胡琳敏+楊霄旭+王金+向雙林+魏晨曦

摘 要 “跨界基因沉默”是一種利用大腸桿菌在哺乳動物細胞中傳遞小干擾RNA并引起基因沉默的新穎技術(shù)，具有實用、穩(wěn)定和低成本等優(yōu)點.該技術(shù)通過構(gòu)建一種能轉(zhuǎn)錄出短發(fā)夾RNA （shRNA） 的大腸桿菌，而這種大腸桿菌產(chǎn)生的shRNA能靶向哺乳動物細胞中的特定基因，從而引發(fā)RNA干擾（RNAi）.本文用RecA同源重組的方法將跨界基因沉默質(zhì)粒的工作元件快速地整合到大腸桿菌的染色體DNA上，構(gòu)建了跨界基因沉默菌株.通過吖啶橙染色實驗證明了跨界基因沉默菌株能夠入侵哺乳動物細胞，最后Western blot結(jié)果表明跨界基因沉默菌株可以對靶標基因產(chǎn)生干擾作用.該技術(shù)的完善將進一步促進工程菌的研發(fā)和利用.

關(guān)鍵詞 siRNA傳遞；跨界基因沉默菌株；RNA干擾；RecA同源重組

中圖分類號 Q812；Q9399 文獻標識碼 A 文章編號 1000-2537（2017）05-0029-07

Fast Construction of Trans-kingdom RNAi Bacteria and Detection of Their Ability to Silence Expression of Target Genes

HU Lin-min1#， YANG Xiao-xu1，2#， WANG Jin1， XIANG Shuang-lin1， WEI Chen-xi1*

（1. The National and Local Joint Engineering Laboratory of Animal Peptide Drug Development，

School of Life Sciences， Hunan Normal University， Changsha 410081， China；

2. The Medicine School， Hunan University of Chinese Medicine， Changsha 410208， China）

Abstract Trans-kingdom RNA interference （TkRNAi） is a useful， stable and low-cost approach for small interference RNA delivery， which employs the genetically engineered E.coli to produce short hairpin RNA and then deliver it into mammalian cells. The shRNA， transcribed by the genetically engineered E.coli， can target and silence the particular gene expression in mammalian cells. We used RecA homologous recombination to quickly integrate working components of TkRNAi into the chromosome DNA of engineered E.coli， thus yielding trans-kingdom interference bacteria. Acridine orange staining tests demonstrated that the trans-kingdom interference bacteria could invade into mammalian cells. Finally， western blot analysis results showed that the trans-kingdom interference bacteria could silence expression of target genes. The improvement of the TkRNAi technology will further promote the development and utilization of this kind of engineering bacteria.

Key words siRNA delivery； trans-kingdom RNAi bacteria； RNAi； RecA homologous recombination

RNA干擾（RNA interference， RNAi）是由小干擾RNA（small interference RNA， siRNA）引起的細胞內(nèi)序列特異性基因沉默，這給惡性腫瘤等疾病的治療帶來了新的希望[1].然而，siRNA的低血清穩(wěn)定性、易脫靶性和易引起免疫反應(yīng)等缺點，也給臨床應(yīng)用帶來了很大的挑戰(zhàn)[2].此外，鑒于siRNA自身的結(jié)構(gòu)，導(dǎo)致其不能直接穿過細胞膜，因此找到一種穩(wěn)定、安全和有效的siRNA傳遞方式十分重要[3].

“跨界基因沉默”技術(shù)利用工程菌攜帶短發(fā)夾RNA（short hairpin RNA， shRNA），將shRNA傳遞至哺乳動物細胞，引發(fā)哺乳動物細胞特定基因的沉默.這種新型siRNA傳遞技術(shù)的出現(xiàn)在某種程度上彌補了RNA干擾藥物的傳遞困境，具有成為臨床藥物載體的潛力[4-6].“跨界基因沉默”技術(shù)由向雙林等提出[7]，其基本流程為：首先構(gòu)建跨界干擾質(zhì)粒 （Trans-kingdom RNAi plasmid， TRIP） pT7-RNAi-inv-hly.該質(zhì)粒上的inv基因，其表達產(chǎn)物為Invasin蛋白，能與表皮細胞膜上表達的β1-整合蛋白 （β1-integrin） 結(jié)合，促使細胞內(nèi)陷并吞噬附著于該區(qū)域的細菌；hly基因，其表達產(chǎn)物為分泌蛋白LLO，使細菌能夠從細胞內(nèi)體中逃離[8-9].將TRIP轉(zhuǎn)化到大腸桿菌BL21（DE3）（以下簡稱為BL21（DE3））內(nèi)，最后將轉(zhuǎn)化TRIP的BL21（DE3）侵染哺乳動物細胞，即可在哺乳動物細胞中發(fā)揮RNAi作用[7， 10].然而，質(zhì)粒轉(zhuǎn)入BL21（DE3）后游離于細菌的胞質(zhì)中，在無抗性的條件下，質(zhì)粒容易因環(huán)境壓力而丟失，不利于質(zhì)粒穩(wěn)定存在并表達shRNA.若能使跨界基因沉默技術(shù)更加穩(wěn)定方便，將有利于拓展跨界基因沉默技術(shù)的使用范圍[11].本研究對跨界基因沉默技術(shù)進行改進，將TRIP的工作元件整合到BL21（DE3）的基因組中，改進后的整合型菌株克服了質(zhì)粒易丟失的缺點，且菌株的保存與使用比質(zhì)粒更方便.endprint

在原核生物中，由RecA介導(dǎo)的同源重組技術(shù)已經(jīng)很成熟[12-14].RecA蛋白在細菌中廣泛存在且高度保守，在細菌的同源重組途徑中起著重要的作用.RecA同源重組系統(tǒng)可介導(dǎo)1 000 bp長同源序列的同源重組，利用大腸桿菌依賴的RecA蛋白重組系統(tǒng)，可以對大腸桿菌基因組進行修飾和基因替換等改造[15-16].

本研究以BL21（DE3） 基因組中的lac Z為模板，克隆出一段長2 027 bp的序列，將其作為lac Z的同源序列插入到TRIP中，構(gòu)建出環(huán)狀整合型跨界基因沉默質(zhì)粒（Cyclic Integrated Trans-kingdom RNAi plasmid， CI-TRIP）.CI-TRIP無須線性化即可快速將TRIP上的工作元件整合入BL21（DE3） 基因組中，實現(xiàn)對BL21（DE3） 基因組的改造.隨后利用CI-TRIP構(gòu)建了跨界基因沉默菌株，并檢測該菌株侵染哺乳動物細胞SW480的能力以及對SW480細胞中特定基因的干擾能力.

1 材料與方法

1.1 實驗材料

E.coli BL21（DE3），E.coli，GBpir菌，質(zhì)粒TRIP，質(zhì)粒pR6k及質(zhì)粒pCre等為本實驗室保存；人結(jié)直腸癌細胞株 （SW480） 為本實驗室保存的細胞株；質(zhì)粒小量提取試劑盒、膠回收試劑盒購于東盛生物公司；限制性核酸內(nèi)切酶Pci Ⅰ，限制性核酸內(nèi)切酶NgoM Ⅳ，限制性核酸內(nèi)切酶BamH Ⅰ，限制性核酸內(nèi)切酶Sal Ⅰ和T4 DNA連接酶購自NEB；Anti-LLO antibody，Anti-GAPDH antibody和Anti-β-catenin antibody購于武漢博士德公司；HRP標記的羊抗鼠二抗購于Santa Cruz公司；氯霉素、氨芐青霉素鈉、4%多聚甲醛、DNA分子量標準、氯化鈉、硼酸、瓊脂糖、酵母提取物等購于生工生物工程（上海）股份有限公司；吖啶橙購于Sigma公司；ECL化學(xué)發(fā)光試劑購于Merck Millipore公司.培養(yǎng)細胞所用的DMEM培養(yǎng)基和胎牛血清購自美國Gibco公司.

1.2 實驗方法

1.2.1 環(huán)狀整合型跨界基因沉默質(zhì)粒的構(gòu)建 以質(zhì)粒pR6k為模板，用引物R6k F1和R6k R1擴增出oriR6k-cm（cm代表氯霉素抗性基因）片段，在氯霉素抗性基因兩側(cè)設(shè)計同方向的LoxP72位點；以BL21（DE3） 基因組為模板，用引物lac F1和N-lac R1擴增出lac Z的重組片段.兩者的PCR產(chǎn)物分別用膠回收試劑盒純化，測定濃度后于-20 ℃保存?zhèn)溆?將oriR6k-cm片段和lac Z重組片段等量混合，以此混合物為模板，以R6k F1，N-lac R1為引物擴增出oriR6k-cm-lac Z基因片段.引物序列如表1所示.

將TRIP中的基因片段hly-inv用Pci Ⅰ和NgoM Ⅳ雙酶切，回收hly-inv基因片段；再用相同的酶剪切oriR6k-cm-lac Z，然后將這兩部分連接.將連接產(chǎn)物用熱轉(zhuǎn)化法轉(zhuǎn)入GBpir菌，用含氯霉素抗性（終濃度為15 mg/L）的固體培養(yǎng)基篩選，置于37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng).第二天挑單克隆擴增，用菌落PCR初篩，之后提取陽性菌落中的質(zhì)粒，雙酶切驗證，最后將驗證為陽性的質(zhì)粒送上海生工測序.將測序正確的質(zhì)粒命名為CI-TRIP，即帶有hly-inv基因的環(huán)狀整合型跨界基因沉默質(zhì)粒.

1.2.2 CI-TRIP整合到跨界基因沉默菌株基因組 取CI-TRIP加到BL21（DE3） 中，用熱轉(zhuǎn)化法處理，置于37 ℃細菌培養(yǎng)箱過夜培養(yǎng).第二天從固體培養(yǎng)基中挑取單克隆重組子，接種于1.5 mL離心管中，離心管先用無菌針頭在管蓋上戳一個小孔，并加1.0 mL帶氯霉素抗性的LB液體培養(yǎng)基.最后將離心管放在恒溫搖床上，37 ℃，1 000 r/min培養(yǎng)12～16 h.將重組子菌液做模板，用PCR初篩，inv的引物如表1所示，將陽性重組子菌液復(fù)壯，第二次PCR篩檢用相同的引物，以細菌基因組DNA為模板.PCR條件為：95 ℃預(yù)變性5 min；95 ℃變性30 s，60 ℃退火1 min，72 ℃延伸5 min，循環(huán)30次；72 ℃后延伸7 min.將陽性菌落的菌液加入甘油管中，于-80 ℃保種.

1.2.3 細菌基因組中抗性基因的敲除 構(gòu)建CI-TRIP時，筆者已在氯霉素抗性基因兩側(cè)設(shè)計了同方向的LoxP72位點，因此可用Cre-LoxP重組酶系統(tǒng)來刪除抗性基因.取1 mL細菌復(fù)壯后，加1 μL pCre質(zhì)粒到管中，混勻后轉(zhuǎn)移到2 mm電擊杯中.電壓為2.5 kV，5.0 ms電擊一次.電擊轉(zhuǎn)化后，37 ℃，250 r/min復(fù)蘇1 h.將菌液沉淀濃縮至100 μL，涂到氯霉素/氨芐青霉素雙固體培養(yǎng)基上，30 ℃過夜培養(yǎng).長出單克隆后，挑取接種到含氨芐青霉素液體培養(yǎng)基中，30 ℃，250 r/min培養(yǎng)2 h，37 ℃繼續(xù)培養(yǎng)2 h.將菌液分別接種到無抗性的LB固體培養(yǎng)基和氯霉素固體培養(yǎng)基，進行雙固體培養(yǎng)基對照檢測.選取無抗性的菌落，以inv c1f/inv c1r為引物做菌落PCR.以菌落PCR為陽性結(jié)果的細菌基因組DNA做模板，用引物inv c1f/inv c1r和cm f/cm r（引物序列如表1所示）進行第二次PCR驗證，inv c1f/inv c1r擴增為陽性而cm f/cm r擴增為陰性的菌落即為抗性敲除成功的跨界基因沉默菌株.將此菌液復(fù)壯，當(dāng)OD600達到0.4～0.6時，按500 μL/管分裝于甘油管內(nèi)，-80 ℃保種待用.

1.2.4 Western blot檢測跨界沉默菌株中LLO蛋白的表達 從固體培養(yǎng)基上挑單克隆接種到LB培養(yǎng)液中，過夜培養(yǎng).將菌液離心后收集上清到新管中.用TCA-丙酮沉淀法提取LLO分泌蛋白，根據(jù)沉淀量加入SDS裂解液，-20 ℃保存?zhèn)溆?用Western blot檢測LLO的表達情況，取50 μg蛋白質(zhì)進行SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳，膠濃度為10%，電壓為100 V；轉(zhuǎn)PVDF膜，恒電流400 mA，時間為80 min.用5%脫脂奶粉封閉，孵育LLO蛋白質(zhì)的一抗（1∶ 2 000）.洗去一抗，孵育HRP標記的羊抗鼠二抗（1∶ 2 000），最后用ECL化學(xué)發(fā)光試劑顯影，并用Tanon-2500全自動數(shù)碼凝膠圖像分析系統(tǒng)（上海天能科技有限公司）記錄實驗結(jié)果.endprint

1.2.5 吖啶橙染色檢測細菌侵染SW480細胞的能力 在6孔板中放入玻璃蓋玻片，將細胞以每孔1×105個接種于孔板內(nèi)，用于細胞爬片.之后置于37 ℃，5%CO2，90%相對濕度的細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng).從固體培養(yǎng)基上復(fù)蘇細菌進行侵染實驗.經(jīng)IPTG誘導(dǎo)2 h后，當(dāng)細菌培養(yǎng)到OD600=1.0時終止培養(yǎng)，取出菌株用于侵染SW480細胞.用無血清、無抗生素的細胞培養(yǎng)基洗滌細菌2次，最后用細胞培養(yǎng)基重懸細菌，完全混勻.根據(jù)實驗中需要的MOI值（細胞與細菌的比值） （1∶ 500/1∶ 1 000/1∶ 1 500） 稀釋細菌.準備進行細菌侵染試驗前0.5 h，先將細胞的培養(yǎng)基更換成無血清、無抗生素的培養(yǎng)基，0.5 h后，加入含有細菌的培養(yǎng)液，輕搖培養(yǎng)板使細菌均勻分布.1.5～4 h后去除含細菌的培養(yǎng)基，加入含慶大霉素的培養(yǎng)基，用以殺死細胞外的細菌.將細胞用4%多聚甲醛固定液固定處理，PBS洗滌后在搖床上輕搖.用通透液（V丙酮∶ V甲醇=1∶ 1）處理30 s，再用PBS洗滌.用0.01%吖啶橙工作液以1 mL/孔加入孔板中，染色45 s，立即用PBS沖洗.用濾紙吸去多余的水，然后用封閉膠水將玻璃片封閉固定，最后用激光掃描共聚焦顯微鏡（德國Zeiss LSM710）觀察拍照，保存實驗結(jié)果.

1.2.6 跨界基因沉默菌株BL21（DE3）-TRIP-CTNNB1的構(gòu)建 利用1.2.1的質(zhì)粒CI-TRIP快速構(gòu)建跨界基因沉默菌株BL21（DE3）-TRIP-CTNNB1.目標基因CTNNB1的發(fā)夾結(jié)構(gòu)干擾序列為，sense： CACCGGATGTGGATACCTCCCAAGTCGAAACTTGGGAGGTATCCACATCC； antisense： AAAAGGATGTGGATACCTCCCAAGTTT-CGACTTGGGAGGTATCCACATCC.將這兩段干擾序列合成后，95℃1 min，37℃1 h退火，將CI-TRIP質(zhì)粒用BamH Ⅰ和Sal Ⅰ雙酶切，最后將干擾序列與CI-TRIP質(zhì)粒連接.經(jīng)測序，連接正確的質(zhì)粒就是BL21（DE3）-TRIP-CTNNB1.取1 μL CI-TRIP-CTNNB1加入BL21（DE3）感受態(tài)中，獲得重組菌.重組菌的鑒定方法同1.2.3.用Western blot檢測跨界基因沉默菌株BL21（DE3）-TRIP-CTNNB1的干擾能力，ImageJ軟件分析目的條帶的光密度值.采用t-檢驗判斷實驗組和對照組之間均值的差異顯著性，顯著水平定為P<0.05.

2 實驗結(jié)果

2.1 同源臂擴增及環(huán)形跨界整合質(zhì)粒的構(gòu)建與鑒定

首先，擴增出同源臂片段，如圖1所示.以質(zhì)粒pR6k為模板，用引物擴增出oriR6k-cm片段，其長度為1 487 bp（圖1A）；以BL21（DE3） 基因組為模板，用引物擴增出lac Z的重組片段，其長度為2 129 bp（圖1B）.將兩者的PCR產(chǎn)物分別用膠回收試劑盒回收，然后將兩種產(chǎn)物等量混合，以此混合物為模板，PCR擴增出oriR6k-cm-lac Z基因片段，其長度為3 493 bp（圖1C）.再將CI-TRIP和oriR6k-cm-lac Z基因片段分別用Pci Ⅰ和NgoM Ⅳ雙酶切，將兩者的連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)入GBpir菌.然后提取陽性菌落中的質(zhì)粒，并進行雙酶切驗證（圖1D）.實驗結(jié)果表明，環(huán)形跨界基因沉默整合質(zhì)粒被成功構(gòu)建，并被命名為CI-TRIP.

2.2 利用CI-TRIP構(gòu)建跨界基因沉默菌株

將CI-TRIP轉(zhuǎn)進BL21（DE3），用引物inv c1f/inv c1r進行菌落PCR初篩.如圖2A中的1，2，3，4，7，8，11，13，14，15，16，19，20，23號菌液擴增出1 563 bp的鑒定條帶，因為inv是跨界基因沉默質(zhì)粒元件中的一段序列，對于改造后的BL21（DE3） 而言，這是一個外源的基因，能用菌落PCR擴增出inv的目的條帶，說明這些菌經(jīng)CI-TRIP已將其他元件也整合到其染色體上了.為了確認這些菌是否確實為陽性，筆者將上述部分陽性菌液作為候選菌株繼續(xù)培養(yǎng)，并提取基因組DNA，然后用相同引物進行第二輪PCR.如圖2B所示，7個泳道都有目的條帶，且條帶的大小和位置正確.通過兩輪PCR驗證，跨界基因沉默菌株已構(gòu)建成功.

2.3 Cre重組酶刪除抗性基因及驗證

雖然跨界基因沉默菌株已經(jīng)構(gòu)建成功，但是菌株的基因組上還含有質(zhì)粒上的抗性基因，因此要刪除整合到染色體上的抗性基因，使其成為安全的siRNA傳遞載體.通過Cre-LoxP重組酶系統(tǒng)刪除抗性基因后，跨界基因沉默菌株有可能同時丟失已整合的inv-hly工作元件.將只在無抗性的LB固體培養(yǎng)基上生長的菌落進行菌落PCR，如圖3A中泳道5，10所示，工作元件已丟失；而泳道1，2，3，4，6，7，8，9為刪除抗性基因后，工作元件仍然存在，為陽性菌.取部分陽性菌進一步做PCR驗證，提取細菌的基因組DNA，并用引物inv c1f/inv c1r和cm f/cm r進行PCR檢測，若在這一輪PCR篩選中引物inv c1f/inv c1r擴增產(chǎn)物為陽性而cm f/cm r擴增產(chǎn)物為陰性，則說明跨界基因沉默作用元件已穩(wěn)定整合到該菌株的基因組染色體上，而抗性基因cm被成功刪除.如圖3B所示，泳道1，2，3，4都有目的條帶，說明工作元件未丟失.如圖3C所示，泳道1，2，3，4都無目的條帶，說明抗性基因刪除成功，泳道p為陽性對照，圖3B和3C中編號相同的泳道其模板來源相同.實驗結(jié)果表明，抗性基因cm已經(jīng)成功被刪除.

2.4 檢測跨界基因沉默菌株中LLO蛋白的表達

跨界基因沉默菌株的基因組DNA整合了TRIP中的hly和inv基因，為了檢測上述整合進細菌基因組的跨界干擾元件能否正常工作，筆者通過Western blot和侵染實驗來進行驗證.endprint

首先，通過Western blot檢測跨界基因沉默菌株是否能夠穩(wěn)定表達hly基因的編碼產(chǎn)物L(fēng)LO蛋白.如圖4所示，BL21（DE3） 為空載對照，TRIP為含TRIP質(zhì)粒的BL21（DE3），B-CI-TRIP為已將跨界基因沉默質(zhì)粒整合到基因組且刪除抗性基因的BL21（DE3）.結(jié)果表明跨界基因沉默菌株能正常表達LLO蛋白.

2.5 跨界基因沉默菌株侵染細胞的能力

其次，用侵染實驗來檢驗跨界基因沉默菌株是否能穩(wěn)定表達inv基因，從而有入侵細胞的能力.吖啶橙能透過細胞膜，并與細胞核中的核酸結(jié)合，在藍光的激發(fā)下發(fā)出綠色熒光.如圖5（彩圖見封三）所示，SW480細胞內(nèi)最大的綠色熒光團為細胞核，細胞質(zhì)處有許多綠色小亮斑即為入侵的細菌.用空載細菌檢測侵染細胞的能力，可見SW480細胞質(zhì)中沒有入侵的細菌，由此可知，空載菌不能侵染哺乳動物細胞（圖5A）.在相同處理條件下，用攜帶了跨界基因沉默整合元件的菌株去侵染細胞，SW480細胞質(zhì)中有入侵的細菌（圖5B）.以上結(jié)果表明，筆者構(gòu)建的跨界基因沉默菌株具有入侵哺乳動物細胞的能力.

2.6 跨界基因沉默菌株干擾靶基因的能力

用1.2.6中的方法，構(gòu)建干擾CTNNB1基因的跨界基因沉默菌株，將其命名為BL21（DE3）-TRIP-CTNNB1.將構(gòu)建好的跨界基因沉默菌株侵染SW480細胞，然后用Western blot來檢測此跨界基因沉默菌株對細胞中靶基因的干擾能力.結(jié)果如圖6所示，跨界基因沉默菌株BL21（DE3）-TRIP-CTNNB1能在48 h和72 h顯著下調(diào)SW480細胞中β-catenin蛋白的表達，將β-catenin的表達量分別降至NC組（不用細菌處理細胞）的76.3%（P<0.01）和61.3%（P<0.05）.這表明跨界基因沉默菌株可攜帶shRNA，并能抑制哺乳細胞中目的基因的表達.

3 討論

RNAi是一種由雙鏈RNA引起的基因沉默現(xiàn)象，能抑制靶基因的表達，具有特異性和高效等優(yōu)點.對哺乳動物細胞來說，要使外源的siRNA起基因沉默作用，siRNA的傳遞成為限制RNAi技術(shù)發(fā)展的瓶頸之一，更限制了特異性干擾作用應(yīng)用于臨床藥物開發(fā).向雙林等在2006年提出了“跨界基因沉默”技術(shù)，利用基因工程改造后的工程細菌攜帶shRNA侵染細胞，并在細胞內(nèi)釋放shRNA的特點，使RNAi的運用不再因傳遞的問題而被限制.但是TRIP轉(zhuǎn)入大腸桿菌后容易因環(huán)境壓力而丟失，從而喪失跨界基因沉默的功能.如果能使質(zhì)粒整合到跨界基因沉默菌株的基因組內(nèi)，那么跨界基因沉默系統(tǒng)會變得更加穩(wěn)定方便，這也將有利于拓展跨界基因沉默技術(shù)的使用范圍.將來可以把益生菌改造成“跨界基因沉默”菌株，當(dāng)人們飲用這種益生菌到腸道后，它不僅對身體有益，還能發(fā)揮RNAi作用，這種一舉兩得的方式將使得臨床治療變得更為便捷.

基于以上考慮，筆者對跨界基因沉默技術(shù)進行完善.首先運用傳統(tǒng)分子克隆的方法構(gòu)建環(huán)形跨界基因沉默整合質(zhì)粒 （CI-TRIP），然后通過RecA介導(dǎo)的同源重組將CI-TRIP上的跨界基因沉默元件成功地整合到大腸桿菌 （BL21-DE3） 的基因組中，并通過Cre-LoxP重組酶系統(tǒng)刪除跨界基因沉默菌株基因組中的抗性基因.隨后利用Western blot和細菌侵染實驗來檢測跨界基因沉默菌株中基因組的跨界干擾元件是否能正常工作.結(jié)果表明，抗性刪除的基因沉默菌株不僅能穩(wěn)定表達LLO蛋白，而且具有細胞侵染的能力.

為了驗證構(gòu)建出的基因沉默菌株是否能在細胞中發(fā)揮其基因沉默作用，筆者對跨界基因沉默菌株進行了功能檢測：以CTNNB1基因做為靶標，用環(huán)形跨界基因沉默整合質(zhì)粒構(gòu)建了BL21（DE3）-TRIP-CTNNB1跨界基因沉默菌株，此菌株帶有能引起CTNNB1基因沉默的shRNA序列.將干擾菌株侵染細胞后，用Western blot來檢測菌株對靶標基因的干擾作用.結(jié)果表明，跨界基因沉默菌株可通過傳遞shRNA抑制細胞中目的基因的表達.

在本研究中，改良后的跨界基因沉默整合菌株解決了載體細菌中質(zhì)粒容易丟失的缺點，提高了跨界沉默菌株的穩(wěn)定性，同時表現(xiàn)出無抗性的特點，而且還能有效地沉默細胞中靶基因，這使跨界基因沉默技術(shù)的使用變得更方便.在今后的研究中，筆者還將對跨界基因沉默技術(shù)進一步改造，使該菌株真正成為既能治療疾病又對人體無害的工程菌.

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