楊舒貽, 李俊成, 惠文凱, 陳曉陽,*, 馬玲,*
1.華南農(nóng)業(yè)大學(xué)林學(xué)與風(fēng)景園林學(xué)院/亞熱帶農(nóng)業(yè)生物資源保護(hù)與利用國家重點實驗室, 廣東省森林植物種質(zhì)創(chuàng)新與利用重點實驗室, 廣東省木本飼料工程技術(shù)研究中心, 農(nóng)業(yè)部能源植物資源與利用重點實驗室, 廣州 510642 2.北京林業(yè)大學(xué)生物科學(xué)與技術(shù)學(xué)院/林木育種國家工程實驗室, 北京 100083
強(qiáng)酸脅迫下大葉相思幼苗抗性生理機(jī)制研究
楊舒貽1, 李俊成1, 惠文凱2, 陳曉陽1,*, 馬玲1,*
1.華南農(nóng)業(yè)大學(xué)林學(xué)與風(fēng)景園林學(xué)院/亞熱帶農(nóng)業(yè)生物資源保護(hù)與利用國家重點實驗室, 廣東省森林植物種質(zhì)創(chuàng)新與利用重點實驗室, 廣東省木本飼料工程技術(shù)研究中心, 農(nóng)業(yè)部能源植物資源與利用重點實驗室, 廣州 510642 2.北京林業(yè)大學(xué)生物科學(xué)與技術(shù)學(xué)院/林木育種國家工程實驗室, 北京 100083
為探討大葉相思幼苗耐強(qiáng)酸脅迫的生理機(jī)制, 試驗采用水培法, 設(shè)置了pH 3.0、pH 2.0 和pH 5.8 (CK)酸脅迫梯度和3天、9天兩個持續(xù)脅迫時間, 觀測了大葉相思幼苗在不同強(qiáng)度酸脅迫下葉片丙二醛(MDA)含量, 脯氨酸(Pro)含量以及抗氧化酶如過氧化物酶(POD)、谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶(GST)、谷胱甘肽過氧化物酶(GPX)和谷胱甘肽還原酶(GR)等活性的響應(yīng)特征。結(jié)果表明: (1)酸脅迫加重過程中, PSⅡ 最大光化學(xué)效率(Fv/Fm)表現(xiàn)出下降趨勢; (2)與CK比較, 在pH 3.0脅迫下, Pro無顯著變化, 但在pH 2.0持續(xù)脅迫下顯著上升, 表明當(dāng)pH 值低至2.0時, 大葉相思幼苗受到嚴(yán)重脅迫; (3)與CK比較, 在pH值為 3.0和 2.0持續(xù)3天、9天的脅迫下, MDA含量無顯著變化, 表明大葉相思幼苗在極強(qiáng)酸脅迫下膜脂過氧化程度并未顯著提高; (4)與CK比較, 在pH 3.0脅迫下GST和GPX活性顯著上升, 但在pH 2.0脅迫下無顯著變化; 與CK比較, 在pH 3.0脅迫下GR和POD活性無顯著差異, 但在pH 2.0脅迫下有所下降, 表明大葉相思幼苗體內(nèi)不同抗氧化酶在應(yīng)對不同程度強(qiáng)酸脅迫時表現(xiàn)不同, 其中 GST對強(qiáng)酸脅迫響應(yīng)最為敏感。綜合分析各指標(biāo)在不同梯度酸脅迫下的變化, 認(rèn)為大葉相思幼苗耐強(qiáng)酸脅迫的生理調(diào)節(jié)閾值可能在pH 3.0左右.
大葉相思; 酸脅迫; 抗氧化酶
含硫礦采后由于硫的氧化使土壤呈強(qiáng)酸性, 許多植物難以存活, 給礦山修復(fù)帶來巨大阻力, 因此,篩選和利用耐強(qiáng)酸植物作為修復(fù)植物具有重要意義。大葉相思(Acacia auriculiformis)系豆科金合歡屬速生喬木樹種, 能在多種土質(zhì)下生長, 是改良土壤的優(yōu)良樹種[1]。前期研究發(fā)現(xiàn), 大葉相思幼苗可在廢棄硫鐵礦土(pH 3.0)中存活, 存活率≥70%, 通過控制試驗發(fā)現(xiàn)大葉相思幼苗在pH 2.0基質(zhì)中表觀生長受到嚴(yán)重抑制, 但仍能存活, 并結(jié)根瘤, 說明大葉相思幼苗可能具有一套高效緩解由酸脅迫產(chǎn)生的傷害的防御體系, 可用于強(qiáng)酸性礦土修復(fù)[2]。
多篇研究指出抗氧化酶活性的高低與植物對環(huán)境脅迫的抗性有密切的關(guān)系[3,4]。目前國內(nèi)外對酸脅迫研究多關(guān)注的是酸雨脅迫[5,6], 且相對于其他非生物脅迫, 研究基礎(chǔ)還比較薄弱, 作用機(jī)制仍未明朗??寡趸赶到y(tǒng)在保護(hù)植物免受酸雨傷害中起到了重要的作用也倍受關(guān)注, 包括過氧化物酶(Peroxidase,POD)[7]、谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶(Glutathione S- transferases, GST)[8]、谷胱甘肽過氧化物酶(Glutathione Peroxidase, GPX)[9]及谷胱甘肽還原酶(Glutathione Reductase, GR)[10]。Gabara等人的研究指出模擬酸雨脅迫(pH 1.8)誘導(dǎo)番茄GST活性在脅迫3天時達(dá)到最大值, 隨后大幅降低[11]; Wyrwicka等人的研究表明,pH 3.0酸雨脅迫誘導(dǎo)黃瓜GST活性在脅迫5天時達(dá)到最大值, 脅迫7天時下降[12], 可見植物對酸雨脅迫的生理響應(yīng)存在一定的閾值。王應(yīng)軍等發(fā)現(xiàn)木芙蓉對酸雨脅迫的生理響應(yīng)閾值大致在pH 2.0—pH 3.0[13]。另外, 植物對強(qiáng)酸脅迫及其它非生物脅迫的生理響應(yīng)是整個機(jī)體抗氧化防御體系的綜合反應(yīng), 除抗氧化酶體系外, 丙二醛(Malondialdehyde, MDA)含量、脯氨酸(Proline, Pro)含量、PSⅡ最大光化學(xué)效率(Fv/Fm)等的變化也常用于分析植物對逆境脅迫的生理響應(yīng)方式。
本研究以大葉相思幼苗為試驗材料, 設(shè)置不同酸度的脅迫試驗, 旨在揭示大葉相思幼苗抗氧化酶系統(tǒng)對不同程度強(qiáng)酸脅迫的響應(yīng)特征; 探討不同脅迫時間梯度對大葉相思幼苗響應(yīng)酸脅迫的相關(guān)抗氧化酶變化的影響, 為進(jìn)一步研究大葉相思幼苗耐強(qiáng)酸脅迫的生理機(jī)制提供依據(jù)。
供試的大葉相思實生苗木為8個月齡苗, 苗高約30 cm。完全洗根后每株獨(dú)立置于裝有Hoagland營養(yǎng)液的塑料杯中, 并固定莖稈使其保持直立, 穩(wěn)定生長一周后進(jìn)行試驗處理。于2015年5月在廣州(全年日照時數(shù)1770—1940小時左右)華南農(nóng)業(yè)大學(xué)校內(nèi)通風(fēng)玻璃溫室內(nèi)自然光下進(jìn)行試驗, 試驗期間環(huán)境溫度10 ℃ —32 ℃, 濕度50%—95%。
以Hoagland營養(yǎng)液原液(pH 5.8)為對照(CK, 不加酸), 另設(shè)pH 2.0、pH 3.0兩個酸度梯度, 使用H2SO4調(diào)節(jié)溶液pH; 設(shè)3d、9d兩個持續(xù)處理時間梯度,每個處理3個重復(fù)。
應(yīng)用FluorPen FP100測定不同pH強(qiáng)度和不同脅迫時間下葉綠素?zé)晒鈪?shù)。于晴天上午9—11點用儀器自帶葉夾使葉片暗適應(yīng)15分鐘后測定OJIP曲線,自動輸出 PSⅡ的最大光化學(xué)效率Fv/Fm值。
于晴朗天上午9點左右取頂端第3或4片完全展開葉, 快速稱重后用錫紙包裹放入液氮中保存, 并及時放入-80 ℃超低溫冰箱, 待9d樣品取樣后, 即進(jìn)行提取實驗。
葉片內(nèi)MDA、Pro含量以及POD、GST、GPX和GR等生理指標(biāo)使用試劑盒(南京建成生物有限公司, 南京)提取。取-80 ℃冷藏后葉片樣品, 加入預(yù)冷0.01 mol·LPBS溶液(pH 7.4)研磨(Pro含量測定需加入試劑盒中特定試劑), 制備10%勻漿液。在4 ℃下5000轉(zhuǎn)·分離心20min后取上清液備用。使用紫外分光光度計(PerkinElmer Lambda 25, 美國)測定相應(yīng)波長下的OD值。MDA含量測定使用TBA法, 測定波長為532 nm[14]; Pro含量測定使用茚三酮法[15]; POD活性測定是利用POD催化過氧化氫反應(yīng)的原理, 通過測定420 nm處吸光度的變化計算其活性[14]; GST活性的測定是利用GST催化還原型谷胱甘肽(GSH)與1-氯-2, 4-二硝基苯(CDNB)反應(yīng)的原理, 通過檢測GSH的濃度來反映活性(GSH與二硫二代硝基甲苯(DTNB)作用生成穩(wěn)定的黃色底物,412 nm下測定吸光度值計算GSH的量); GPX活性測定是利用GPX促進(jìn)H2O2與GSH反應(yīng)行程H20和GSSG,通過測定酶促反應(yīng)中GSH的消耗求出GPX活性[16]; GR活性測定利用氧化型谷胱甘肽GSSG在GR催化下, 由NADPH供氫, 使GSSG還原生成GSH, 在340 nm處檢測NADPH吸光度值的下降, 通過檢測NADPH的改變,計算GR活性。Pro以鮮重質(zhì)量計算含量, 其他生理指標(biāo)均以樣品蛋白濃度計算。
采用SAS9.0分析統(tǒng)計軟件進(jìn)行顯著性檢驗(t-test); 采用SPSS 9.0分析統(tǒng)計軟件進(jìn)行雙因素方差分析; 采用EXCEL繪制相關(guān)圖表。
由圖1可知, 經(jīng)持續(xù)3天和9天處理后, Fv/Fm均隨著酸脅迫強(qiáng)度的增加呈持續(xù)下降趨勢, 與對照相比, 差異達(dá)極顯著水平(p<0.01)。
圖1 酸脅迫對大葉相思幼苗葉片F(xiàn)v/Fm的影響Fig.1 Fv/Fm in phylloid of Acacia auriculiformis under strong acid stress
由圖2可知, 經(jīng)持續(xù)3天和9天處理后, 大葉相思幼苗葉片中MDA含量均隨著酸脅迫強(qiáng)度的增加呈先升高后降低趨勢, 但差異不顯著。雙因素方差分析結(jié)果顯示, 持續(xù)脅迫時間對MDA含量影響不顯著,酸度與時間尺度交互作用不顯著(表1)。
由圖3可以看出, 與CK相比較, 經(jīng)pH 3.0 脅迫3天和9天后, 大葉相思幼苗葉片中Pro含量均無變化, 而經(jīng)pH 2.0脅迫后, Pro含量顯著增加(p<0.01)。經(jīng)雙因素方差分析, 這兩種脅迫時間尺度對Pro含量影響極顯著, 酸度與時間尺度的交互作用達(dá)到顯著水平(表1)。
由圖4可知, 經(jīng)3天和9天脅迫后, 大葉相思幼苗葉片中GST活性隨酸度增加均呈現(xiàn)先升后降趨勢,在pH 3.0脅迫下, GST活性最高, 與對照相比, 分別提高了511.76%和673.46%, 差異達(dá)到極顯著水平(p<0.01); 而在pH 2.0脅迫下, GST活性與對照則無顯著差異。經(jīng)雙因素方差分析, 脅迫3天、9天均對GST活性有極顯著影響, 酸度與時間尺度交互作用達(dá)到顯著水平(表1)。
圖2 酸脅迫對大葉相思幼苗葉片丙二醛含量的影響Fig.2 MDA content in phylloid of Acacia auriculiformis under strong acid stress
圖3 酸脅迫對大葉相思幼苗葉片脯氨酸含量的影響Fig.3 Pro content in phylloid of Acacia auriculiformis under strong acid stress
由圖5可知, 經(jīng)3天和9天脅迫處理后, 大葉相思幼苗葉片中GPX活性也隨酸度增加均呈現(xiàn)先上升后下降趨勢, 但只有9天處理的pH 3.0脅迫強(qiáng)度與CK的差異達(dá)到顯著水平(p<0.05), 而pH 2.0脅迫強(qiáng)度下與CK 無顯著差異。經(jīng)雙因素方差分析, 脅迫3天、9天這兩個脅迫時間尺度對GPX活性影響沒有達(dá)到顯著水平, 酸度與時間尺度交互作用也不顯著(表1)。
由圖6可知, 經(jīng)3天和9天脅迫處理后, 大葉相思幼苗在pH 3.0和pH 2.0酸度強(qiáng)度下葉片中GR活性與對照的差異沒有達(dá)到顯著水平。在pH 3.0和pH 2.0酸度脅迫下, 分別達(dá)到顯著(p<0.05)和極顯著差異水平(p<0.01), 9天的處理GR活性明顯比3天的高。經(jīng)方差分析, 脅迫3天、9天這兩個脅迫時間尺度對GR活性影響達(dá)到極顯著水平, 酸度與時間尺度交互作用不顯著(表1)。
根據(jù)圖7顯示, 在脅迫3天時間尺度上, pH 3.0脅迫時大葉相思幼苗葉片中POD活性相與CK無明顯差異, 而pH 2.0脅迫時大葉相思幼苗葉片中POD活性明顯比CK低; 經(jīng) pH 3.0和pH 2.0酸度 9天脅迫處理后, 葉片中POD活性與CK均無顯著差異。雙因素方差分析顯示, 經(jīng)3天、9天脅迫處理對POD活性影響不顯著, 酸度與時間尺度交互作用也不顯著(表1)。
圖4 酸脅迫對大葉相思幼苗葉片谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶活性的影響Fig.4 GST activity in phylloid of Acacia auriculiformis under strong acid stress
圖5 酸脅迫對大葉相思幼苗葉片谷胱甘肽過氧化物酶活性的影響Fig.5 GPX activity in phylloid of Acacia auriculiformis under strong acid stress
圖6 酸脅迫對大葉相思幼苗葉片谷胱甘肽還原酶活性的影響Fig.6 GR activity in phylloid of Acacia auriculiformis under strong acid stress
圖7 酸脅迫對大葉相思幼苗葉片過氧化物酶活性的影響Fig.7 POD activity in phylloid of Acacia auriculiformis under strong acid stress
表1 酸度、時間尺度雙因素顯著性分析表Tab.1 Two-factor analysis between pH and time
大葉相思幼苗受酸毒害的一個重要原因可能是酸脅迫引起體內(nèi)的氧化脅迫, 脅迫會破壞植物細(xì)胞內(nèi)的穩(wěn)態(tài)環(huán)境, 使植物細(xì)胞內(nèi)ROS含量增加。ROS被認(rèn)為是有氧代謝有毒的副產(chǎn)品[17], 包括單線態(tài)氧、超氧陰離子(O2-)、過氧化氫(H2O2)、氫氧根離子(HO-)等。大葉相思幼苗在酸脅迫下, Pro含量以及GST、GPX、GR等抗氧化酶活性發(fā)生了變化, 類似的結(jié)果也出現(xiàn)在低溫[18]、干旱[19]、鹽[20]以及高濃度銅[21]等環(huán)境脅迫中。說明大葉相思幼苗在酸脅迫下積極啟動抗氧化酶防御系統(tǒng), 通過調(diào)節(jié)酶活性等方式來阻止、降低、修復(fù)因酸脅迫造成的機(jī)體損傷, 保證植物可以正常進(jìn)行生理活動。
葉綠素?zé)晒鈪?shù)在測定植物光合作用過程中光系統(tǒng)對光能的吸收、傳遞、耗散、分配等方面具有獨(dú)特的作用[22]。葉綠素?zé)晒夥治黾夹g(shù)現(xiàn)較多的被應(yīng)用于探測溫度脅迫、干旱脅迫等環(huán)境脅迫對植物光合作用的影響過程以及機(jī)制研究中[23][24]。Fv/Fm是光合系統(tǒng)II(PSII)的最大光能轉(zhuǎn)換效率, 反映PSII反映中心內(nèi)稟光能轉(zhuǎn)換效率[25]。本研究中, 經(jīng)3天和9天脅迫后,Fv/Fm隨酸脅迫強(qiáng)度地增強(qiáng)呈逐漸下降趨勢, 且與對照相比, 存在極顯著差異, 表明在酸脅迫下大葉相思幼苗葉片PSⅡ系統(tǒng)受到了一定程度的損傷。Fv/Fm也是表征健康植物葉片的指標(biāo), 植物受到脅迫時, 這一效率值(0.8)就明顯下降[26]。本研究中, 經(jīng)pH 3.0、pH 2.0脅迫后, 該效率值在0.8之下,表明兩種酸強(qiáng)度對大葉相思幼苗造成了脅迫。
Pro是水溶性最大的氨基酸(溶解度162.3 g, 25℃), 具有較強(qiáng)水合能力, 生理pH范圍內(nèi)帶靜電荷,是理想的有機(jī)滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)[27], 逆境脅迫下植株可通過增加Pro含量提高滲透勢以緩解脅迫引起的傷害[28]。本試驗中, 在 pH 3.0下, 經(jīng)3天和9天脅迫處理后, Pro含量與對照差異較小; 經(jīng)pH 2.0處理后,Pro含量大幅增加, 表明大葉相思幼苗在pH 3.0時所受害較輕, 而在pH 2.0時才受害嚴(yán)重 , 且Pro在大葉相思幼苗受到酸脅迫時起了重要的滲透調(diào)節(jié)作用。此外, 也從生理水平上證明大葉相思幼苗對強(qiáng)酸有較大的耐受性。MDA是細(xì)胞脂質(zhì)過氧化最重要的產(chǎn)物之一。MDA的增加表明質(zhì)膜損壞的出現(xiàn)。本研究中, 在pH 3.0和pH 2.0酸度下經(jīng)3天和9天處理后,MDA含量與CK相比均無顯著變化。其他環(huán)境脅迫,如低溫脅迫處理后, 玉米MDA含量也出現(xiàn)了類似變化, 抗冷能力較強(qiáng)的玉米品種(東農(nóng)250)遭受8 ℃和9℃處理時, MDA含量與對照相比, 差異并不明顯,且在脅迫第9天含量僅比對照增加6.53%和4.26%[29]。因此我們推測pH 2.0的強(qiáng)酸對大葉相思幼苗所形成的脅迫可能體現(xiàn)在其他細(xì)胞結(jié)構(gòu)或生物大分子受損而非質(zhì)膜損壞, 但該推斷需要在今后進(jìn)行進(jìn)一步研究驗證。
GPX、GST、GR是與谷胱甘肽密切相關(guān)的酶類。有研究指出, GPX活性的提高可以反映植物體高效清除脂質(zhì)過氧化產(chǎn)物[12]。本試驗中, 經(jīng)pH 3.0脅迫后,大葉相思幼苗葉片中GST和GPX相對于CK均顯著升高。可能由于pH 3.0對大葉相思幼苗產(chǎn)生一定程度的氧化脅迫, 進(jìn)而刺激植物體內(nèi)ROS大量積累,ROS作為信號因子誘導(dǎo)抗氧化酶活性增強(qiáng), 以盡量降低氧化脅迫對植物產(chǎn)生的傷害。其中GST活性在pH 3.0脅迫時相對于CK升高幅度最大, 推測GST活性的提高可能對大葉相思幼苗耐酸脅迫具有重要作用。Wyrwicka等研究指出GST對清除由酸雨誘導(dǎo)的黃瓜體內(nèi)有毒產(chǎn)物具有重要作用, 這與本研究結(jié)果相符[12]。經(jīng)pH 2.0處理后, 大葉相思幼苗GST、GPX、GR活性并未被高效激活, 甚至受到抑制, 可能原因是如此強(qiáng)的酸脅迫已對大葉相思幼苗產(chǎn)生了嚴(yán)重傷害, 破壞植物組織, 造成植物機(jī)體代謝紊亂, 使GST、GPX、GR活性無法被激活; 也可能是由于Pro的大量積累, 在降解過程中產(chǎn)生有毒物質(zhì), 使植物體內(nèi)酶活性降低或完全喪失[30,31]。
POD作為活性較高的適應(yīng)性酶, 能夠反映植物生長發(fā)育的特點、體內(nèi)代謝狀況以及對外界環(huán)境的適應(yīng)性。在本研究中, 在pH 3.0酸度下經(jīng)3天和9天脅迫后, 大葉相思幼苗POD活性與對照相比有增強(qiáng)趨勢, 但差異不顯著; 經(jīng)pH 2.0處理后POD活性反而受到抑制, 鄧紅平等人的研究報導(dǎo)了類似結(jié)果: 入侵物種土荊芥POD活性隨模擬酸雨脅迫的增強(qiáng)呈現(xiàn)先升高后降低的趨勢, 在pH 3.5處理后活性達(dá)到最高值[32]。說明POD可能并未高效地參與大葉相思幼苗植物體內(nèi)ROS的清除過程, 對緩解強(qiáng)酸脅迫引起的氧化損傷可能并不是必需的。
大葉相思幼苗GST、GPX、GR、POD等抗氧化酶活性隨脅迫強(qiáng)度增強(qiáng)總體呈現(xiàn)先升高后下降趨勢,特別是GST活性, 相比對照顯著升高, 而脂質(zhì)過氧化程度并未顯著提高, 表明大葉相思幼苗在pH 3.0時能較好的調(diào)節(jié)自身防御機(jī)制以抵抗酸脅迫帶來的傷害。綜合各生理指標(biāo)對不同梯度酸脅迫的響應(yīng)的分析, 同時借鑒肖艷、姜靜等人對模擬酸雨脅迫下荔枝、龍眼、芒果、美人蕉等植物生理傷害閾值的確定方法[33,34], 可以推測, 大葉相思幼苗耐強(qiáng)酸脅迫的生理調(diào)節(jié)閾值在pH 3.0左右。
兩個脅迫時間尺度對GST、GR活性和Pro含量影響顯著, 而對Fv/Fm、MDA含量、GPX和POD活性的影響較小。脅迫9天時, GST活性相對于脅迫3天顯著降低, 而GR活性和Pro含量相對于脅迫3天顯著升高。由于本實驗是在水培條件下進(jìn)行, 推測9天時間尺度對大葉相思幼苗生理活動造成輕微水淹脅迫,而GST、GR和Pro對水淹脅迫可能較敏感。有研究發(fā)現(xiàn)水淹脅迫會提高無花果幼苗Pro含量[35], 牡丹受到淹水脅迫時GR也表現(xiàn)出類似的響應(yīng): 牡丹體內(nèi)GR活性隨著水淹脅迫時間的延長呈現(xiàn)先上升后下降趨勢[36]。關(guān)于大葉相思幼苗對水淹脅迫的響應(yīng)有待今后進(jìn)一步深入研究, 但總體來說本試驗中輕微水淹脅迫并未對酸脅迫結(jié)果造成不利影響。
(1) pH 2.0時大葉相思幼苗受到嚴(yán)重脅迫, pH 3.0時僅受到輕微脅迫。
(2) 大葉相思幼苗體內(nèi)不同抗氧化酶在應(yīng)對不同程度強(qiáng)酸脅迫時表現(xiàn)不同, 其中GST對強(qiáng)酸脅迫響應(yīng)最為敏感。
(3) 大葉相思幼苗耐強(qiáng)酸脅迫的生理調(diào)節(jié)閾值可能在pH 3.0左右。
本研究的數(shù)據(jù)為進(jìn)一步研究酸脅迫下大葉相思幼苗抗氧化酶保護(hù)系統(tǒng)的活化以及酸脅迫的作用機(jī)理提供了基礎(chǔ)框架。
[1]林秀蘭.大葉相思人工林木材理化特性及利用方式的研究[J].林業(yè)科學(xué), 2002, 38(5): 121–127.
[2]MA Ling, RAO Xingquan, LU Ping, et al.Acid-tolerant plant species screened for rehabilitating acid mine drainage sites[J].Journal of Soils and Sediments, 2015, 15:1104–1112.
[3]SáNCHEZ RODRíGUEZ E, RUBIO WILHELMI M D M,BLASCO B, et al.Antioxidant response resides in the shoot in reciprocal grafts of drought-tolerant and droughtsensitive cultivars in tomato under water stress[J].Plant Science, 2012, 188-189(3): 89–96.
[4]HU Longxing, LI Huiying, PANG Huangcheng, et al.Responses of antioxidant gene, protein and enzymes to salinity stress in two genotypes of perennial ryegrass(Lolium perenne) differing in salt tolerance[J].Journal of Plant Physiology, 2012, 169(2): 146–156.
[5]LIU Jixi, ZHOU Guoyi, YANG Chengwei, et al.Responses of chlorophyll fluorescence and xanthophyll cycle in leaves ofSchima superbGardn.&Pinus massonianaLamb.to simulated acid rain at Dinghushan Biosphere Reserve[J].Acta Physiologiae Plantarum, 2007, 29(1): 33–38.
[6]麥博儒.模擬酸雨對農(nóng)作物生長發(fā)育、產(chǎn)量及營養(yǎng)品質(zhì)的影響[D].南京: 南京信息工程大學(xué), 2008.
[7]郭慧媛, 馬元丹, 王丹, 等.模擬酸雨對毛竹葉片抗氧化酶活性及釋放綠葉揮發(fā)物的影響[J].植物生態(tài)學(xué)報,2014, 38(8): 896–903.
[8]CHEN Juan, WANG Wenhua, LIU Tingwu, et al.Photosynthetic and antioxidant responses ofLiquidambar formosanaandSchima superbaseedlings to sulfuric-rich and nitric-rich simulated acid rain[J].Plant Physiology and Biochemistry, 2013, 64: 41–51.
[9]WYRWICKA A, SK?ODOWSKA M.Intercompartmental differences between cytosol and mitochondria in their respective antioxidative responses and lipid peroxidation levels in acid rain stress[J].Acta Physiologiae Plantarum,2014, 36(4): 837–848.
[10]LIU Enu, LIU Chiungpin.Effects of simulated acid rain on the antioxidative System inCinnamomum philippinenseSeedlings[J].Water, Air, & Soil Pollution, 2011, 215(1–4):127–135.
[11]GABARA, B, SK?ODOWSKA M, WYRWICKA A, et al.Changes in the ultrastructure of chloroplasts and mitochondria and antioxidant enzyme activity inLycopersicon esculentumMill.leaves sprayed with acid rain[J].Plant Science, 2003, 164(4): 507–516.
[12]WYRWICKA A, SK?ODOWSKA M.Influence of repeated acid rain treatment on antioxidative enzyme activities and on lipid peroxidation in cucumber leaves[J].Environmental and Experimental Botany, 2006, 56(2):198–204.
[13]王應(yīng)軍, 鄧仕槐, 姜靜, 等.酸雨對木芙蓉幼苗光合作用及抗氧化酶活性的影響[J].核農(nóng)學(xué)報, 2011, 25(3):588–593.
[14]LI Hongxia, XIAO Yu, CAO Lingling, et al.Cerebroside C Increases Tolerance to Chilling Injury and Alters Lipid Composition in Wheat Roots[J].Plos ONE, 2013, 8(9):e73380.
[15]趙世杰, 史國安, 董新純.植物生理學(xué)實驗指導(dǎo)[M].北京: 中國農(nóng)業(yè)科學(xué)技術(shù)出版社, 2002
[16]LEI Liu, YANG Liu, JIE Cui, et al.Oxidative stress induces gastric submucosal arteriolar dysfunction in the elderly[J].World Journal of Gastroenterology, 2013, 19 (48):9439–9446
[17]MITTLER R.Oxidative stress, antioxidants and stress tolerance[J].Trends in Plant Science, 2002, 7(9): 405–410.
[18]王小華, 莊南生.脯氨酸與植物抗寒性的研究進(jìn)展[J].中國農(nóng)學(xué)通報, 2008, 124(11): 398–402.
[19]UZILDAY B, TURKAN I, SEKMEN A H, et al.Comparison of ROS formation and antioxidant enzymes inCleome gynandra(C4) andCleome spinosa(C3) under drought stress[J].Plant Science, 2012, 182: 59–70.
[20]SEKMEN A H, TURKAN I, TANYOLACZ O, et al.Different antioxidant defense responses to salt stress during germination and vegetative stages of endemic halophyteGypsophila oblanceolataBark[J].Environmental and Experimental Botany, 2012, 77: 63–76.
[21]THOUNAOJAM T C, PANDA P, MAZUMDAR P, et al.Excess copper induced oxidative stress and response of antioxidants in rice[J].Plant Physiology and Biochemistry,2012, 53: 33–39.
[22]裴斌, 張光燦, 張淑勇, 等.土壤干旱脅迫對沙棘葉片光合作用和抗氧化酶活性的影響[J].生態(tài)學(xué)報, 2013, 33(5):1386–1396
[23]郭延平, 張良誠, 紅雙宋, 等.溫州蜜柑葉片氣體交換和葉綠素?zé)晒鈱Φ蜏氐捻憫?yīng)[J].植物生理學(xué)報, 2000, 26(2):88–94
[24]楊甲定, 趙哈林, 張銅會.黃柳和垂柳的耐熱性和耐寒性比較研究[J].植物生態(tài)報, 2005, 91(1): 42–47
[25]溫國勝, 田海濤, 張明如.葉綠素?zé)晒夥治黾夹g(shù)在林木培養(yǎng)中的應(yīng)用[J].2006, 17, (10): 1973–1977
[26]BJ?RKMAN O, DEMMIG B.Photon yield of O2evolution and chlorophyll fluorescence characteristics at 77K among vascular plants of diverse origins[J].Planta,1987, 170 (4): 489–504
[27]DELAUNEY A J, VENNA D S P.Proline biosynthesis and osmoregulation in plants[J].The Plant Journal, 1993, 4(2):215–223.
[28]全先慶, 張渝潔, 單雷, 等.高等植物脯氨酸代謝研究進(jìn)展[J].生物技術(shù)通報, 2007, (1): 14–18.
[29]王瑞, 馬鳳鳴, 李彩鳳, 等.低溫脅迫對玉米幼苗脯氨酸、丙二醛及電導(dǎo)率的影響[J].東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報, 2008,39(5): 20–23
[30]HELLMANN H, FUNCK D, RENTSCH D, et al.Hypersensitivity of an Arabidopsis sugar signaling mutant toward exogenous proline application[J].Plant Physiology,2000, 123(2): 779–790.
[31]DEUSCHLE K, FUNCK D, HELLMANN H, et al.A nuclear gene encoding Mitochondrial△1-pyrroline-5-carboxylate dehydrogenase and its potential role in protection from proline toxicity[J].The Plant Journal, 2001,27(4): 345–356.
[32]鄧紅平, 尹燦, 王馨, 等.模擬酸雨對土荊芥生長和抗氧化酶活性的影響[J].西南師范大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版),36(1): 113–117
[33]肖艷, 黃建昌.13種果樹對酸雨抗性的研究[J].果樹學(xué)報, 2004, 21(3): 191–195
[34]姜靜.酸雨脅迫對美人蕉生理生化特性的影響[D].四川:四川農(nóng)業(yè)大學(xué), 2011
[35]齊琳, 馬娜, 吳雯雯, 等.無花果品種幼苗淹水脅迫的生理響應(yīng)與耐澇性評估[J].園藝學(xué)報, 2015, 42(7):1273–1284.
[36]王娟.淹水對牡丹生理特性的影響[J].生態(tài)學(xué)雜志,2015, 34(12): 3341–3347
Study on the physiological mechanism for seedling resistance to strong acid stress in Acacia auriculiformis
YANG Shuyi1, LI Juncheng1, HUI Wenkai2, CHEN Xiaoyang1,*, MA Ling1,*
1.College of Forestry and Landscape Architecture, South China Agricultural University /State Key Laboratory for Conservation and Utilization of Subtropical Agro-bioresources,Guangdong Key Laboratory for Innovative Development and Utilization of Forest Plant Germplasm,Guangdong Province Research Center of Woody Forage Engineering Technology,Guangzhou510642,China2.College of Biological Sciences and Technology,Beijing Forestry University/National Engineering Laboratory for Forest Tree Breeding,Beijing100083,China
A hydroponics experiment was set up to investigate the physiological response ofAcacia auriculiformisseedlings to acid stress.The experiment was designed with two levels of acid stresses (pH 2.0 and 3.0), contrast to the control (CK) pH 5.8, and two periods of times in acid stress (3 and 9 days after any treatment).Effects of the acid stress on metabolic products were assessed by measuring the contents of malondialdehyde (MDA) and proline (Pro) and the activities of different antioxidant enzymes in seedling leaves, including the peroxidase (POD), glutathione S-transferases (GST), glutathione peroxidase (GPX) and glutathione reductase(GR).The results showed that the proline content exhibited an insignificant difference under pH 3.0, but a significant increase under pH 2.0 in comparison with the results under control, indicating that the seedling stress was severe under pH 2.0.The MDA content didn’t show any significant difference from that in CK under the stress of either pH 3.0 or pH 2.0, suggesting that membrane lipid was not severely peroxidated under a strong acid stress.Compared with the results in CK, the activities of enzymes GST and GPX significantly increased under pH 3.0, but did not significantly change under pH 2.0.On the contrary, the activities of enzymes GR and POD showed no significant differences under pH 3.0, but significantly decreased under pH 2.0, suggesting distinct responses to the two levels of acid stresses among different antioxidant enzymes.The GST enzyme was most sensitive to a strong acid stress.In general, our observed patterns suggested that the strength of acid stress under pH 3.0 could be a threshold below which the seedlings ofA.auriculiformiswere difficult to adapt in physiological metabolism.
Acacia auriculiformis; acid stress; antioxidant enzymes
10.14108/j.cnki.1008-8873.2017.05.002
Q948.1
A
1008-8873(2017)05-011-07
楊舒貽, 李俊成, 惠文凱, 等.強(qiáng)酸脅迫下大葉相思幼苗抗性生理機(jī)制研究[J].生態(tài)科學(xué), 2017, 36(5): 11-17.
YANG Shuyi, LI Juncheng, HUI Wenkai, et al.Study on the physiological mechanism for seedling resistance to strong acid stress inAcacia auriculiformis[J].Ecological Science, 2017, 36(5): 11-17.
2016-10-21;
2016-11-22
國家自然科學(xué)基金(31600307); 廣東省科技計劃項目(2015A020209139, 2015B020207002); 中央財政林業(yè)示范推廣項目[(2015)GDTK-08].
楊舒貽(1991—), 女, 在讀碩士, E-mail: zjtzysy@126.com
*通信作者:陳曉陽(1958—), 男, 博士, 教授, 主要從事遺傳育種工作, E-mail: xychen@scau.edu.cn馬玲(1979—), 女, 博士, 助理研究員, 主要從事植物生理生態(tài)學(xué)研究, E-mail: maling@scau.edu.cn