国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

重離子的輻射生物效應(yīng)及其在生命科學(xué)中的應(yīng)用

2018-01-31 03:45:20賈蓉蘇鋒濤胡步榮
生物技術(shù)通報 2018年1期
關(guān)鍵詞:重離子突變體菌株

賈蓉 蘇鋒濤 胡步榮

(1. 中國科學(xué)院重離子輻射生物醫(yī)學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 甘肅省空間輻射生物學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 中國科學(xué)院近代物理研究所,蘭州 730000;2. 復(fù)旦大學(xué)附屬腫瘤醫(yī)院腫瘤研究所,上海 200032;3. 中國科學(xué)院大學(xué),北京 100049)

重離子是指重于元素周期表中2號元素氦并被電離的粒子。線性能量傳遞(Linear energy transfer,LET),又稱為傳能線密度,是描寫射線性質(zhì)的一種物理量,單位為J/m,常用keV/μm表示,指的是電離粒子在其單位長度徑跡上消耗的平均能量,即電離輻射貫穿物質(zhì)時,因碰撞而發(fā)生的能量轉(zhuǎn)移。重離子屬于高LET類型的粒子,這種粒子在其穿透的路徑上,產(chǎn)生很強(qiáng)的局部電離,與傳統(tǒng)的光子輻射(如X、γ射線)相比,會誘導(dǎo)更嚴(yán)重的輻射損傷生物效應(yīng)。外太空中存在著高能量的質(zhì)子和重離子,它們對生命體細(xì)胞會產(chǎn)生嚴(yán)重的電離作用,導(dǎo)致細(xì)胞死亡、染色體畸變和癌癥發(fā)生,影響著外太空航天員的健康安全[1]。在近層宇宙空間(即距離地球100 km到幾百公里的空間)中,由于地球磁場的捕獲作用(Van Allen Belt,范艾倫輻射帶),這些高能的質(zhì)子與重離子被屏蔽,因此,生活在地面的人們,處在一個相對安全的環(huán)境[2]。隨著核科學(xué)研究的需要和核技術(shù)的發(fā)展,人們在地面建立了重離子加速器裝置,這種裝置的建立,不僅大大促進(jìn)了核科學(xué)的研究與相應(yīng)技術(shù)的發(fā)展,也促進(jìn)了核技術(shù)在生命科學(xué)基礎(chǔ)與應(yīng)用領(lǐng)域的研究,更好的理解DNA團(tuán)簇?fù)p傷與修復(fù)機(jī)制及重離子在生命科學(xué)中的應(yīng)用,能為未來研究方向提供方便,促進(jìn)對重離子輻射危害的評估與防護(hù)策略的建立,以及其得到更好的應(yīng)用。

1 高能重離子誘導(dǎo)的DNA損傷

1.1 高能重離子誘導(dǎo)DNA團(tuán)簇?fù)p傷

電離輻射通過射線的直接作用和間接作用引起DNA分子發(fā)生多種類型損傷,包括如圖1所示的堿基位點(diǎn)損傷(Apurinic/apyrimidinic sites,APs),損傷堿基(Oxidized purines or pyrimidines),單鏈斷裂(Single-strand breaks,SSBs)或雙鏈斷裂(Double-strand breaks,DSBs)[3]。DSBs損傷是輻射引起的各種生物效應(yīng)中最重要的原初損傷之一,無論是光子(如X或γ射線)還是帶電粒子誘導(dǎo)的未修復(fù)的或錯誤修復(fù)的DSBs,均會導(dǎo)致細(xì)胞毒性、突變和輻射致癌效應(yīng)[4-5]。一系列的證據(jù)揭示高LET輻射誘導(dǎo)細(xì)胞在DNA局部一到兩個螺旋(約10 nm)之間出現(xiàn)2個或更多個損傷(單一或復(fù)合類型損傷)[6],這種密集的損傷類型被稱之為DNA團(tuán)簇?fù)p傷(又稱之為復(fù)雜的或簇集DNA損傷,Clustered DNA damage,圖2)。DNA團(tuán)簇?fù)p傷比單個獨(dú)立的DSBs更難以修復(fù),有的情況下更是不可修復(fù)[7-15],這是高LET輻射比低LET輻射有更高的相對生物學(xué)效應(yīng)(如細(xì)胞殺傷、染色體畸變、突變和致癌形成)的一個主要原因[16-18]。利用識別DNA損傷不同類型的抗體,不同熒光素結(jié)合的二抗,進(jìn)行免疫熒光染色,激光共聚焦顯微鏡細(xì)胞三維成像,可直觀地觀察到DNA團(tuán)簇?fù)p傷的不同類型(hOGG1-堿基損傷,XRCC1-單鏈損傷,53BP1-雙鏈損傷;如圖3所示)高度共定位。這些團(tuán)簇?fù)p傷復(fù)雜、修復(fù)困難,致使細(xì)胞周期停止時間長,導(dǎo)致更多的染色體發(fā)生畸變(圖4)[19]。軟瓊脂囊球?qū)嶒?yàn)表明DNA團(tuán)簇?fù)p傷將會引發(fā)更多的細(xì)胞發(fā)生轉(zhuǎn)化事件[20]。但為什么DNA團(tuán)簇?fù)p傷難以修復(fù)以及這些損傷激發(fā)的癌癥形成事件的機(jī)制還不十分清楚,還需要繼續(xù)深入研究。

David-Cordonnier等的研究顯示,在DNA團(tuán)簇?fù)p傷區(qū)域內(nèi),當(dāng)有第二個AP位點(diǎn)或單鏈斷裂存在時,第一個AP位點(diǎn)的切開以便于修復(fù)的效率顯著地降低[23]。一系列研究也顯示,不論是利用哺乳動物細(xì)胞提取物還是純化的修復(fù)酶,對DNA團(tuán)簇?fù)p傷中AP位點(diǎn)或8-氧鳥嘌呤位點(diǎn)(8-oxoguanine,8-OxoG)的修復(fù),都不起作用[23-25]。在大腸桿菌和哺乳動物細(xì)胞中,一些DNA團(tuán)簇?fù)p傷位點(diǎn)的單個損傷類型在試圖進(jìn)行修復(fù)時,也可能導(dǎo)致致命的DSBs[3,26-30]。DNA團(tuán)簇?fù)p傷中不同損傷類型的空間分布和在細(xì)胞核內(nèi)(常染色質(zhì)或異染色質(zhì)上)損傷的實(shí)際位置可能影響細(xì)胞DNA團(tuán)簇?fù)p傷的修復(fù)能力。用分子動力學(xué)模擬的方法,已經(jīng)能檢驗(yàn)帶有一個堿基或8-氧鳥嘌呤的DNA團(tuán)簇?fù)p傷分子的構(gòu)象變化及其能荷特性,其結(jié)果顯示,含有團(tuán)簇?fù)p傷的DNA分子具有特殊的性能特點(diǎn):在損傷位點(diǎn)能劇烈地彎曲,8-氧鳥嘌呤和互補(bǔ)鏈的堿基之間的靜電相互作用能削弱或徹底失去[31]。這些構(gòu)象可能使得修復(fù)酶與損傷區(qū)域的結(jié)合變得困難,也可能由于DNA團(tuán)簇?fù)p傷中多種損傷的致密空間分布使修復(fù)酶不能結(jié)合于某種損傷類型位點(diǎn),從而導(dǎo)致修復(fù)能力的下降[13]。研究顯示,非雙鏈斷裂的簇集損傷類型(如單鏈斷裂、堿基損傷),如果沒有修復(fù),也會導(dǎo)致基因突變和染色體異常[32]。

圖1 電離輻射誘導(dǎo)的DNA損傷類型

圖2 電離輻射誘導(dǎo)的DNA損傷

圖3 低LET與高LET輻射誘導(dǎo)的DNA損傷類型與差異

圖4 低LET與高LET輻射誘導(dǎo)的染色體畸變類型與差異

1.2 重離子誘導(dǎo)的DNA團(tuán)簇?fù)p傷修復(fù)途徑

重離子誘導(dǎo)的DNA團(tuán)簇?fù)p傷包括兩個基本組成類型:DSBs和非DSBs。DSBs的正確修復(fù)對細(xì)胞生存和基因組完整性至關(guān)重要[33]。在哺乳動物細(xì)胞,DSBs主要由兩個明確的途徑被修復(fù):非同源末端連接修復(fù)(Non-homologous end-joining repair,NHEJ)和同源重組修復(fù)(Homologous recombination repair,HR)[34](圖 5)。這兩條途徑有著不同的底物需求,按不同的修復(fù)動力學(xué)進(jìn)行,并且在細(xì)胞周期的不同時期被區(qū)別使用[35]。HR和NHEJ被看成是相互競爭的通路,但是最新的證據(jù)表明,這兩條途徑的結(jié)合可以增強(qiáng)所有DNA的修復(fù),并且保護(hù)基因組的完整性[33,36-37]。在HR修復(fù)途徑,斷裂的基因組以另一條完整的姐妹染色單體作為模板來填補(bǔ)缺口,會出現(xiàn)基因轉(zhuǎn)換[34],因此這一途徑被認(rèn)為是無錯修復(fù)途徑。相比于HR,NHEJ很少利用同源的模板來延伸DNA斷端[38],在只有一個染色體拷貝的情況下也能正常進(jìn)行修復(fù)。與高保真的HR修復(fù)相反,NHEJ可以是高保真的,也可以帶來大量的突變。NHEJ是G1與早S期細(xì)胞首選的DSBs修復(fù)途徑,而對于晚S期與G2期的DSBs修復(fù),HR與NHEJ均有貢獻(xiàn)[39]。NHEJ途徑缺陷型哺乳動物細(xì)胞對X和γ射線極為敏感,DSBs大量積聚[40],表明NHEJ在低LET輻射誘導(dǎo)的DSBs 修復(fù)中占支配地位。對α-粒子和高能重離子輻射來說,NHEJ途徑缺陷型哺乳動物細(xì)胞的相對敏感性程度低于X射線,表明DNA修復(fù)的NHEJ途徑在高LET輻射誘導(dǎo)的DNA團(tuán)簇?fù)p傷修復(fù)中作用受限[7,14-15,40]。研究認(rèn)為,高LET射線作用于細(xì)胞后,在DNA分子中產(chǎn)生一定密度的不均勻能量沉積,其結(jié)果是在局部范圍內(nèi)形成的DNA損傷不止一種,而是幾種類型損傷的簇集,這種局部多重?fù)p傷位點(diǎn)(Multiple damage sites,MDS)及斷裂的小片段DNA碎片影響Ku70/80修復(fù)蛋白結(jié)合到DNA斷端上(NHEJ的啟動步驟),導(dǎo)致由NHEJ介導(dǎo)的DSBs修復(fù)的抑制[41-42],限制了NHEJ途徑的進(jìn)程。

圖5 DNA雙鍵斷裂修復(fù)的兩種途徑:HR和NHEJ

圖6 不同修復(fù)通路缺陷性細(xì)胞系對不同射線、離子敏感度分析[51]

表1 輻射誘導(dǎo)的染色單體及染色體畸變

研究顯示,在整個細(xì)胞周期過程中,NHEJ和HR修復(fù)途徑對X和γ射線誘導(dǎo)的DSBs修復(fù)都是需要的,HR與NHEJ在低LET輻射誘導(dǎo)的DSBs修復(fù)中相互協(xié)作[44-49]。有幾篇報道揭示HR修復(fù)因子,包括Rad54和Rad51同系物(Rad51D和XRCC3)缺陷型哺乳動物細(xì)胞系對高能重離子輻射敏感,出現(xiàn)較高的細(xì)胞毒性和遺傳突變性(圖6)[7,50-51]。進(jìn)一步,HR缺陷型細(xì)胞在S期時表現(xiàn)更為敏感(此時HR是DSB修復(fù)的主要途徑),這一結(jié)果強(qiáng)烈暗示HR在復(fù)雜DSBs修復(fù)中作用關(guān)鍵。

對于低LET輻射誘發(fā)的DSBs而言,NHEJ是主要的修復(fù)方式[52],但是能夠精確地處理DNA團(tuán)簇?fù)p傷的DSB修復(fù)途徑還不清楚。有報道指出,在處理HZE粒子誘導(dǎo)的DNA損傷中需要RAD51介導(dǎo)的DNA修復(fù)(HR)[53-54]。另有研究顯示,范可尼貧血癥(Fanconi anemia,F(xiàn)A)蛋白通路可能與HR因子協(xié)調(diào)作用,并且在高LET的Fe離子輻射誘發(fā)的DNA團(tuán)簇?fù)p傷修復(fù)中起著非常重要的作用[55]。而且,涉及到多種DNA修復(fù)過程的Mre11、WRN和Artemis核酸酶,在由重離子誘導(dǎo)的DNA復(fù)雜損傷末端的修復(fù)過程中可能均有重要作用[56-58]。盡管Mre11和WRN在響應(yīng)離子輻射時能結(jié)合在DNA損傷位點(diǎn),但在修復(fù)通路選擇的機(jī)制,與其在響應(yīng)DNA團(tuán)簇?fù)p傷過程中蛋白質(zhì)的精確作用這些方面,現(xiàn)在依然有很多不清楚的地方。這就要求將來能確定涉及DNA團(tuán)簇?fù)p傷過程中的多蛋白復(fù)合體。

2 重離子輻射在生命科學(xué)中的應(yīng)用

電離輻射能夠誘導(dǎo)生命體細(xì)胞的DNA損傷,這種損傷能夠正確修復(fù)的,將幸存下來;無法修復(fù)的,細(xì)胞死亡或凋亡;不能正確修復(fù)的,引起突變,僥幸存活,成為突變株。為了在較短時間內(nèi)培育出優(yōu)良高性能突變品種,X或γ射線已經(jīng)成為開展輻射誘變育種的常規(guī)手段,但仍存在突變率低,所產(chǎn)生的變異絕大多數(shù)不能穩(wěn)定遺傳等問題。重離子具有高LET,接觸受體樣品后首先會引起細(xì)胞表面穿孔的物理過程[59],甚至可直接穿透植物或微生物,在此過程中伴隨著能量的局部沉積,對生物體作用區(qū)域更集中,對作用部位細(xì)胞的損傷比X或γ射線顯著增加,而且集中受損的區(qū)域可隨離子能級控制,因此,重離子束用于誘變育種,能誘發(fā)基因組當(dāng)代可遺傳變異,并具有較高的突變率,在生物品種改良方面具有突出優(yōu)勢,在微生物、植物等生物品種選育中已經(jīng)取得了良好的效益[59-63]。

低LET的X或γ射線因其有效的細(xì)胞殺傷作用,已普遍應(yīng)用于臨床實(shí)體腫瘤的治療。然而,這其中也存在一些問題,如劑量主要損失在人體淺表部位、適型性不好,對腫瘤周圍健康組織損傷較大,對乏氧的腫瘤細(xì)胞抗拒、治療周期長、缺乏在線實(shí)時觀察手段等缺點(diǎn)。高LET的高能重離子誘導(dǎo)的DNA損傷很難修復(fù),因此在殺死腫瘤細(xì)胞中是更有效的。更為重要的是,帶電粒子的物理特征允許其靶向腫瘤,傳遞更高劑量和能量的粒子,減少對周圍正常組織的損傷。如高LET的碳離子束,已經(jīng)應(yīng)用于幾個國家的放射治療中,取得了很好的治療效果[63]。

2.1 重離子輻射在植物育種中的應(yīng)用

重離子輻照作為誘變育種的一種新方法,已經(jīng)被應(yīng)用到作物育種和模式植物功能基因的研究中。早在1986年,我國余增亮研究員等就發(fā)現(xiàn)了重離子注入水稻的誘變效應(yīng)[64]。先后成功選育出抗病蟲S9042、優(yōu)質(zhì)D9055 和早秈14、高產(chǎn)中粳63、晚粳M3122、高產(chǎn)早熟晚粳48和晚粳M1148等不同特點(diǎn)的水稻品種[65]。近年來,中國科學(xué)院近代物理研究所用重離子輻照植物獲得了多個有利突變體。如在小麥中選育出了矮稈、抗逆、高產(chǎn)、優(yōu)質(zhì)的春小麥M-920和豐產(chǎn)、高蛋白含量、抗黑穗病的隴輻2號[66-67]。在能源植物方面選育出了豐產(chǎn)、早熟、抗逆、含糖量高的甜高粱突變體“近甜1號”,為我國甜高粱乙醇燃料產(chǎn)業(yè)提供新思路[68]。在花卉方面通過重離子輻照選育出了葉片細(xì)胞色素定位發(fā)生變化的白花紫露草突變體“冬花夏草”[69],并且通過RAPD技術(shù)分析,選育出較母本株DNA片段新增的深紅色和鮮紅色花朵的一串紅突變體[70]與花色發(fā)生變化的天竺葵突變體[71]。還選育出了花盤增大的萬壽菊突變體,花色和花葉都改變的雞冠花突變體,矮桿、花色變異、花期提前的大麗花芽突變體,并且得到“新興紅”和“新興白”兩個新品系[72]。通過重離子輻照,百脈根形態(tài)學(xué)突變頻率約5.14%,但其DNA多態(tài)率僅0.567%,其具體機(jī)制還有待研究[73]。

國外重離子輻照植物誘變育種及其機(jī)理方面也有很多研究成果,如在水稻中選育出了一個DNA片段缺失的葉綠素缺失突變體CDM[74],OsSPY轉(zhuǎn)錄水平明顯增加的半矮水稻突變體PKOS1、HyKOS1,14-3-3表達(dá)量增加最多的細(xì)長型水稻突變體TKOS4[75];在擬南芥中選育出了種皮呈現(xiàn)紫紅色斑點(diǎn)的與花青素合成有關(guān)的突變體ast[76]。在花卉方面選育出了花色發(fā)生變化的菊花突變體[77]。并且通過對小麥的重離子輻照,發(fā)現(xiàn)了可能與選擇性非同源末端連接相關(guān)的兩種DNA修復(fù)基因,這對重離子輻照獲得小麥突變體的機(jī)制研究有很大貢獻(xiàn)[78]。

2.2 重離子輻射在微生物育種中的應(yīng)用

近年來重離子在輻照藥用微生物誘變育種方面也廣受研究者的關(guān)注,尤其是我國在這方面有很多突出貢獻(xiàn)。微生物優(yōu)良菌種的選育在微生物藥物的研究開發(fā)中很關(guān)鍵,利用不同吸收劑量的12C6+離子束輻照斜蓋菇屬真菌原生質(zhì)體,選育出了截短側(cè)耳素高產(chǎn)變異株C.pin15I5E和C.pin15II6B,其產(chǎn)量較出發(fā)菌株分別提高16.17%和15.47%[79]。重離子誘變處理慶大霉素生產(chǎn)菌絳紅色小單孢菌與阿維菌素生產(chǎn)菌阿維鏈霉菌等,其代謝產(chǎn)物產(chǎn)量也有一定提高[80-81]。并且得到了土曲霉突變株 Z15-7[82],還能通過負(fù)調(diào)控突變菌株基因缺失導(dǎo)致代謝過程中蛋白表達(dá)上調(diào)來提高阿維菌素B1a的生產(chǎn),而且能夠穩(wěn)定遺傳[83]。在食品工業(yè)方面,重離子輻照也同樣獲得了高轉(zhuǎn)化率的發(fā)酵新菌種,并使之產(chǎn)業(yè)化。如重離子輻照黑曲霉、釀酒酵母等,已篩選獲得高產(chǎn)穩(wěn)定菌株[84-85]。利用重離子輻照黑曲霉菌,胡偉等最終成功選育出一株檸檬酸生產(chǎn)菌高產(chǎn)突變菌株H4002,此菌株產(chǎn)檸檬酸能力,是目前國際上的最好水平,在生產(chǎn)中大大提高了經(jīng)濟(jì)效益[85-86]。重離子束輻照處理3株乳酸菌菌株,得到了乳酸產(chǎn)量比原菌株顯著提高的突變菌株,且遺傳穩(wěn)定性良好[87]。而且還通過輻照篩選出了高產(chǎn)β-葡聚糖的面包酵母突變菌株,經(jīng)過實(shí)驗(yàn)室發(fā)酵條件優(yōu)化,產(chǎn)量較出發(fā)菌株YS-00可以提高1.73倍[88]。在微生物能源方面,利用重離子束輻照誘變得到了PHB 高產(chǎn)株菌G15[89],產(chǎn)油微藻突變株 D90G-19[90],兩株生長速率明顯加快的微擬球藻突變株HP-1和HP-2[91],建立了磺基-磷-香草醛快速篩選高產(chǎn)油脂酵母菌模型,最終篩選出一株突變菌株M16[92];并且利用離子束輻照酪丁酸梭菌ATCC 25755,能顯著改善以葡萄糖為底物的丁酸生產(chǎn)率[93]。

2.3 重離子輻射在癌癥治療中的應(yīng)用

使用帶電的或者高LET粒子的放射療法已經(jīng)有很久的歷史了,如使用質(zhì)子有將近60年,使用重離子也有將近30年[94-95]。1954年,在美國勞倫斯國家實(shí)驗(yàn)室(LBNL)的第一次粒子治療是粒子療法的開始。

由于用于重離子治療必需的加速器非常昂貴,而且在臨床方面因相對生物學(xué)效應(yīng)的難題需要不斷探索分析,所以與質(zhì)子治療設(shè)備的發(fā)展相比,重離子治療設(shè)備發(fā)展得非常慢。在重離子治療方面,主要的開創(chuàng)性工作是在1977-1992年間,勞倫斯國家實(shí)驗(yàn)室對許多病人采用了氦和氖離子治療[95-96]。1994年在日本千葉市(Chiba)的國立放射學(xué)研究所(NIRS),開始了全面用碳離子治療的臨床研究。1977年, 德 國 Darmstadt的 GSI(Gesellschaft für Schwerionenforschung)開始嘗試用碳離子進(jìn)行臨床治療試驗(yàn),但隨后終止了其臨床應(yīng)用。不過,海德堡重離子束治療中心(HIT)的腫瘤治療實(shí)驗(yàn)在2009年獲得成功[97]。2001年,在NIRS支持下的第一個商業(yè)性的重離子放射治療中心,日本兵庫縣離子束醫(yī)學(xué)中心(HIBMC)建立[98]。位于中國蘭州,有著重離子加速器的中國科學(xué)院近代物理研究所,于2006年開始開展重離子癌癥治療臨床前期研究。目前,全世界開展重離子放射治療的主要國家及設(shè)施如表2所示。全世界利用重離子開展治療的患者的數(shù)量在穩(wěn)定增長,到目前為止[99],10 000多名患者已經(jīng)在日本國立放射學(xué)研究所獲得治療,超過5 000名患者在海德爾堡重離子束治療中心獲得治療。中科院近代物理研究所與當(dāng)?shù)蒯t(yī)院合作自1996年即開始國內(nèi)首例碳離子治療癌癥病例,目前已有103例淺層腫瘤、110例深部腫瘤治療案例。復(fù)旦大學(xué)附屬腫瘤醫(yī)院分院——質(zhì)子重離子醫(yī)院目前已收治900多病例。這些病例均有很好的治療效果[100]。

在腫瘤治療方面,一個關(guān)鍵問題是在盡可能保護(hù)正常組織的前提下有效地殺死腫瘤細(xì)胞。重離子貫穿靶物質(zhì)時,通過與靶原子核外電子的碰撞損失其能量,并且這種碰撞的幾率隨離子能量的降低而增大。因此,離子在接近其射程末端時損失其大部分初始動能,形成一個高劑量的能量損失峰,這就是布拉格峰(Bragg peak,以學(xué)者威廉·布拉格名字命名,他測定出α粒子在空氣中的射程末端,電離作用增加)。在其射程末端之后,即布拉格峰之后很少有劑量吸收;同時,離子在其入射通道上損失的能量較小,因而形成一個低劑量的坪區(qū)。對于常規(guī)輻射(X射線、γ射線、電子束和中子束),這就是重離子束特有的倒置深度劑量分布(圖7)。常規(guī)輻射呈指數(shù)衰減型劑量分布,無法控制將其大部分劑量調(diào)整到深部腫瘤上,而且損傷總是表皮淺層最大,直至較深處健康組織仍能受到較大傷害。離子束布拉格峰位的深度還可以通過改變?nèi)肷潆x子束的能量來調(diào)節(jié),因而治療時布拉格峰位可精確地調(diào)整在腫瘤靶區(qū)上。同時,為達(dá)到對實(shí)體瘤的治療,可以實(shí)施不同能量離子束對靶區(qū)的照射,從而形成不同布拉格峰在靶區(qū)的疊加,即布拉格峰展寬技術(shù)[103]。通過設(shè)計可以做到展寬區(qū)域的物理劑量或生物劑量分布均勻(盡管通過此技術(shù)會導(dǎo)致峰坪劑量比減小,但疊加的深度劑量分布仍遠(yuǎn)好于常規(guī)輻射治療)。

表2 迄今世界主要重離子放射治療設(shè)備[101-102]

重離子的倒轉(zhuǎn)劑量分布,以及在進(jìn)入組織的入口通道處(即粒子徑跡的坪區(qū))劑量低、在束流的末端很少有劑量吸收的特性,對于處于深部的、具有輻射抗性的腫瘤細(xì)胞來說,這是一個最佳的殺滅方式(圖7)。另一方面,DNA是電離輻射使細(xì)胞失活的主要靶點(diǎn)。前面已分析過,重離子比低LET輻射能誘導(dǎo)更多的DNA團(tuán)簇?fù)p傷。在低劑量的X射線下,主要產(chǎn)生如單鏈破壞的獨(dú)立損傷。對于這種損傷,甚至是DNA雙鏈損傷,細(xì)胞都有非常有效的修復(fù)系統(tǒng),DNA都能被高保真的修復(fù)。但是如果損傷部位發(fā)生了更復(fù)雜的DNA損傷(團(tuán)簇?fù)p傷),就不太可能修復(fù)了。DNA團(tuán)簇?fù)p傷是致密電離輻射的相對生物學(xué)效應(yīng)高的主要原因[104]。通常腫瘤細(xì)胞,特別是乏氧的腫瘤細(xì)胞是非常抗輻射的,但是由于重離子輻射誘導(dǎo)的DNA團(tuán)簇?fù)p傷難修復(fù),氧增比(Oxygen enhancement ratio,OER)依賴性低[105],所以在重離子下就變得非常敏感,對常規(guī)射線治療抗拒的腫瘤乏氧細(xì)胞、腫瘤干細(xì)胞殺傷效果好[106]。而且利用重離子的散射特性,還可建立實(shí)時在線的治療觀察手段。重離子治療特別適宜治療外科手術(shù)無法實(shí)施、化療、常規(guī)放療無效或易復(fù)發(fā)的難治病例[107]。因此,以碳離子為代表的重離子射線,正成為腫瘤放射治療發(fā)展的新方向,被認(rèn)為是最有前景的放療手段。2000年9月第145次與2013年10月第472次的“香山科學(xué)會議”均認(rèn)為:“盡管道路曲折,但重離子束治癌最科學(xué)、最先進(jìn),前景好”。

圖7 不同類型射線的深度劑量分布

3 結(jié)語

重離子因其致密的電離輻射特性,誘導(dǎo)細(xì)胞產(chǎn)生復(fù)雜的DNA團(tuán)簇?fù)p傷并難以正確修復(fù),易產(chǎn)生突變株,使其在輻射生物突變育種方面,具有明顯的優(yōu)勢,這對創(chuàng)新型農(nóng)業(yè)與食品工業(yè)的發(fā)展將有很大的幫助。未來除了繼續(xù)根據(jù)需要,選取不同品種的植物種子和微生物菌株,進(jìn)行重離子的單次或累進(jìn)多次輻射,優(yōu)化選育條件,篩選突變株并改善生產(chǎn)工藝,實(shí)現(xiàn)高產(chǎn)與穩(wěn)產(chǎn)之外,對突變選育的品種,應(yīng)加強(qiáng)突變株與對照組的基因組、蛋白質(zhì)組與代謝組學(xué)等大數(shù)據(jù)分析,為物種的發(fā)育進(jìn)化研究提供基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。對突變株中與高產(chǎn)穩(wěn)產(chǎn)相關(guān)的關(guān)鍵基因進(jìn)行深入研究,將其與遺傳工程技術(shù)(如最新的CRISPR技術(shù)[108-111])相結(jié)合,實(shí)現(xiàn)對更多的品種進(jìn)行定點(diǎn)定向突變,使育種工作變得更省時、低成本和低工作量。

重離子誘導(dǎo)的DNA團(tuán)簇?fù)p傷難以修復(fù)并且具有倒轉(zhuǎn)的劑量分布特性,利用碳離子束治療癌癥被認(rèn)為是最有前景的放療手段。未來重離子治癌技術(shù)的提高主要包括:(1)加強(qiáng)硬件設(shè)施的建設(shè)以便降低成本,諸如建造重離子加速器的材料技術(shù)性能提高;加速器的緊湊小型化、低成本、產(chǎn)業(yè)化等。(2)腫瘤位置的精準(zhǔn)成像與精確定位研究;不同腫瘤類型細(xì)胞的重離子殺傷效應(yīng)與輻照劑量的相關(guān)性研究等;依據(jù)相關(guān)研究結(jié)果,開展重離子放射治療程序軟件的自主編制與優(yōu)化,以提高粒子的精確靶向性和高效性。

在碳離子誘導(dǎo)生物效應(yīng)的機(jī)理認(rèn)識、增強(qiáng)碳離子輻射增敏效果等生物學(xué)基礎(chǔ)研究方面也有需要提高的地方。雖然低LET電離輻射產(chǎn)生的簡單DSBs損傷HR修復(fù)機(jī)制目前已經(jīng)較清楚,但是對于重離子引起的多損傷類型的DNA團(tuán)簇?fù)p傷,HR通路的作用和機(jī)理還有待進(jìn)一步闡釋,如在碳離子輻射誘導(dǎo)復(fù)雜DNA團(tuán)簇?fù)p傷修復(fù)中,復(fù)雜的多類型損傷末端如何剪切;不同損傷如何協(xié)同修復(fù);除了已知HR修復(fù)蛋白分子外,是否還有新的蛋白分子參與及參與程度與重要性如何;它們之間的相互作用關(guān)系又是怎樣的;它們?nèi)绾斡绊憟F(tuán)簇?fù)p傷Rad51-ssDNA核蛋白絲修復(fù)復(fù)合體的形成。我們初步的研究顯示,組蛋白賴氨酸甲基轉(zhuǎn)移酶SET8響應(yīng)輻射應(yīng)激,其表達(dá)抑制,增加了包括重(碳)離子在內(nèi)的細(xì)胞輻射敏感性。SET8調(diào)控組蛋白單甲基化水平,這些結(jié)果暗示染色體重塑對DNA的損傷修復(fù)也起著重要作用,那么染色體重塑因子對重離子DNA團(tuán)簇?fù)p傷修復(fù)影響的程度與具體機(jī)理又如何。

揭示以上重離子誘導(dǎo)DNA團(tuán)簇?fù)p傷修復(fù)新機(jī)制,不僅有助于提高對重離子輻射生物效應(yīng)的認(rèn)識,豐富輻射生物學(xué)基礎(chǔ)知識,而且有助于更好地認(rèn)識和評估空間重離子對航天員的輻射危害。依賴對DNA團(tuán)簇?fù)p傷修復(fù)新機(jī)制的研究突破,研發(fā)相關(guān)抑制劑,與碳離子束聯(lián)用,建立重離子放療腫瘤細(xì)胞增敏新方法,可實(shí)現(xiàn)既能靶向放射增敏腫瘤細(xì)胞又能同時更好地降低對正常組織的損傷,促進(jìn)重離子治癌技術(shù)的發(fā)展與應(yīng)用,以及為太空航天員的輻射防護(hù)策略制定提供理論依據(jù)。

[1]王同權(quán), 沈永平, 王尚武, 等. 空間輻射環(huán)境中的輻射效應(yīng)[J].國防科技大學(xué)學(xué)報, 1999, 21(4):36-39.

[2]葛本偉, 郭世先, 葛淼. 地球磁場與人體健康[J]. 國外醫(yī)學(xué)(醫(yī)學(xué)地理分冊), 2005, 26(1):39-42.

[3]Blaisdell JO, Harrison L, Wallace SS. Base excision repair processing of radiation-induced clustered DNA lesions[J].Radiation Protection Dosimetry, 2001, 97(1):25-31.

[4]Goodhead DT, Thacker J, Cox R. Effects of radiations of different qualities on cells:molecular mechanisms of damage and repair[J]. Int J Radiat Biol, 1993, 63(5):543-556.

[5]Dianov GL, O’Neill P, Goodhead DT. Securing genome stability by orchestrating DNA repair:removal of radiation-induced clustered lesions in DNA[J]. Bioessays, 2001, 23(8):745-749.

[6]Brenner DJ, Ward JF. Constraints on energy deposition and target size of multiply damaged sites associated with DNA double-strand breaks[J]. Int J Radiat Biol, 1992, 61(6):737-748.

[7]Okayasu R, Okada M, Okabe A, et al. Repair of DNA damage induced by accelerated heavy ions in mammalian cells proficient and deficient in the non-homologous end-joining pathway[J].Radiation Research, 2006, 165(1):59-67.

[8]Hamada N, Imaoka T, Masunaga S, et al. Recent advances in the biology of heavy-ion cancer therapy[J]. J Radiat Res, 2010, 51(4):365-383.

[9]Heilmann J, Rink H, Taucher-scholz G, et al. DNA strand break induction and rejoining and cellular recovery in mammalian cells after heavy-ion irradiation[J]. Radiat Res, 1993, 135(1):46-55.

[10]Tokuyama Y, Furusawa Y, Ideh, et al. Role of isolated and clustered DNA damage and the post-irradiating repair process in the effects of heavy ion beam irradiation[J]. J Radiat Res, 2015, 56(3):446-455.

[11] Werner E, Wang Y, Doetsch PW. A single exposure to low-or high-LET radiation induces persistent genomic damage in mouse epithelial cells in vitro and in lung tissue[J]. Radiation Research, 2017.Doi:10. 1667/RR14685. 1.

[12]Asaithamby A, Uematsu N, Chatterjee A, et al. Repair of HZE-particle-induced DNA double-strand breaks in normal human fibroblasts[J]. Radiat Res, 2008, 169(4):437-446.

[13]Lorat Y, Timm S, Jakob B, et al. Clustered double-strand breaks in heterochromatin perturb DNA repair after high linear energy transfer irradiation[J]. Radiother Oncol, 2016, 121(1):154-161.

[14]Taucher-scholz G, Heilmann J, Kraft G. Induction and rejoining of DNA double-strand breaks in CHO cells after heavy ion irradiation[J]. Adv Space Res, 1996, 18(1-2):83-92.

[15] Tucker JD, Marples B, Ramsey MJ, et al. Persistence of chromosome aberrations in mice acutely exposed to56Fe+26ions[J]. Radiation Research, 2004, 161(6):648-655.

[16] Oike T, Niimi A, Okonogi N, et al. Visualization of complex DNA double-strand breaks in a tumor treated with carbon ion radiotherapy[J]. Scientific Reports, 2016, 6:22275. Doi:10. 1038/srep22275.

[17]Ritter S, Durante M. Durante M:Heavy-ion induced chromosomal aberrations:a review[J]. Mutation Research, 2010, 701(1):38-46.

[18]Schipler A, Mladenova V, Soni A, et al. Chromosome thripsis by DNA double strand break clusters causes enhanced cell lethality,chromosomal translocations and 53BP1-recruitment[J]. Nucleic Acids Research, 2016, 44(16):7673-7690.

[19]Asaithamby A, Hu B, Chen DJ. Unrepaired clustered DNA lesions induce chromosome breakage in human cells[J]. Proc Natl Acad Sci of the USA, 2011, 108(20):8293-8298.

[20]Sutherland BM, Cuomo NC, Bennett PV. Induction of anchorageindependent growth in primary human cells exposed to protons or HZE ions separately or in dual exposures[J]. Radiation Research, 2005, 164(4):493-496.

[21]Urushibara A. JAEA R&D Review, 2007, 71. (http://jolisfukyu.tokai-sc. jaea. go. jp/fukyu/mirai-en/2007/index_set. html)

[22]Shikazono N. JAEA R&D Review, 2008, 71(http://jolisfukyu.tokai-sc. jaea. go. jp/fukyu/mirai-en/2008/index_set. html)

[23]David-cordonnier MH, Cunniffe SM, Hickson ID, et al. Efficiency of incision of an AP site within clustered DNA damage by the major human AP endonuclease[J]. Biochemistry, 2002, 41(2):634-642.

[24]Gulston M, Fulford J, Jenner T, et al. Clustered DNA damage induced by gamma radiation in human fibroblasts(HF19),hamster(V79-4)cells and plasmid DNA is revealed as Fpg and Nth sensitive sites[J]. Nucleic Acids Research, 2002, 30(15):3464-3472.

[25]Lomax ME, Salje H, Cunniffe S, et al. 8-OxoA inhibits the incision of an AP site by the DNA glycosylases Fpg, Nth and the AP endonuclease HAP1[J]. Radiation Research, 2005, 163(1):79-84.

[26]Gulston M, Delara C, Jenner T, et al. Processing of clustered DNA damage generates additional double-strand breaks in mammalian cells post-irradiation[J]. Nucleic Acids Research, 2004, 32(4):1602-1609.

[27]Blaisdell JO, Wallace SS. Abortive base-excision repair of radiation-induced clustered DNA lesions in Escherichia coli[J].Proc Natl Acad Sci USA, 2001, 98(13):7426-7430.

[28]D’Souza DI, Harrison L. Repair of clustered uracil DNA damages in Escherichia coli[J]. Nucleic Acids Research, 2003, 31(15):4573-4581.

[29]Harrison L, Brame KL, Geltz LE, et al. Closely opposed apurinic/apyrimidinic sites are converted to double strand breaks in Escherichia coli even in the absence of exonuclease III, endonuclease IV, nucleotide excision repair and AP lyase cleavage[J]. DNA Repair, 2006, 5(3):324-335.

[30]Malyarchuk S, Castore R, Harrison L. DNA repair of clustered lesions in mammalian cells:involvement of non-homologous endjoining[J]. Nucleic Acids Research, 2008, 36(15):4872-4882.

[31]Fujimoto H, Pinak M, Nemoto T, et al. Molecular dynamics simulation of clustered DNA damage sites containing 8-oxoguanine and abasic site[J]. J Comput Chem, 2005, 26(8):788-798.

[32]Sedelnikova OA, Redon CE, Dickey JS, et al. Role of oxidatively induced DNA lesions in human pathogenesis[J]. Mutation Research, 2010, 704(1-3):152-159.

[33]Haines JW, Coster M, Bouffler SD. Impairment of the nonhomologous end joining and homologous recombination pathways of DNA double strand break repair:Impact on spontaneous and radiation-induced mammary and intestinal tumour risk in Apc min/+ mice[J]. DNA Repair, 2015, 35:19-26.

[34] Jackson SP. Sensing and repairing DNA double-strand breaks[J]. Carcinogenesis, 2002, 23(5):687-696.

[35]Wu X, Petrini JH, Heine WF, et al. Independence of R/M/N focus formation and the presence of intact BRCA1[J]. Science, 2000,289(5476):11.

[36]Cousineau I, Abaji C, Belmaaza A. BRCA1 regulates RAD51function in response to DNA damage and suppresses spontaneous sister chromatid replication slippage:implications for sister chromatid cohesion, genome stability, and carcinogenesis[J].Cancer Res, 2005, 65(24):11384-11391.

[37]Fang S, Weissman AM. A field guide to ubiquitylation[J]. Cell Mol Life Sci, 2004, 61(13):1546-1561.

[38]Jeggo PA. Identification of genes involved in repair of DNA doublestrand breaks in mammalian cells[J]. Radiat Res, 1998, 150(5):S80-91.

[39]Rothkamm K, Kruger I, Thompson LH, et al. Pathways of DNA double-strand break repair during the mammalian cell cycle[J].Mol Cell Biol, 2003, 23(16):5706-5715.

[40] Nagasawa H, Little JB, Inkret WC, et al. Response of X-ray-sensitive CHO mutant cells(xrs-6c)to radiation. II. Relationship between cell survival and the induction of chromosomal damage with low doses of alpha particles[J]. Radiat Res, 1991, 126(3):280-288.

[41]Wang HY, Wang X, Zhang PY, et al. The Ku-dependent nonhomologous end-joining but not other repair pathway is inhibited by high linear energy transfer ionizing radiation[J]. DNA Repair,2008, 7(5):725-733.

[42]Wang JH, Pluth JM, Cooper PK, et al. Artemis deficiency confers a DNA double-strand break repair defect and Artemis phosphorylation status is altered by DNA damage and cell cycle progression[J]. DNA Repair, 2005, 4(5):556-570.

[43]Symington LS, Gautier J. Double-strand break end resection and repair pathway choice[J]. Annual Review of Genetics, 2011,45:247-271.

[44]Couedel C, Mills KD, Barchi M, et al. Collaboration of homologous recombination and nonhomologous end-joining factors for the survival and integrity of mice and cells[J]. Genes Dev, 2004, 18(11):1293-1304.

[45]Kass EM, Jasin M. Collaboration and competition between DNA double-strand break repair pathways[J]. Febs Letters, 2010, 584(17):3703-3708.

[46]Shrivastav M, De haro LP, Nickoloff JA. Regulation of DNA doublestrand break repair pathway choice[J]. Cell Res, 2008, 18(1):134-147.

[47]You ZS, Bailis JM. CtIP coordinates DNA repair and cell cycle checkpoints[J]. Trends Cell Biol, 2010, 20(7):402-409.

[48]Allen C, Kurimasa A, Brenneman MA, et al. DNA-dependent protein kinase suppresses double-strand break-induced and spontaneous homologous recombination[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2002, 99(6):3758-3763.

[49]Pierce AJ, Hu P, Han MG, et al. Ku DNA end-binding protein modulates homologous repair of double-strand breaks in mammalian cells[J]. Genes Dev, 2001, 15(24):3237-3242.

[50] Zafar F, Seidler SB, Kronenberg A, et al. Homologous recombination contributes to the repair of DNA double-strand breaks induced by high-energy iron ions[J]. Radiat Res, 2010, 173(1):27-39.

[51]Gerelchuluun A, Manabe E, Ishikawa T, et al. The major DNA repair pathway after both proton and carbon-Ion radiation is NHEJ,but the HR pathway is more relevant in carbon ions[J]. Radiat Res, 2015, 183(3):345-356.

[52]Hammet A, Pike BL, Mcnees CJ, et al. FHA domains as phosphothreonine binding modules in cell signaling[J]. Iubmb Life,2003, 55(1):23-27.

[53]Durant ST, Nickoloff JA. Good timing in the cell cycle for precise DNA repair by BRCA1[J]. Cell Cycle, 2005, 4(9):1216-1222.

[54]Deng CX. BRCA1:cell cycle checkpoint, genetic instability, DNA damage response and cancer evolution[J]. Nucleic Acids Res,2006, 34(5):1416-1426.

[55]Yan ZJ, Guo R, Paramasivam M, et al. A ubiquitin-binding protein,FAAP20, links RNF8-mediated ubiquitination to the Fanconi anemia DNA repair network[J]. Mol Cell, 2012, 47(1):61-75.

[56]Cao L, Xu X, Bunting SF, et al. A selective requirement for 53BP1 in the biological response to genomic instability induced by Brca1 deficiency[J]. Mol Cell, 2009, 35(4):534-541.

[57]Wang B, Matsuoka S, Carpenter PB, et al. 53BP1, a mediator of the DNA damage checkpoint[J]. Science, 2002, 298(5597):1435-1438.

[58]Schultz LB, Chehab NH, MalikzaYA, et al. p53 binding protein 1(53BP1)is an early participant in the cellular response to DNA double-strand breaks[J]. J Cell Biol, 2000, 151(7):1381-1390.

[59]李仁民, 王菊芳, 李文建. 重離子束在微生物誘變育種及生物能源開發(fā)中的應(yīng)用[J]. 原子核物理評論, 2007, 24(3):234-237.

[60]Okamura M, Yasuno N, Ohtsuka M, et al. Wide variety of flower-color and -shape mutants regenerated from leaf cultures irradiatedwith ion beams[J]. Nucl Instrum Methods B, 2003,206:574-578.

[61]Yamaguchi H, Nagatomi S, Morishita T, et al. Mutation induced with ion beam irradiation in rose[J]. Nucl Instrum Methods B,2003, 206:561-564.

[62]Kikuchi S, Saito Y, Ryuto H, et al. Effects of heavy-ion beams on chromosomes of common wheat, Triticum aestivum[J]. Mutat Res, 2009, 669(1-2):63-66.

[63]Li Q, Wei ZQ, Li WJ. Calculation of depth-dose distribution of intermediate energy heavy-ion beams[J]. Chinese Science Bulletin, 2002, 47(20):1708-1710.

[64]余增亮, 何建軍, 鄧建國, 等. 離子注入水稻誘變育種機(jī)理初探[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學(xué), 1989(1):12-16.

[65]郭高, 錢坤. 安徽省農(nóng)科院育成世界上第一個離子束小麥新品種[J]. 安徽農(nóng)業(yè) . l998, 25(5):4.

[66]衛(wèi)增泉, 頡紅梅, 梁劍平, 等. 重離子束在誘變育種和分子改造中的應(yīng)用[J]. 原子核物理評論, 2003, 20(1):38-41.

[67] 趙連芝, 壬勇, 甄東牛, 等. 春小麥突變新品種-“隴輻2號”[J].核農(nóng)學(xué)報, 2005, 19(1):80.

[68]董喜存, 李文建, 何金玉, 等. 碳離子束輻照對甜高粱主要性狀的影響[J]. 核技術(shù), 2009, 32(2):146-149.

[69]He JY. Pigment analysis of a color-leaf mutant in Wandering Jew(Tradescantia fluminensis)irradiated by carbon ions[J].Nuclear Science and Techniques, 2011, 22(2):77-83.

[70] Wu DL, Hou SW, Qian PP, et al. Flower color chimera and abnormal leaf mutants induced by12C6+heavy ions in Salvia splendens Ker-Gawl[J]. Sci Hortic, 2009, 121(4):462-467.

[71]Yu LX, Li WJ, Du Y, et al. Flower color mutants induced by carbon ion beam irradiation of geranium(Pelargonium× hortorum,Bailey)[J]. Nuclear Science & Techniques, 2016, 27(5):112-120.

[72]周利斌, 李文建, 曲穎, 等. 重離子束輻照育種研究進(jìn)展及發(fā)展趨勢[J]. 原子核物理評論, 2008, 25(2):165-170.

[73]Luo SW, Zhou B, Li WJ, et al. Mutagenic effects of carbon ion beam irradiations on dry Lotus japonicus seeds[J]. Nuclear Instruments& Methods in Physics Research Section B-beam Interactions with Materials and Atoms, 2016, 383(15):123-128.

[74]Abe T, Matsuyana T, Shigeko S, et al. Chlorophyll-deficient mutants of rice demonstrated the deletion of a DNA fragment by heavy-ion irradiation[J]. J Radiat Res, 2002, 43(4):S157-S161.

[75]Phanchaisri B, Samsang N, Yu LD, et al. Expression of OsSPY and 14-3-3 genes involved in plant height variations of ion-beaminduced KDML 105 rice mutants[J]. Mut Res, 2012, 734(1-2):56-61.

[76]Tanaka A, Tano S, Chantes T, et al. A new Arabidopsis mutant induced by ion beams affects flavonoid synthesis with spotted pigmentation in testa[J]. Genes Genet Syst, 1997, 3(3):141-148.

[77]Okamura M, Hase Y, Furusawa Y, et al. Tissue-dependent somaclonal mutation frequencies and spectra enhanced by ion beam irradiation in chrysanthemum[J]. Euphytica, 2015, 202(3):333-343.

[78]Ishii K, Kazama Y, Morita R, et al. Linear Energy Transfer-Dependent Change in Rice Gene Expression Profile after Heavy-Ion Beam Irradiation[J]. PLoS One, 2016, 11(7):e0160061.

[79]都雯玥. 重離子輻照并篩選截短側(cè)耳素高產(chǎn)菌株的研究[D].蘭州:蘭州理工大學(xué), 2016:1-59.

[80]頡紅梅, 衛(wèi)增泉, 李文建.7MeV/u O6+離子對慶大霉素生產(chǎn)菌誘變的初步研究[J]. 輻射研究與輻射工藝學(xué)報, 1995, 13(2):99-101.

[81]王曙陽, 薄永恒, 王麗華, 等.12C6+離子輻照對阿維鏈霉菌代謝效應(yīng)研究[J]. 原子核物理評論, 2013, 30(2):195-200.

[82]Li SW, Li M, Song HP, et al. Induction of a high-yield lovastatin mutant of Aspergillus terreus by12C6+heavy-ion beam irradiation and the influence of culture conditions on lovastatin production under submerged fermentation[J]. Applied Biochemistry and Biotechnology, 2011, 165(3):913-925.

[83]Wang SY, Bo YH, Zhou X, et al. Significance of heavy-ion beam irradiation-induced avermectin b1a production by engineered streptomyces avermitilis[J]. Biomed Res Int, 2017, 2017 :5373262. Doi:10. 1155/2017/5373262.

[84]胡偉, 陳積紅, 張珍, 等. 重離子輻照檸檬酸菌株的誘變選育[J]. 輻射研究與輻射工藝學(xué)報, 2012, 30(1):53-57.

[85]嚴(yán)亞平, 王菊芳, 陸棟, 等. C離子束誘變產(chǎn)生甜高粱汁酒精酵母高產(chǎn)菌株的研究[J]. 原子核物理評論, 2009, 26(3):269-273.

[86]Hu W, Chen JH, Li WJ, et al. Mutant breeding of Aspergillus nigerirradiated by12C6+for hyper citric acid[J]. Nuclear Science and Techniques, 2014, 25(2):1-4.

[87]王雨辰, 王曙陽, 董妙音, 等. 重離子束輻照選育高產(chǎn)植物乳酸菌[J]. 輻射研究與輻射工藝學(xué)報, 2017, 35(1):50-56.

[88]李壟清, 馬良, 李文建.12C6+輻照環(huán)境下酵母高產(chǎn)β-葡聚糖菌株篩選及條件優(yōu)化研究[J]. 食品科技, 2017, 42(3):2-6.

[89]薛林貴, 趙旭, 常思靜, 等.80MeV/u C-12離子誘變選育 PHB高產(chǎn)菌株[J]. 核技術(shù), 2010, 33(4):284-288.

[90]Hu GR, Fan Y, Zhang L, et al. Enhanced lipid productivity and photosynthesis effi ciency in a Desmodesmus sp. mutant induced by heavy carbon ions[J]. PLoS One, 2013, 8(4):e60700.

[91]王芝瑤, 馬玉彬, 牟潤芝, 等. 重離子誘變創(chuàng)制高產(chǎn)油微擬球藻新品種[J]. 生物工程學(xué)報, 2013, 29(1):119-122.

[92]Wang JF, Li RM, Lu D, et al. A quick isolation method for mutants with high lipid yield in oleaginous yeast[J]. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 2009, 25(5):921-925.

[93]Zhou X, Lu XH, Li XH, et al. Radiation induces acid tolerance of Clostridium tyrobutyricum and enhances bioproduction of butyric acid through a metabolic switch[J]. Biotechnology for Biofuels,2014, 7:22.

[94]Suit H, Urie M. Proton beams in radiation therapy[J]. Journal of the National Cancer Institute, 1992, 84(3):155-164.

[95]Linstadt DE, Castro JR, Phillips TL. Neon ion radiotherapy:results of the phase I/II clinical trial[J]. International Journal of Radiation Oncology Biology Physics, 1991, 20(4):761-769.

[96]Castro JR. Results of Heavy-Ion Radiotherapy[J]. Radiat Environ Bioph, 1995, 34(1):45-48.

[97]Combs SE, Jakel O, Haberer T, et al. Particle therapy at the heidelberg ion therapy center(HIT)- integrated research-driven university-hospital-based radiation oncology service in Heidelberg,Germany[J]. Radiother Oncol, 2010, 95(1):41-44.

[98] Sawada K, Sawada J, Sakata T, et al. Performance test of electron cyclotron resonance ion sources for the Hyogo Ion Beam Medical Center[J]. Rev Sci Instrum, 2000, 71(2):987-989.

[99]辻進(jìn)博彥. 日本重離子治療臨床研究[C]. 蘭州:第二屆全國重離子治療高端論壇, 2016. 12. 27.

[100] 王小虎. 國產(chǎn)碳離子治癌設(shè)備應(yīng)用進(jìn)展[C]. 蘭州:第二屆全國重離子治療高端論壇, 2016. 12. 27.

[101] Tsujii H, Kamada T. A review of update clinical results of carbon ion radiotherapy[J]. Jpn J Clin Oncol, 2012, 42(8):670-685.

[102] Kitagawa A, Fujita T, Muramatsu M, et al. Review on heavy ion radiotherapy facilities and related ion sources(invited)[J].Rev Sci Instrum, 2010, 81(2):02B909.

[103] Sunada S, Cartwright IM, Hirakawa H, et al. Investigation of the relative biological effectiveness and uniform isobiological killing effects of irradiation with a clinical carbon SOBP beam on DNA repair deficient CHO cells[J]. Oncol Lett, 2017, 13(6):4911-4916.

[104] Hada M, Sutherland BM. Spectrum of complex DNA damages depends on the incident radiation[J]. Radiation Research,2006, 165(2):223-230.

[105] Sunada S, Hirakawa H, Fujimori A, et al. Oxygen Enhancement ratio in radiation-induced initial DSBs by an optimized flow cytometry-based gamma-H2AX analysis in A549 human cancer cells[J]. Radiat Res, 2017, 188(5):591-594.

[106] Cui X, Oonishi K, Tsujii H, et al. Effects of carbon ion beam on putative colon cancer stem cells and its comparison with X-rays[J]. Cancer Research, 2011, 71(10):3676-3687.

[107] Osama M, Brock JS, Janapriya S, et al. Carbon ion radiotherapy:a review of clinical experiences and preclinical research, with an emphasis on DNA damage/repair[J]. Cancers(Basel),2017, 9(6). pii:E66. Doi:10. 3390/cancers9060066.

[108] Kuscu C, Parlak M, Tufan T, et al. CRISPR-STOP:gene silencing through base-editing-induced nonsense mutations[J].Nat Methods, 2017, 14(7):710-712.

[109] Sattar MN, Iqbal Z, Tahir MN, et al. CRISPR/Cas9:A practical approach in date palm genome editing[J]. Front Plant Sci,2017, 8:1469.

[110] Huang JJ, Wang YF, Zhao JG. CRISPR editing in biological and biomedical investigation[J]. J Cell Physiol, 2017. doi:10.1002/jcp. 26141.

[111] Donohoue PD, Barrangou R, May AP. Advances in industrial biotechnology using CRISPR-Cas systems[J]. Trends Biotechnol, 2017, pii:S0167-7799(17)30187-7.

猜你喜歡
重離子突變體菌株
費(fèi)米能區(qū)重離子反應(yīng)中對稱能系數(shù)的提取
菌株ZYRH-19的篩選鑒定及其合成韋蘭膠的特性研究
灰樹花工廠化瓶栽菌株篩選試驗(yàn)
食用菌(2023年6期)2023-11-28 06:03:32
菌株出馬讓畜禽污染物變廢為寶
相對論簡并量子等離子體中完全非線性重離子聲波行波解的動力學(xué)研究
我國首臺自主研發(fā)的重離子治療裝置 有望年內(nèi)開展臨床試驗(yàn)
健康管理(2017年4期)2017-05-20 21:01:06
CLIC1及其點(diǎn)突變體與Sedlin蛋白的共定位研究
擬南芥干旱敏感突變體篩選及其干旱脅迫響應(yīng)機(jī)制探究
Survivin D53A突變體對宮頸癌細(xì)胞增殖和凋亡的影響
上海市質(zhì)子重離子醫(yī)院項(xiàng)目管理實(shí)踐
余江县| 山西省| 南开区| 崇仁县| 开封市| 瓦房店市| 象山县| 永和县| 洛川县| 大同市| 大厂| 西和县| 马鞍山市| 库尔勒市| 江阴市| 兖州市| 镇安县| 武乡县| 鞍山市| 漠河县| 金寨县| 安泽县| 遂宁市| 慈利县| 涟源市| 龙门县| 博爱县| 磐石市| 湘阴县| 富蕴县| 县级市| 宁海县| 陆河县| 公主岭市| 正宁县| 靖安县| 基隆市| 灵寿县| 正定县| 格尔木市| 酒泉市|