文峰 蘇文潘 黃建祺 鄭華 俞奔馳 付海天
摘要木薯是一種重要的糧食和工業(yè)原料作物。隨著細胞工程和基因工程的發(fā)展,生物技術(shù)育種要求一種高效的再生體系。從木薯的器官發(fā)生途徑、體細胞胚發(fā)生途徑、脆性胚性愈傷組織(FEC)再生和原生質(zhì)體再生4個方面闡述了木薯再生體系的發(fā)展與建立,以期為木薯組織培養(yǎng)和基于木薯再生體系的技術(shù)進步提供參考。
關(guān)鍵詞木薯;器官發(fā)生;體細胞胚發(fā)生;脆性胚性愈傷組織(FEC);原生質(zhì)體;再生
中圖分類號S533文獻標識碼
A文章編號0517-6611(2017)08-0156-03
Research Progress of Establishment of Regeneration System in Cassava
WEN Feng1,2,SU Wenpan1,HUANG Jianqi1 et al(1.Guangxi Institute of Subtropical Crops,Nanning,Guangxi 530001;2.Huazhong Agricultural University,Key Laboratory of Horticultural Plant Biology (Ministry of Education),Wuhan,Hubei 430070)
AbstractCassava is an important crop for food and industrial raw materials.With the development of cell engineering and gene engineering,highly efficient regeneration system is a prerequisite for biotechnology breeding.This review summarizes the development and establishment of regeneration of cassava,via organogenesis,somatic embryogenesis,friable embryogenic callus (FEC) and protoplast,hoping to provide some useful reference for the technical progress of tissue culture and regeneration system of cassava.
Key wordsCassava;Organogenesis;Somatic embryogenesis;Friable embryogenic callus (FEC);Protoplast;Regeneration
木薯(Manihot esculenta Crantz)別名樹薯,屬于大戟科(Euphorbiaceae)木薯屬(Manihot)多年生灌木,常作為一年生作物栽培,因其塊根富含淀粉,被譽為“淀粉之王”。木薯在熱帶、亞熱帶地區(qū)是重要的糧食作物,還是生產(chǎn)淀粉、變性淀粉、酒精、葡萄糖等工業(yè)產(chǎn)品的重要原料,被用于食品、化工、醫(yī)藥、紡織、造紙等多種行業(yè),其塊根、嫩莖、枝葉也常用作飼料。
木薯遺傳背景復雜,具有基因型高度雜合、花粉育性低、種子萌發(fā)率低和有性子代性狀嚴重分離[1-2]的特性,使其傳統(tǒng)育種受到一定限制。生物技術(shù)育種是傳統(tǒng)育種方法的一種補充手段。隨著細胞工程和基因工程的發(fā)展,生物技術(shù)育種要求一種高效的再生體系。木薯的組織培養(yǎng)技術(shù)起步較晚,但在國際熱帶農(nóng)業(yè)中心(International Center for Tropical Agriculture,CIAT)得到發(fā)展,主要用于脫毒、無性繁殖、種質(zhì)收集保存和種質(zhì)交換。木薯種子顯示了高度的基因多樣性,有性繁殖會導致基因嚴重分離,因此作為無性繁殖作物,從特定的組織再生植株顯得尤為重要。木薯科研工作者也一直在朝著這個方向努力。目前,木薯已經(jīng)建立的再生體系主要有器官發(fā)生途徑、體細胞胚發(fā)生途徑、脆性胚性愈傷(FEC)再生和原生質(zhì)體再生4種。筆者對木薯現(xiàn)有的4種再生體系發(fā)展與建立進行了總結(jié)與歸納,以期為木薯組織培養(yǎng)和基于木薯再生體系的技術(shù)進步提供一些參考。
1器官發(fā)生途徑
1974年,Kartha等[3]首次對木薯的頂端分生組織進行了培養(yǎng),獲得5個品種的完整植株。1994年,Konan等[1]用高濃度的細胞分裂素6-BA(10 mg/L)培養(yǎng)木薯腋芽,形成了致密的類似球莖的結(jié)構(gòu),然后轉(zhuǎn)移到低濃度的6-BA培養(yǎng)基上,能形成多莖結(jié)構(gòu),再生了植株。
在建立體細胞胚發(fā)生的基礎上,初生胚胎、次生胚胎以及循環(huán)胚胎形成的子葉都可在含1.0 mg/L 6-BA 和 0.5 mg/L IBA的培養(yǎng)基中經(jīng)器官發(fā)生再生植株[4]。初生胚胎的子葉器官發(fā)生的能力較低,循環(huán)胚胎子葉器官發(fā)生能力最高[5]。木薯器官發(fā)生途徑可來源于腋芽、莖尖、嫩葉以及初生胚、次生胚、循環(huán)胚的子葉等外植體。
2體細胞胚發(fā)生途徑
2.1體細胞胚發(fā)生的發(fā)展
自1982年Stamp等[6]首次報道以木薯合子胚的胚軸和子葉為外植體成功誘導出胚狀體以來,該方法現(xiàn)已得到普遍發(fā)展。從最初的2步:①在包含2,4-D的培養(yǎng)基中誘導體細胞胚胎;②將誘導的胚狀體轉(zhuǎn)到含2,4-D、6-BA、含或不含GA的培養(yǎng)基中發(fā)展莖,之后再生根[7-8],細化到現(xiàn)在的4步:①在包含2,4-D等生長素的培養(yǎng)基中誘導體細胞胚胎;②在含低濃度6-BA的培養(yǎng)基中成熟或萌發(fā);③在含高濃度6-BA的培養(yǎng)基中生長,發(fā)展成莖;④在含低濃度NAA或不含激素的培養(yǎng)基中生根[9-11]。循環(huán)①、②步,能產(chǎn)生次生胚胎和循環(huán)胚胎,形成循環(huán)的體細胞胚發(fā)生體系,循環(huán)的胚胎外植體誘導胚胎更顯著[9,11]。此后的相關(guān)體細胞胚發(fā)生研究也大多在此基礎上,根據(jù)基因型、外植體類型及激素類型等不同因素進行了優(yōu)化。所用外植體也從最開始的合子胚的胚軸和子葉發(fā)展到莖尖、嫩葉、腋芽、花組織以及初生胚、次生胚、循環(huán)胚的子葉。
2.2植物激素對體細胞胚發(fā)生的影響
植物激素在木薯體細胞胚發(fā)生中有重要作用。2,4-D、Picloram和NAA常作為誘導木薯體細胞胚發(fā)生的激素,但根據(jù)木薯品種、外植體類型的不同,誘導的能力也有所不同。2,4-D濃度在 1~8 mg/L范圍內(nèi)增加時,體細胞胚胎誘導率顯著增加;當濃度在 8~16 mg/L時,胚胎誘導率是相似的[8]。研究顯示,在某些基因型中,誘導初生胚胎,Picloram比2,4-D效果更好[12-13]。起初的研究認為NAA沒有誘導初生胚胎的能力,但有誘導次生胚胎的能力[14]。馬國華等[15]研究顯示,采用高濃度的NAA,能成功地直接誘導初生體細胞胚發(fā)生和芽的形成。后來的研究也證實了這一結(jié)果[16]。盡管研究的激素較多,但目前常采用12 mg/L 的Picloram誘導常規(guī)木薯的體細胞胚發(fā)生。
有研究認為在體細胞胚胎誘導早期,生長素起關(guān)鍵作用,而6-BA有抑制作用,一旦胚胎形成后,生長素抑制莖結(jié)構(gòu)形成,而6-BA促進莖結(jié)構(gòu)形成。同時認為,改變生長激素能調(diào)控木薯經(jīng)體細胞胚發(fā)生途徑或器官發(fā)生途徑再生。外植體在含生長素的培養(yǎng)基上培養(yǎng),一旦胚性細胞團被誘導,若繼續(xù)在此培養(yǎng)基上培養(yǎng),則向體細胞胚發(fā)生途徑發(fā)展,若轉(zhuǎn)入含6-BA的培養(yǎng)基上培養(yǎng),則向器官發(fā)生途徑發(fā)展,而誘導時間決定了胚性細胞團的誘導。在含生長素的誘導培養(yǎng)基上培養(yǎng)的時間越長,越多的胚性細胞團發(fā)展成胚胎,也越難改變再生路徑[17]。
3脆性胚性愈傷組織(FEC)誘導與再生
在植物中,F(xiàn)EC已經(jīng)得到發(fā)展,合子胚通常是用于誘導的首選外植體材料[18]。在木薯中,合子胚基因型嚴重分離,不清楚基因型來源,不適合作為外植體,如同體細胞胚發(fā)生一樣。
Taylor等[19]描述FEC發(fā)生于嫩葉誘導初生胚胎,經(jīng)次生胚胎或循環(huán)胚胎發(fā)生,將高質(zhì)量的胚性組織在含Picloram的GD培養(yǎng)基上連續(xù)繼代培養(yǎng),產(chǎn)生一種由數(shù)十個細胞組成的直徑約1 mm的細小細胞團結(jié)構(gòu),即脆性胚性愈傷組織。這種結(jié)構(gòu)新陳代謝快,分離出來后,在SH液體培養(yǎng)基中懸浮培養(yǎng)可迅速擴增。嫩葉誘導初生胚胎的胚性組織質(zhì)量不高,次生胚胎或循環(huán)胚胎培養(yǎng)產(chǎn)生的胚性組織質(zhì)量較高。
FEC的誘導仍存在基因型限制。Taylor等[20]在20個木薯供試品種中,成功誘導了14個品種的FEC,并且FEC產(chǎn)生的時間和植株的再生效率存在很大差異。Raemakers等[21]報道,供試的10個木薯基因型中只有6個獲得了FEC,每個基因型的FEC都能再生植株,但再生的效率不同。方佳敏等[22]對11個主栽木薯品種進行誘導FEC,經(jīng)多次重復的誘導與條件優(yōu)化,結(jié)果表明只有4個木薯品種在GD培養(yǎng)基上多次繼代培養(yǎng)后,可獲得FEC。盡管木薯的FEC難誘導,但一旦誘導了FEC,均能再生成植株。FEC的再生過程與體細胞胚發(fā)生再生過程類似,除起始材料不同外,都經(jīng)過誘導胚胎出現(xiàn)、胚胎成熟、莖伸長、生根4個階段。
4原生質(zhì)體培養(yǎng)與再生
4.1葉肉原生質(zhì)體的培養(yǎng)與再生
木薯葉片分離原生質(zhì)體再生植株僅有1例成功的報道[23],其他學者不能重復這個過程[24-25]。Anthony等[24]采用組培苗的葉片分離原生質(zhì)體,用固(B5培養(yǎng)基)液(無銨MS培養(yǎng)基)雙層法培養(yǎng),并在培養(yǎng)基中均勻垂直地插入短玻璃棒,對照不插玻璃棒,其他均相同,結(jié)果原生質(zhì)體只在插玻璃棒的培養(yǎng)基中持續(xù)分裂,形成肉眼可見的愈傷,但仍沒有再生植株。此后再未見木薯葉肉原生質(zhì)體培養(yǎng)的相關(guān)報道,后人一般認為木薯葉肉原生質(zhì)體不能再生植株。
4.2胚性愈傷組織原生質(zhì)體的培養(yǎng)與再生
20世紀90年代,木薯原生質(zhì)體再生研究取得了突破性的進展。在建立FEC及其懸浮系的基礎上[19],展開了木薯品種TMS60444原生質(zhì)體分離、純化及培養(yǎng)研究,并再生了植株,然而再生效率低,主要是由于原生質(zhì)體起源的愈傷組織分化體細胞胚的效率低,并且成熟胚萌發(fā)效率也低造成的,這成為木薯原生質(zhì)體再生植株的瓶頸[25]。2012 年,筆者根據(jù)前人[25]的研究基礎,分離木薯品種TMS60444的FEC懸浮系原生質(zhì)體并培養(yǎng),在胚狀體發(fā)生過程中采用MSN培養(yǎng)基培養(yǎng),對前人提及的瓶頸問題有所改進,原生質(zhì)體再生效率有較大提高,建立了相對完整有效的木薯脆性愈傷原生質(zhì)體再生體系[26]。目前原生質(zhì)體再生成功的經(jīng)驗是先誘導胚性愈傷組織,再建立胚性懸浮系,利用胚性懸浮系分離原生質(zhì)體,這樣分離的原生質(zhì)體容易再生。該方法已在水稻[27]、玉米[28]、甘蔗[29]、小麥[30]等多種作物的原生質(zhì)體再生過程中成功應用。
5結(jié)語
木薯是一種主要糧食作物,對其再生體系的研究落后于水稻、小麥等糧食作物。直到20世紀90年代木薯的再生體系研究才得到了充分發(fā)展,從器官發(fā)生、體細胞胚發(fā)生、FEC再生,再到原生質(zhì)體再生,都有了新的突破。當時木薯的體細胞胚發(fā)生是一個研究熱點,無論是品種、外植體類型,還是激素影響的研究都非常多[7-17]。這些促使了遺傳轉(zhuǎn)化技術(shù)的進步,為木薯遺傳轉(zhuǎn)化的發(fā)展奠定了基礎。
目前木薯再生體系的應用除種質(zhì)保存、無性繁殖外,主要應用于遺傳轉(zhuǎn)化。子葉和FEC常作為遺傳轉(zhuǎn)化的起始材料。木薯遺傳轉(zhuǎn)化有2種方式:一種是利用體細胞胚發(fā)生得到的子葉,經(jīng)過器官發(fā)生得到轉(zhuǎn)基因植株;另一種是利用FEC再生得到轉(zhuǎn)基因植株。器官發(fā)生應用于遺傳轉(zhuǎn)化研究,其優(yōu)點是基因型不受限制,再生時間短,簡單、易操作,缺點是再生效率低,有假陽性和嵌合現(xiàn)象。FEC是很多基礎研究的重要起始材料,是木薯高效遺傳轉(zhuǎn)化的最合適材料[31]。FEC再生應用于遺傳轉(zhuǎn)化研究,其優(yōu)點是轉(zhuǎn)化效率高,可以得到較多的轉(zhuǎn)基因植株,缺點是受基因型限制,有嵌合現(xiàn)象,F(xiàn)EC在繼代保存及再生過程中可能發(fā)生體細胞變異。目前遺傳轉(zhuǎn)化的研究報道大多是模式品種TMS60444、M.Col 22,轉(zhuǎn)換到栽培種中還需要優(yōu)化。木薯原生質(zhì)體再生,其操作過程繁瑣,技術(shù)要求較高,再生成功的報道少。若在原生質(zhì)體再生的基礎上原生質(zhì)體融合及原生質(zhì)體轉(zhuǎn)化等研究成功,將為木薯育種提供一條新途徑。
參考文獻
[1]
KONAN N K,SANGWAN R S,SANGWANNORREEL B S.Efficient in vitro shootregeneration systems in cassava (Manihot esculenta Crantz)[J].Plant breeding,1994,113(3):227-236.
[2] MUSSIO I,CHAPUT M H,SERRAF I,et al.Adventitious shoot regeneration from leaf explants of an African clone of cassava(Manihot esculenta Crantz) and analysis of the conformity of regenerated plants[J].Plant cell,tissue and organ culture,1998,53(31):205-211.
[3] KARTHA K K,GAMBORG O L,CONSTABEL F,et al.Regeneration of cassava plants from apical meristems[J].Plant science letters,1974,2(2):107-113.
[4] LI H Q,SAUTTER C,POTRYKUS I,et al.Genetic transformation of cassava (Manihot esculenta Crantz) [J].Nature biotechnology,1996,14(6):736-740.
[5] LI H Q,GUO J Y,HUANG Y W,et al.Regeneration of cassava plants via shoot organogenesis[J].Plant cell reports,1998,17(5):410-414.
[6] STAMP J A,HENSHAW G G.Somatic embryogenesis in cassava[J].Zeitschrift für pflanzenphysiologie,1982,105(2):183-187.
[7] STAMP J A,HENSHAW G G.Secondary somatic embryogenesis and plant regeneration in cassava[J].Plant cell,tissue and organ culture,1987,10(3):227-233.
[8] SZABADOS L,HOYOS R,ROCA W.In vitro somatic embryogenesis and plant regeneration in cassava[J].Plant cell reports,1987,6(3):248-251.
[9] RAEMAKERS C J J M,AMATI M,STARITSKY G,et al.Cyclic somatic embryogenesis and plant regeneration in cassava[J].Annals of botany,1993,71(4):289-294.
[10] RAEMAKERS C J J M,BESSEMBINDER J J E,STARITSKY G,et al.Induction,germination and shoot development of somatic embryos in cassava[J].Plant cell,tissue and organ culture,1993,33(2):151-156.
[11] SAELIM L,PHANSIRI S,NETRPHAN S,et al.Optimization of in vitro cyclic somatic embryogenesis and regeneration of the Asian cultivars of cassava (Manihot esculenta Crantz) for genetic manipulation system[J].Global journal of biotechnology & biochemistry,2006,1(1):7-15.
[12] SUDARMONOWATI E,HENSHAW G G.The use of picloram and dicamba to induce somatic embryogenesis in cassava[J].Annales bogorienses,1996,4(1):27-34.
[13] RAEMAKERS C J J M,SOFIARI E,JACOBSEN E,et al.Regeneration and transformation of cassava[J].Euphytica,1997,96(1):153-161.
[14] SOFIARI E,RAEMAKERS C J J M,KANJU E,et al.Comparison of NAA and 2,4-D induced somatic embryogenesis in cassava[J].Plant cell,tissue and organ culture,1997,50(1):45-56.
[15] 馬國華,許秋生,羨蘊蘭.從木薯嫩葉直接誘導初生體細胞胚胎發(fā)生和芽的形成[J].植物學報,1998,40(6):503-507.
[16] 張紅巖,申乃坤,王溪森,等.木薯初生體細胞胚發(fā)生及植株再生的影響因素[J].廣西農(nóng)業(yè)科學,2010,41(9):882-885.
[17] MA G H,XU Q S.Induction of somatic embryogenesis and adventitious shoots from immature leaves of cassava[J].Plant cell,tissue and organ culture,2002,70(3):281-288.
[18] LIN H S,TOORN C V D,RAEMAKERS K J J M,et al.Development of a plant regeneration system based on friable embryogenic callus in the ornamental Alstroemeria[J].Plant cell reports,2000,19(5):529-534.
[19] TAYLOR N J,EDWARDS M,KIERNAN R J,et al.Development of friable embryogenic callus and embryogenic suspension culture systems in cassava (Manihot esculenta Crantz) [J].Nature biotechnology,1996,14(6):726-730.
[20] TAYLOR N J,MASONA M V,CARCAMO R,et al.Production of embryogenic tissues and regeneration of transgenic plants in cassava (Manihot esculenta Crantz) [J].Euphytica,2001,120(1):25-34.
[21] RAEMAKERS K,SCHREUDER M,PEREIRA I,et al.Progress made in FEC transformation of cassava[J].Euphytica,2001,120(1):15-24.
[22] 方佳敏,劉佳,唐克軒,等.根癌農(nóng)桿菌介導的木薯遺傳轉(zhuǎn)化條件的優(yōu)化[J].熱帶作物學報,2011,32(9):1697-1703.
[23] SHAHIN E A,SHEPARD J F.Cassava mesophyll protoplasts:Isolation,proliferation,and shoot formation[J].Plant science letters,1980,17(4):459-465.
[24] ANTHONY P,DAVEY M R,POWER J B,et al.An improved protocol for the culture of cassava leaf protoplasts[J].Plant cell,tissue and organ culture,1995,42(3):229-302.
[25] SOFIARI E,RAEMAKERS C J J M,BERGERVOET J E M,et al.Plant regeneration from protoplasts isolated from friable embroygenic callus of cassava[J].Plant cell reports,1998,18(1):159-165.
[26] 文峰,肖詩鑫,聶揚眉,等.木薯脆性胚性愈傷組織原生質(zhì)體培養(yǎng)與植株再生[J].中國農(nóng)業(yè)科學,2012,45(19):4050-4056.
[27] KYOZUKA J,OTOO E,SHIMAMOTO K.Plant regeneration from protoplasts of indica rice:Genotypic differences in culture response[J].Theoretical and applied genetics,1988,76(6):887-890.
[28] RHODES C A,PIERCE D A,METTLER I J,et al.Genetically transformed maize plants from protoplasts[J].Science,1988,240(4849):204-207.
[29] CHEN W H,DAVEY M R,POWER J B,et al.Sugarcane protoplasts:Factors affecting division and plant regeneration[J].Plant cell reports,1988,7(5):344-347.
[30] CHANG Y F,WANG W C,WARFIELD C W,et al.Plant regeneration from protoplasts isolated from longterm cell cultures of wheat (Triticum aestivum L.) [J].Plant cell reports,1991,9(11):611-614.
[31] MA Q X,ZHOU W Z,ZHANG P.Transition from somatic embryo to friable embryogenic callus in cassava:Dynamic changes in cellular structure,physiological status,and gene expression profiles[J].Frontiers in plant science,2015,6:824.
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