国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

LRIG1在卵巢漿液性囊腺癌細(xì)胞對依托泊苷敏感性中的作用研究*

2017-08-28 16:38陽華葉元肖勝軍雷小妹羅小紅
關(guān)鍵詞:細(xì)胞株桂林卵巢癌

陽華,葉元,肖勝軍,雷小妹,羅小紅

(1.桂林醫(yī)學(xué)院第二附屬醫(yī)院 婦科,廣西 桂林 541199;2.桂林醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院 婦科,廣西 桂林 541001;3.桂林醫(yī)學(xué)院第二附屬醫(yī)院 病理科,廣西 桂林 541199;4.桂林醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院 統(tǒng)計(jì)室,廣西 桂林 541001)

基礎(chǔ)研究·論著

LRIG1在卵巢漿液性囊腺癌細(xì)胞對依托泊苷敏感性中的作用研究*

陽華1,葉元2,肖勝軍3,雷小妹1,羅小紅4

(1.桂林醫(yī)學(xué)院第二附屬醫(yī)院 婦科,廣西 桂林 541199;2.桂林醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院 婦科,廣西 桂林 541001;3.桂林醫(yī)學(xué)院第二附屬醫(yī)院 病理科,廣西 桂林 541199;4.桂林醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院 統(tǒng)計(jì)室,廣西 桂林 541001)

目的 探討亮氨酸重復(fù)序列免疫球蛋白樣結(jié)構(gòu)域基因-1(LRIG1)在卵巢漿液性囊腺癌(SKOV3)細(xì)胞株中對依托泊苷敏感性的可能機(jī)制。方法 噻唑藍(lán)比色法(MMT)檢測不同濃度VP16干預(yù)下48 h的SKOV3細(xì)胞組、siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3細(xì)胞組、SKOV3/VP16細(xì)胞組和siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞組的增殖。平板克隆檢測細(xì)胞增殖,流式檢測細(xì)胞凋亡情況,實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)(qRT-PCR)檢測LRIG1 mRNA表達(dá)。結(jié)果 半抑制濃度(IC50)分別為62.90、115.49、156.50和195.42μg/L,siRNALRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3、SKOV3/VP16和siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16的耐藥指數(shù)分別為1.8、2.5和3.1。SKOV3、siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3、SKOV3/VP16和siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞組的克隆率(F=39.338,P=0.000),細(xì)胞的LRIG1 mRNA(F=63.095,P=0.000)和凋亡細(xì)胞(F=230.046,P=0.000)明顯不同,與 SKOV3 比較,siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3、SKOV3/VP16和siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞的克隆率增加(t=0.026、0.0710和0.125,P=0.042、0.000和 0.000),細(xì)胞的 LRIG1 mRNA 降低(t=0.130、0.525和 0.825,均 P=0.000),凋亡細(xì)胞減少(t=12.350、35.506和 44.412,均 P=0.000),與 siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染 SKOV3比較,SKOV3/VP16和 siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞的克隆率增加(t=0.044和0.099,P=0.001和0.000),LRIG1 mRNA降低(t=0.395和0.695,均 P=0.000),凋亡細(xì)胞減少(t=23.156 和 32063,均 P<0.05),與 SKOV3/VP16 比較,siRNA LRIG1 轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞的克隆率增加(t=0.055,P=0.000),細(xì)胞的 LRIG1 mRNA降低(t=0.300,P=0.000),凋亡細(xì)胞減少(t=8.906,P=0.000)。結(jié)論 LRIG1 mRNA影響SKOV3細(xì)胞對藥物的敏感性,沉默LRIG1的耐藥細(xì)胞可抑制SKOV3細(xì)胞凋亡。

卵巢癌;耐藥;亮氨酸重復(fù)序列免疫球蛋白樣結(jié)構(gòu)域基因-1

當(dāng)今,卵巢癌的發(fā)生率已經(jīng)呈現(xiàn)出不斷上升的趨勢,成為危害女性的重要?dú)⑹?,發(fā)病率僅次于子宮頸癌和子宮體癌而列居第3位,卵巢腫瘤中的卵巢上皮癌的死亡為女性各種腫瘤死亡之首,可見卵巢腫瘤已嚴(yán)重危害女性生命健康。隨著化療藥物使用的增加,卵巢癌細(xì)胞的耐藥性也逐漸受到了人們的關(guān)注。富含亮氨酸重復(fù)序列免疫球蛋白樣結(jié)構(gòu)域基因 -1(leucine-rich repeats and immunoglobulinlike domains-1,LRIG-1)及其家族分子LRIG-2和LRIG-3是一類新興的腫瘤抑制分子,在多種惡性腫瘤如乳腺癌[1-2]、子宮頸癌[3-5]、頭部和頸部癌[6-8]、膠質(zhì)瘤[9-10]、前列腺癌[11]與皮膚鱗狀細(xì)胞癌等[12]均有異常表達(dá),與腫瘤的形成及多藥耐藥密切相關(guān)。近年來,RNAi技術(shù)的出現(xiàn),給人類治療癌癥帶來巨大福音,可用來研究與癌癥相關(guān)基因的變化機(jī)制,成為可代替臨床治療,改變多藥耐藥機(jī)制的一種新方法。雙鏈核糖核酸(ribonucleic acid,RNA)經(jīng)酶切后會形成很多小片段,稱為小干擾核糖核酸(small interfering ribonucleic acid,siRNA)。siRNA 與信使核糖核酸(messenger ribonucleic acid,mRNA)中的同源序列發(fā)生互補(bǔ)結(jié)合,導(dǎo)致mRNA失去功能,不能翻譯產(chǎn)生蛋白質(zhì),使基因“沉默”。本研究中LRIG-1是治療卵巢腫瘤的新靶點(diǎn),在多種癌癥中的siRNA沉默LRIG-1將為一種新的高選擇性LRIGs開發(fā)提供可靠的科學(xué)依據(jù)。本研究在既往研究基礎(chǔ)上,進(jìn)一步探討LRIG-1分子在卵巢癌及其耐藥細(xì)胞株中的作用。

1 材料與方法

1.1 材料和試劑

卵巢漿液性囊腺癌(SKOV3)細(xì)胞株(北京大學(xué)人民醫(yī)院),依托泊苷(VP16)(江蘇省連云港市恒瑞醫(yī)藥股份有限公司),SKOV3/VP16(選取SKOV3以濃度為300μg/ml的VP16反復(fù)大劑量沖擊用藥,培養(yǎng)8個(gè)月建立VP16耐藥細(xì)胞株,反復(fù)傳代>3個(gè)月),胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)(美國 Thermo Fisher Scientific公司,No:10099-141),高糖培養(yǎng)基(dulbecco's modified eagle medium,DMEM)(美國Hyclone公司,No:SH30022.01B),青鏈霉素、磷酸鹽緩沖溶液(phosphate buffer saline,PBS)及CCK-8試劑盒 (cell counting Kit-8)(日本 Dojindo,No:CK04),LipofectamineTM2000(美國 Thermo Fisher Scientific 公司,No:52887),Annexin V/PI apoptosis kit(浙江省杭州市聯(lián)科生物公司,AP101),結(jié)晶紫染色液(自配),Trizol(日本TaKaRa株式會社),焦碳酸二乙酯(diethy pyrocarbonate,DEPC)(美國 Sigma公司),聚合酶鏈反應(yīng)儀(丹麥DBI公司),逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(DBI公司),RNasin(美國 Promega公司)。

1.2 實(shí)驗(yàn)儀器

紫外分光光度計(jì)(日本Shimodzu公司),SCR20B型冷凍離心機(jī)(日本Hitachi公司),低溫高速離心機(jī)(德國Hermle公司),凝膠掃描系統(tǒng)(德國UVP公司),Stratagene Mx 3000P Quantitative RealTime PCR設(shè)備(美國Agilent公司),ABI9700PCR擴(kuò)增儀(美國ABI公司),超凈工作臺(江蘇省蘇州凈化設(shè)備公司),Anke/飛鴿TDL-80-2B低速離心機(jī)(上海安亭科學(xué)儀器廠),倒置顯微鏡(德國Motic公司),INC108型二氧化碳CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱(德國Memmert公司),流式細(xì)胞儀和酶聯(lián)免疫檢測儀(美國BD,F(xiàn)ACS Calibur Thermo Fisher Scientific公司)。

1.3 SKOV3和SKOV3/VP16細(xì)胞培養(yǎng)與計(jì)數(shù)

將SKOV3和SKOV3/VP16細(xì)胞株按常規(guī)方法培養(yǎng)于含10%的FBS及青霉素、鏈霉素的MEM(minimum essential medium)培養(yǎng)基中,在 37℃、5%CO2、恒溫、飽和濕度條件下培養(yǎng),將處于對數(shù)生長期的細(xì)胞用0.25%胰酶消化,制成單細(xì)胞懸液,取出40 μl單細(xì)胞懸液,40 μl臺盼藍(lán)試劑吹打均勻,放置5 min,取20 μl計(jì)數(shù),細(xì)胞計(jì)數(shù)板一共16個(gè)小格,合成4個(gè)大格,活細(xì)胞清晰可現(xiàn),其中SKOV3呈梭型,SKOV3/VP16呈不規(guī)則多邊形,算出4大格內(nèi)的總細(xì)胞數(shù)。

1.4 siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3和SKOV3/VP16細(xì)胞

①轉(zhuǎn)染前1天,分別將100μl含有1×104個(gè)的SKOV3和SKOV3/VP16細(xì)胞加入培養(yǎng)基6孔內(nèi),令轉(zhuǎn)染過程中細(xì)胞密度達(dá)到至少50%;②在25 μl的DMEM無血清無抗生素培養(yǎng)基中加入siRNA LRIG1/sh LRIG1,混勻;③在 25 μl的 DMEM 無血清無抗生素培養(yǎng)基中加入LipofectamineTM2000,混勻,室溫放置5 min;④將稀釋好的siRNA LRIG1/sh LRIG1和LipofectamineTM2000試劑混合,室溫放置20 min,將50μl混合液放入內(nèi)含50μl培養(yǎng)基和細(xì)胞的培養(yǎng)孔內(nèi),搖晃培養(yǎng)板;⑤把細(xì)胞培養(yǎng)板放在CO2培養(yǎng)箱內(nèi),孵育4 h,除去復(fù)合物,更換培養(yǎng)基,放入培養(yǎng)箱中;⑥轉(zhuǎn)染0、24、48和72 h后,吸去培養(yǎng)液,按每1ml完全培養(yǎng)基加入100μl CCK-8混合,每孔加入100μl CCK-8混合液,將培養(yǎng)板放到培養(yǎng)箱內(nèi)孵育1 h。

1.5 噻唑藍(lán)比色法測定SKOV3細(xì)胞存活率

用96孔板接種細(xì)胞,24 h后進(jìn)行轉(zhuǎn)染,轉(zhuǎn)染后再等待 6 h,加入 VP16,噻唑藍(lán)比色法[3-(4,5)-dimethylthiahiazo(-z-y1)-3,5-di-phenytetrazoliumromide,MTT]法檢測 SKOV3細(xì)胞、siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3細(xì)胞、SKOV3/VP16細(xì)胞和siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞在VP16濃度梯度下的存活率,檢測各細(xì)胞在490 nm處的吸光值并計(jì)算其各自的半抑制濃度(50%inhibitory concentration,IC50)。

1.6 平板克隆形成

將SKOV3細(xì)胞、siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3細(xì)胞、SKOV3/VP16細(xì)胞和siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞每孔200個(gè)/2 ml接種于6孔板中,置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)10d,棄培養(yǎng)基,加入PBS洗滌細(xì)胞2次,每個(gè)孔內(nèi)加入無水甲醇,室溫靜置并固定15 min,棄去固定液,加入1%結(jié)晶紫染液1ml,室溫染色15min,計(jì)算克隆形成率,克隆形成率=克隆數(shù)面積/接種面積(100%)。

1.7 實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)檢測SKOV3細(xì)胞、siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3細(xì)胞、SKOV3/VP16細(xì)胞和siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞的LRIG1 mRNA的表達(dá)

1.7.1 RNA提取 ①收集適量細(xì)胞,加入1ml Trizol,震蕩混勻室溫放置5 min;②加入0.2 ml氯仿,劇烈震蕩15s,靜置 3min;③4℃、12000r/min 離心 10min,取上清轉(zhuǎn)移到新EP管;④加入等體積異丙醇,混勻,靜置20min;4℃、12000r/min離心10min,棄去上清液;⑤用1 ml 75%DEPC酒精洗滌;⑥4℃、12 000 r/min離心5 min,棄去液體;⑦室溫晾干后,加入30μl DEPC處理過的雙蒸水(distillation-distillation H2O,ddH2O),溶解RNA,置入-80℃冰箱冷凍保存?zhèn)溆谩?/p>

1.7.2 逆轉(zhuǎn)錄 以1 μg總RNA視為模板,依照使用說明書內(nèi)容,對逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)體系加以配置,體系的總含量為20μl。將其合成為DNA第一鏈,依照下述內(nèi)容,全面配置反應(yīng)液:Primer Mix 1.0,RNA 1.0 μg,DEPC 10.0μl,水 1.0μl,共 11 μl。后將其放置到35℃環(huán)境中共計(jì)300 s,急速冷凍。依照以下體系配置出反應(yīng)液:5 RT Buffer 4.0 μl;RT Enzyme Mix 1.0 μl,DEPC 11.0 μl,水 4.0μl,共 20 μl。分別在98℃預(yù)變性10 min和37℃變性60 min,合成互補(bǔ)脫氧核糖核酸(complementary deoxyribonucleic acid,cDNA)第一鏈,再經(jīng)Sephacryl s2300離心柱離心2 min除去引物等雜質(zhì),可獲得純凈cDNA分子。

1.7.3 實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶反應(yīng)(quantitative real time polymerase chain reaction,qRT-PCR)檢測 qRTPCR 反應(yīng)條件:94℃預(yù)變性 2 min,94℃變性 20 s,58℃退火 20 s,72℃延伸 20 s,40 個(gè)循環(huán),以 GAPDH為內(nèi)參,通過2-△△CT方法進(jìn)行相對定量分析LRIG1 mRNA的相對表達(dá)。GAPDH,正向引物:5'-TGTTCG TCATGGGTGTGAA-3',反向引物:5'-ATGGCATGGA CTGTGGTCAT-3'。LRIG1 正向引物:5'-GACCCTTTCTGACCGACAA-3',反向引物:5'-CGCTTTCCACGGC TCTTT-3'。

1.8 流式細(xì)胞術(shù)檢測SKOV3細(xì)胞、siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3細(xì)胞、SKOV3/VP16細(xì)胞和 siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞凋亡

①轉(zhuǎn)染前1天將容量為2.5×105的細(xì)胞接種在2 ml 6孔培養(yǎng)基,確保密度達(dá)到50%~70%;②在250μl的DMEM無血清無抗生素培養(yǎng)基中加入質(zhì)?;騭iRNA,柔和混勻;③在250μl的DMEM無血清無抗生素培養(yǎng)基中加入LipofectamineTM2000,柔和混勻,室溫放置5 min;④將稀釋好的siRNA和LipofectamineTM2000混合,室溫放置20 min,把siRNA/Lipofectamin混合物放到內(nèi)含有細(xì)胞以及培養(yǎng)基的小孔內(nèi),混合;⑤把細(xì)胞培養(yǎng)板放在CO2培養(yǎng)箱內(nèi),孵育4 h,更換完全培養(yǎng)基并放入培養(yǎng)箱;⑥轉(zhuǎn)染后48h,收集細(xì)胞進(jìn)行后續(xù)檢測;⑦用ddH2O將5×結(jié)合緩沖液(Binding Buffer)稀釋為 1×Binding Buffer,每0.5 ml 1×Binding Buffer加入5μl Annexin V和10μl PI,配制Annexin V/PI染色工作液;⑧吸去培養(yǎng)板中的培養(yǎng)基,每孔用2 ml PBS輕輕潤洗培養(yǎng)板內(nèi)細(xì)胞,吸去PBS,每孔加0.5 ml 0.25%胰酶,孵育,鏡下觀察,當(dāng)胞質(zhì)回縮,細(xì)胞之間不再連接成片,吸去胰酶,加入2 ml PBS,制成單細(xì)胞懸液,移至流式管,1000r/min離心5min,棄上清液;⑨加入200μl Annexin V/PI染色工作液,重懸細(xì)胞;⑩避光孵育15 mim,上機(jī)檢測。

1.9 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

數(shù)據(jù)分析采用SPSS 19.0統(tǒng)計(jì)軟件,計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,組間比較用單因素方差分析,兩兩比較用LSD-t檢驗(yàn),P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 不同濃度VP16干預(yù)SKOV3細(xì)胞的存活情況

VP16干預(yù) SKOV3、siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染 SKOV3、SKOV3/VP16和siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞的存活率及 IC50,0、5、10、20、40、80、100、120、180和 200μg/L的 VP16處理 SKOV3、siRNA LRIG1轉(zhuǎn) 染 SKOV3、SKOV3/VP16和 siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞48 h的吸光值逐漸降低,呈劑量依 賴 關(guān) 系 ,IC50 分 別 為 62.90、115.49、156.50 和195.42 μg/L,siRNA LRIG1 轉(zhuǎn)染 SKOV3、SKOV3/VP16和siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞的耐藥指數(shù)分別為1.8、2.5和3.1。見附表。

2.2 SKOV3、siRNA LRIG1 轉(zhuǎn)染 SKOV3、SKOV3/VP16和siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞增殖情況

SKOV3、siRNALRIG1 轉(zhuǎn)染 SKOV3、SKOV3/VP16和siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞進(jìn)行平板克隆實(shí)驗(yàn),克隆率分別為(0.03±0.02)%、(0.05±0.01)%、(0.10±0.03)%和(0.15±0.04)%,4 組細(xì)胞增殖差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=39.338,P=0.000),與SKOV3比較,siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染 SKOV3、SKOV3/VP16和siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞的克隆率增高(t=0.026,0.070和 0.125,P=0.042、0.000 和0.000),與 siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染 SKOV3 比較,SKOV3/VP16和siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞的克隆率增高(t=0.044和 0.099,P=0.001和 0.000),與SKOV3/VP16比較,siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞的克隆率增加(t=0.055,P=0.000)。見圖1。

附表 VP16干預(yù)SKOV3、siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3、SKOV3/VP16和siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞的吸光值 (n=3)

圖1 4組SKOV3/VP16細(xì)胞增殖情況

2.3 SKOV3、siRNA LRIG1 轉(zhuǎn)染 SKOV3、SKOV3/VP16和siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞中LRIG1 mRNA的表達(dá)

SKOV3、siRNALRIG1 轉(zhuǎn)染 SKOV3、SKOV3/VP16和siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞的LRIG1 mRNA 分別為 1.05±0.15、0.93±0.16、0.53±0.09 和0.23±0.04,4組的LRIG1 mRNA表達(dá)有差異(F=63.095,P=0.000),與 SKOV3 比較,siRNA LRIG1 轉(zhuǎn)染 SKOV3、SKOV3/VP16 和 siRNA LRIG1 轉(zhuǎn) 染SKOV3/VP16細(xì)胞的LRIG1 mRNA降低(t=0.130、0.525 和 0.825,均 P=0.000),與 siRNA LRIG1 轉(zhuǎn)染SKOV3比較,SKOV3/VP16和 siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞的LRIG1 mRNA降低(t=0.395和 0.695,均 P=0.000),與 SKOV3/VP16 比較,siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞的LRIG1 mRNA降低(t=0.300,P=0.000)。見圖 2。

2.4 SKOV3、siRNA LRIG1 轉(zhuǎn)染 SKOV3、SKOV3/VP16和siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞凋亡情況

4組的凋亡細(xì)胞比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=230.046,P=0.000),與 siRNA LRIG1 轉(zhuǎn)染 SKOV3 比較,SKOV3/VP16和siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16的凋亡細(xì)胞減少(t=12.350、35.506和44.412,均P=0.000),與 SKOV3/VP16 比較,siRNA LRIG1 轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16凋亡細(xì)胞減少(t=23.156和32.063,均P=0.000),與 SKOV3/VP16比較,siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16 凋亡細(xì)胞減少(t=8.906,P=0.000)。見圖3。

圖2 SKOV3、siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3、SKOV3/VP16和siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞LRIG1 mRNA表達(dá)

圖3 SKOV3、siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3、SKOV3/VP16和siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞凋亡比較

3 討論

LRIG1發(fā)現(xiàn)于10多年前,科學(xué)家們開始假設(shè)其是一個(gè)腫瘤抑制基因[12]。一系列實(shí)驗(yàn)和臨床數(shù)據(jù)都支持這一最初假設(shè)。此后,越來越多的證據(jù)證明,LRIG1可以抑制細(xì)胞的正常增殖和分化。LRIG1的增殖抑制作用在包括人胚胎腎細(xì)胞[14]、前列腺癌細(xì)胞[14]、小鼠成纖維細(xì)胞角質(zhì)形成細(xì)胞[15-16]、膀胱癌細(xì)胞[17]、乳腺癌細(xì)胞[1,18-19]、星形細(xì)胞瘤、膠質(zhì)母細(xì)胞瘤細(xì)胞[20-21]、非洲綠猴腎細(xì)胞[21]、鼻咽癌細(xì)胞[7]與肺癌細(xì)胞[22]在內(nèi)一系列組織細(xì)胞。在分子水平上,LRIG1可以負(fù)性調(diào)節(jié)由致癌受體酪氨酸激酶介導(dǎo)的生長因子信號:LRIG1可誘導(dǎo)表皮生長因子受體(EGFR)家族成員EGFR、ERBB2、ErbB3 和 ErbB4 的泛素化[14-15],從而破壞MET受體[18],作用于RET受體并抑制RET和下游信號的磷酸化[23-24]。另一方面,在ErbB2陽性的腫瘤細(xì)胞系中,過表達(dá)ErbB2可以下調(diào)雌激素受體,從而抑制雌激素誘導(dǎo)的LRIG1轉(zhuǎn)錄[1,19]。

筆者研究發(fā)現(xiàn),LRIG1 mRNA在SKOV3/VP16耐藥細(xì)胞株中的表達(dá)低于野生型SKOV3細(xì)胞株,使用siRNA沉默的SKOV3和SKOV3/VP16細(xì)胞中的LRIG1 mRNA進(jìn)一步降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,與之相對的,給予不同濃度的VP16,siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3細(xì)胞、SKOV3/VP16和 siRNA LRIG1轉(zhuǎn)染SKOV3/VP16細(xì)胞的IC50依次增高,克隆集落刺激增加和凋亡降低。本結(jié)果表明,LRIG1可以抑制卵巢癌細(xì)胞的增殖,將其沉默后,細(xì)胞增殖能力減弱而凋亡增加。該結(jié)論與既往研究基本吻合,該結(jié)果提示在卵巢癌的治療中,可以通過增強(qiáng)LRIG1蛋白的表達(dá)而促進(jìn)腫瘤細(xì)胞凋亡,提高卵巢癌細(xì)胞放化療的敏感性。如臨床應(yīng)用天然化合物藤黃酸可用于抗癌,機(jī)制在于藤黃酸可以通過AMP激酶的活化而上調(diào)LRIG1在膠質(zhì)瘤細(xì)胞中的表達(dá),從而抑制該細(xì)胞的增殖[25]。

結(jié)合本研究結(jié)果,筆者認(rèn)為,LRIG1影響SKOV3細(xì)胞對藥物的敏感性,呈劑量相關(guān)特點(diǎn),沉默細(xì)胞中的LRIG1后,可以抑制SKOV3細(xì)胞凋亡,增強(qiáng)卵巢癌細(xì)胞中LRIG1表達(dá)以提高卵巢癌細(xì)胞放化療敏感性。

[1]KRIG S R,FRIETZE S,SIMION C,et al.LRIG1 is an estrogen-regulated growth suppressor and correlates with longer relapse-free survival in ER alpha-positive breast cancer[J].Molecular Cancer Research,2011,9(10):1406-1417.

[2]THOMPSON P A,LJUSLINDER I,TSAVACHIDIS S,et al.Loss of LRIG1 locus increases risk of early and late relapse of stageⅠ/Ⅱ breast cancer[J].Cancer Research,2014,74(11):2928-2935.

[3]LINDSTROM A K,EKMAN K,STENDAHL U,et al.LRIG1 and squamous epithelial uterine cervical cancer:Correlation to prognosis,other tumor markers,sex steroid hormones,and smoking[J].International Journal of Gynecological Cancer,2008,18(2):312-317.

[4]HEDMAN H,LINDSTROM A K,TOT T,et al.LRIG2 in contrast to LRIG1 predicts poor survival in early-stage squamous cell carcinoma of the uterine cervix[J].Acta Oncologica,2010,49(4):812-815.

[5]MULLER S,LINDQUIST D,KANTER L,et al.Expression of LRIG1 and LRIG3 correlates with human papillomavirus status and patient survival in cervical adenocarcinoma[J].International Journal of Oncology,2013,42(1):247-252.

[6]SHEU J J,LEE C H,KO J Y,et al.Chromosome 3p12.3-p14.2 and 3q26.2-q26.32 are genomic markers for prognosis of advanced nasopharyngeal carcinoma[J].Cancer Epidemiology Biomarkers&Prevention,2009,18(10):2709-2716.

[7]SHEU J J,LEE C C,HUA C H,et al.LRIG1 modulates aggressiveness of head and neck cancers by regulating EGFR-MAPKSPHK1 signaling and extracellular matrix remodeling[J].Oncogene,2014,33(11):1375-1384.

[8]LINDQUIST D.Expression of LRIG1 is associated with good prognosis and human papillomavirus status in oropharyngeal cancer[J].British Journal of Cancer,2014,110(7):1793-1800.

[9]GUO D,NILSSON J,HAAPASALO H,etal.Perinuclear leucine-rich repeatsand immunoglobulin-like domain proteins(LRIG1-3)as prognostic indicators in astrocytic tumors[J].Acta Neuropathologica,2006,111(3):238-246.

[10]HOLMLUND C,HAAPASALO H,YI W,et al.Cytoplasmic LRIG2 expression is associated with poor oligodendroglioma patient survival[J].Neuropathology,2009,29(3):242-247.

[11]THOMASSON M,WANG B,HAMMARSTEN P,et al.LRIG1 and the liar paradox in prostate cancer:A study of the expression and clinical significance of LRIG1 in prostate cancer[J].International Journal of Cancer,2011,128(12):2843-2852.

[12]TANEMURA A,NAGASAWA T,INUI S,et al.LRIG-1 provides a novel prognostic predictor in squamous cell carcinoma of the skin:Immunohistochemical analysis for 38 cases[J].Dermatologic Surgery,2005,31(4):423-430.

[13]HEDMAN H,NILSSON J,GUO D,et al.Is LRIG1 a tumour suppressorgeneatchromosome3p14.3[J].ActaOncologica,2002,41(4):352-354.

[14]GUR G,RUBIN C,KATZ M,et al.LRIG1 restricts growth factor signaling by enhancing receptor ubiquitylation and degradation[J].Embo Journal.2004,23(16):3270-3281.

[15]LAEDERICH M B,FUNES-DURAN M,YEN L,et al.The leucine-rich repeat protein LRIG1 is a negative regulator of ErbB family receptor tyrosine kinases[J].Journal of Biological Chemistry,2004,279(45):47050-47056.

[16]JENSEN K B,WATT F M.Single-cell expression profiling of human epidermal stem and transit-amplifying cells:Lrig1 is a regulator of stem cell quiescence[J].Proceedings of the NationalAcademy of Sciences of the United States of America,2006,103(32):11958-11963.

[17]YANG W M,YAN Z J,YE Z Q,et al.LRIG1,a candidate tumour-suppressor gene in human bladder cancer cell line BIU87[J].BJU International,2006,98(4):898-902.

[18]SHATTUCK D L,MILLER J K,LAEDERICH M,et al.LRIG1 is a novel negative regulator of the Met receptor and opposes Met and Her2 synergy[J].Molecular&Cellular Biology,2007,27(5):1934-1946.

[19]MILLER J K,SHATTUCK D L,INGALLA E Q,et al.Suppression ofthe negativeregulatorLRIG1 contributesto ErbB2 overexpression in breast cancer[J].Cancer Research,2008,68(20):8286-8294.

[20]NILSSON J,VALLBO C,GUO D,et al.Cloning,characterization,and expression of human LIG1[J].Biochemical&Biophysical Research Communications,2001,284(5):1155-1161.

[21]HOLMLUND C,NILSSON J,GUO D,et al.Characterization and tissue-specific expression of human LRIG2[J].Gene,2004,332(4):35-43.

[22]GUO D,HOLMLUND C,HENRIKSSON R,et al.The LRIG gene family has three vertebrate paralogs widely expressed in human and mouse tissues and a homolog in Ascidiacea[J].Genomics,2004,84(1):157-165.

[23]NILSSON J,STAREFELDT A,HENRIKSSON R,et al.LRIG1 protein in human cells and tissues[J].Cell and Tissue Research,2003,312(1):65-71.

[24]LEDDA F,BIERAUGEL O,FARD S S,et al.LRIG1 is an endogenous inhibitor of Ret receptor tyrosine kinase activation,downstream signaling,and biological responses to GDNF[J].The Journal of Neuroscience,2008,28(1):39-49.

[25]ZHAO B,SHEN H,ZHANG L,et al.Gambogic acid activates AMP-activated protein kinase in mammalian cells[J].Biochem Biophys Res Commun,2012,424(1):100-104.

Role and mechanism of LRIG1 in SKOV3,siRNALRIG1 KOV3,KOV3/VP16 and siRNALRIG1 KOV3/VP16*

Hua Yang1,Yuan Ye2,Sheng-jun Xiao3,Xiao-mei Lei1,Xiao-hong Luo4
(1.Department of Gynaecology,the Second Affiliated Hospital of Guilin Medical University,Guilin,Guangxi 541199,China;2.Department of Gynaecology,Affiliated Hospital of Guilin Medical University,Guilin,Guangxi 541001,China;3.Department of Pathology,the Second Affiliated Hospital of Guilin Medical University,Guilin,Guangxi 541199,China;4.Department of Medical Records,Affiliated Hospital of Guilin Medical University,Guilin,Guangxi 541001,China)

ovarian cancer;drug resistance;leucine-rich repeats and immunoglobulin-like domains-1

Q344.14

A

10.3969/j.issn.1005-8982.2017.11.001

1005-8982(2017)11-0001-07

2016-12-15

桂林市科學(xué)研究與技術(shù)開發(fā)計(jì)劃項(xiàng)目(No:20130120-3)

葉元,Tel:13517738776

Abstract:ObjectiveTo investigate the role and possible mechanism of LRIG1 in SKOV3,siRNALRIG1 KOV3,KOV3/VP16 and siRNALRIG1 KOV3/VP16.MethodsThe cell proliferation of SKOV3,siRNALRIG1 KOV3,KOV3/VP16 and siRNALRIG1 KOV3/VP16 were detected by MMT at different concentrations of VP16,which had been con-cultured for 48 hours.Cell proliferation was detected by plate cloning.Cell apoptosis was detected by flow cytometry.LRIG1 gene expression was detected by quantitative real-time PCR.ResultsIC50 of SKOV3,siRNALRIG1 KOV3,KOV3/VP16 and siRNALRIG1 KOV3/VP1 were 62.90 μg/L,115.49 μg/L,156.50 μg/L and 195.42 μg/L,respectively,with the drug resistance index of 1.8,2.5 and 3.1 respectively.Compared with SKOV3,the cloning rates had increased (the mean differences were 8.000,37.692 and 72.000,P<0.05),the LRIG1 mRNA (the mean differences were 2.994,88.366 and 279.004,P<0.05)and apoptotic cells(the mean difference were 48.942,63.485 83.659,P<0.05)had decreased significantly in siRNALRIG1 KOV3,SKOV3/VP16 and siRNALRIG1 KOV3/VP16 cells.Compared with siRNALRIG1 KOV3,the cloning rates had increased(the mean differences were 25.000 and 58.824,P<0.05),the LRIG1 mRNA(the mean differences were 47.478 and 180.147,P<0.05)and apoptotic cells (the mean differences were 53.678 and 42.687,P<0.05)had decreased in SKOV3/VP16 and siRNALRIG1 KOV3/VP16 cells (P<0.05).Compared with SKOV3/VP16,the cloning rates had increased (the mean difference was 10.000,P<0.05),the LRIG1 mRNA (the mean difference was 92.784,P<0.05)and apoptotic cells (the mean difference was 37.625,P<0.05)had decreased in siRNA LRIG1 KOV3/VP16 cells(P<0.05).Conclusions The LRIG1 gene can affect drug sensitivity of SKOV3 for lower LRIG1 could decrease the apoptosis of cells.

猜你喜歡
細(xì)胞株桂林卵巢癌
基于Oncomine數(shù)據(jù)庫研究PDE4D基因在卵巢癌中的表達(dá)及血根堿的調(diào)控作用
miR-181a在卵巢癌細(xì)胞中對順鉑的耐藥作用
安羅替尼對肺腺癌細(xì)胞株A549放射敏感性的影響及機(jī)制
miR-21負(fù)向調(diào)控宮頸癌HeLa細(xì)胞株中hTERT的表達(dá)
鉑耐藥復(fù)發(fā)性卵巢癌的治療進(jìn)展
桂林行
槲芪癥消湯對人肝癌細(xì)胞株HepG2.2.15增殖和凋亡的影響
樂!乘動車,看桂林
慢病毒載體法建立乳腺癌GFP-ST3穩(wěn)定細(xì)胞株
桂林:擊浪現(xiàn)代理化技術(shù)
阳春市| 荥阳市| 东安县| 梓潼县| 万年县| 安泽县| 福海县| 四会市| 琼中| 兴城市| 石首市| 姚安县| 阜新市| 婺源县| 大冶市| 百色市| 仁怀市| 蓬溪县| 龙州县| 九江县| 岳西县| 鲁山县| 宿松县| 海兴县| 墨竹工卡县| 多伦县| 威信县| 绩溪县| 雅江县| 溧阳市| 山阳县| 临武县| 武乡县| 原阳县| 万山特区| 永吉县| 广昌县| 余江县| 当涂县| 博客| 沁源县|