程中也起到一定作用[26]。

2.1 支原體誘導(dǎo)細(xì)胞自噬

在MG感染小鼠巨噬細(xì)胞細(xì)胞系RAW264.7中,可以通過(guò)TLR2調(diào)控細(xì)胞自噬,此過(guò)程同時(shí)有多個(gè)信號(hào)通路(包括ERK1/2、JNK和p38)被激活,然而干擾TLR2后只有ERK1/2磷酸化的表達(dá)水平顯著降低,當(dāng)ERK1/2信號(hào)通路被抑制劑PD98059抑制時(shí),自噬相關(guān)蛋白質(zhì)表達(dá)顯著下調(diào),細(xì)胞內(nèi)LC3斑點(diǎn)的數(shù)量顯著減少,即MG通過(guò)TLR2激活ERK信號(hào)通路觸發(fā)巨噬細(xì)胞自噬[27]。T. Shimizu等[28]研究發(fā)現(xiàn)MP感染巨噬細(xì)胞后,可被吞噬進(jìn)入胞內(nèi),誘導(dǎo)自噬發(fā)生,與此同時(shí)MP也通過(guò)TLR4途徑誘導(dǎo)強(qiáng)烈的炎癥反應(yīng),然而自噬抑制劑能下調(diào)該過(guò)程促炎因子的釋放,表明自噬的發(fā)生同時(shí)介導(dǎo)炎癥反應(yīng),此外,MP的ABC-轉(zhuǎn)運(yùn)體(MPN333)和ATP合成酶F0F1亞基(MPN597)對(duì)于自噬/TLR4介導(dǎo)通路的活化是必不可少的[29]。本課題組成員孫遠(yuǎn)航[30]研究發(fā)現(xiàn)MO感染小鼠肺上皮細(xì)胞(TC-1)可以誘導(dǎo)細(xì)胞發(fā)生自噬,進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),MO也可誘導(dǎo)RAW264.7發(fā)生自噬,在MO感染前期,TC-1、RAW264.7細(xì)胞通過(guò)自噬水平的增強(qiáng)對(duì)MO有一定的清除作用,隨著支原體感染時(shí)間的延長(zhǎng),細(xì)胞自噬對(duì)其的清除有所限制,沉默自噬關(guān)鍵基因P62和Atg7后,MO的存活率升高,即自噬參與了MO在胞內(nèi)增殖的過(guò)程。

2.2 支原體逃避細(xì)胞自噬

支原體長(zhǎng)期定植、感染宿主細(xì)胞的過(guò)程中已經(jīng)形成了逃避自噬,進(jìn)而長(zhǎng)期存活于胞內(nèi)的機(jī)制。支原體感染宿主細(xì)胞后,可以與宿主細(xì)胞膜融合,通過(guò)募集Rab7和LC3-II形成自噬體包裹支原體,誘導(dǎo)宿主細(xì)胞發(fā)生自噬,并且研究發(fā)現(xiàn)支原體誘導(dǎo)自噬有助于減少胞內(nèi)支原體積累,Rab7是支原體在宿主細(xì)胞內(nèi)積累所必需的,Rab7的上調(diào)可促進(jìn)自噬體的融合,進(jìn)而擾亂內(nèi)吞體和自噬體的動(dòng)力學(xué),抑制自噬的降解過(guò)程,為胞內(nèi)支原體提供生存環(huán)境,從而促進(jìn)了支原體的細(xì)胞內(nèi)感染與長(zhǎng)期存活[31],這種通過(guò)上調(diào)Rab7和抑制自噬降解途徑幫助支原體在細(xì)胞內(nèi)積累的過(guò)程,可能是支原體逃避細(xì)胞對(duì)自身清除的作用機(jī)制。在解脲支原體(Ureaplasmaurealyticum,Uu)感染HeLa細(xì)胞的研究中發(fā)現(xiàn),Uu可以通過(guò)網(wǎng)格蛋白依賴(lài)性?xún)?nèi)吞作用進(jìn)入細(xì)胞,并被運(yùn)送至早期內(nèi)體,即誘導(dǎo)細(xì)胞自噬反應(yīng),此外被運(yùn)送至內(nèi)體的Uu還可以通過(guò)內(nèi)體循環(huán)、細(xì)胞外分泌或胞吐作用被運(yùn)輸至胞外,逃避細(xì)胞自噬對(duì)自身的清除,并且純化的Uu脂蛋白具有抗原性,可以誘導(dǎo)宿主免疫反應(yīng),造成宿主免疫損傷[32],即Uu可以利用宿主細(xì)胞膜囊泡逃避宿主自噬和免疫系統(tǒng)對(duì)自身的損傷,進(jìn)而促進(jìn)其對(duì)宿主細(xì)胞的長(zhǎng)期感染和毒害。

3 支原體感染與細(xì)胞癌變

近年來(lái)研究發(fā)現(xiàn),支原體感染與腫瘤的發(fā)生有一定的關(guān)系[33],如支原體感染宿主細(xì)胞后與細(xì)胞膜成分的互換,促使信號(hào)從細(xì)胞膜到核的轉(zhuǎn)導(dǎo),進(jìn)而改變?cè)S多基因的表達(dá),為細(xì)胞癌變提供可能。此外,支原體的長(zhǎng)期存在可以通過(guò)炎癥反應(yīng)誘導(dǎo)各種細(xì)胞因子產(chǎn)生,對(duì)細(xì)胞的增生和分化發(fā)揮作用,進(jìn)而有可能影響腫瘤的發(fā)生發(fā)展。

隨著分子生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展和應(yīng)用,在人類(lèi)的一些實(shí)體瘤中相繼發(fā)現(xiàn)有支原體的存在。R. Y. H. Wang等[34]檢測(cè)414例H1V-1陽(yáng)性感染者血清中抗穿透支原體抗體的水平,發(fā)現(xiàn)高滴度者患Kaposi肉瘤的危險(xiǎn)性是低滴度者的11.7倍,穿透支原體(Mycoplasmapenetrans,Mpe)與Kaposi肉瘤的形成密切相關(guān)。Y. A. Barykova等[35]研究發(fā)現(xiàn)前列腺上皮內(nèi)瘤變(HGPIN)或前列腺癌癥(PCa)患者中Uu含量是良性患者的三倍,并且通過(guò)對(duì)PCa患者的血清樣品分析發(fā)現(xiàn)其攜帶更高水平的Uu抗體[36]。近年來(lái),結(jié)腸癌、胃癌、肺癌[37-39]組織中均被發(fā)現(xiàn)有豬鼻支原體(Mycoplasmahyorhinis,Mhy)的存在,Mhy的存在和肺癌、結(jié)腸癌等腫瘤細(xì)胞的侵襲能力增強(qiáng)相關(guān)。

現(xiàn)有研究證明一些支原體在慢性組織培養(yǎng)侵襲期間具有誘導(dǎo)其核型變化和惡性轉(zhuǎn)化的潛力,S.Tasi等[40]用發(fā)酵支原體(Mycoplasmafermentans,Mf)及Mpe感染極少自發(fā)轉(zhuǎn)化的小鼠胚胎細(xì)胞系C3H10T1/2,在感染6周后,C3H細(xì)胞顯示出形態(tài)學(xué)的改變;11周后細(xì)胞出現(xiàn)惡性改變,此時(shí)用抗生素殺滅支原體,細(xì)胞的惡性特征迅速消失;18周之后,細(xì)胞轉(zhuǎn)化已不可逆,且在軟瓊脂上形成集落,在裸鼠體內(nèi)成瘤。另有研究發(fā)現(xiàn)支原體能夠感染并轉(zhuǎn)化正常肺細(xì)胞,并能夠誘導(dǎo)骨形態(tài)發(fā)生蛋白2(bone morphogenetic protein 2,BMP2)表達(dá)上調(diào)[41],高表達(dá)的BMP2激活致癌途徑并促進(jìn)小鼠肺部腫瘤生長(zhǎng)[42]。CYP1A1作為細(xì)胞色素酶亞家族成員,是前致癌物質(zhì)代謝活化的主要功能酶,參與癌癥病變及腫瘤發(fā)生過(guò)程,當(dāng)Mhp感染宿主后,CYP1A1基因表達(dá)水平顯著變化,此過(guò)程可能存在潛在的致癌風(fēng)險(xiǎn),同時(shí)CYP1A1和PPAR-γ還參與調(diào)控由Mhp誘導(dǎo)的宿主炎癥反應(yīng)[43]。支原體與宿主細(xì)胞長(zhǎng)期互作的過(guò)程中,對(duì)宿主細(xì)胞的惡性影響不容忽視,目前支原體與細(xì)胞癌變的關(guān)系及分子機(jī)制還有待進(jìn)一步研究。

4 討論及展望

支原體侵染宿主細(xì)胞的首要條件是黏附,支原體細(xì)胞膜的一端向外突起形成“附著細(xì)胞器”或“尖端結(jié)構(gòu)”介導(dǎo)支原體與宿主的黏附作用[44-45],并在黏附蛋白的幫助下沿著突起的方向滑動(dòng),使其轉(zhuǎn)移到宿主細(xì)胞表面,支原體動(dòng)力學(xué)與細(xì)胞浸潤(rùn)能力相結(jié)合增強(qiáng)了支原體對(duì)宿主細(xì)胞的感染能力[46]。因此,在支原體感染宿主細(xì)胞過(guò)程中,鑒定支原體黏附宿主細(xì)胞的膜組分,以及宿主細(xì)胞識(shí)別支原體的膜受體,了解黏附因子與宿主細(xì)胞互作的分子機(jī)制,同時(shí)深入探究支原體如何逃避或破壞宿主的保護(hù)機(jī)制是今后的主要研究方向。

細(xì)胞凋亡、自噬作為維持細(xì)胞內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定的基本生理過(guò)程,在抵抗胞內(nèi)病原菌過(guò)程中發(fā)揮一定作用。支原體作為病原菌,可誘導(dǎo)宿主細(xì)胞發(fā)生凋亡、自噬,且宿主細(xì)胞可以通過(guò)凋亡、自噬方式,或通過(guò)有效的免疫反應(yīng)產(chǎn)生IgM、IgG、IgA[47]抗體等途徑緩解支原體感染早期對(duì)宿主細(xì)胞的損傷。隨著支原體感染時(shí)間的延長(zhǎng)和支原體對(duì)細(xì)胞微環(huán)境的改變,其釋放的毒素,為支原體的定植和致病提供有利條件,甚至某些支原體可以利用宿主細(xì)胞自噬過(guò)程以躲避宿主的免疫清除,造成宿主細(xì)胞對(duì)支原體的抵抗能力減弱,促使支原體在宿主細(xì)胞內(nèi)存活并增殖,最終導(dǎo)致其從細(xì)胞擴(kuò)散到更深的組織和器官,難以被根除。在支原體長(zhǎng)期感染過(guò)程中,通過(guò)炎癥反應(yīng)誘導(dǎo)各種細(xì)胞因子產(chǎn)生,對(duì)細(xì)胞的增生和分化發(fā)揮作用,進(jìn)而為細(xì)胞腫瘤的發(fā)生提供可能[33]。目前研究已經(jīng)證實(shí)一些支原體在慢性組織培養(yǎng)侵襲期間具有誘導(dǎo)核型變化和惡性轉(zhuǎn)化的潛力,且通過(guò)臨床檢測(cè)發(fā)現(xiàn)在人類(lèi)的一些實(shí)體瘤中存在支原體,因此支原體致癌的危害不容小覷。本課題組在研究MO誘導(dǎo)TC-1、RAW264.7細(xì)胞自噬的過(guò)程中,發(fā)現(xiàn)隨著支原體感染時(shí)間的延長(zhǎng),細(xì)胞自噬對(duì)其的清除作用有所限制,關(guān)于MO是否可利用、修飾或干擾自噬過(guò)程,以及是否存在其他自我保護(hù)機(jī)制逃避宿主細(xì)胞的免疫清除,進(jìn)而實(shí)現(xiàn)自身在宿主細(xì)胞內(nèi)的長(zhǎng)期感染等惡性影響,還需要更深入的研究。最新研究發(fā)現(xiàn)的cell-in-cell作為一種細(xì)胞程序性死亡方式,越來(lái)越多的引起人們的關(guān)注,此途徑也為支原體感染情況下細(xì)胞的宿命研究提供新的方向。

臨床表現(xiàn)的多樣性及診斷工具的靈敏性限制,使得臨床上支原體疾病較難治愈,因此深入研究支原體感染致病機(jī)制,才能為研發(fā)用于支原體感染的預(yù)防、診斷、控制的新型疫苗及診斷試劑,有效控制支原體感染提供保障。

參考文獻(xiàn)(References):

[1]吳移謀, 葉元康. 支原體學(xué)[M]. 2版. 北京: 人民衛(wèi)生出版社, 2008: 1.

WU Y M, YE Y K. Mycoplasmology[M]. 2nd ed. Beijing: People′s Medical Publishing House, 2008: 1. (in Chinese)

[2]TOUATI A, CAZANAVE C, BéBéAR C. Strain typing ofMycoplasmapneumoniaeand its value in epidemiology[J].CurrPediatrRev, 2013, 9(4): 334-342.

[3]BANSAL P, ADEGBOYE D S, ROSENBUSCH R F. Immune responses to the capsular polysaccharide ofMycoplasmadispar in calves and mice[J].CompImmunolMicrobiolInfectDis, 1995, 18(4): 259-268.

[4]劉紫玲, 游曉星, 彭志平, 等. 肺炎支原體莢膜多糖與DC-SIGN結(jié)合并促進(jìn)IL-10的分泌[J]. 細(xì)胞與分子免疫學(xué)雜志, 2013, 29(1): 10-13.

LIU Z L, YOU X X, PENG Z P, et al.Mycoplasmapneumoniaecapsular polysaccharides bind to DC-SIGN and promote the secretion of IL-10[J].ChineseJournalofCellularandMolecularImmunology, 2013, 29(1): 10-13. (in Chinese)

[5]NIANG M, ROSENBUSCH R F, ANDREWS J J, et al. Demonstration of a capsule onMycoplasmaovipneumoniae[J].AmJVetRes, 1998, 59(5): 557-562.

[6]JIANG Z J, SONG F Y, LI Y N, et al. Capsular polysaccharide is a main component ofMycoplasmaovipneumoniaein the pathogen-induced Toll-like receptor-mediated inflammatory responses in sheep airway epithelial cells[J].MediatorsInflamm, 2017, 2017: 9891673.

[7]JIANG Z J, SONG F Y, LI Y N, et al. Capsular polysaccharide ofMycoplasmaovipneumoniaeinduces sheep airway epithelial cell apoptosisviaROS-dependent JNK/P38 MAPK pathways[J].OxidMedCellLongev, 2017, 2017: 6175841.

[8]王素果. 支原體脂質(zhì)相關(guān)膜蛋白致病機(jī)制的研究進(jìn)展[J]. 微生物學(xué)免疫學(xué)進(jìn)展, 2016, 44(4): 42-47.

WANG S G. Pathogenic mechanisms onMycoplasmalipid-associated membrane proteins[J].ProgressinMicrobiologyandImmunology, 2016, 44(4): 42-47. (in Chinese)

[9]ARCHER D B. The structure and functions of theMycoplasmamembrane[J].IntRevCytol, 1981, 69: 1-44.

[10]BAI F F, NI B, LIU M J, et al.Mycoplasmahyopneumoniae-derived lipid-associated membrane proteins induce inflammation and apoptosis in porcine peripheral blood mononuclear cellsinvitro[J].VetMicrobiol, 2015, 175(1): 58-67.

[11]汪洋. 雞毒支原體生物被膜相關(guān)基因篩選及其LAMPs誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡的研究[D]. 北京:中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院, 2017.

WANG Y. Screening of biofilm-forming mutants and effect of LAMPs on apoptosis of chicken embryo fibroblast forMycoplasmagallisepticum[D]. Beijing: Chinese Academy of Agricultural Sciences, 2017. (in Chinese)

[12]HE J, WANG S P, ZENG Y H, et al. Binding of CD14 toMycoplasmagenitalium-derived lipid-associated membrane proteins upregulates TNF-α[J].Inflammation, 2014, 37(2): 322-330.

[13]歐廣利. 核因子Nrf2負(fù)向調(diào)節(jié)肺炎支原體LAMPs誘導(dǎo)人THP-1細(xì)胞產(chǎn)生炎癥物質(zhì)[D]. 衡陽(yáng): 南華大學(xué), 2015.

OU G L. Nuclear factor Nrf2 negatively regulated inflammatory substances production induced by lipid-associated membrane proteins derived fromMycoplasmapneumoniaein human monocyte cell line THP-1 cells[D]. Hengyang: University of South China, 2015. (in Chinese)

[14]WANG Y, LIU S L, LI Y, et al.Mycoplasmabovis-derived lipid-associated membrane proteins activate IL-1β production through the NF-κB pathway via Toll-like receptor 2 and MyD88[J].DevCompImmunol, 2016, 55: 111-118.

[15]WANG Y, WANG Q, LI Y, et al. Mmm-derived lipid-associated membrane proteins activate IL-1β production through the NF-κB pathway via TLR2, MyD88, and IRAK4[J].SciRep, 2017, 7(1): 4349.

[16]WELLS P G, MILLER-PINSLER L, BHATIA S, et al. Reactive Oxygen Species (ROS) formation, oxidative DNA damage and repair in teratogenesis[J].BirthDefectsResA, 2015, 103(5): 359-359.

[17]KUWANO K, HAGIMOTO N, MAEYAMA T, et al. Mitochondria-mediated apoptosis of lung epithelial cells in idiopathic interstitial pneumonias[J].LabInvest, 2002, 82(12): 1695-1706.

[18]LI Y N, JIANG Z J, XUE D, et al.Mycoplasmaovipneumoniaeinduces sheep airway epithelial cell apoptosis through an ERK signalling-mediated mitochondria pathway[J].BMCMicrobiol, 2016, 16: 222.

[19]MCCUBREY J A, LAHAIR M M, FRANKLIN R A. Reactive oxygen species-induced activation of the map kinase signaling pathways[J].AntioxidRedoxSignal, 2006, 8(9-10): 1775-1789.

[20]XUE D, LI Y N, JIANG Z J, et al. A ROS-dependent and caspase-3-mediated apoptosis in sheep bronchial epithelial cells in response toMycoplasmaovipneumoniaeinfections[J].VetImmunolImmunopathol, 2017, 187: 55-63.

[21]INOSHITA S, TAKEDA K, HATAI T, et al. Phosphorylation and inactivation of myeloid cell leukemia 1 by JNK in response to oxidative stress[J].JBiolChem, 2002, 277(46): 43730-43734.

[22]SON Y, CHEONG Y K, KIM N H, et al. Mitogen-activated protein kinases and reactive oxygen species: how can ROS activate MAPK pathways?[J].JSignalTransduct, 2011, 2011: 792639.

[23]NAKAJIMA S, KITAMURA M. Bidirectional regulation of NF-κB by reactive oxygen species: a role of unfolded protein response[J].FreeRadicBiolMed, 2013, 65: 162-174.

[24]MORGAN M J, LIU Z G. Crosstalk of reactive oxygen species and NF-κB signaling[J].CellRes, 2011, 21(1): 103-115.

[25]PAVEL M, RUBINSZTEIN D C. Mammalian autophagy and the plasma membrane[J].FEBSJ, 2017, 284(5): 672-679.

[26]SHIMIZU T. Pathogenic factors ofMycoplasma[J].NihonSaikingakuZasshi, 2015, 70(4): 369-374.

[27]LU Z Y, XUE D Y, CHEN Y, et al. TLR2 mediates autophagy through ERK signaling pathway inMycoplasmagallisepticum-infected RAW264.7 cells[J].MolImmunol, 2017, 87: 161-170.

[28]SHIMIZU T, KIMURA Y, KIDA Y, et al. Cytadherence ofMycoplasmapneumoniaeinduces inflammatory responses through autophagy and toll-like receptor 4[J].InfectImmun, 2014, 82(7): 3076-3086.

[29]SHIMIZU T. Inflammation-inducing factors ofMycoplasmapneumoniae[J].FrontMicrobiol, 2016, 7: 414.

[30]孫遠(yuǎn)航. 綿羊肺炎支原體誘導(dǎo)肺臟上皮細(xì)胞自噬的初步研究[D]. 銀川: 寧夏大學(xué), 2016.

SUN Y H. Preliminary study of Autophagy in lung epithelial cells induced byM.ovipneumoniaeinfection[D]. Yinchuan: Ningxia University, 2016. (in Chinese)

[31]HU X, YU J, ZHOU X, et al. Synergism between upregulation of Rab7 and inhibition of autophagic degradation caused by mycoplasma facilitates intracellularMycoplasmainfection[J].MolMedRep, 2014, 9(3): 793-800.

[32]NISHIUMI F, OGAWA M, NAKURA Y, et al. Intracellular fate ofUreaplasmaparvumentrapped by host cellular autophagy[J].Microbiologyopen, 2017, 6(3): e441.

[33]張必雄,熊祺琰,王佳,等. 豬鼻支原體表面可變脂蛋白vlpA黏附宿主細(xì)胞功能研究[J]. 畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào), 2016, 47(9): 1897-1904.

ZHANG B X,XIONG Q Y,WANG J,et al. The function of the variable lipoprotein A ofMycoplasmahyorhinisin adherence to host cell[J].ActaVeterinariaetZootechnicaSinica, 2016, 47(9): 1897-1904. (in Chinese)

[34]WANG R Y H, SHIH J W K, WEISS S H, et al.Mycoplasmapenetransinfection in male homosexuals with AIDS: high seroprevalence and association with Kaposi's sarcoma[J].ClinInfectDis, 1993, 17(4): 724-729.

[35]BARYKOVA Y A, LOGUNOV D Y, SHMAROV M M, et al. Association ofMycoplasmahominisinfection with prostate cancer[J].Oncotarget, 2011, 2(4): 289-297.

[36]HRBACEK J, URBAN M, HAMSIKOVA E, et al. Serum antibodies against genitourinary infectious agents in prostate cancer and benign prostate hyperplasia patients: a case-control study[J].BMCCancer, 2011, 11: 53.

[37]劉斌波. 豬鼻支原體抗原在人結(jié)腸腺癌細(xì)胞表達(dá)的研究[D]. 南寧: 廣西大學(xué), 1999.

LIU B B. Expression ofMycoplasmahyorhinisantigens expressing in human colon adenocarcinoma cells[D]. Nanning: Guangxi University, 1999. (in Chinese)

[38]馬華崇, 馬泓, 張艷麗, 等. 胃癌組織中豬鼻支原體的分離培養(yǎng)與鑒定[J]. 中國(guó)人獸共患病雜志, 2003, 19(2): 31-33.

MA H C, MA H, ZHANG Y L, et al. Detection and confirmation ofMycoplasmahyorhinisin gastric carcinoma specimens by culture and PCR[J].ChineseJournalofZoonoses, 2003, 19(2): 31-33. (in Chinese)

[39]厲建蕾, 施嘉駿, 李泉, 等. 豬鼻支原體(Mycoplasmahyorhinis)誘導(dǎo)NCI-H446等小細(xì)胞肺癌細(xì)胞在FIGNL1沉默時(shí)出現(xiàn)S期阻滯[J]. 微生物學(xué)通報(bào), 2017, 44(2): 411-419.

LI J L, SHI J J, LI Q, et al.Mycoplasmahyorhinisinduces S phase arrest when suppressing expression ofFIGNL1 in NCI-H446 and NCI-H1688 human small cell lung cancer cells[J].MicrobiologyChina, 2017, 44(2): 411-419. (in Chinese)

[40]TSAI S, WEAR D J, SHIH J W, et al.Mycoplasmasand oncogenesis: persistent infection and multistage malignant transformation[J].ProcNatlAcadSciUSA, 1995, 92(22): 10197-10201.

[41]JIANG S, ZHANG S M, LANGENFELD J, et al.Mycoplasmainfection transforms normal lung cells and induces bone morphogenetic protein 2 expression by post-transcriptional mechanisms[J].JCellBiochem, 2008, 104(2): 580-594.

[42]MUSHABEN E M. BMPR2 and mTOR signaling pathways in inflammatory lung diseases[D]. Cincinnati: University of Cincinnati, 2012.

[43]徐杰, 趙為民, 任守文, 等.CYP1A1與PPAR-γ在豬肺炎支原體感染炎性反應(yīng)調(diào)控中的作用關(guān)系[J]. 畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào), 2016, 47(3): 574-580.

XU J, ZHAO W M, REN S W, et al. Interaction effect ofCYP1A1 andPPAR-γ in the regulation of inflammation of mycoplasma pneumonia in swine[J].ActaVeterinariaetZootechnicaSinica, 2016, 47(3): 574-580. (in Chinese)

[44]RELICH R F, BALISH M F. Insights into the function ofMycoplasmapneumoniaeprotein P30 from orthologous gene replacement[J].Microbiology, 2011, 157(10): 2862-2870.

[45]MIYATA M, HAMAGUCHI T. Integrated information and prospects for gliding mechanism of the pathogenic bacteriumMycoplasmapneumoniae[J].FrontMicrobiol, 2016, 7: 960.

[46]NAKANE D, ADAN-KUBO J, KENRI T, et al. Isolation and characterization of P1 adhesin, a leg protein of the gliding bacteriumMycoplasmapneumoniae[J].JBacteriol, 2011, 193(3): 715-722.

[47]MEYER SAUTEUR P M, JACOBS B C, SPUESENS E B M, et al. Antibody responses toMycoplasmapneumoniae: role in pathogenesis and diagnosis of encephalitis?[J].PLoSPathog, 2014, 10(6): e1003983.

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