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水稻紋枯病的危害及其微生物防治概述

2018-03-28 04:04:30吳志明李昆太
生物災(zāi)害科學(xué) 2018年2期
關(guān)鍵詞:生防細(xì)胞壁紋枯病

吳志明,李昆太

(江西農(nóng)業(yè)大學(xué) 生物科學(xué)與工程學(xué)院/江西省農(nóng)業(yè)微生物資源開發(fā)與利用工程實(shí)驗(yàn)室,江西 南昌 330045)

水稻是中國最重要的糧食作物,但經(jīng)土壤傳播的擔(dān)子類立枯絲核菌(Rhizoctonia solaniKühn)引發(fā)的水稻紋枯病是全球范圍內(nèi)危害最為嚴(yán)重的水稻真菌病害之一,尤其在集約化種植系統(tǒng)中嚴(yán)重阻礙了水稻的高產(chǎn)與穩(wěn)產(chǎn)[1]。近年隨著水稻生產(chǎn)體系的強(qiáng)化、種植密度的提高和高產(chǎn)水稻品種的利用,紋枯病在中國的危害日趨嚴(yán)重。當(dāng)自然條件有利于病原菌生長時,其造成的產(chǎn)量損傷可能高達(dá) 50%[2]。此外,我國的水稻紋枯病疫區(qū)高達(dá) 1 500至 2 000萬 hm2, 已造成的產(chǎn)量損失約 600萬 t[3]。 該病害因宿主廣泛,菌核長期存活于兩季作物土壤中,且具有遺傳變異性強(qiáng)的特性,使其難于控制[4]。

現(xiàn)今,防治水稻紋枯病的主要措施有農(nóng)業(yè)、化學(xué)和生物防治。其中,打撈菌核、合理栽培管理和選育抗病品種是農(nóng)業(yè)防治的重要手段,但其作用有限,且抗性基因單一,轉(zhuǎn)基因安全性和難以提高抗性品種持久有效性等突出問題亟需解決。而化學(xué)防治由于其具有經(jīng)濟(jì)高效,殺菌譜廣、防治簡便等優(yōu)點(diǎn),一直是綜合防控水稻紋枯病不可或缺的部分。但是,過度使用化學(xué)農(nóng)藥引發(fā)了眾多隨之而來的問題,例如:環(huán)境污染、人類健康日益惡化、紋枯病耐藥性增強(qiáng),甚至在殺害紋枯病菌時也危害了其他有益生物,破壞了稻田生態(tài)平衡,間接導(dǎo)致水稻減產(chǎn)。面對如此嚴(yán)峻的世界難題,尋求廣譜高效、低毒環(huán)保的生物農(nóng)藥用于防治水稻紋枯病迫在眉睫。

長期以來,生物防治因良好的環(huán)境兼容與可持續(xù)性,被公認(rèn)為現(xiàn)代農(nóng)業(yè)生產(chǎn)過程中防治水稻紋枯病的重要途徑。鑒于此,筆者簡要概述了近年來國內(nèi)外科研工作者在水稻紋枯病菌的致病機(jī)理,及其生防微生物種類與生防機(jī)理研究中取得的一些進(jìn)展,為今后研究微生物防治紋枯病提供理論依據(jù)。

1 水稻紋枯病的致病機(jī)理

1.1 水稻紋枯病菌的生物學(xué)及其侵染特性

水稻紋枯病菌分為無性態(tài)的半知菌亞門、絲核菌屬立枯絲核菌(Rhizoctonia solaniKühn)和有性態(tài)的擔(dān)子菌亞門、亡革菌屬瓜亡革菌(Thanatephorus cucumeris(Frank) Donk)。依據(jù)菌絲融合現(xiàn)象可將其分為 13 個融合群,又根據(jù)其引發(fā)的病害癥狀、核糖體基因和培養(yǎng)特性等可將融合群分為 AG-1 IA、AG-1 IB 和 AG-1 IC 3 個種內(nèi)亞群,其中水稻紋枯病菌即屬于融合群 AG-1 中的 I A亞群,即為R. solaniAG-1 IA[5]。 有研究發(fā)現(xiàn),同屬 AG-1 融合群的不同水稻紋枯病菌其致病力也有很大差異,使得水稻紋枯病菌表現(xiàn)出高度的遺傳特異性,因此讓水稻紋枯病菌的研究受到嚴(yán)峻挑戰(zhàn)[6-7]。

水稻紋枯病菌主要以營養(yǎng)菌絲體和菌核的形式在自然界中存活,既可通過土壤傳播也可經(jīng)灌溉水流行于稻田中,其無性態(tài)菌絲是侵染危害水稻的主要形式,自然界中偶見有性態(tài)[4]。水稻紋枯病菌菌絲通過在水稻葉片或葉鞘表面擴(kuò)展、蔓延,逐漸形成侵染結(jié)構(gòu)(侵染墊或附著胞)首次侵入水稻,而后水稻菌絲體在水稻組織中延伸,表現(xiàn)病狀[8]。來年春耕時,遺落在稻田中越冬的菌核在適宜的條件下萌發(fā)成菌絲,進(jìn)而侵染水稻葉鞘組織,初期形成水漬狀橢圓形或云狀的病斑,而后變成綠色或淡褐色病斑并長出氣生菌絲侵染鄰近植株,逐漸在水稻植株上由白色變成褐色至栗色菌核。整個過程殃及水稻一生,年復(fù)一年循環(huán)反復(fù),尤其在高溫高濕條件下最易發(fā)病,以分蘗期和抽穗期最為嚴(yán)重。其中菌核抗逆、忍耐極端環(huán)境的特性是水稻紋枯病難以防治的重要原因之一[9]。

1.2 細(xì)胞壁降解酶

約有 10%的已知真菌能在1 萬多種植物中引發(fā)病害,在感染過程中均須穿過植物抵御病原菌侵害的第一道防線——細(xì)胞壁,為此植物病原真菌會分泌系列降解酶類(如:纖維素酶、半纖維素酶、蛋白酶和果膠酶等)來解聚植物細(xì)胞壁中的多糖組分、蛋白質(zhì)和芳香族化聚合物等非均質(zhì)結(jié)構(gòu),進(jìn)而克服植物細(xì)胞壁屏障[10]。細(xì)胞壁降解酶有利于植物病原真菌侵入、定殖于宿主細(xì)胞并在胞內(nèi)擴(kuò)展,在病原菌攝取營養(yǎng)和消解宿主植物抵御能力中起主要作用,是病菌致病的重要因子。根據(jù)細(xì)胞壁降解酶的作用方式,可將其分為水解酶和裂解酶,其中果膠甲基酯酶(pectin methyl esterase,PME)、 多聚半乳糖醛酸酶(polygalacturonase, PG)、果膠甲基半乳糖醛酸酶(pectin methyl galacturonase,PMG)屬水解酶,多聚半乳糖醛酸反式消除酶(polygalacturonic acid trans-eliminase,P GTE)和 果膠甲基反式消除酶( pectin methyl trans-eliminase,P MTE)屬裂解酶,均在水稻紋枯病菌中有報道[11]。

楊媚等[12]通 過 SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳分析和 DNS 法證實(shí)了水稻紋枯病菌中存在 β-1,4-內(nèi)切葡聚糖酶(endo-β-1,4-glucanase,Cx)、FPA、PGTE、PG、PMG、PME 和 PMTE 等 7 種常見的細(xì)胞壁降解酶,進(jìn)一步研究表明,隨著胞壁降解酶濃度的升高水稻葉片組織的損傷程度加大。有研究發(fā)現(xiàn)[11],在水稻倒二葉鞘中的感病組織和改良的 Marcus 立枯絲核病菌的粗酶液中均檢測到 PMTE、PGTE、PMG、Cx 和 PG 等5 種胞壁降解酶,同時電鏡觀察發(fā)現(xiàn)胞壁降解酶粗酶液處理后水稻葉鞘組織細(xì)胞呈現(xiàn)質(zhì)壁分離、葉綠體和線粒體等細(xì)胞器損傷,且不同立枯絲核菌對水稻植株的致病力與其細(xì)胞壁降解酶的能力呈極顯著正相關(guān)。

1.3 細(xì)胞毒素

同細(xì)胞壁降解酶一樣,水稻紋枯病菌毒素是一類能引發(fā)水稻組織發(fā)生胞質(zhì)外滲、細(xì)胞器損傷等細(xì)微變化的非酶類化合物。大量研究表明,植物病原真菌毒素主要通過影響寄主的細(xì)胞質(zhì)膜、細(xì)胞器、植物防御酶以及與蛋白質(zhì)的特異性結(jié)合實(shí)現(xiàn)對植物組織的致病[13]。

陳夕軍等[14]發(fā)現(xiàn)經(jīng)水稻紋枯病毒素處理后能顯著破壞寄主細(xì)胞結(jié)構(gòu),造成水稻組織電解質(zhì)滲透和磷酸外滲,降低葉綠素含量。徐艷[15]發(fā)現(xiàn)適宜濃度水稻紋枯病菌毒素處理能不同程度的提高水稻葉片和葉鞘中過氧化物酶、多酚氧化酶、苯丙氨酸解氨酶和超氧化物歧化酶的活性,由此可見一定濃度的毒素能有效激活水稻的防御系統(tǒng)。李路等[16]研究表明水稻紋枯病菌毒素會顯著影響水稻種子的萌發(fā)、且致病力越強(qiáng)的紋枯病菌菌株其產(chǎn)生的粗毒素毒性越強(qiáng)。Aoki 等[17]認(rèn)為從立枯絲核菌的代謝物中分離出的苯乙酸 (phenylacetic acid)及其羥基衍生物在其致病過程中起重要作用。根據(jù)對寄主致病范圍可將毒素分為寄主?;远舅兀╤ost-specific toxin, HST)和非寄主?;远舅兀╪on- host-specific toxin, NHST)。Vidhyasekaran 等[18]從水稻紋枯病菌中分離并純化出含甘露糖、N-乙酰半乳糖胺和葡萄糖等碳水化合物的寄主?;远舅?,進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)毒素對不同抗性的寄主組織結(jié)構(gòu)均有破壞力。

2 水稻紋枯病生防微生物種類

微生物防治植物真菌病害通常是指應(yīng)用生防防治劑(真菌、細(xì)菌和病毒)或?qū)⑵浠旌衔镒饔糜谥参锘蛲寥乐衼硪种撇『19]。

2.1 生防真菌

迄今為止,木 霉菌(Trichoderma)、淡 紫擬青霉菌(Paecilomyces lilacinus)和 毛殼菌(G. liocladiumspp.)等生防真菌因能產(chǎn)大量孢子,環(huán)境適應(yīng)力強(qiáng)等優(yōu)勢成為了生物防治研究的重要方向。其中,木霉菌屬半知菌亞門,絲孢綱,絲孢目,叢梗孢科,是普遍存在于土壤中資源豐富、應(yīng)用廣泛的生防真菌。如哈茨木霉(T. harzianum)、 棘孢木霉(T. asperellum)、綠色木霉(T.viride)和長枝木霉(T. longibrachiatum)等[20]。真菌用于防治水稻紋枯病的報道有很多,有研究[21]發(fā)現(xiàn)棘孢木霉(T.asperellum)處理后不僅水稻紋枯病菌感染率降低了 19%,千 粒質(zhì)量增加了 34%,且 水稻增產(chǎn) 41%。陳 立華等[22]在 篩選生防菌時發(fā)現(xiàn)棘孢木霉(T. asperellum)孢子粉、菌絲吸附和固體發(fā)酵 3 種應(yīng)用方式均能有效防治水稻紋枯病菌,其中以防治率高達(dá) 89.5%的固體發(fā)酵方式最佳。沙莎等[23]利用高速逆流色譜法從哈茨木霉(T.harzianum)發(fā)酵液中分離純化出的抑菌活性成分對水稻紋枯病菌的菌絲生長毒力EC50和EC90分別為 0.69 μg/mL 和 3.02 μg/mL。此外,內(nèi)生真菌[24]和 青霉[25]等 生防真菌防治水稻紋枯病的研究也常被報道。

2.2 生防細(xì)菌

細(xì)菌種類多、生長周期短、代謝復(fù)雜且產(chǎn)物豐富,是極具潛力和應(yīng)用前景的生防微生物。目前研究較多的生防細(xì)菌主要有蠟狀芽孢桿菌(B. cereus)、 枯草芽孢桿菌(B. subtilis)、多粘芽孢桿菌(B. polymyxa) 等芽孢桿菌屬(Bacillus)和熒光假單胞桿菌(P. fluorscens)、丁香假單胞桿菌(P. syringe)等假單孢桿菌屬

(Pseudomonas)[26]。其中,環(huán)境兼容性強(qiáng)、高效廣譜的枯草芽孢桿菌[27]和地衣芽孢桿菌[28]能通過與病原菌競爭營養(yǎng)和空間、產(chǎn)抗菌物質(zhì)和誘導(dǎo)植物提高抗病性等多種機(jī)制防治植物病害。許多科研工作者利用細(xì)菌防治水稻紋枯病的案例也常見報道,如 陳劉軍等[29]通過試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)蠟質(zhì)芽孢桿菌 AR156 不僅對水稻紋枯病的溫室防效達(dá) 73.06%,且水稻生物量提高了 14.45%。此外還能有效激活植株體內(nèi)防御酶,增強(qiáng)防衛(wèi)基因表達(dá),進(jìn)而提高水稻抗性。Wang 等[30]采 用蛋白質(zhì)組學(xué)研究類芽孢桿菌 PS04 對水稻紋枯病菌 GD118 的作用機(jī)理時發(fā)現(xiàn),PS04 能有效抑制抗氧化、細(xì)胞骨架調(diào)控和能量代謝相關(guān)蛋白質(zhì)的表達(dá)。陳思宇等[31]篩選了多株對水稻紋枯病菌的生防細(xì)菌,其中熒光假單孢桿菌 XF 174 對水稻紋枯病菌的抑制率高達(dá) 82.86%,盆栽和田間防效分別為 48.14%和 43.03%。

2.3 生防病毒

病毒是一類具侵染性、無細(xì)胞結(jié)構(gòu)的微生物,其中能在真菌細(xì)胞中進(jìn)行復(fù)制的真菌病毒逐漸成為生物防治植物病害領(lǐng)域的熱點(diǎn),且目前認(rèn)為真菌病毒大部分為 RNA病毒,也存在 DNA真菌病毒[32]。廣泛存在于植物病原真菌中的真菌病毒大多數(shù)是潛伏性的,不會造成宿主真菌明顯的異常,但也有能弱化病原菌毒性、延緩寄主生長、降低其產(chǎn)孢能力的真菌病毒日趨成為防治植物病害的潛力軍[33]。其中,能顯著弱化植物病原真菌致病力的病毒稱為低毒真菌病毒,如分別被成功應(yīng)用于板栗疫病和油菜菌核病生物防治的dsRNA 病毒 CHV1 和 ssDNA 病毒 SsHADV-l[34]。 隨著研究的逐漸深入,科研工作者近年來從水稻紋枯病的病原菌立枯絲核菌中分離并鑒定了多種真菌病毒[35-36]。其中不乏能有效抑制水稻紋枯病菌的病毒,如 Lü 等[37]篩選立枯絲核菌弱毒相關(guān)真菌病毒時發(fā)現(xiàn)感染 RsPV3 和 RsPV4 病毒粒子后的水稻紋枯病菌不僅菌核減少,其毒力也相應(yīng)減弱了。Li 等[38]對水稻紋枯病菌菌核發(fā)育過程中差異表達(dá)基因及其 dsRNA 真菌病毒進(jìn)行研究,結(jié)果表明:RsPV2 病毒粒子會致使水稻紋枯病菌GD-118T生長遲緩、菌核減少、色素含量下降和致病力明顯減弱。弱毒真菌病毒憑借侵染高毒力病原真菌后不但能迅速準(zhǔn)確起防效作用,同時能通過產(chǎn)生效應(yīng)子誘導(dǎo)寄主植物產(chǎn)生抗性,且防效范圍廣、傳播能力強(qiáng)等優(yōu)勢被公認(rèn)為極具潛力的生防微生物[34]。

2.4 生防放線菌

放線菌是一種絲狀腐生細(xì)菌,最常見于土壤、堆肥、淡水和海水中。這些微生物在根際微生物群落中占很大比例,能夠通過產(chǎn)生抗性孢子在農(nóng)業(yè)土壤中存活很長時間而在植物根上定居,放線菌在促進(jìn)植物生長、控制病害、分解有機(jī)物質(zhì)和生產(chǎn)具有商業(yè)價值的次生代謝產(chǎn)物等方面發(fā)揮著重要作用[39-40]。同時,放線菌是許多胞外酶和抗生素的主要生產(chǎn)者,尤其是鏈霉菌屬(Streptomycesspp.)憑借易分離培養(yǎng)、產(chǎn)多種次級代謝物等特點(diǎn),被廣泛用于植物病害的生物防治,目前大約 60%的農(nóng)用抗生素是由鏈霉菌產(chǎn)生的[41]。其中,由 灰色產(chǎn)色鏈霉菌(S. griseochromogenes)產(chǎn) 生的滅瘟素( Blasticidin S)、春 日鏈霉菌(S. kasugaensis)產(chǎn)生的春日霉素( Kasugamycin)、可 可鏈霉菌阿索變種(S. cacaoivar.asoensis)產(chǎn) 生的多氧霉素( Polyoxins)、吸水鏈霉菌檸檬色變種(S. hygroscopicusvar.limoneus)產(chǎn)生的井岡霉素(Validamycin A)等,更是成功地商業(yè)化運(yùn)用于水稻、蔬菜和果類等的真菌病害防治之中[42]。國外有學(xué)者研究發(fā)現(xiàn) 5 μg/mLS. aurantiogriseusVSMGT1014 代謝粗提物能有效抑制水稻紋枯病菌菌核生長,其無菌細(xì)胞濾液和代謝粗提物同多菌靈一樣能降低離體葉片的病變程度[43]。韋坤逢等[44]研究發(fā)現(xiàn)藍(lán)微褐鏈霉菌具有廣譜抑菌活性,對水稻紋枯病的抑菌率為 70%。江西農(nóng)業(yè)大學(xué)的研究人員發(fā)現(xiàn)鏈霉菌 702 所產(chǎn)抗真菌活性物質(zhì)可有效抑制水稻紋枯病菌菌核的形成及萌發(fā)[45], 對水稻紋枯病的最低抑菌濃度為 23.8 mg/L[46]同 時對稻瘟菌、稻曲病菌等有明顯抑制作用[47]。Streptomycessp. N2是本試驗(yàn)室[48]分 離篩選到的一株能產(chǎn)新型氮橋環(huán)內(nèi)酯類抗真菌活性物質(zhì)(1-甲基 -3-氧代-6-氮雜二環(huán)[3.1.1]-5(7)-庚烯-2-酮,分子式為 C6H7O2N,暫命名為農(nóng)抗 N2)的新種,此活性物質(zhì)對水稻紋枯病菌、意大利青霉(Penicillium italicum)和膠孢炭疽菌(Colletotrichum gloeosporioides)等多種植物病原真菌具有較強(qiáng)的抑制作用。

3 水稻紋枯病菌的生防機(jī)理

目前生防微生物防治植物病害的作用機(jī)理已獲證實(shí)的主要有競爭、重寄生和溶菌作用、誘導(dǎo)抗性、促進(jìn)植物生長和抗生作用等[49]。

3.1 競爭作用

生防微生物會同病原菌競爭空間位點(diǎn)和營養(yǎng)物質(zhì),空間競爭致使病原菌因與植株間形成隔離帶而難以侵入寄主,而營養(yǎng)競爭致使病原菌因得不到充足的養(yǎng)分而大大降低致病性。如生防微生物可通過抑制有害微生物在土壤中的定殖,或與病原菌競爭植物葉面和根系中相同的營養(yǎng)物質(zhì),防止感染[50]。此外,有些生防微生物因產(chǎn)生的鐵載體相較病原真菌具有更高的鐵親和力,因而能有效隔離鐵供應(yīng)病原真菌[51]。盧鈺升等[52]研 究表明菌株GB58 能在水稻病株很好地定殖(2.22×107cfu/g),相比井岡霉素處理組,DB58 的生物防效在水稻紋枯病發(fā)生后 20 d 和 40 d 時分別提高了 20%和 24%。拮抗鏈霉菌 VSMGT 1014 能產(chǎn)裂解酶、揮發(fā)性物質(zhì)、吲哚乙酸和鐵載體,其中鐵載體將有利于生防鏈霉菌與水稻紋枯病菌競爭鐵離子[43]。

3.2 重寄生和溶菌作用

生防微生物能通過重寄生的方式吸附于植物病原真菌菌絲上,而后產(chǎn)生 β-1,3-葡聚糖酶、幾丁質(zhì)酶、纖維素酶等植物細(xì)胞壁降解酶或溶菌物質(zhì)破壞病原菌的細(xì)胞結(jié)構(gòu)[53]。張建[54]研究發(fā)現(xiàn)生防木霉NJAU4742 具備重寄生立枯絲核菌、核盤菌等多種植物病原真菌的能力,掃描電鏡觀察和 Trypan Blue 染色發(fā)現(xiàn)菌株 NJAU4742能纏繞或緊貼病原菌菌絲生長,且在纏繞過程中分泌代謝物破壞病原菌細(xì)胞結(jié)構(gòu)。Hassan等[55]研究發(fā)現(xiàn)鏈霉菌之所以能顯著抑制植物病原真菌的生長與它能產(chǎn)幾丁質(zhì)酶和 β-1,3-葡聚糖酶密切相關(guān)。

3.3 誘導(dǎo)抗性作用

誘導(dǎo)抗性(induced resistance, IR)是指利用生物或非生物因子刺激植物,激活其對逆境和病蟲害的天然防御系統(tǒng),誘導(dǎo)防御相關(guān)基因產(chǎn)物的形成。其中,包括內(nèi)生菌在內(nèi)的有益微生物或生物防治劑誘導(dǎo)植物提高抑制病原菌生長和發(fā)育的能力稱為誘導(dǎo)系統(tǒng)抗性(induced systemic resistance, ISR),此外,病原菌誘導(dǎo)植物產(chǎn)生的抗病能力稱為系統(tǒng)獲得性抗性(systemic acquired resistance, SAR)[56]。 有研究表明:過氧化物酶(peroxidase, POD)、多酚氧化酶(polyphenol oxidase, PPO)可催化木質(zhì)素的形成,苯丙氨酸解氨酶(phenylalnine ammonialyase, PAL)參 與植物防御素和酚類化合物的合成,β -1,3 葡聚糖酶(β-1, 3-glucanases, PR-2 家族)和幾丁質(zhì)酶(chitinases, PR-3 家族)等病程相關(guān)蛋白(pathogenesis-related proteins, PRs)可將病原真菌細(xì)胞壁降解并產(chǎn)生低聚物,進(jìn)而誘導(dǎo)植物啟動多種防御機(jī)制[57]。據(jù)報道,鏈霉菌可通過產(chǎn)多種次級代謝物拮抗病原菌,也能刺激植物啟動防御系統(tǒng),進(jìn)而誘導(dǎo)系統(tǒng)抗性[58]。邵正英等[59]研究表明鏈霉菌JD211促進(jìn)了水稻葉片酚類物質(zhì)的積累,提高了相關(guān)酶的活性增強(qiáng)了水稻抗病能力。杜亞楠[60]研究表明新農(nóng)抗 702 激活了植物的防衛(wèi)系統(tǒng),具有一定的誘導(dǎo)抗性作用。徐佳[61]發(fā)現(xiàn)源自鏈霉菌 702 的抗真菌霉素 702早期能誘導(dǎo)水稻積累活性氧,引發(fā)系統(tǒng)抗性后水稻體內(nèi)的防御酶迅速緩解水稻細(xì)胞膜損傷,進(jìn)而增強(qiáng)水稻抗紋枯病的能力。

3.4 促生作用

植物根際促生菌(plant growth-promoting rhizobacteria,PGPR)和內(nèi)生菌除了上述作用機(jī)制外,還能改善植物生長的養(yǎng)分供應(yīng)、緩解非生物脅迫等直接或間接的促生長作用,增強(qiáng)植物的抗病能力。放線菌常被用于植物生長促進(jìn)劑,研究表明:鏈霉菌不僅能分泌有機(jī)酸將植物不能直接吸收的礦物質(zhì)降解成含磷、鉀等有機(jī)肥,而且也可分泌赤霉素、吲哚乙酸等植物生長激素直接促進(jìn)植物的生長,此外還能改善植物根系土壤中的微生物群落,間接促進(jìn)植物的生長[58]。Gopalakrishnan 等[62]從 不同草本植物堆肥中分離了 6 株能產(chǎn)纖維素酶、氫氰酸和吲哚乙酸的鏈霉菌,并對其植物生長促進(jìn)特性進(jìn)行研究發(fā)現(xiàn)它們能有效提高水稻分蘗數(shù)、穗數(shù)、千粒質(zhì)量和土壤中微生物對營養(yǎng)物質(zhì)的利用能力。

3.5 抗生作用

生防微生物通過分泌拮抗物質(zhì)直接抑制或殺死病原菌,其防治植物病害的主要作用機(jī)制包括抑制細(xì)胞壁的合成、破壞細(xì)胞膜的通透性、阻礙菌絲蛋白質(zhì)的合成、干擾菌體能量代謝系統(tǒng)、抑制核酸的合成等,是微生物防治真菌病害的重要機(jī)制之一。有研究[48]發(fā)現(xiàn)廣譜拮抗植物病原真菌的鏈霉菌 N2 能產(chǎn)新型抗真菌活性物質(zhì),并且能通過改變水稻紋枯病菌的細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)進(jìn)入細(xì)胞,進(jìn)而破壞細(xì)胞質(zhì)中的細(xì)胞器有效地抑制立枯絲核菌的生長。鏈霉菌 RM-1-138 代謝產(chǎn)生的揮發(fā)性物質(zhì)能有效降低立枯絲核菌菌絲體和菌核在健康水稻葉片上的感染程度,采用掃描、透射電子顯微鏡發(fā)現(xiàn)鏈霉菌主要通過破壞立枯絲核菌的細(xì)胞壁起生防作用[63]。 研究[64-65]表明,鏈霉菌 JAU4234 可通過提高幾丁質(zhì)酶活將幾丁質(zhì)水解成 N-乙酰葡萄糖胺,破壞水稻紋枯病菌細(xì)胞壁,降低細(xì)胞膜中麥角甾醇的含量顯著增強(qiáng)質(zhì)膜透性、抑制菌體蛋白質(zhì)合成從而影響呼吸能量代謝系統(tǒng)等多個位點(diǎn)抑制水稻紋枯病菌。

4 總結(jié)與展望

近年來,植物病害的生物防治不僅對環(huán)境友好,同時也促進(jìn)人類發(fā)現(xiàn)了一些與生防微生物緊密相關(guān)的植保新機(jī)制。為能更加高效地利用現(xiàn)有的天然微生物資源,促進(jìn)綠色農(nóng)業(yè)可持續(xù)發(fā)展,深入了解病原菌的致病機(jī)理和有益微生物的生防機(jī)理將有助于更快實(shí)現(xiàn)人類命運(yùn)共同體的夢想。

現(xiàn)階段對水稻紋枯病的病狀、侵染結(jié)構(gòu)等生物學(xué)特性及其傳播途徑和方式都研究得比較清楚,針對細(xì)胞壁降解酶和毒素兩大主要致病因子的研究也越來越多,逐漸深入。其中細(xì)胞壁降解酶的種類、提取與純化及其生理學(xué)特性均較毒素研究更為明確,但細(xì)胞壁降解酶的疏水性、等電點(diǎn)等蛋白質(zhì)特性有待進(jìn)一步研究。同細(xì)胞壁降解酶一樣,水稻紋枯病菌產(chǎn)生的毒素會造成水稻植株細(xì)胞結(jié)構(gòu)損傷,但毒素中的主要毒力成分仍存在較大爭議,有待進(jìn)一步確定。此外,水稻紋枯病菌是如何通過基因調(diào)控產(chǎn)細(xì)胞壁降解酶和毒素的研究還很少,且由于水稻紋枯病菌的遺傳變異性,其產(chǎn)生的致病因子也隨著與寄主的長期互作逐漸變得更加復(fù)雜。如今,隨著分子生物學(xué)、蛋白質(zhì)組學(xué)等現(xiàn)代新技術(shù)的發(fā)展將大大推動致病機(jī)理研究,使人們實(shí)現(xiàn)從宏觀推測到微觀揭示的飛躍。

從作物保護(hù)角度看,更好地了解生防微生物保護(hù)植物的機(jī)制有利于開發(fā)能應(yīng)用于市場的生防制劑。研究的逐步深入,發(fā)現(xiàn)生防微生物對水稻紋枯病的防治存在多種機(jī)制,如上述介紹的單一機(jī)制,也有多種機(jī)制共同作用的結(jié)果。然而,水稻根系復(fù)雜、品種繁多、生防微生物定殖困難、次生代謝物安全性和生產(chǎn)成本等因素都是制約生防微生物進(jìn)入農(nóng)業(yè)生產(chǎn)實(shí)踐的重要原因。如誘導(dǎo)抗性需要水稻的介導(dǎo),其在田間的防效會受環(huán)境、宿主基因型、作物營養(yǎng)和植物誘導(dǎo)程度的影響,筆者在加大研究這些因素時,也要深入對誘導(dǎo)防御啟動成本及其生產(chǎn)效益的評估關(guān)。因此,大力尋找與誘抗有關(guān)的基因并整合到水稻中,將有助于科學(xué)家開發(fā)出一種對多種植物病原具有持久抗性的品種。目前利用生防病毒防治水稻紋枯病的研究還停留在基因組測序和結(jié)構(gòu)解析上,還未發(fā)現(xiàn)能幫助生防病毒在田間廣泛傳播的介體?;蚪M、蛋白質(zhì)和轉(zhuǎn)錄組等生物學(xué)技術(shù)的迅速發(fā)展有助于高效篩選更多有益生防微生物,快速分離純化多種能迅速占領(lǐng)市場的次級代謝物,加深我們了解調(diào)控水稻、水稻紋枯病和生防微生物之間復(fù)雜的互作機(jī)制,從而提高現(xiàn)有的生物控制策略和植物疾病管理的效率。

參考文獻(xiàn):

[1]Wu W, Shah F, Shah F, et al. Rice sheath blight evaluation as affected by fertilization rate and planting density[J]. Australasian Plant Pathology, 2015,44(2):183-189.

[2]Wu W, Liao Y, Shah F, et al. Plant growth suppression due to sheath blight and the associated yield reduction under double rice-cropping system in central China[J]. Field Crops Research, 2013, 144(144):268-280.

[3]Wang L, Liu L M, Wang Z G, et al. Genetic structure and aggressiveness ofRhizoctonia solaniAG1-IA, the cause of sheath blight of rice in southern China[J]. Journal of Phytopathology, 2013, 161(11/12):753-762.

[4]Basu A, Chowdhury S, Ray Chaudhuri T, et al. Differential behaviour of sheath blight pathogenRhizoctonia solaniin tolerant and susceptible rice varieties before and during infection[J]. Plant Pathology, 2016, 65(8):1333-1346.

[5]Liu Z L, Sinclair J B. Differentiation of intraspecific groups within anastomosis group 1 ofRhizoctonia solaniusing ribosomal DNA internal transcribed spacer and isozyme comparisons[J]. Canadian Journal of Plant Pathology, 1993, 15(4):272-280.

[6]Mohammadi M, Banihashemi M, Hedjaroude G-A, et al. Genetic diversity among iranian isolates ofRhizoctonia solaniKühn anastomosis group1 subgroups based on isozyme analysis and total soluble protein pattern[J]. Journal of Phytopathology, 2003, 151(3):162-170.

[7]Carling D E, Kuninaga S, Brainard K A. Hyphal anastomosis reactions, rDNA-internal transcribed spacer sequences, and virulence levels among subsets ofRhizoctonia solanianastomosis group-2 (AG-2) and AG-BI[J]. Phytopathology, 2002, 92(1): 43.

[8]楊迎青, 楊媚, 蘭波, 等. 水稻紋枯病菌致病機(jī)理的研究進(jìn)展[J]. 中國農(nóng)學(xué)通報, 2014, 30(28):245-250.

[9]Singh A K, Srivastava J N. Sheath blight disease of paddy and their management[M]. Springer India, 2015.

[10]Kubicek C P, Starr T L, Glass N L. Plant cell wall-degrading enzymes and their secretion in plant-pathogenic fungi[J]. Annual Review of Phytopathology, 2014, 52(1):427.

[11]張紅. 立枯絲核菌胞壁降解酶及其在致病中的作用[D]. 揚(yáng)州: 揚(yáng)州大學(xué), 2004.

[12]楊媚, 楊迎青, 鄭麗, 等. 水稻紋枯病菌細(xì)胞壁降解酶組分分析、活性測定及其致病作用[J]. 中國水稻科學(xué), 2012, 26(5): 600-606.

[13]Chen J, Wang C, Shu C, et al. Isolation and characterization of a melanin fromRhizoctonia solani, the causal agent of rice sheath blight[J]. Asian Journal of Chemistry, 2015, 14(2):281-290.

[14]陳夕軍, 徐艷, 童蘊(yùn)慧, 等. 水稻紋枯病菌毒素致病機(jī)理研究[J]. 植物病理學(xué)報, 2009, 39(4):439-443.

[15]徐艷. 水稻紋枯病菌毒素的致病機(jī)理及對寄主防御酶活性的影響[D]. 揚(yáng)州: 揚(yáng)州大學(xué), 2006.

[16]李路, 王玲, 劉連盟, 等. 水稻紋枯病菌毒素提取及其對水稻的毒性[J]. 浙江農(nóng)業(yè)科學(xué), 2013, 1(1):60-62.

[17]Akoi H, Sassa T, Tamura T. Phytotoxic metabolites ofRhizoctonia solani[J]. Nature, 1963, 200:575.

[18]Vidhyasekaran P, Ponmalar T R, Samiyappan R, et al. Host-specific toxin production byRhizoctonia solani, the rice sheath blight pathogen.[J]. Phytopathology, 1997, 87(12):1258-63.

[19]O Brien P A. Biological control of plant diseases[J]. Australasian Plant Pathology, 2017,46(4):293-304.

[20]李凱, 袁鶴. 植物病害生物防治概述[J]. 山西農(nóng)業(yè)科學(xué), 2012,40(7):807-810.

[21]Fran?a S K S D, Cardoso A F, Lustosa D C, et al. Biocontrol of sheath blight byTrichoderma asperellum, in tropical lowland rice[J]. Agronomy for Sustainable Development, 2015, 35(1):317-324.

[22]陳立華, 沈珊珊, 邵孝侯, 等. 水稻紋枯病生防菌株的篩選及其應(yīng)用方式的研究[J]. 中國生態(tài)農(nóng)業(yè)學(xué)報, 2014, 22(12): 1469-1475.

[23]沙莎, 劉雷, 潘順, 等. 高速逆流色譜法從哈茨木霉發(fā)酵液中分離純化抑菌活性成分[J]. 中國生物防治學(xué)報, 2013, 29(1): 83-88.

[24]施蕊, 夏菁, 王娟, 等. 滇重樓內(nèi)生真菌的分離及其抗菌活性分析[J]. 貴州農(nóng)業(yè)科學(xué), 2016, 44(7):69-71.

[25]羅文芳, 魏松紅, 王海寧, 等. 水稻紋枯病生防菌的篩選與鑒定[J]. 沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報, 2017, 48(6): 660-665.

[26]李雪婷, 徐夢亞, 鄭少兵, 等. 水稻紋枯病研究進(jìn)展[J]. 長江大學(xué)學(xué)報(自科版), 2017, 14(14):15-18.

[27]Sivasakthi S, Usharani G, Saranraj P. Biocontrol potentiality of plant growth promoting bacteria (pgpr)-pseudomonas fluorescens andBacillus subtilis: A review[J]. African Journal of Microbiology Research, 2014,9(11):1265-1277.

[28]周通, 徐永平, 王麗麗, 等. 地衣芽胞桿菌在植物病害生物防治中的應(yīng)用[J]. 生物資源, 2017,39(2):85-92.

[29]陳劉軍, 俞儀陽, 王超, 等. 蠟質(zhì)芽孢桿菌AR156防治水稻紋枯病機(jī)理初探[J]. 中國生物防治學(xué)報, 2014, 30(1):107-112.

[30]Wang L, Liu M, Liao M. Proteomic response ofRhizoctonia solaniGD118 suppressed byPaenibacillus kribbensisPS04[J]. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 2014,30(12):3037-3045.

[31]陳思宇, 陳志誼, 張榮勝. 水稻紋枯病菌拮抗細(xì)菌的篩選及鑒定[J]. 植物保護(hù)學(xué)報, 2013, 40(3):211-218.

[32]唐利華, 莫賤友, 郭堂勛, 等. 真菌病毒的研究進(jìn)展[J]. 中國農(nóng)學(xué)通報, 2016, 32(12):84-91.

[33]Zhong J, Chen D, Lei X H, et al. Detection and characterization of a novel gammapartitivirus in the phytopathogenic fungusColletotrichum acutatumstrain HNZJ001[J]. Virus Research, 2014,190(7):104-109.

[34]Xie J, Jiang D. New insights into mycoviruses and exploration for the biological control of crop fungal diseases[J]. Annual Review of Phytopathology, 2014, 52(1):45-68.

[35]Zhang M, Zheng L, Liu C, et al. Characterization of a novel dsRNA mycovirus isolated from strain A105 ofRhizoctonia solaniAG-1 IA[J]. Archives of Virology, 2018, 163(2):427-430.

[36]Bartholom?us A, Wibberg D, Winkler A, et al. Identification of a novel mycovirus isolated fromRhizoctonia solani(AG 2-2 IV) provides further information about genome plasticity within the order Tymovirales[J]. Archives of Virology, 2017,162(2): 555-559.

[37]Lyu R, Zhang Y, Tang Q, et al. Two alphapartitiviruses co-infecting a single isolate of the plant pathogenic fungusRhizoctonia solani[J]. Archives of Virology, 2017, 163(1):1-6.

[38]Li Z, Zhang M, Chen Q, et al. A novel mycovirus closely related to viruses in the genus alphapartitivirus, confers hypovirulence in the phytopathogenic fungusRhizoctonia solani[J]. Virology, 2014, 456-457(1):220.

[39]Seipke R F, Kaltenpoth M, Hutchings M I. Streptomyces as symbionts: an emerging and widespread theme?[J]. FEMS Microbiology Reviews,2012, 36(4):862-876.

[40]Solanki M K, Malviya M K, Wang Z. Actinomycetes bio-inoculants: A modern prospectus for plant disease management[J]Plant Growth Promoting Actinobacteria, 2016, 63-81.

[41]Couillerot O, Loqman S, Toribio A. Purification of antibiotics from the biocontrol agentStreptomyces anulatusS37 by centrifugal partition chromatography[J]. Journal of Chromatography B Analytical Technologies in the Biomedical & Life Sciences, 2014, 944(944C):30-34.

[42]Kim B S, Hwang B K. Microbial fungicides in the control of plant diseases[J]. Journal of Phytopathology, 2007, 155(12): 641-653.

[43]Harikrishnan H, Shanmugaiah V, Balasubramanian N, et al. Antagonistic potential of native strainStreptomyces aurantiogriseusVSMGT1014 against sheath blight of rice disease.[J]. World Journal of Microbiology & Biotechnology, 2014, 30(12): 3149-3161.

[44]韋坤逢, 王麗, 李燦燦, 等. 辣椒根際鏈霉菌WKFF34的分離鑒定及拮抗作用[J]. 江西農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2018,40(1):78-88.

[45]張慧雯, 薛秀園, 張智平, 等. 鏈霉菌702所產(chǎn)抗真菌物質(zhì)對水稻紋枯病菌的抑菌機(jī)制研究[J]. 江西農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報, 2007, 29(1):38-42.

[46]周云, 張智平, 涂曉嶸, 等. 農(nóng)抗702抗真菌活性的測定[J]. 江西農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2009,31(6):1127-1133.

[47]聶麗, 邵正英, 游思遠(yuǎn), 等. 誘導(dǎo)子促進(jìn)鏈霉菌702產(chǎn)農(nóng)抗702作用機(jī)制的初探[J]. 江西農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報, 2017, 39(1): 161-167.

[48]Xu B, Chen W, Wu Z M, et al. A novel and effectiveStreptomyces,sp. N2 against various phytopathogenic fungi[J]. Applied Biochemistry & Biotechnology, 2015, 177(6):1338-1347.

[49]彭衛(wèi)福, 李昆太, 曾勇軍. 水稻病害的微生物防治研究進(jìn)展[J]. 江西農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報, 2015, 37(4):625-631.

[50]Hyakumachi M, Takahashi H, Matsubara Y, et al. Recent studies on biological control of plant diseases in Japan[J]. Journal of General Plant Pathology, 2014, 80(4):287-302.

[51]Gustavo Santoyo, Ma. del Carmen Orozco-Mosqueda, M. Govindappa. Mechanisms of biocontrol and plant growth-promoting activity in soil bacterial species of Bacillus and Pseudomonas: a review[J]. Biocontrol Science & Technology, 2012, 22(8): 855-872.

[52]盧鈺升, 顧文杰, 蔣瑞萍, 等. 解淀粉芽孢桿菌GB58對水稻紋枯病的防效及菌劑載體篩選[J]. 中國農(nóng)學(xué)通報, 2017, 33(11):119-125.

[53]Haggag W M, Mohamed H A L A. Biotechnological aspects of microorganisms used in plant biological control[J]. American-Eurasian Journal of Sustainable Agriculture, 2007, 1(1): 7-12.

[54]張建. 生防木霉(Trichoderma guizhouenseNJAU 4742)重寄生分子機(jī)理研究Ⅰ中性金屬肽酶NMP1和活性氧的功能分析 [D]. 南京: 南京農(nóng)業(yè)大學(xué), 2015.

[55]Hassan A A, El-Barawy A M, El Mokhtar M N.Evaluation of biological compounds of streptomyces species for control of some fungal diseases[J]. Journal of American Science, 2011,7(4):752-760.

[56]Senthilraja G. Induction of systemic resistance in crop plants against plant pathogens by plant growth-promoting actinomycetes [C]//Plant Growth Promoting Actinobacteria. Springer Singapore, 2016.

[57]Walters D R, Ratsep J, Havis N D. Controlling crop diseases using induced resistance: challenges for the future[J]. Journal of Experimental Botany, 2013,64(5):1263-1280.

[58]Sousa J A O D, Olivares F L. Plant growth promotion by streptomycetes: ecophysiology, mechanisms and applications[J].World Journal of Microbiology and Biotechnology, 2016,3(1):1-12.

[59]邵正英, 聶麗, 徐志榮, 等. 鏈霉菌JD211對水稻酚類物質(zhì)及相關(guān)酶活的影響[J]. 江西農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報, 2017, 39(5): 983-988.

[60]杜亞楠, 魏賽金, 涂國全, 等. 新農(nóng)抗702對水稻抗紋枯病誘導(dǎo)抗性的初步研究[J].江西農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報, 2012, 34(2): 270-275.

[61]徐佳. 新農(nóng)抗702誘導(dǎo)水稻防御紋枯病的生理生化機(jī)理研究[D]. 南昌: 江西農(nóng)業(yè)大學(xué), 2012.

[62]Gopalakrishnan S, Vadlamudi S, Bandikinda P, et al. Evaluation of Streptomyces strains isolated from herbal vermicompost for their plant growth-promotion traits in rice[J]. Microbiological Research, 2014, 169(1):40-48.

[63]Boukaew S, Plubrukam A, Prasertsan P. Effect of volatile substances fromStreptomyces philanthiRM-1-138 on growth ofRhizoctonia solanion rice leaf[J]. Biocontrol, 2013,58(4):471-482.

[64]Xiong Z Q, Tu X R, Wei S J, et al. The mechanism of antifungal action of a new polyene macrolide antibiotic antifungalmycin 702 fromStreptomyces padanusJAU4234 on the rice sheath blight pathogenRhizoctonia solani[J]. Plos One, 2013, 8(8): e73884.

[65]魏賽金, 杜亞楠, 倪國榮, 等. 農(nóng)抗702對植物病原真菌的抑制效果及抑菌機(jī)理[J]. 應(yīng)用生態(tài)學(xué)報, 2012(12):3435-3440.

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