劉麗婭，陸桂麗，王 杰，沈辰峰，馬曉菁，薛 晶，葉 鋒，易新萍，王金泉，鐘 旗

（1. 新疆農業(yè)大學動物科學學院，新疆烏魯木齊 830052；2. 新疆畜牧科學院獸醫(yī)研究所（動物臨床醫(yī)學研究中心），新疆烏魯木齊 830000）

布魯氏菌種熒光定量PCR快速檢測方法的建立

劉麗婭1，2，陸桂麗2，王 杰2，沈辰峰2，馬曉菁2，薛 晶2，葉 鋒2，易新萍2，王金泉1，鐘 旗2

（1. 新疆農業(yè)大學動物科學學院，新疆烏魯木齊 830052；2. 新疆畜牧科學院獸醫(yī)研究所（動物臨床醫(yī)學研究中心），新疆烏魯木齊 830000）

根據(jù)熒光定量PCR原理和技術，通過與GeneBank數(shù)據(jù)庫中布魯氏菌基因組進行序列比對，選擇不同種屬布魯氏菌的特異性位點，設計3對引物和Taqman熒光探針。將3對引物進行獨立的種特異熒光定量PCR實驗優(yōu)化，最終實現(xiàn)在1次熒光定量PCR反應中完成對牛種、羊種、豬種布魯氏菌的鑒別和定量。該檢測方法特異、敏感、快速，既能實現(xiàn)對布魯氏菌的分種，又能實現(xiàn)定量快速檢測，對于布魯氏菌病的流行病學調查和防治都具有重要意義。

布魯氏菌；熒光定量PCR；檢測方法

Abstract：In this study，three pairs of primers and Taqman fluorescent probes were designed and the specific loci of different species of Brucella were selected by comparing the sequences of the Brucella genome in the GeneBank database，according to the principle and technique of fluorescence quantitative PCR. Three pairs of primers were used to optimize the specific quantitative PCR. The final identification and quantification of Brucella of cattle，sheep and swine were completed in a fluorescence quantitative PCR reaction. The detection method was specific，sensitive and rapid，and it could not only realize the Brucella species，but also achieve rapid quantitative detection，which was very important for the epidemiological investigation of Brucella bacteria and the prevention and treatment of Brucellosis.

Key words：Brucella；fluorescence quantitative PCR；detection method

布魯氏菌病是由布魯氏菌引起的一種慢性人獸共患傳染病，在我國歸為二類動物疫病，呈全球性流行。該病既給畜牧業(yè)帶來巨大經(jīng)濟損失，也給人的生命安全帶來了極大威脅[1-2]。該病以牛、羊、豬感染為主，每年因此造成的經(jīng)濟損失高達數(shù)億美元。檢測技術一直是布魯氏菌病研究的重要領域。傳統(tǒng)的細菌學和血清學檢測方法存在著陽性率低、假陽性和假陰性的干擾，應用受到限制。隨著分子生物學技術的發(fā)展，直接檢測布魯氏菌核酸成為可能。Baily等[3]按B.abortus 31 kDa外膜蛋BCSP31基因選定的1對B4、B5 引物用于布魯氏菌屬檢測，擴增產(chǎn)物為223 bp片段。這一方法已被國內外多個實驗室重復過，被證明是敏感、特異、可靠的布魯氏菌檢測方法，可用于提取的布魯氏菌DNA、快速煮沸菌體上清液、含菌病料等的檢測。本實驗建立了3個獨立的種特異熒光定量PCR實驗。3個定量PCR熱循環(huán)參數(shù)是一致的，使之可以在1次熒光定量PCR反應中完成對牛種、羊種、豬種布魯氏菌的鑒別和定量。由于PCR產(chǎn)物片段大小不同，可將本實驗的引物和實驗條件用于常規(guī)PCR實驗，對布魯氏菌進行種水平的鑒別。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1布魯氏菌和參考菌。布魯氏菌菌株（B.abortus 544A、104，B.melitensis l6M，B.suis 1330），購于中國預防醫(yī)學科學院流行病學微生物學研究所布魯氏菌病室；參考菌株E.coli O:157，Y.enter O:9，均購于中國預防醫(yī)學科學院流行病學微生物學研究所。

1.1.2屬特異引物和熒光探針。用Primer Express 2.0軟件設計牛種、羊種、豬種布魯氏菌特異性引物和Taqman熒光探針，由上海生工生物技術有限公司合成、標記和純化（表1）。

表1 引物相關情況

1.1.3試劑和儀器

1.1.3.1主要試劑。DNA Purificcation System質粒提取試劑盒、DNA Purificcation System質粒小量純化試劑盒、RNA酶（Rnase）、蛋白酶K（Protase K），均為美國Promega公司產(chǎn)品；DNA凝膠回收純化試劑盒，為杭州維特潔公司產(chǎn)品；SDS、瓊脂糖、胰蛋白陳、酵母抽提物、氯化鈉、Tris、EDTA等試劑，均為國外產(chǎn)品國內公司分裝；Pst I、EcoR I、pMD 18-T載體、ExTaq DNA聚合酶、dNTP，均為寶生物大連有限公司產(chǎn)品。

1.1.3.2主要儀器。Bio-Red IQ Detection System（美國BIO-RAD公司產(chǎn)品）；HVE-50自動滅菌高壓鍋（口本平山公司產(chǎn)品）；400 L超低溫冰箱（德國賀利氏公司產(chǎn)品）；PL5241 K純水器（美國頗爾公司產(chǎn)品）；Biofuge臺式高速冷凍離心機（德國賀利氏公司產(chǎn)品）；TKP-M/WL凝膠成像系統(tǒng)（法國產(chǎn)品）；BS210S分析天平（德國S artorius公司產(chǎn)品）；BIO-RAD真空泵（美國伯樂公司產(chǎn)品）；FTGENEZD型PCR儀（英國Techgene公司產(chǎn)品）；移液器（法國吉爾森公司產(chǎn)品）；Gene Quant定量儀（瑞典Pharamacia Biotech公司產(chǎn)品）。

1.2 方法

1.2.1活菌記數(shù)。將布魯氏菌在肝湯瓊脂斜面培養(yǎng)48 h，離心棄上清。生理鹽水重懸，用標準比濁管制成10億/mL菌液；10倍系列稀釋到1×109、1×108、1×107、1×106、1×105、1×104、1×103、1×102、1×101；每個稀釋度取 0.2 mL，接種于3個培養(yǎng)板中，每個平板0.1 mL，涂勻。將平板置于37 ℃溫箱中培養(yǎng)，48 h后觀察菌落數(shù)，計算每個稀釋度3個平板的平均菌落數(shù)，進而得出CFU/mL。

1.2.2DNA提取。取1.0 mL菌懸液于1.5 mL的離心管中。10 000 r/min離心5 min，棄去上清。按照DNA提取試劑盒說明書進行DNA提取操作，將提取的DNA放置-20 ℃保存?zhèn)溆茫NA溶液用Gene Quant定量儀測濃度和純度。

1.2.3陽性質控標準品制作

1.2.3.1牛、羊、豬屬特異片段的擴增。以上述布魯氏菌提取的DNA為模板進行PCR反應。反應體系：Premix 12.5 μL、Primer F 0.5 μL、Primer R 0.5 μL、模板 2 μL、Water 9.5 μL，總體積 25 μL。擴增反應條件：95 ℃變性4 min，94 ℃變性45 s，52.8 ℃退火1 min，72 ℃延伸2 min，共35個循環(huán)，最后72 ℃再延伸10 min，4 ℃終止。PCR產(chǎn)物經(jīng)1%的瓊脂糖凝膠電泳，通過核酸染料染色后，紫外燈下觀察PCR擴增結果。按照DNA凝膠回收試劑盒說明，回收PCR產(chǎn)物，將其送往上海生物工程有限公司進行測序。

1.2.3.2牛、羊、豬屬陽性重組質粒的克隆。將PCR純化產(chǎn)物與pMD18-T載體連接。連接反應體系為：pMD18-T Vector 1 μL、DNA 3 μL、SolutionI 5 μL、ddH2O 5 μL。連接反應 16 ℃過夜。次日，取出感受態(tài)細胞JM109，置37 ℃水浴中；待細胞融化后，立即把離心管轉移到冰浴中放置10 min。將連接產(chǎn)物加入到感受態(tài)細胞中，輕輕旋轉，混勻，冰浴30 min；42 ℃水浴，熱應激90 s，冷卻1～2 min。每管加200 μL的LB培養(yǎng)基，用水浴將培養(yǎng)基加溫至37 ℃，然后將管轉移到37 ℃搖床上，培養(yǎng)60 min；最后轉移到Amp平板上進行培養(yǎng)過夜。用滅菌牙簽挑取可疑菌落接種于含Amp液體LB培養(yǎng)基的試管中培養(yǎng)過夜。提取質粒進行酶切鑒定。取部分菌液加入終濃度30%的甘油保存菌種。

1.2.3.3酶切鑒定。用所選限制性內切酶，分別對陽性重組質粒進行酶切鑒定。酶切反應體系為內切酶各 1 μL、K-Buffer 2 μL、質粒 DNA 5 μL、ddH2O 12 μL。

1.2.3.4質粒提取。對重組質粒的提取，按照質粒提取試劑盒說明書要求進行操作。

1.2.3.5質粒濃度測定。用DNA quent定量儀測定濃度，將純化質粒稀釋100倍，平行作3管，分別測定濃度和A260/A280值。用含有屬特異片段的重組子，用分子生物學軟件DNAStar統(tǒng)計堿基數(shù)，計算重復組質粒的平均分子量。用超純水將質粒溶液稀釋成含 1×109、1×108、1×107、1×106、1×105、1×104、1×103、1×102、1×101、1×100個拷貝/μL的標準陽性質粒，-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1.2.4熒光定量PCR實驗條件的優(yōu)化

1.2.4.1引物的最適濃度。根據(jù)文獻報道，大致確定各組分濃度后逐個進行優(yōu)化，確定其最適濃度。引物經(jīng)超純水稀釋后的終濃度分別為200、250、300、350、400、450、500、550 nM 8個濃度水平；將所有成分充分預混，最后加入模板，進行熒光定量PCR反應，觀察擴增曲線。

1.2.4.2探針的最適濃度。對牛種、羊種、豬種3個基因分別進行探針濃度優(yōu)化。3個基因上下游引物濃度分別保持在350 nmol/L，探針濃度分別取 200、250、300、350、400、450、500、550 nM 8個濃度梯度；每個濃度梯度做8個平行樣。實時PCR反應參數(shù)及最佳濃度的選擇同引物濃度優(yōu)化選擇方法。

1.2.4.3最適退火溫度。在體系各組分濃度最優(yōu)化后，將退火溫度設置為8個溫度梯度（55～65 ℃進行實時熒光PCR擴增；同一模板8個平行樣3次重復；對擴增所得數(shù)據(jù)進行分析，得出反應的最優(yōu)退火溫度。

1.2.5實時多重熒光定量PCR反應條件

1.2.5.1牛種、羊種、豬種單重實時多重PCR反應條件。反應體系為：Premix 12.5 μL、Primer F 0.5 μL、Primer R 0.5 μL、探針 0.5 μL、模板 2 μL、水 9 μL，總體積25 μL。擴增反應條件為：95 ℃變性15 s，95 ℃變性 20 s，52.8 ℃退火 20 s，72 ℃延伸 20 s，共40個循環(huán)。退火步驟檢測熒光信號。

1.2.5.2牛種、羊種、豬種多重實時多重PCR反應條件。反應體系為：Premix 12.5 μL，3對Primer F 分別為 0.5 μL，3對 Primer R 分別為 0.5 μL，3對探針分別為 0.5 μL、模板 2 μL、水 3.5 μL，總體積25 μL。退火步驟檢測熒光信號。

1.2.6熒光定量PCR標準曲線的建立。應先將標準陽性對照管、標準陰性對照管（NTC）、待檢測樣品管的其他組分，按優(yōu)化的反應體系充分混勻，進行第1次分裝；將標準品、NTC對照、待檢模板充分混均，分裝各管。此過程要確保相同處理，確保各管反應液的均一性，確保各管加樣量一致。將已知拷貝數(shù)的質粒10倍稀釋后作為模板，進行熒光定量PCR擴增，得到相應的動力學曲線，并計算產(chǎn)生相應的標準曲線。

1.2.7重復性試驗。用熒光定量PCR儀對3份不同拷貝數(shù)的標準品進行重復檢測，每個樣品重復3次；根據(jù)每個稀釋度標準品的Ct值進行變異系數(shù)計算，以確定該方法的重復性。

1.2.8引物探針特異性檢驗。應用建立的多重PCR反應體系，分別擴增布魯氏菌標準菌株和陰性對照菌株的DNA，以檢測試驗的特異性。

1.2.9實時多重熒光PCR敏感性檢測

1.2.9.1單重實時熒光PCR的敏感性檢測。分別對牛種、羊種、豬種基因進行檢測。將以3個基因為模板克隆的質粒進行10倍稀釋制得的梯度標準品，分別取2 μL進行實時熒光PCR。每個稀釋度做3個平行樣。

1.2.9.2多重實時熒光PCR敏感性檢測。在1個多重實時熒光PCR反應體系中，將上述牛種、羊種、豬種3種基因的梯度標準品，分別取2 μL進行實時熒光PCR。

1.2.10臨床樣品檢測。將臨床送檢的58份血樣，用常規(guī)SAT、RBPT、常規(guī)PCR以及熒光定量PCR方法進行檢測。

2 結果與分析

2.1 重組質粒的PCR鑒定

以提取的質粒為模板，對牛種、羊種、豬種布魯氏菌重組陽性質粒進行常規(guī)PCR鑒定。電泳可見有不同長度的特異條帶出現(xiàn)（圖1）。通過設計特異性引物，能夠將牛種、羊種、豬種布魯氏菌檢測出來。PCR擴增大小為牛種86 bp、羊種67 bp、豬種80 bp。

圖1 含不同種屬的布魯氏菌重組質粒PCR鑒定

2.2 重組質粒的酶切鑒定

重組質粒經(jīng)限制性內切酶酶切后，獲得相應大小的酶切片段（圖2）。

圖2 含不同種屬的布魯氏菌重組質粒酶切鑒定

2.3 重組質粒的測序結果

結果顯示，布魯氏菌目的片段已成功克隆在pMD18-T中，測序的3個布魯氏菌株PCR產(chǎn)物序列具有很高的同源性；該片段具有高度保守性；獲得的3個布魯氏菌重組質粒可作為熒光定量PCR標準陽性對照品。將獲得的重組質粒分別命名為pMD18-A、pMD18-M、pMD18-S。以下為測序結果：

pMD18-A（牛種布魯氏菌）：

tgtctgcctgcaggtcgacgattgcatgcgctatgatctggttacgtt aaatgcagacacgccctagaacgcctttcggaaggtcagattaagccgaa acggccccagccgctcatgctcgccagacttcaatggtagaataccgtga tagaaaagcaatctctagaggatc

pMD18-M（羊種布魯氏菌）：

cttgcatgcctgcaggtcgacgattcatgcgctatgatctggttacg ttgaatgcagacacgccctaggggtgaatctggaaattgtcagaaagaca gtgcttcgtcacgctagagcgctcgctgccatacttgcaacagtgacagcg ataattgccgttattggctggtggcagggcgaagattggcgggtaagctatt ccaatctcgctattgttaatggcgtctattggatattactgctctaccttctgtgg attattctgagccgaaacactaatctctagaggatcc

pMD18-S（豬種布魯氏菌）：

gccaagcttgcatgcctgcaggtcgacgattcatgcgctatgatct ggttacgttaaatgcagacacgccctaaaacccctgaaccttcagaaaac cgcgctttgcgcgttttccagaaacttgcccccaagcgataatgcattcacc accgcataagtagggtctaagccggatcgcagcaatcgtcatttgcatgttc cggtaatctctagaggatc

測序結果表明，用3種特異引物擴增的片段是特異序列。其中，pMD18-A（牛種布魯氏菌）與GeneBank公布牛種布魯氏菌（ACCESSION：CP009099）序列同源性為100%；pMD18-M（羊種布魯氏菌）與GeneBank公布牛種布魯氏菌（ACCESSION：CP002931）序列同源性為100%；pMD18-S（豬種布魯氏菌）與GeneBank公布牛種布魯氏菌（ACCESSION：CP003128）序列同源性為99%。

2.4 質粒濃度和純度的測定

提取的質粒經(jīng)核酸蛋白分析儀測定，pMD18-A質量濃度為389.5 ng/μL，其拷貝數(shù)為8.21×1010拷貝/μL；pMD18-M質量濃度為412.4 ng/μL，其拷貝數(shù)為 6.45×1010拷貝 /μL；pMD18-S質量濃度為367.6 ng/μL，其拷貝數(shù)為7.89×1010拷貝/μL；D260/D280值不低于1.80，符合純度要求。經(jīng)稀釋，制成1×1010～1×100的標準陽性對照品，-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

2.5 屬特異熒光定量PCR反應條件優(yōu)化

2.5.1引物濃度優(yōu)化。對牛種BCSP31基因引物濃度優(yōu)化結果進行分析比較，發(fā)現(xiàn)8組濃度梯度的Ct值存在一定差異。根據(jù)最小Ct值和最小Ct值標準偏差觀察，發(fā)現(xiàn)350 nmol/L試驗組擴增曲線明顯優(yōu)于其他試驗組的擴增曲線，因此確定牛種的最佳引物濃度為350 nmol/L（表2、圖3）。

表2 不同引物、探針、dNTP濃度下PCR反應條件優(yōu)化

圖3 牛種布魯氏菌引物濃度優(yōu)化結果

以同樣的方式確定豬種最佳引物濃度為350 nmol/L，羊種為300 nmol/L。

2.5.2探針濃度優(yōu)化。對牛種BCSP31基因探針濃度優(yōu)化結果進行分析比較，發(fā)現(xiàn)5組濃度梯度的Ct值中，350 nmol/L試驗組的Ct值和Ct值標準偏差最小，擴增曲線明顯優(yōu)于其他試驗組的擴增曲線，因此確定牛種的最佳探針濃度為350 nmol/L（表2、圖4）。以同樣的方式確定豬種的最佳探針濃度為200 nmol/L，羊種為200 nmol/L。

圖4 牛種布魯氏菌探針濃度優(yōu)化結果

2.5.3退火溫度優(yōu)化。在體系各組分濃度最優(yōu)化后，將退火溫度設置為8個溫度梯度（55～65 ℃）進行實時熒光PLR擴增；同一模板8個平行樣，進行3次重復；對擴增所得數(shù)據(jù)進行分析，得出反應的最優(yōu)退火溫度（圖5）。

圖5 退火溫度優(yōu)化熒光定量PCR試驗結果

2.5.4實時熒光定量PCR標準曲線。用3組引物和探針，分別檢驗了牛種、羊種、豬種布魯氏菌和其他細菌的DNA，結果上述引物探針只對相應種別的布魯氏菌DNA有特異熒光曲線生成，并給出了定量結果，對其他細菌和無模板對照（NTC）均無熒光曲線生成，亦無定量結果。選擇107、106、105、104、103拷貝/μL 6個梯度濃度的質粒為模板，制作標準曲線。牛種特異性熒光定量PCR的相關系數(shù)R為0.996，擴增效率不低于99%（圖6）。

圖6 標準品3次重復熒光定量PCR試驗結果

2.6 引物探針特異性檢測

基于BCSP31基因片段設計的引物探針，對牛種、羊種、豬種布魯氏菌都有較好的擴增信號，陰性菌株對照和空白對照均無擴增信號（圖7、圖8）。

圖7 引物特異性擴增曲線

圖8 種屬特異性擴增曲線

2.7 實時單重熒光定量PCR敏感性試驗

將已定量的牛種、羊種、豬種布魯氏菌陽性質粒 DNA 的 10 倍稀釋（1.0×106～1.0×101拷貝 /μL）為模板進行擴增。每個濃度3個重復，并對結果進行統(tǒng)計分析。結果1.0×102拷貝/μL仍有熒光曲線，表明該方法檢測靈敏度為1.0×102拷貝/μL，并且重復性試驗的變異系數(shù)均小于5%，說明該方法具有良好的重復性（表3）。

表3 熒光定量PCR重復性試驗結果（3次重復循環(huán)閾值）

2.8 實時多重熒光定量PCR敏感性試驗

將已定量的牛種、羊種、豬種布魯氏菌陽性質粒 DNA 的 10 倍稀釋（1.0×106～1.0×101拷貝 /μL）為模板進行擴增。每個濃度3個重復，并對結果進行統(tǒng)計分析。結果1.0×102拷貝/μL仍有熒光曲線，表明該方法檢測靈敏度為1.0×102拷貝/μL，并且重復性試驗的變異系數(shù)均小于5%，說明該方法具有良好的重復性（圖9）。

圖9 實時多重熒光定量PCR敏感性試驗

2.9 實時多重熒光PCR臨床應用檢測

將臨床送檢的58份血樣，用常規(guī)SAT、RBPT、常規(guī)PCR以及熒光定量PCR方法檢測，結果見表4和圖10。

表4 常規(guī)SAT、RBPT、常規(guī)PCR以及熒光定量PCR方法檢測結果

圖10 布魯氏菌實時熒光定量PCR擴增曲線

上述檢測結果可知，在病原學檢測方面，普通PCR與熒光定量PCR檢測結果一致，沒有表現(xiàn)出優(yōu)勢，可能存在的主要原因：（1）血清中布魯氏菌的含量較高，達到普通PCR的檢測水平；（2）樣品采集的范圍小，相對較集中，群體之間沒有反應出顯著差異。但與常規(guī)方法相比，熒光定量PCR可以通過1次反應就能區(qū)分出各種屬布魯氏菌，省時省力，且降低了人為感染病原的風險。而常規(guī)方法則需要進一步鑒定，才能達到區(qū)分種屬的目的。

3 討論

近年來，布魯氏菌病疫情呈反彈趨勢。據(jù)《獸醫(yī)公報》統(tǒng)計，布魯氏菌病為我國牛羊源人獸共患病發(fā)病報告最多的傳染病，且感染率與發(fā)病率呈現(xiàn)明顯上升趨勢[4]。自2000年以后，人間布魯氏菌病已成為報告發(fā)病數(shù)上升速度最快的傳染病之一[5]。帶菌動物是其他動物和人類布魯氏菌病的主要傳染源。病原學監(jiān)測顯示，在我國引起人發(fā)病的布魯氏菌主要是羊種3型，其次是牛種[6]。在不同的國家和地區(qū)，以至在同一個國家的不同地區(qū)，各種動物作為傳染源的意義也不盡相同[7]。因此，建立快速、靈敏、準確性高的布魯氏菌種檢測方法，對于不同地區(qū)的流行病學、防控及風險分析具有重要意義。熒光定量 PCR 技術自建立以來，發(fā)展迅速、應用廣泛。由于其具有定量、特異、靈敏和快速等特點，成為目前檢測目的核酸拷貝數(shù)的可靠方法，被廣泛應用于動物醫(yī)學和分子生物學研究領域。

我國用于布魯氏菌病診斷的方法大體有3類：一是血清學檢測方法，也是主要的診斷方法，有平板凝集試驗、試管凝集試驗、補體結合試驗及酶聯(lián)免疫吸附試驗（ELISA）等。但血清學檢測存在特異性不強、敏感性差或操作煩瑣等缺點，且易受主觀意識影響，易出現(xiàn)假陰性或假陽性結果。二是細菌分離培養(yǎng)技術。它雖是細菌檢測的金標準，但病原菌的分離耗時長、技術復雜、檢出率低，也存在生物安全隱患。三是分子生物學診斷技術，如PCR方法以其靈敏、高效、省時省力、安全等優(yōu)點已被廣泛應用于布魯氏菌鑒定。

本研究根據(jù)布魯氏菌保守基因，設計引物、合成探針，并建立了熒光定量分析體系。該檢測體系準確性高、重復性好，且表現(xiàn)出較好的檢測敏感性。當血液中布魯氏菌病血清抗體水平或菌體載量較低時，血清學檢測和普通PCR會存在假陰性結果。熒光定量PCR快速檢測方法靈敏性高，在樣本中菌體含量很低的情況下，仍能檢測出菌體核酸，并且可對大量樣本進行定性和定量分析[8]。其不僅可區(qū)分不同種屬布魯氏菌，而且能夠對組織樣本中布魯氏菌載量進行定量，同時在實驗操作中減少了與病原接觸的幾率，降低了生物安全風險，因此該方法具有較好的潛在應用價值。

[1] ARIZA J. Brucellosis：An update. The perspective from the Mediterranean basin[J]. Reviews in medical microbiology，1999，10（3）：125-135.

[2] 丁家波，毛開榮，程君生，等. 布氏桿菌病疫苗的應用和研究現(xiàn)狀[J]. 微生物學報，2006（5）：856-859.

[3] BAILY G G，KRAHN J B，DRASAR B S，et al.Detection of Brucella melitensis and Brucella abortus by DNA amplification[J]. Journal of tropical medicine & hygiene，1992，95（4）：271.

[4] 郭愛珍，任寧寧，鄧明亮，等. 我國牛羊源人畜共患病的防控現(xiàn)狀[J]. 中國動物檢疫，2015，32（1）：53-56.

[5] 崔步云. 關注中國布魯桿菌病疫情發(fā)展和疫苗研究[J].中華地方病學雜志，2012，31（4）：355-356.

[6] 錢振宇，姜霞，賈肇一，等. 河北省布魯菌流行菌株生物學特征分析[J]. 現(xiàn)代預防醫(yī)學，2013（17）：3266-3268.

[7] 卿燕，牛新玲，邰新萍，等. 不同生物型羊種布魯氏菌在新疆布魯氏菌病流行病學中的意義[J]. 地方病通報，1988（3）：62-66.

[8] 石麗瑞，李秀華，韓惠瑛，等. 布魯氏菌實時定量熒光PCR 檢測體系的建立及應用[J]. 中國動物檢疫，2014，31（1）：57-60.

（責任編輯：朱迪國）

Establishment on Rapid Detection Method for Quantitative PCR of Brucella Strains

Liu Liya1，2，Lu Guili2，Wang Jie2，Shen Chenfeng2，Ma Xiaojing2，Xue Jing2，Ye Feng2，Yi Xinping2，Wang Jinquan1，Zhong Qi2
（1. College of Veterinary Medicine，Xinjiang Agricultural University，Urumqi，Xinjiang 830052；2. Veterinary Research Institute（Animal Clinical Medicine Research Center），Animal Science Academy of Xinjiang，Urumqi，Xinjiang 830000）

S851.3

A

1005-944X（2017）10-0065-07

10.3969/j.issn.1005-944X.2017.10.019

新疆自治區(qū)公益性科研院所基本科研業(yè)務經(jīng)費資助項目（KYGY2016020）；新疆自治區(qū)公益性科研院所基本科研業(yè)務經(jīng)費資助項目（KY2017004）

王金泉、鐘 旗