吳維,江娟,呂磊,梁嘉前,孫瑩,袁敬東,章傳華,周高峰
(湖北省武漢市第一醫(yī)院 泌尿外科,湖北 武漢 430022)
近年來我國男性前列腺癌的發(fā)病率和死亡率呈上升趨勢,且我國大多數(shù)前列腺癌患者在初診時(shí)就已經(jīng)出現(xiàn)轉(zhuǎn)移,給臨床治療帶來極大的挑戰(zhàn)[1-3]。外泌體(Exosomes)是細(xì)胞通過胞內(nèi)體內(nèi)陷形成多泡體再與細(xì)胞膜融合釋放,該種細(xì)胞脂質(zhì)雙層膜結(jié)構(gòu),直徑大約40~100 nm[4]。外泌體攜帶母體細(xì)胞特征性生物信息分子(如脂質(zhì),蛋白質(zhì),DNA,mRNA,miRNA),并可作為細(xì)胞間運(yùn)輸載體將該生物分子傳遞給其他細(xì)胞[5-6],參與多種生物學(xué)行為。研究證實(shí),外泌體不僅存在于體外培養(yǎng)的細(xì)胞上清中,且大量存在于機(jī)體的血液、尿液和唾液等體液和疾病狀態(tài)下的胸水、腹水之中[7-9]。其中,外周血中的外泌體與多種疾病如心血管疾病和惡性腫瘤密切相關(guān),并可作為這些疾病診斷的重要潛在標(biāo)志物[10-12]。本研究的目的是比較正常人和前列腺患者外周血外泌體的含量,并探究外泌體在前列腺癌遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移中的作用。
選取2016年1月1日-2016年12月31日于武漢市第一醫(yī)院泌尿外科就診的前列腺癌患者16例。手術(shù)切除16例前列腺癌標(biāo)本及相應(yīng)瘤旁組織,所有標(biāo)本均由2位病理醫(yī)師獨(dú)立診斷,并結(jié)合患者臨床表現(xiàn)、影像學(xué)及組織學(xué)特點(diǎn)確診?;颊吣挲g54~72歲,中位年齡61.81歲。所有患者均無飲酒愛好,多數(shù)患者無吸煙愛好。標(biāo)本獲取前均告知患者并簽署知情同意書,研究方案經(jīng)武漢市第一醫(yī)院倫理委員會批準(zhǔn)。
1.2.1 材料和設(shè)備 DMEM培養(yǎng)基、胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)、磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered solution,PBS)及雙抗(青霉素+鏈霉素)、胰蛋白酶(購自美國Hyclone公司),MTT、DAPI封片劑(購自武漢谷歌生物科技有限公司),Ki-67、CD63、CD9、GAPDH一抗(購自美國Sigma公司),細(xì)胞培養(yǎng)耗材(購自無錫耐思生物科技有限公司)。
1.2.2 外泌體的分離與純化 用含抗凝劑的真空采血管收集前列腺癌者5 ml靜脈血樣品;并轉(zhuǎn)移至離心管中,4℃條件下,1 000 r/min離心20 min,取上清液,加入上清體積3倍的無菌PBS稀釋血清;4℃條件下4 600 r/min離心20 min;取上清液,并將上清液以0.2 μm濾器過濾,最后4℃條件下34 000 r/min離心70 min,得到沉淀,并以150 μl無菌PBS重懸沉淀,即獲得外泌體。以BCA法測定外泌體蛋白濃度,置于-80℃冰箱冷凍保存?zhèn)溆?。收集?xì)胞培養(yǎng)上清,以上述離心方法收集細(xì)胞上清中外泌體。
1.2.3 外泌體形態(tài)表征 取10 μl外泌體PBS垂懸液滴于碳支持膜銅網(wǎng)上,室溫孵育5 min,濾紙吸干銅網(wǎng);將銅網(wǎng)置于1%磷鎢酸復(fù)染液中染色,3 min后濾紙吸干液體,自然晾干銅網(wǎng);將銅網(wǎng)置于Hitachi HT7700型透射電鏡上觀察、拍照,測量外泌體粒徑大小。將PBS重懸的外泌體樣品吸附至鎳網(wǎng)上,自然風(fēng)干;2.5%的戊二醛固定10 min,PBS漂洗3次;加入CD63抗體20 ml(1∶100)或CD9抗體20 ml(1∶100)于37℃孵育2 h,PBS漂洗3次,加入金標(biāo)二抗20 ml(1∶100)于37℃孵育1 h,PBS漂洗3次;醋酸鈾負(fù)染5 min,以濾紙吸干染液;待樣品干燥后置于透射電鏡下觀察。
1.2.4 Western blot 收集蛋白,并用BCA蛋白定量檢測試劑盒測定蛋白濃度。按所測蛋白濃度計(jì)算樣品(蛋白上樣量為20 μg)和上樣緩沖液體積后,將其混合并置于95℃水浴鍋中水浴5 min。配制10%SDS-聚丙烯酰胺凝膠(SDS-PAGE),80 V恒壓下蛋白電泳至分離膠與濃縮膠界面時(shí)換為120 V電壓,然后200 mA,2 h恒流下將蛋白轉(zhuǎn)至PVDF膜。封閉2 h后,分別以 CD63(1∶ 1 000)、CD9(1∶ 1 000)、Cyclin D1(1 ∶ 1 000)、phospho-Rb(pRb,1 ∶ 1 000)、GAPDH(1∶10 000)抗體4℃孵育過夜。TBST洗膜3次,每次10 min。相應(yīng)二抗室溫孵育2 h,TBST洗膜3次,每次10 min。化學(xué)發(fā)光劑顯色后,蛋白凝膠成像系統(tǒng)分析樣品中目標(biāo)蛋白的相對含量。
1.2.5 細(xì)胞培養(yǎng) 前列腺細(xì)胞系LNCap細(xì)胞來源于中國典型培養(yǎng)物保藏中心(China Center for Type Culture Collection,CCTCC)。LNCap細(xì)胞培養(yǎng)于含10%FBS的DMEM培養(yǎng)基中,隔天換液,每3天傳代1次;細(xì)胞培養(yǎng)環(huán)境為37℃、約95%濕度、5%二氧化碳CO2濃度。
1.2.6 MTT實(shí)驗(yàn) 收集對數(shù)期細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞懸液濃度加入96孔板:每孔加入100 μl,使細(xì)胞調(diào)密度1 000~10 000/孔。細(xì)胞分為對照組和實(shí)驗(yàn)組,實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞分別加入終濃度為5、10和15 μg/ml前列腺癌患者來源的外泌體。5% CO2,37℃孵育0~72 h,每孔加入10 μl MTT溶液(5 mg/ml),繼續(xù)培養(yǎng)4 h。終止培養(yǎng),小心吸去孔內(nèi)培養(yǎng)液。每孔加入100 μl二甲基亞砜,置搖床上低速振蕩10 min,使結(jié)晶物充分溶解。在酶聯(lián)免疫檢測儀OD490 nm處測量各孔的吸光值,并與對照組0 h的吸光度值比較。
1.2.7 細(xì)胞活力檢測 收集對數(shù)期細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞懸液濃度加入12孔板:每孔加入2 ml,使細(xì)胞調(diào)密度5×105/孔。細(xì)胞分為對照組和實(shí)驗(yàn)組,實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞分別加入終濃度為15 μg/ml前列腺癌患者來源的外泌體。5% CO2,37℃孵育24 h,終止培養(yǎng),小心吸去孔內(nèi)培養(yǎng)液,消化細(xì)胞,細(xì)胞活力儀器檢測細(xì)胞活力。
1.2.8 免疫組織化學(xué)染色 標(biāo)本取材后切成小塊組織,4%多聚甲醛固定標(biāo)本、流水沖洗后,梯度酒精脫水、石蠟包埋及組織切片(4 μm)。然后二甲苯脫蠟、梯度酒精入水、高壓抗原修復(fù)、羊血清37℃孵育切片20 min,甩去血清,滴加CD63一抗(1∶200),4℃孵育過夜。滴加相應(yīng)辣根過氧化物酶標(biāo)記的二抗約50 μl完全覆蓋切片,37℃孵育切片20 min。PBS緩沖液漂洗后,滴加鏈霉親和素-過氧化物酶,37℃孵育切片20 min。PBS緩沖液漂洗后,于光學(xué)顯微鏡下顯色。蘇木素復(fù)染細(xì)胞核后流水沖洗15 min后,梯度酒精脫水,切片晾干后行二甲苯透明及中性樹膠封片過夜。光學(xué)顯微鏡隨機(jī)拍攝5個(gè)高倍視野(×200)/張切片,利用Image-Pro Plus軟件統(tǒng)計(jì)CD63著色強(qiáng)度。染色評分由2位經(jīng)驗(yàn)豐富的病理醫(yī)師進(jìn)行雙盲閱片完成,取其平均值。
1.2.9 外泌體對前列腺癌肺轉(zhuǎn)移模鼠的影響 將對數(shù)生長期的LNCap細(xì)胞以PBS重懸,使細(xì)胞密度為1×107個(gè)/ml。將200 μl含有細(xì)胞的PBS懸液經(jīng)尾靜脈注入裸鼠體內(nèi)(每組各10只)。實(shí)驗(yàn)組老鼠,每3天經(jīng)尾靜脈注射1次外泌體(50 μg/次),連續(xù)注射3次。觀察期結(jié)束后,安樂死動物,收獲肺組織切片脫蠟、梯度酒精入水后,滴加適量ki-67(鼠源)和CD-63(兔源)一抗,37℃孵育1 h;PBS洗去抗體;滴加適量對應(yīng)二抗,37℃避光孵育30 min,PBS洗去抗體;以含DAPI封片劑封片;最后置于熒光顯微鏡下觀察并拍照成像。
數(shù)據(jù)分析采用GraphPad Prism 6.0軟件,計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,兩兩比較用t檢驗(yàn),3組及3組以上采用單因素方差分析(One-way-ANOVA)及重復(fù)測量設(shè)計(jì)的方差分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
按圖1A所示的程序,離心法收集前列腺患者外周血中的外泌體。將離心所得沉淀以PBS垂懸后,置于透射電鏡下觀察:分離所得的沉淀呈雙層膜結(jié)構(gòu),大小范圍為20~100 nm,其中30~60 nm的雙層膜結(jié)構(gòu)最多(見圖1B)。Western blot結(jié)果提示,離心分離的沉淀中高表達(dá)CD63和CD9(見圖1C)。免疫電鏡結(jié)果進(jìn)一步提示,CD63、CD9表達(dá)的位置位于雙側(cè)膜結(jié)構(gòu)外膜(見圖1D)。上述鑒定結(jié)果顯示分離所得的沉淀的粒徑分布范圍和表面標(biāo)志分子的表達(dá)均與報(bào)道的文獻(xiàn)結(jié)果一致[13],證明本研究分離所得的沉淀為外泌體。
分別收集正常人和前列腺癌患者外周血外泌體,以BCA法測定外泌體總蛋白含量。結(jié)果發(fā)現(xiàn),前列腺癌患者外泌體含量為(27.69±11.66)μg/ml,高于正常人外周血中外泌體含量(7.41±5.2)μg/ml(見圖2A),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=6.313,P=0.000)。16例前列腺癌患者分為無遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移(n=6)和伴發(fā)遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移(n=10)兩組,并進(jìn)一步分析兩組患者外周血外泌體含量。見圖2B所示,伴遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移的前列腺癌患者外周血中外泌體含量(33.40±10.45)μg/ml<無遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移前列腺癌患者外周血中外泌體含量(18.17±5.96)μg/ml,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=3.055,P=0.0086)。以上結(jié)果提示外泌體可能在前列腺癌的進(jìn)展中起重要作用。同時(shí),前列腺癌中CD63組織學(xué)評分(2.04±0.61)高于癌旁正常前列腺組織組織學(xué)評分(0.55±0.21),差異有統(tǒng)計(jì)意義(t=3.870,P=0.000)。見圖2C、2D。
為進(jìn)一步研究外泌體在前列腺發(fā)展中的作用,評估外泌體對前列腺癌細(xì)胞活力和增殖能力的影響。實(shí)驗(yàn)組和對照組數(shù)據(jù)的方差分析,結(jié)果:不同濃度外泌體處理24 h后細(xì)胞活力無差異(F=0.360,P=0.836)(見圖3A),不同濃度的外泌體對細(xì)胞活力無影響。MTT實(shí)驗(yàn)證實(shí),不同濃度處理后的細(xì)胞增殖活性有差異(F=0.650,P=0.018)。實(shí)驗(yàn)組間細(xì)胞增殖活性有差異(F=0.845,P=0.025),外泌體濃度越高,細(xì)胞增殖活性越高。實(shí)驗(yàn)組和對照組細(xì)胞增殖活性變化趨勢有差異(F=0.576,P=0.015),見圖 2B。
圖1 前列腺癌患者外周血外泌體的分離和鑒定
圖2 前列腺癌患者外周血外泌體含量
Western blot實(shí)驗(yàn)顯示 Cyclin D1(F=0.725,P=0.027)和 pRb(F=0.618,P=0.015)高于對照組細(xì)胞。實(shí)驗(yàn)組間細(xì)胞增殖活性有差異(F=0.320,P=0.014),外泌體濃度越高,Cyclin D1和pRb表達(dá)水平越高。實(shí)驗(yàn)組和對照組細(xì)胞增殖活性變化趨勢有差異(F=0.576,P=0.015),見圖3B、3C。收集外泌體處理組和對照組細(xì)胞培養(yǎng)上清液,并分離上清中外泌體。BCA測定外泌體總蛋白后發(fā)現(xiàn),外泌體處理組細(xì)胞外泌體分泌量大于對照組細(xì)胞外泌體產(chǎn)量(F=0.451,P=0.027)(見圖3D),且促進(jìn)作用具有濃度依賴性。
注射外泌體組裸鼠肺部轉(zhuǎn)移灶數(shù)目(16.28±6.94)多于對照組(4.72±2.51)差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=5.265,P=0.000)(見圖4A、B)。肺組織切片H&E染色結(jié)果進(jìn)一步證實(shí),單位面積內(nèi)肺轉(zhuǎn)移灶面積大于對照組(見圖4C)。外泌體處理組裸鼠存活時(shí)間較對照組組裸鼠存活時(shí)間短,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(見圖4D)(χ2=6.606,P=0.000)。肺轉(zhuǎn)移灶免疫熒光分析結(jié)果顯示,外泌體處理組轉(zhuǎn)移瘤標(biāo)本中CD63和Ki-67表達(dá)水平高于對照組(見圖5A、B),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=4.238,P=0.0067)。
圖3 前列腺癌患者外泌體對前列腺癌細(xì)胞增殖和外泌體分泌的影響
圖4 前列腺癌患者外泌體對前列腺癌肺轉(zhuǎn)移裸鼠的影響
圖5 肺轉(zhuǎn)移灶中CD63和Ki-67的表達(dá)
圖6 外泌體在前列腺癌發(fā)展和轉(zhuǎn)移中的作用
盡管外泌體最初在1983年就被發(fā)現(xiàn),但人們一直認(rèn)為它只是一種細(xì)胞的廢棄物[14]。然而最近幾年,人們發(fā)現(xiàn)這種微小膜泡中含有細(xì)胞特異的蛋白、脂質(zhì)和核酸,能作為信號分子傳遞給其他細(xì)胞從而改變其他細(xì)胞的功能。該發(fā)現(xiàn)點(diǎn)燃了人們對細(xì)胞分泌膜泡的興趣。最近的研究發(fā)現(xiàn)外泌體在很多生理病理上起著重要的作用,如免疫中抗原呈遞、腫瘤的生長與遷移、組織損傷的修復(fù)等。不同細(xì)胞分泌的外泌體具有不用的組成成分和功能,可作為疾病診斷的生物標(biāo)志物。近期有學(xué)者報(bào)道,乳腺癌細(xì)胞來源的外泌體可在肺部或肝部形成利于乳腺癌細(xì)胞生成的微環(huán)境,為迎接癌細(xì)胞向上述器官轉(zhuǎn)移鋪平道路[15]。說明外泌體在腫瘤轉(zhuǎn)移中起前鋒作用。我國大多數(shù)前列腺癌患者在初診時(shí)就已經(jīng)出現(xiàn)轉(zhuǎn)移,遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移最常見于骨轉(zhuǎn)移和肺轉(zhuǎn)移。前列腺癌細(xì)胞來源的外泌體在前列腺癌的遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移中是否起作用作用目前尚無文獻(xiàn)報(bào)道。
本研究結(jié)果顯示,前列腺癌患者外周血外泌體濃度高于正常人。此外,伴遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移的前列腺癌患者外周血中外泌體的含量對于無遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移前列腺癌患者。提示外泌體可能在前列腺癌的發(fā)生和發(fā)展中起重要作用。并且前列腺癌患者外周血外泌體可以提高前列腺癌細(xì)胞的增殖活性。隨后在肺轉(zhuǎn)移模型中發(fā)現(xiàn),前列腺癌患者來源的外泌體在裸鼠體內(nèi)可促進(jìn)前列腺癌細(xì)胞的肺轉(zhuǎn)移。該結(jié)果可解釋伴遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移的前列腺患者外周血中外泌體的含量高于無遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移的前列腺癌患者。同時(shí),上述結(jié)果還顯示,外泌體可促進(jìn)前列腺癌的發(fā)展,并加速前列腺癌的遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移。此外,還發(fā)現(xiàn),前列腺癌患者來源的外泌體還可以提高前列腺癌細(xì)胞分泌外泌體的能力,促進(jìn)前列腺癌細(xì)胞分泌更多的外泌體。筆者推測,外泌體分泌的增加,導(dǎo)致患者外周血中外泌體含量的進(jìn)步一提高,從而進(jìn)一步促進(jìn)前列腺癌的發(fā)展和轉(zhuǎn)移,并誘使細(xì)胞分泌更多的外泌體,形成1個(gè)正反饋環(huán)(見圖6),最終導(dǎo)致前列腺癌發(fā)展加速和遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移的形成。
總之,本研究發(fā)現(xiàn):①前列腺癌患者外周血外泌體含量高于正常人;②伴遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移的前列腺癌患者外泌體含量高于無遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移前列腺患者;③外泌體促進(jìn)前列腺細(xì)胞增殖和外泌體分泌;④外泌體促進(jìn)前列腺癌的遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移。本研究的結(jié)果有助于理解前列腺癌的發(fā)生、發(fā)展以及轉(zhuǎn)移轉(zhuǎn)移的機(jī)制,以期尋找更好的治療方法。
[1]韓蘇軍, 張思維, 陳萬青, 等. 中國前列腺癌發(fā)病現(xiàn)狀和流行趨勢分析[J]. 臨床腫瘤學(xué)雜志, 2013, 18(4): 330-334.
[2]李漢忠, 張玉石. 2016年前列腺癌診治熱點(diǎn)回顧[J]. 中華外科雜志, 2017, 55(1): 59-62.
[3]葉定偉, 朱耀. 中國前列腺癌的流行病學(xué)概述和啟示[J]. 中華外科雜志, 2015, 53(4): 249-252.
[4]MAUSE S F, WEBER C. Microparticles: protagonists of a novel communication network for intercellular information exchange[J].Circulation research, 2010, 107(9): 1047-1057.
[5]KANADA M, BACHMANN M H, HARDY J W, et al. Differential fates of biomolecules delivered to target cells via extracellular vesicles[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences,2015, 112(12): E1433-E1442.
[6]CHEN G, ZHU J Y, ZHANG Z L, et al. Transformation of cellderived microparticles into quantum-dot-labeled nanovectors for antitumor siRNA delivery[J]. Angewandte Chemie (International ed in English), 2015, 54: 1036-1040.
[7]PICCIN A, MURPHY W G, SMITH O P. Circulating microparticles: pathophysiology and clinical implications[J]. Blood Reviews, 2007, 21(3): 157-171.
[8]OROZCO A F, LEWIS D E. Flow cytometric analysis of circulating microparticles in plasma[J]. Cytometry A, 2010, 77(6): 502-514.
[9]MRVAR-BRECKO A, SUSTAR V, JANSA V, et al. Isolated microvesicles from peripheral blood and body fl uids as observed by scanning electron microscope[J]. Blood Cells Mol Dis, 2010,44(4): 307-312.
[10]REN J G, MAN Q W, ZHANG W, et al. Elevated level of circulating platelet-derived microparticles in oral cancer[J].Journal of Dental Research, 2016, 95(1): 87-93.
[11]BEREZIN A, ZULLI A, KERRIGAN S. Predictive role of circulating endothelial-derived microparticles in cardiovascular diseases[J]. Clinical Biochemistry, 2015, 48(9): 562-568.
[12]AMABILE N, HEISS C, REAL W M, et al. Circulating endothelial microparticle levels predict hemodynamic severity of pulmonary hypertension[J]. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine, 2008, 177(11): 1268-1275.
[13]SIMONS M, RAPOSO G. Exosomes-vesicular carriers for intercellular communication[J]. Current Opinion in Cell Biology,2009, 21(4): 575.
[14]TAYLOR D D, GERCELTAYLOR C. MicroRNA signatures of tumor-derived exosomes as diagnostic biomarkers of ovarian cancer[J]. Gynecologic Oncology, 2008, 110(1): 13-21.
[15]AYUKO H, BRUNO C S, SHEN T L, et al. Tumour exosome integrins determine organotropic metastasis[J]. Nature, 2015,527(7578): 329.