何小用,王大明,孫文敬,,*,崔鳳杰,,錢靜亞,,齊向輝,余泗蓮
變形假單胞菌2-酮基葡萄糖酸激酶基因的克隆、表達(dá)及生物信息學(xué)分析
何小用1,王大明2,3,孫文敬1,2,*,崔鳳杰1,2,錢靜亞1,2,齊向輝1,余泗蓮2
(1.江蘇大學(xué)食品與生物工程學(xué)院,江蘇 鎮(zhèn)江 212013;2.百勤異VC鈉有限公司,江西 德興 334221;3.江南大學(xué)生物工程學(xué)院,江蘇 無(wú)錫 214122)
采用聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)技術(shù),從2-酮基葡萄糖酸工業(yè)生產(chǎn)菌株變形假單胞菌JUIM01中克隆2-酮基葡萄糖酸激酶的全長(zhǎng)基因kguK,并在此基礎(chǔ)上構(gòu)建了重組菌株大腸桿菌BL21(DE3)/pET-28a(+)-kguK。在異丙基-β-D-硫代半乳糖苷的誘導(dǎo)下,該重組菌株表達(dá)了一個(gè)特異的分子質(zhì)量約為36.0 ku融合蛋白,且該蛋白的Western-Blot鑒定結(jié)果顯示為陽(yáng)性。生物信息學(xué)分析結(jié)果表明,該蛋白是一種由305 個(gè)氨基酸殘基組成的親水性蛋白,定位于細(xì)胞質(zhì)中,存在著與pfkB家族蛋白類似的保守結(jié)構(gòu)域,其二級(jí)結(jié)構(gòu)中α-螺旋、延伸鏈和無(wú)規(guī)則卷曲所占的比例分別為35.73%、12.79%和51.48%。
變形假單胞菌;2-酮基葡萄糖酸激酶;kguK基因;克隆;表達(dá);生物信息學(xué)
假單胞菌(Pseudomonas)[1-4]屬于氧化細(xì)菌(oxidative bacteria)[5-6],其細(xì)胞質(zhì)膜的周質(zhì)側(cè)存在著與呼吸鏈相連的葡萄糖直接氧化系統(tǒng)[7-10]。該系統(tǒng)由膜結(jié)合的葡萄糖脫氫酶和膜結(jié)合的葡萄糖酸脫氫酶[11-14]組成,能夠在細(xì)胞的周質(zhì)空間中催化氧化葡萄糖為食品抗氧化劑D-異抗壞血酸合成的前體——2-酮基葡萄糖酸(2-ketogluconic acid,2KGA)[15-19]。2KGA既可積累于假單胞菌的培養(yǎng)液中,也可被轉(zhuǎn)運(yùn)至其細(xì)胞質(zhì)內(nèi)而被分解代謝[7,20]。因此,開展2KGA代謝機(jī)理的研究對(duì)2KGA的發(fā)酵生產(chǎn)具有重要的指導(dǎo)意義。
到目前為止,有關(guān)2KGA的分解代謝的基因調(diào)控研究主要集中于惡臭假單胞菌(P. putida)[21-22]和致病性的銅綠假單胞菌(P. aeruginosa)[23],幾乎沒有涉及到其他的假單胞菌,更未涉及到沙雷氏菌(Serratia)[24]、克雷伯氏菌(Klebsiella)[25-26]、醋酸桿菌(Acetobacter)[27]等能夠生產(chǎn)2KGA的細(xì)菌菌株。相關(guān)研究結(jié)果[21-23]表明:由kguT、kguK、kguE和kguD等結(jié)構(gòu)基因組成的kgu操縱子與2KGA的胞內(nèi)磷酸化過程密切相關(guān),這些基因分別編碼2KGA轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白(2-ketogluconate transporter,KguT)、2KGA激酶(2-ketogluconate kinase,KguK)、2KGA異構(gòu)酶(2-ketogluconate epimerase,KguE)和2KGA還原酶(2-ketogluconate reductase,KguD)。另外,阻遏蛋白PtxS調(diào)控kgu操縱子的轉(zhuǎn)錄,同時(shí)調(diào)控其自身的合成[28-29]。
本研究以國(guó)內(nèi)2KGA工業(yè)生產(chǎn)的主要用菌變形假單胞菌(P. plecoglossicida)JUIM01[30]為材料,對(duì)其KguK的編碼基因kguK進(jìn)行克隆和表達(dá),并通過生物信息學(xué)方法分析和預(yù)測(cè)KguK蛋白的基本生物學(xué)特性,為后續(xù)的KguK蛋白純化、鑒定及其酶學(xué)特性研究奠定基礎(chǔ),進(jìn)而為2KGA高效生產(chǎn)菌株的構(gòu)建提供相關(guān)的理論依據(jù)。
1.1 材料與試劑
1.1.1 菌株和質(zhì)粒
變形假單胞菌(P. plecoglossicida)JUIM01 本實(shí)驗(yàn)室選育保藏;大腸桿菌(Escherichia coli)JM109、E. coli BL21(DE3)和質(zhì)粒pET-28a(+) 本實(shí)驗(yàn)室保存;質(zhì)粒pMD19-T 寶生物工程(大連)公司。
1.1.2 培養(yǎng)基
LB液體培養(yǎng)基:酵母提取物5.0 g/L、胰蛋白胨10.0 g/L、NaCl 10.0 g/L,pH 7.0。
LB固體培養(yǎng)基:在LB液體培養(yǎng)基中添加終質(zhì)量濃度為15.0 g/L的瓊脂。
1.1.3 試劑
細(xì)菌基因組提取試劑盒、2×Pfu PCR MasterMix天根生化科技(北京)有限公司;Anti-6×His antibody、HRP-conjugated Goat Anti-Rabbit lgG、W-TMB顯色試劑盒、瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒、SanPrep柱式質(zhì)粒DNA小量提取試劑盒、5×Protein Loading Buffer 生工生物工程(上海)股份有限公司;限制性內(nèi)切酶EcoR Ⅰ、BamH Ⅰ、T4 DNA連接酶、DNA A-Tailing Kit、DL5 000 DNA Marker、Premixed Protein Marker(Low)寶生物工程(大連)公司;PageRulerTMPrestained Protein Ladder 賽默飛世爾科技(中國(guó))有限公司;其他試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純?cè)噭?/p>
1.2 儀器與設(shè)備
TGL-18M型冷凍離心機(jī) 上海盧湘儀離心機(jī)儀器有限公司;XMTD-8222型恒溫水浴鍋 上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;C1000 TouchTM型聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)儀、PowerPac Basic型電泳儀、GelDocTMXR+型凝膠成像儀 美國(guó)Bio-Rad公司;DYCZ-40A型電泳儀 北京市六一儀器廠;QL-901型旋渦混合器、TS-2型脫色搖床 海門市其林貝爾儀器制造有限公司;UVG20型防紫外割膠儀 上海領(lǐng)成生物科技有限公司;FMB40型雪花制冰機(jī)、DC-2006型低溫恒溫槽 上海比朗儀器有限公司;HYL-C型組合式搖床 太倉(cāng)市強(qiáng)樂實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司。
1.3 方法
1.3.1 變形假單胞菌JUIM01基因組DNA的提取
將低溫保存的變形假單胞菌JUIM01菌株涂布于LB固體培養(yǎng)基上,在37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)12 h。挑取JUIM01菌株的單菌落接種于30 mL的LB液體培養(yǎng)基中,37 ℃、200 r/min振蕩培養(yǎng)12 h,然后取適量菌液8 000 r/min離心收集菌體,并用無(wú)菌水洗滌菌體2 次。參照細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒說明書,提取變形假單胞菌JUIM01基因組DNA,并在-20 ℃貯存?zhèn)溆谩?/p>
1.3.2 PCR引物的設(shè)計(jì)與合成
根據(jù)GenBank中已公布的其他假單胞菌kguK基因的完整序列和變形假單胞菌JUIM01基因組的部分測(cè)序結(jié)果,采用同源比對(duì)的方法設(shè)計(jì)引物,設(shè)計(jì)的PCR引物如下:
P1:5’-CGGGATCCATGGCCATGTTCGTGGCCGA GCAGT-3’
P2:5’-GGAATTCTCAACCGCCGAAGCGGTCTTC GT-3’
其中,下劃線部分分別為限制性內(nèi)切酶BamHⅠ和EcoRⅠ的酶切位點(diǎn)。
引物的合成委托生工生物工程(上海)股份有限公司完成。
1.3.3 目的基因片段的擴(kuò)增
以變形假單胞菌JUIM01的基因組DNA為模板,采用引物P1和P2擴(kuò)增kguK基因的全長(zhǎng)片段。
PCR體系(25.0 μL):2×Pfu PCR MasterMix 12.5 μL、引物P1(10 μmol/L)1.0 μL、引物P2(10 μmol/L)1.0 μL、基因組DNA 0.5 μL、ddH2O 10.0 μL。
PCR程序:94 ℃預(yù)變性3 min;94 ℃變性30 s,61 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,反應(yīng)32 個(gè)循環(huán);72 ℃延伸5 min。1.3.4 變形假單胞菌kguK基因的克隆與測(cè)序
擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳分離后,參照瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒說明書,對(duì)切膠獲取的目的條帶進(jìn)行純化回收。參照DNA A-Tailing Kit和pMD19-T Vector Cloning Kit說明書,將純化得到的kguK基因片段加A尾,并進(jìn)行T-A克隆,然后轉(zhuǎn)化E. coli JM109的感受態(tài)細(xì)胞。在含有100 μg/mL的氨芐青霉素的LB平板(取40.0 μL的2.0 g/100 mL的X-Gal和7.0 μL的20.0 g/100mL的異丙基-β-D-硫代半乳糖苷(isopropylβ-D-thiogalactopyranoside,IPTG)混合后均勻涂布于平板表面)上進(jìn)行藍(lán)白斑篩選,挑取陽(yáng)性單克隆。參照質(zhì)粒DNA提取試劑盒說明書,提取重組質(zhì)粒pMD19-T-kguK。對(duì)重組質(zhì)粒進(jìn)行雙酶切(限制性內(nèi)切酶BamHⅠ和EcoRⅠ)驗(yàn)證后,將陽(yáng)性克隆子送至生工生物工程(上海)股份有限公司進(jìn)行測(cè)序。
1.3.5 異源表達(dá)載體的構(gòu)建與鑒定
使用限制性內(nèi)切酶BamHⅠ和EcoRⅠ對(duì)重組質(zhì)粒pMD19-T-kguK進(jìn)行雙酶切,然后采用1%瓊脂糖凝膠電泳分離酶切產(chǎn)物;切膠獲取kguK基因條帶,利用瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒回收目的DNA片段。此后,在T4 DNA連接酶作用下,將回收的目的基因片段與經(jīng)過上述相同處理的表達(dá)載體pET-28a(+)連接(16 ℃連接16 h),并用該連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化E. coli JM109的感受態(tài)細(xì)胞。取100 μL的轉(zhuǎn)化菌液均勻涂布于含有50 μg/mL卡那霉素的LB固體培養(yǎng)基中,37 ℃培養(yǎng)12~16 h。從平板上挑取陽(yáng)性單克隆,接種至含有50 μg/mL卡那霉素的LB液體培養(yǎng)基中,37 ℃、200 r/min振蕩培養(yǎng)12 h。參照質(zhì)粒DNA提取試劑盒說明書,提取重組質(zhì)粒pET-28a(+)-kguK并進(jìn)行酶切驗(yàn)證。
1.3.6 重組菌的構(gòu)建及重組蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)
利用重組質(zhì)粒pET-28a(+)-kguK轉(zhuǎn)化E. coli BL21(DE3)的感受態(tài)細(xì)胞,然后將轉(zhuǎn)化菌液均勻涂布于含有50 μg/mL卡那霉素的LB固體培養(yǎng)基中,37 ℃培養(yǎng)12~16 h。從平板上挑取陽(yáng)性單克隆至含有50 μg/mL卡那霉素的LB液體培養(yǎng)基中過夜振蕩培養(yǎng)(37 ℃,200 r/min),然后以2%的接種量轉(zhuǎn)接至相同的液體培養(yǎng)基中進(jìn)行擴(kuò)大培養(yǎng)(37 ℃,200 r/min)。當(dāng)培養(yǎng)液的OD600nm達(dá)到0.6左右時(shí),加入IPTG至終濃度為0.8 mmol/L,在20 ℃、200 r/min的條件下誘導(dǎo)表達(dá)12 h。
1.3.7 SDS-PAGE分析與Western-Blot鑒定
取經(jīng)過誘導(dǎo)的細(xì)胞培養(yǎng)液1.0 mL,8 000 r/min離心2 min收集菌體,并用預(yù)冷的無(wú)菌PBS緩沖液洗滌2 次,然后使菌體重懸于100 μL的PBS緩沖液中。取20.0 μL的重懸菌液與5.0 μL的十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)蛋白上樣緩沖液充分混勻,于100 ℃水中煮沸5 min。待樣品冷卻后,對(duì)其全細(xì)胞蛋白進(jìn)行SDS-PAGE分析。
以Anti-6×His antibody(抗6×His單克隆兔抗)為一抗、HRP-conjugated Goat Anti-Rabbit lgG(IgG/HRP羊抗兔)為二抗,以預(yù)染蛋白質(zhì)分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)PageRulerTMPrestained Protein Ladder為Marker,對(duì)經(jīng)SDS-PAGE分離的KguK融合蛋白進(jìn)行Western-Blot鑒定。
1.3.8 變形假單胞菌KguK蛋白的序列分析
采用DNAMAN軟件進(jìn)行基因序列和氨基酸序列的分析比對(duì);使用ExPASy的ProtParam工具對(duì)kguK編碼的蛋白質(zhì)KguK的理化性質(zhì)進(jìn)行預(yù)測(cè)和分析;應(yīng)用ExPASy的ProtScale工具在線分析蛋白的疏水性;應(yīng)用TMHMM Server v. 2.0、SignalP 4.1 Server、Kinasephos和PSORT WWW Server中的PSORT Prediction在線工具分別預(yù)測(cè)目的基因編碼蛋白的跨膜結(jié)構(gòu)域、信號(hào)肽、激酶磷酸化修飾位點(diǎn)和亞細(xì)胞定位;利用PSIPRED V3.3在線分析工具分析蛋白的二級(jí)結(jié)構(gòu);采用ExPASy中COILS工具預(yù)測(cè)KguK蛋白的卷曲螺旋結(jié)構(gòu);使用InterProScan在線工具對(duì)KguK蛋白的保守結(jié)構(gòu)域和功能位點(diǎn)進(jìn)行分析;利用MEGA6.0軟件構(gòu)建蛋白的系統(tǒng)進(jìn)化樹;應(yīng)用Swiss-Model在線工具進(jìn)行同源模建,并用PDBsum Generate在線蛋白檢測(cè)工具對(duì)預(yù)測(cè)的蛋白模型進(jìn)行評(píng)估。
2.1 變形假單胞菌kguK基因片段的克隆
圖1 變形假單胞kguK基因PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的瓊脂糖凝膠電泳分析Fig. 1 Agarose gel electrophoresis analysis of kguK PCR amplification products from P. plecoglossicida
以變形假單胞菌JUIM01的基因組為模板,以P1和P2為引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,得到了一段長(zhǎng)度約為900 bp的核酸片段(圖1)。
采用DNA A-Tailing Kit對(duì)切膠回收的PCR產(chǎn)物進(jìn)行處理后,經(jīng)連接、轉(zhuǎn)化、藍(lán)白斑篩選和質(zhì)粒提取等步驟,得到了重組質(zhì)粒pMD19-T-kguK。在該質(zhì)粒雙酶切產(chǎn)物的瓊脂糖凝膠電泳圖譜(圖2)中,存在2 條得到明顯分離的條帶,其中一條在大約900 bp處,另一條在大約2 700 bp處,與預(yù)期的結(jié)果一致。上述結(jié)果表明,重組質(zhì)粒pMD19-T-kguK得到了正確的構(gòu)建。
圖2 重組質(zhì)粒pMD19-T-kguK雙酶切產(chǎn)物的瓊脂糖凝膠電泳分析Fig. 2 Electrophoretic analysis of the restriction enzyme-digested products of recombinant plasmid pMD19-T-kguK
圖3 變形假單胞KguK的基因序列及氨基酸序列Fig. 3 Gene and amino acid sequences of KguK from P. plecoglossicida
由圖3可知,克隆的基因片段的核苷酸序列長(zhǎng)度為918 bp。DNAMAN分析結(jié)果表明,克隆的基因片段具有一個(gè)完整開放閱讀框,其起始密碼子為ATG,終止密碼子為TGA。利用BLAST進(jìn)行同源性比對(duì)發(fā)現(xiàn),本研究克隆的基因片段與P. putida NBRC 14164、P. putida KT2440、P. aeruginosa UCBPP-PA14、P. aeruginosa NCGM 1900和P. fluorescens F113的編碼KguK的基因片段在核苷酸序列上的一致性分別為71.91%、71.59%、67.61%、67.51%和64.37%,初步認(rèn)為該序列為變形假單胞菌JUIM01編碼KguK的基因序列。本研究克隆的變形假單胞菌JUIM01的kguK基因序列已被遞交至GenBank數(shù)據(jù)庫(kù),登錄號(hào)為KU168043。
2.2 異源表達(dá)載體的構(gòu)建
對(duì)重組質(zhì)粒pMD19-T-kguK和表達(dá)載體pET-28a(+)分別進(jìn)行雙酶切處理,經(jīng)電泳分離、DNA回收、連接、轉(zhuǎn)化、抗性篩選和質(zhì)粒提取等步驟,得到了重組質(zhì)粒pET-28a(+)-kguK。1%瓊脂糖凝膠電泳分析結(jié)果(圖4)表明:重組質(zhì)粒pET-28a(+)-kguK的單酶切(BamHⅠ處理)產(chǎn)物顯示為長(zhǎng)度約為6 300 bp的單一條帶,與預(yù)期的結(jié)果相符;重組質(zhì)粒pET-28a(+)-kguK的雙酶切(BamHⅠ和EcoRⅠ處理)產(chǎn)物顯示為長(zhǎng)度分別為5 400 bp左右和900 bp左右的2 條條帶,與預(yù)期的結(jié)果一致。上述研究結(jié)果證明,基因kguK已成功構(gòu)建到表達(dá)載體pET-28a(+)-kguK中。
圖4 重組質(zhì)粒pET-28a(+)-kguK酶切產(chǎn)物的瓊脂糖凝膠電泳分析Fig. 4 Electrophoretic analysis of the restriction enzyme-digested products of recombinant plasmid pET-28a(+)-kguK
2.3 重組菌的構(gòu)建及重組蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)
圖5 重組菌株E. coli BL21(DE3)/pET-28a(+)-kguK全細(xì)胞蛋白的SDS-PAGE分析Fig. 5 SDS-PAGE analysis of the whole-cell proteins extracted from E. coli BL21(DE3)/ pET-28a(+)-kguK
利用重組質(zhì)粒pET-28a(+)-kguK轉(zhuǎn)化E. coli BL21(DE3)的感受態(tài)細(xì)胞,經(jīng)抗性篩選得到了重組菌E. coli BL21(DE3)/pET-28a(+)-kguK。SDS-PAGE分析結(jié)果(圖5)表明:在相同的誘導(dǎo)條件下,重組菌E. coli BL21(DE3)/pET-28a(+)-kguK表達(dá)出分子質(zhì)量約為36.0 ku的融合蛋白(其中標(biāo)簽蛋白的分子質(zhì)量約為3.5 ku),而E. coli BL21(DE3)和E. coli BL21(DE3)/ pET-28a(+)的全細(xì)胞蛋白中沒有該蛋白的存在。
圖6 重組菌株E. coli BL21(DE3)/pET-28a(+)-kguK表達(dá)的融合蛋白的Western-Blot分析Fig. 6 Western-Blot analysis of the protein expressed by E. coli BL21(DE3)/pET-28a(+)-kguK
對(duì)經(jīng)過SDS-PAGE分離的重組蛋白進(jìn)行Western-Blot鑒定,結(jié)果如圖6所示。E. coli BL21(DE3)/pET-28a(+)-kguK表達(dá)的融合蛋白的鑒定結(jié)果顯示為陽(yáng)性,進(jìn)一步證明了變形假單胞菌JUIM01的kguK基因在E. coli BL21(DE3)中的成功表達(dá)。
2.4 變形假單胞菌KguK蛋白的生物信息學(xué)分析
2.4.1 變形假單胞菌KguK的基本理化性質(zhì)預(yù)測(cè)
采用ExPASy的ProtParam工具進(jìn)行的分析結(jié)果表明:KguK蛋白由305 個(gè)氨基酸殘基組成,其中帶負(fù)電荷的氨基酸殘基(Asp+Glu)總數(shù)為37 個(gè),帶正電荷的氨基酸殘基(Arg+Lys)為31 個(gè)。該蛋白的理論分子質(zhì)量和等電點(diǎn)分別為32.5 ku和5.47,分子式為C1417H2265N423O429S14。KguK蛋白在溶液中的不穩(wěn)定指數(shù)為40.78(>40),說明該蛋白在溶液中性質(zhì)不穩(wěn)定。KguK的脂溶性指數(shù)為92.20,總平均親水指數(shù)為-0.032,預(yù)測(cè)該蛋白為親水性蛋白,但親水性較低。采用ExPASy的ProtScale工具對(duì)KguK蛋白進(jìn)行疏水性分析發(fā)現(xiàn),該蛋白為親水性蛋白,預(yù)測(cè)結(jié)果與上述結(jié)果一致。
2.4.2 變形假單胞菌KguK的跨膜結(jié)構(gòu)、細(xì)胞定位、信號(hào)肽及潛在激酶磷酸化位點(diǎn)預(yù)測(cè)
采用TMHMM Server v. 2.0進(jìn)行的預(yù)測(cè)顯示,KguK蛋白無(wú)跨膜結(jié)構(gòu)域,為非跨膜蛋白。利用PSORT Prediction進(jìn)行的預(yù)測(cè)結(jié)果表明,KguK蛋白定位于細(xì)胞質(zhì)中。采用SignalP 4.1 Server對(duì)KguK蛋白的氨基酸序列進(jìn)行N端信號(hào)肽的預(yù)測(cè)結(jié)果顯示,該蛋白無(wú)信號(hào)肽。
采用NetPhos2.0在線分析工具對(duì)KguK蛋白中潛在的蘇氨酸、絲氨酸和酪氨酸的激酶磷酸化位點(diǎn)進(jìn)行分析,結(jié)果顯示:KguK蛋白中可能存在10 個(gè)絲氨酸激酶磷酸化修飾位點(diǎn)(第50、99、100、103、106、130、132、150、160、283位氨基酸)、4 個(gè)蘇氨酸激酶磷酸化修飾位點(diǎn)(第167、193、197、230位氨基酸)和2 個(gè)酪氨酸激酶磷酸化修飾位點(diǎn)(第223、299位氨基酸)。
2.4.3 變形假單胞菌KguK的二級(jí)結(jié)構(gòu)及卷曲螺旋預(yù)測(cè)
通過PSIPRED V3.3在線分析工具對(duì)KguK蛋白的二級(jí)結(jié)構(gòu)進(jìn)行了預(yù)測(cè),結(jié)果顯示:KguK蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)中具有α-螺旋、延伸鏈以及無(wú)規(guī)則卷曲3 種結(jié)構(gòu),所占比例分別為35.73%、12.79%和51.48%。
卷曲螺旋是蛋白質(zhì)中2~7 條α-螺旋鏈互相纏繞形成類似麻花狀結(jié)構(gòu)的總稱,存在于轉(zhuǎn)錄因子、膜蛋白、酶等蛋白質(zhì)中,具有分子識(shí)別、膜通道和代謝調(diào)控等生物學(xué)功能。使用COILS server預(yù)測(cè)了蛋白KguK的卷曲螺旋結(jié)構(gòu),結(jié)果顯示:在3 種不同的窗口寬度下的檢測(cè)值均較低,表明KguK蛋白中可能不存在卷曲螺旋結(jié)構(gòu)。
2.4.4 變形假單胞菌KguK的結(jié)構(gòu)域和功能位點(diǎn)分析
InterPro數(shù)據(jù)庫(kù)整合了蛋白家族、結(jié)構(gòu)域和功能位點(diǎn)等數(shù)據(jù)庫(kù)資源,如SMART、Pfam、TIGRFAMs、ProDom、PROSITE、PRINTS等常用數(shù)據(jù)庫(kù),檢測(cè)結(jié)果的準(zhǔn)確度較高。使用InterProScan在線工具分析KguK蛋白的結(jié)構(gòu)域和功能位點(diǎn),結(jié)果表明,KguK蛋白存在PfkB蛋白結(jié)構(gòu)域,具有磷酸轉(zhuǎn)移酶活性,受體基團(tuán)為醇基,其保守位點(diǎn)位于第244~257個(gè)氨基酸殘基之間。
2.4.5 變形假單胞菌KguK的系統(tǒng)進(jìn)化分析
圖7 KguK蛋白的系統(tǒng)進(jìn)化樹Fig. 7 Phylogenetic tree of KguK proteins from Pseudomonas
通過BLAST搜索,從NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)中獲得了變形假單胞菌KguK的同源序列,然后利用ClustW軟件進(jìn)行多序列同源性多重比對(duì),采用MEGA6.0軟件對(duì)7 個(gè)不同來(lái)源的氨基酸序列進(jìn)行系統(tǒng)進(jìn)化分析。分析結(jié)果(圖7)表明,變形假單胞菌JUIM01的KguK與P. putida NBRC 14164的KguK的同源性較高,在氨基酸序列上的一致性達(dá)73.82%。
2.4.6 變形假單胞菌KguK的三級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)與檢驗(yàn)
利用Swiss-Model在線預(yù)測(cè)工具,采用自動(dòng)模式對(duì)變形假單胞菌JUIM01的KguK蛋白的三級(jí)結(jié)構(gòu)進(jìn)行同源模建,選取與KguK蛋白同源性最高的PfkB蛋白(4du5.1A)為模板,模擬KguK蛋白的三級(jí)結(jié)構(gòu),結(jié)果如圖8所示。
圖8 變形假單胞菌JUIM01蛋白KguK的三級(jí)結(jié)構(gòu)Fig. 8 Tertiary structure of KguK from P. plecoglossicida JUIM01 predicted by Swiss-model
圖9 變形假單胞菌JUIM01蛋白KguK的拉氏構(gòu)象圖Fig. 9 Ramachandran diagram of KguK from P. plecoglossicida JUIM01
采用PDBsum Generate工具對(duì)預(yù)測(cè)結(jié)果進(jìn)行評(píng)估,結(jié)果如圖9所示。根據(jù)構(gòu)象的穩(wěn)定性,拉氏構(gòu)象圖被分為4 個(gè)區(qū)域,即最佳區(qū)、次允許區(qū)、一般區(qū)和不允許區(qū)。一般認(rèn)為,最佳區(qū)達(dá)90%以上、不允許區(qū)低于1%的模型結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定性較好。對(duì)變形假單胞菌KguK三級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)模型的評(píng)估結(jié)果顯示,上述4 個(gè)區(qū)域的統(tǒng)計(jì)數(shù)據(jù)分別為93.7%、6.3%、0.0%和0.0%,表明所構(gòu)建的KguK蛋白三級(jí)結(jié)構(gòu)模型的質(zhì)量較高。
采用PCR技術(shù),從工業(yè)生產(chǎn)菌株變形假單胞菌JUIM01克隆了與2KGA代謝密切相關(guān)的KguK的全長(zhǎng)基因,其核苷酸序列長(zhǎng)度為918 bp。利用所克隆的基因kguK,構(gòu)建了重組菌E. coli BL21(DE3)/pET-28a(+)-kguK。在IPTG的誘導(dǎo)下,該重組菌表達(dá)了一個(gè)特異性的分子質(zhì)量約為36.0 ku的融合蛋白(其中標(biāo)簽蛋白的分子質(zhì)量約為3.5 ku)。該重組蛋白的Western-Blot鑒定結(jié)果顯示為陽(yáng)性,進(jìn)一步證明了變形假單胞菌JUIM01的kguK基因在E. coli BL21(DE3)中的成功表達(dá)。
生物信息學(xué)分析結(jié)果表明:變形假單胞菌KguK是由305 個(gè)氨基酸殘基組成的親水性蛋白,理論分子質(zhì)量為32.5 ku,定位于細(xì)胞質(zhì)中,無(wú)跨膜結(jié)構(gòu)和信號(hào)肽。變形假單胞菌KguK存在一個(gè)保守結(jié)構(gòu)域,與pfkB家族蛋白的保守結(jié)構(gòu)域類似。在該蛋白的氨基酸序列上,存在著16 個(gè)潛在的激酶磷酸化修飾位點(diǎn)。在該蛋白的二級(jí)結(jié)構(gòu)中,α-螺旋、延伸鏈和無(wú)規(guī)則卷曲3 種結(jié)構(gòu)形式所占的比例分別為35.73%、12.79%和51.48%。
[1] PALLERONI N J. The Pseudomonas story[J]. Environmental Microbiology, 2010, 12(6): 1377-1383. DOI:10.1111/j.1462-2920.2009.02041.x.
[2] LA ROSA R, NOGALES J, ROJO F. The Crc/CrcZ-CrcY global regulatory system helps the integration of gluconeogenic and glycolytic metabolism in Pseudomonas putida[J]. Environmental Microbiology, 2015, 17(9): 3362-3378. DOI:10.1111/1462-2920.12812.
[3] KALRA S, MIDHA K, KAUR A. Production, purification and characterization of L-asparaginase from Pseudomonas aeruginosa 2488 using fermentation[J]. International Journal of Advanced Research, 2016, 4(1): 541-549.
[4] SUN Wenjing, XIAO Fangfang, WEI Zhuan, et al. Non-sterile and buffer-free bioconversion of glucose to 2-keto-gluconic acid by using Pseudomonas fluorescens AR4 free resting cells[J]. Process Biochemistry, 2015, 50(4): 493-499. DOI:10.1016/ j.procbio.2015.01.011.
[5] MATSUSHITA K, OHNO Y, SHINAGAWA E, et al. Membranebound, electron transport-linked, D-glucose dehydrogenase of Pseudomonas fluorescens. Interaction of the purified enzyme with ubiquinone or phospholipid[J]. Agricultural and Biological Chemistry, 1982, 46(4): 1007-1011. DOI:10.1080/00021369.1982.10865179.
[6] GILARDI G L, FAUR y C. Pseudomonas mesophilica and an unnamed taxon, clinical isolates of pink-pigmented oxidative bacteria[J]. Journal of Clinical Microbiology, 1984, 20(4): 626-629.
[7] DEL CASTILLO T, RAMOS J L, RODRIGUEZ-HERVA J J, et al. Convergent peripheral pathways catalyze initial glucose catabolism in Pseudomonas putida: genomic and flux analysis[J]. Journal of Bacteriology, 2007, 189(14): 5142-5152. DOI:10.1128/JB.00203-07.
[8] DADDAOUA A, MOLINA-SANTIAGO C, DE LA TORRE J, et al. GtrS and GltR form a two-component system: the central role of 2-ketogluconate in the expression of exotoxin A and glucose catabolic enzymes in Pseudomonas aeruginosa[J]. Nucleic Acids Research, 2014, 42(12): 7654-7663. DOI:10.1093/nar/gku496.
[9] SHRIVASTAVA R, BASU B, GODBOLE A, et al. Repression of the glucose-inducible outer-membrane protein OprB during utilization of aromatic compounds and organic acids in Pseudomonas putida CSV86[J]. Microbiology, 2011, 157(5): 1531-1540. DOI:10.1099/ mic.0.047191-0.
[10] PANDEy S, MODAK A, PHALE P S, et al. Cloning, purification, crystallization and preliminary X-ray diffraction studies of periplasmic glucose binding protein of Pseudomonas putida CSV86[J]. Advances in Bioscience and Biotechnology, 2015, 6(5): 164-171. DOI:10.4236/ abb.2015.63016.
[11] MATSUSHITA K, OHNO y, SHINAGAWA E, et al. Membrane-bound D-glucose dehydrogenase from Pseudomonas sp.: solubilization, purification and characterization[J]. Agricultural and Biological Chemistry, 1980, 44(7): 1505-1512. DOI:10.1271/bbb1961.44.1505.
[12] MATSUSHITA K, AMEyAMA M. D-Glucose dehydrogenase from Pseudomonas fluorescens, membrane-bound[J]. Methods in Enzymolog, 1982, 89(4): 149-154. DOI:10.1016/S0076-6879(82)89026-5.
[13] KUMAR C, yADAV K, ARCHANA G, et al. 2-Ketogluconic acid secretion by incorporation of Pseudomonas putida KT2440 gluconate dehydrogenase (gad) operon in Enterobacter asburiae PSI3 improves mineral phosphate solubilization[J]. Current Microbiology, 2013, 67(3): 388-394. DOI:10.1007/s00284-013-0372-z.
[14] MATSUSHITA K, SHINAGAWA E, ADACHI O, et al. Membranebound D-gluconate dehydrogenase from Pseudomonas aeruginosa: purification and structure of cytochrome-binding form[J]. Journal of Biochemistry, 1979, 85(5): 1173-1181. DOI:10.1093/oxfordjournals. jbchem.a132441.
[15] 周強(qiáng), 魏轉(zhuǎn), 孫文敬, 等. D-異抗壞血酸生產(chǎn)技術(shù)研究進(jìn)展[J]. 食品科學(xué), 2008, 29(8): 647-651. DOI:10.3321/j.issn:1002-6630.2008.08.158.
[16] PAPPENBERGER G, HOHMANN H P. Industrial production of L-ascorbic acid (vitamin C) and D-isoascorbic acid[J]. Advances in Biochemical Engineering Biotechnology, 2014, 143: 143-188. DOI:10.1007/10_2013_243.
[17] 張抗, 史小利, 龔舒, 等. D-異抗壞血酸鈉合成工藝研究[J]. 低碳世界, 2014(10): 351-352.
[18] 魏轉(zhuǎn), 余泗蓮, 孫文敬, 等. 2-酮基-D-葡萄糖酸發(fā)酵生產(chǎn)研究進(jìn)展[J]. 食品科學(xué), 2008, 29(8): 636-639. DOI:10.3321/ j.issn:1002-6630.2008.08.155.
[19] UMEZAWA K, TAKEDA K, ISHIDA T, et al. A novel pyrroloquinoline quinone-dependent 2-keto-D-glucose dehydrogenase from Pseudomonas aureofaciens[J]. Journal of Bacteriology, 2015, 197(8): 1322-1329. DOI:10.1128/JB.02376-14.
[20] SUN Wenjing, ZHOU yanzheng, ZHOU Qiang, et al. Semi-continuous production of 2-keto-gluconic acid by Pseudomonas fluorescens AR4 from rice starch hydrolysate[J]. Bioresource Technology, 2012, 110: 546-551. DOI:10.1016/j.biortech.2012.01.040.
[21] NELSON K E, WEINEL C, PAULSEN I T, et al. Complete genome sequence and comparative analysis of the metabolically versatile Pseudomonas putida KT2440[J]. Environmental Microbiology, 2002, 4(12): 799-808. DOI:10.1046/j.1462-2920.2002.00366.x.
[22] NIKEL P I, CHAVARRIA M, FUHRER T, et al. Pseudomonas putida KT2440 metabolizes glucose through a cycle formed by enzymes of the entner-doudoroff, embden-meyerhof-parnas, and pentose phosphate pathways[J]. Journal of Biological Chemistry, 2015, 290(43): 25920-25932. DOI:10.1074/jbc.M115.687749.
[23] SWANSON B L, HAGER P, PHIBBS P, et al. Characterization of the 2-ketogluconate utilization operon in Pseudomonas aeruginosa PAO1[J]. Molecular Microbiology, 2000, 37(3): 561-573. DOI:10.1046/j.1365-2958.2000.02012.x.
[24] MISENHEIMER T J, ANDERSON R F, LAGODA A A, et al. Production of 2-ketogluconic acid by Serratia marcescens[J]. Applied Microbiology, 1965, 13(3): 393-396.
[25] WEI Dong, XU Jiqing, SUN Junson, et al. 2-Ketogluconic acid production by Klebsiella pneumoniae CGMCC 1.6366[J]. Journal of Industrial Microbiology and Biotechnology, 2013, 40(6): 561-570. DOI:10.1007/s10295-013-1261-y.
[26] SUN yuehong, WEI Dong, SHI Jiping, et al. Two-stage fermentation for 2-ketogluconic acid production by Klebsiella pneumoniae[J]. Journal of Microbiology and Biotechnology, 2014, 24(6): 781-787. DOI:10.4014/jmb.1401.01038.
[27] ?VITEL J, ?TURDIK E. 2-Ketogluconic acid production by Acetobacter pasteurianus[J]. Applied Biochemistry and Biotechnology, 1995, 53(1): 53-63. DOI:10.1007/BF02783481.
[28] DADDAOUA A, KRELL T, ALFONSO C, et al. Compartmentalized glucose metabolism in Pseudomonas putida is controlled by the PtxS repressor[J]. Journal of Bacteriology, 2010, 192(17): 4357-4366. DOI:10.1128/JB.00520-10.
[29] DADDAOUA A, FILLET S, FERNANANDEZ M, et al. Genes for carbon metabolism and the toxA virulence factor in Pseudomonas aeruginosa are regulated through molecular interactions of PtxR and PtxS[J]. PLoS ONE, 2012, 7(7): e39390. DOI:10.1371/journal. pone.0039390.
[30] 孫文敬, 欒方, 王大明, 等. 變形假單胞菌2-酮基葡萄糖酸轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白基因的克隆與分析[J]. 現(xiàn)代食品科技, 2016, 32(6): 50-55. DOI:10.13982/j.mfst.1673-9078.2016.6.009.
Cloning, Expression and Bioinformatic Analysis of 2-Ketogluconate Kinase Gene from Pseudomonas plecoglossicida
HE Xiaoyong1, WANG Daming2,3, SUN Wenjing1,2,*, CUI Fengjie1,2, QIAN Jingya1,2, QI Xianghui1, YU Silian2
(1. School of Food and Biological Engineering, Jiangsu University, Zhenjiang 212013, China; 2. Parchn Sodium Isovitamin C Co. Ltd., Dexing 334221, China; 3. School of Biotechnology, Jiangnan University, Wuxi 214122, China)
The full-length sequence of 2-ketegluconate kinase gene (kguK) from was cloned from an industrial 2KGA producer of Pseudomonas plecoglossicida JUIM01 and expressed in the recombinant strain Escherichia coli BL21(DE3)/ pET-28a(+)-kguK with isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside induction. The specific fusion protein KguK had a molecular weight of about 36.0 ku, which was confirmed by Western-Blot. The bioinformatics analysis showed that KguK in P. plecoglossicida was a hydrophilic protein with 305 amino acid residues. It was located in the cytoplasm, having a conserved domain similar to that of the pfkB family. The predicted secondary structure contained 35.73% of α-helixes, 12.79% of extended strand and 51.48% of random coil.
Pseudomonas plecoglossicida; 2-ketegluconate kinase (KguK); kguK gene; cloning; expression; bioinformatics
10.7506/spkx1002-6630-201716002
Q781
A
1002-6630(2017)16-0010-07
何小用, 王大明, 孫文敬, 等. 變形假單胞菌2-酮基葡萄糖酸激酶基因的克隆、表達(dá)及生物信息學(xué)分析[J]. 食品科學(xué), 2017, 38(16): 10-16. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201716002. http://www.spkx.net.cn
HE Xiaoyong, WANG Daming, SUN Wenjing, et al. Cloning, expression and bioinformatic analysis of 2-ketogluconate kinase gene from Pseudomonas plecoglossicida[J]. Food Science, 2017, 38(16): 10-16. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630-201716002. http://www.spkx.net.cn
2016-11-08
國(guó)家自然科學(xué)基金面上項(xiàng)目(31571885);國(guó)家高技術(shù)研究發(fā)展計(jì)劃(863計(jì)劃)項(xiàng)目(2012AA022103);江西省科技計(jì)劃項(xiàng)目(贛知發(fā)[2015]64號(hào));江西省創(chuàng)新團(tuán)隊(duì)建設(shè)計(jì)劃項(xiàng)目(20142BCB24024);江西省科技平臺(tái)建設(shè)計(jì)劃項(xiàng)目(2010DTZ01900);德興市科技計(jì)劃項(xiàng)目(德科發(fā)[2015]44號(hào))
何小用(1989—),男,碩士研究生,研究方向?yàn)槭称飞锛夹g(shù)。E-mail:hxy9808@126.com
*通信作者:孫文敬(1964—),男,研究員,博士,研究方向?yàn)楣I(yè)生物技術(shù)。E-mail:juswj@163.com