陸健康++艾明艷++李述剛
摘要:在獲得高特異性抗CPPU單克隆抗體的基礎(chǔ)上,采用活性酯法將CPPU-H1與BSA、CPPU-H2與OVA偶聯(lián)制備得到免疫抗原CPPU-H1-BSA和包被抗原CPPU-H2-OVA;用CPPU-H1-BSA對(duì)小鼠進(jìn)行免疫,通過(guò)雜交瘤技術(shù)篩選獲得了1株抗CPPU單克隆抗體的雜交瘤細(xì)胞株B7B6 24。經(jīng)過(guò)體內(nèi)誘生腹水法制備抗體,測(cè)定抗體亞類(lèi)為IgG1,效價(jià)為1∶32 000。通過(guò)對(duì)試驗(yàn)條件的優(yōu)化,建立了一種檢測(cè)CPPU的方法,該方法IC50值為3.89 ng/mL;該抗體與四螨嗪、赤霉素、噻苯隆幾乎不存在交叉反應(yīng);利用所建立的間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA法對(duì)葡萄樣品進(jìn)行檢測(cè),平均加標(biāo)回收率為91.4%~112.4%,變異系數(shù)為5.9%~14.4%。本研究所建立的間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA方法具有低成本、高準(zhǔn)確性和高靈敏度的特點(diǎn),可以用來(lái)對(duì)葡萄中的CPPU殘留情況進(jìn)行檢測(cè)。
關(guān)鍵詞:氯吡脲;單克隆抗體;間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA
中圖分類(lèi)號(hào):S482.8 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A 文章編號(hào):0439-8114(2016)21-5584-04
DOI:10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2016.21.037
Preparation of Anti-CPPU Monoclonal Antibody and Development of
an Indirect Competitive ELISA Method
LU Jian-kang,Ai Ming-yan,LI Shu-gang
(Xinjiang Production & Construction Group Key Laboratory of aricultural Products Processing in Xinjiang South,
Tarim University,Alaer 843300,Xinjiang,China)
Abstract: A method to rapidly detect forchlorfenuron(CPPU) was developed by Indirect competitive ELISA on the basis of obtaining the Anti-CPPU Monoclonal Antibody with high specificity. CPPU-H1-BSA(immunogenic antigen) and CPPU-H2-OVA(coating antigen) were prepared by coupling with CPPU-H1 and CPPU-H2 with carrier proteins using active ester method,respectively. Through a hybridoma cell line,a strain of cells B7B6 24 which can produce anti-CPPU on monoclonal antibody was obtained. Ascites was produced by mice vivo culcure,the monoclonal antibody characterized by IgG1 isotype,and the ELISA titer of ascites was 1∶32 000. A indirect competitive ELISA was developed for the detection of CPPU by optimizing experimental conditions. The IC50 value was 3.89 ng/mL,it did not react with clofentezine, gibberellic acid,thidiazuron. The average recovery rate for CPPU from grape samples were ranged from 91.4% to 112.4% and the variation coefficient were between 5.9%~14.4%. The indirect competitive ELISA allows for accurate,sensitive,and low-cost for determination of CPPU residues in grape.
Key words: CPPU; monoclonal antibody; indirect competitive ELISA
氯吡脲(forchlorfenuron)又名吡效隆、CPPU,化學(xué)名稱(chēng)為1-(2-氯-4-吡啶基)-3-苯基脲,是膨大劑的主要成分,具有促進(jìn)細(xì)胞增大、分化、分裂、防止落花以及提高座果率等多方面作用[1]。CPPU在西瓜[2]、葡萄[3]、獼猴桃[4,5]、菠蘿[6]等瓜果類(lèi)植物中的應(yīng)用研究較多。在CPPU的實(shí)際使用過(guò)程中,存在著片面追求大果形以及高產(chǎn)量而高劑量、高濃度噴灑的問(wèn)題,從而導(dǎo)致各類(lèi)瓜果貯藏期縮短以及營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)和風(fēng)味物質(zhì)降低[7]。此外,殘留于瓜果以及其他食品中的CPPU還可能對(duì)人類(lèi)以及環(huán)境中的其他生物造成潛在的影響,如美國(guó)環(huán)境保護(hù)署指出人類(lèi)長(zhǎng)期接觸CPPU會(huì)導(dǎo)致體內(nèi)蛋白質(zhì)代謝紊亂以及體形消瘦等問(wèn)題[8]、高劑量CPPU可能誘導(dǎo)雌性大鼠青春期啟動(dòng)延遲[9]等。因此,中國(guó)、美國(guó)、日本以及歐盟等對(duì)CPPU的最大殘留量作出了嚴(yán)格的限定,中國(guó)規(guī)定西瓜和黃瓜中的最大殘留量為0.1 mg/kg,獼猴桃和葡萄中的最大殘留量為0.05 mg/kg。
目前,對(duì)于CPPU殘留的檢測(cè)方法較多,主要包括液相色譜法[10-13]、液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法[14,15]、近紅外高光譜成像法[16]以及免疫分析方法[17,18]等。免疫學(xué)分析方法具有簡(jiǎn)便、快速、高通量、靈敏以及成本低等諸多優(yōu)點(diǎn),適合于大批量樣品的現(xiàn)場(chǎng)檢測(cè)。本研究使用單克隆抗體技術(shù),制備抗CPPU的高特異性和靈敏度的單克隆抗體,并在此基礎(chǔ)上建立了果品中快速檢測(cè)CPPU的間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA法,為后續(xù)開(kāi)發(fā)ELISA試劑盒奠定基礎(chǔ)。
1 材料與方法
1.1 材料與儀器
1.1.1 試劑 牛血清白蛋白(BSA)、卵白蛋白(OVA)、N-羥基硫代琥珀酰亞胺、二環(huán)己基碳二亞胺、弗氏完全佐劑、弗氏不完全佐劑,購(gòu)自Sigma公司;單克隆抗體亞型鑒定試劑盒,購(gòu)自Thermo公司;CPPU等農(nóng)藥標(biāo)準(zhǔn)品,購(gòu)自山東西亞化學(xué)工業(yè)有限公司;其他化學(xué)試劑均為分析純。
1.1.2 細(xì)胞株及試驗(yàn)動(dòng)物 鼠骨髓瘤細(xì)胞SP2/0由深圳市易瑞生物技術(shù)有限公司提供;清潔級(jí)Balb/c純種雌性小鼠及普通級(jí)雌性昆明鼠由廣東省醫(yī)學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心提供。
1.1.3 儀器與設(shè)備 WD-2102A型酶標(biāo)儀(北京市六一儀器廠(chǎng));FA/JA2004N型電子天平(上海精密科學(xué)儀器有限公司);TDL-5-A(上海安亭科學(xué)儀器廠(chǎng));LHS-150 SC型恒溫恒濕培養(yǎng)箱(上海一恒科學(xué)儀器有限公司)。
1.2 人工抗原的合成與鑒定
按照文獻(xiàn)[17]的方法稍作修改后合成N-(4-羧基苯基)-N-3-氯吡啶基-2-甲酰二胺(CPPU-H1)和N-(4-乙酸苯基)-N-3-氯吡啶基-2-甲酰二胺人工半抗原(CPPU-H2),經(jīng)質(zhì)譜鑒定為目標(biāo)產(chǎn)物。然后采用活性酯法合成CPPU完全抗原,具體操作如下:稱(chēng)取0.1 mmol CPPU-H1(或CPPU-H2)溶解于0.5 mL二甲基甲酰胺中,加入0.2 mmol N-羥基琥珀的酰亞胺和0.2 mmol二環(huán)己基碳二亞胺,4 ℃條件下避光攪拌反應(yīng)過(guò)夜后4 000 r/min離心10 min,離心后的上清液為A液。稱(chēng)取6 mmol BSA(或6 mmol OVA)溶于適量0.01 mmol/L磷酸鹽緩沖液(PBS,pH 7.4)中,攪拌溶解為B液;4 ℃攪拌條件下,將A液逐滴加入到B液中,4 ℃攪拌反應(yīng)過(guò)夜;將反應(yīng)液轉(zhuǎn)入透析袋中,4 ℃攪拌條件下透析3 d,每天更換透析液3次;將透析液分裝后置于-20 ℃條件下保存?zhèn)溆谩?/p>
合成的人工抗原CPPU-H1-BSA、CPPU-H1、BSA、CPPU-H2-OVA、CPPU-H2以及OVA在波長(zhǎng)200~360 nm范圍內(nèi)分別進(jìn)行紫外光譜掃描,通過(guò)比對(duì)掃描曲線(xiàn)判斷是否合成成功。
1.3 單克隆抗體的制備
1.3.1 動(dòng)物免疫 將制備好的免疫抗原CPPU-H2-OVA與等量弗氏完全佐劑乳化完全后對(duì)6~8周齡雌性Balb/c小鼠進(jìn)行皮下多點(diǎn)免疫,100 μg/只。二、三免時(shí)采用弗氏不完全佐劑進(jìn)行乳化,皮下多點(diǎn)以及腹腔免疫,100 μg/只,免疫間隔為2周。第4次免疫后的第7天從小鼠尾部取血測(cè)定抗體效價(jià)。細(xì)胞融合前3 d腹腔免疫CPPU-H2-OVA,50 μg/只以加強(qiáng)免疫。
1.3.2 細(xì)胞融合及篩選 取抗血清效價(jià)好以及靈敏度高的小鼠的脾細(xì)胞與SP2/0骨髓瘤細(xì)胞進(jìn)行細(xì)胞融合,然后先后采用含HAT和HT的培養(yǎng)液對(duì)融合后的細(xì)胞進(jìn)行培養(yǎng)篩選;待細(xì)胞培養(yǎng)板中的細(xì)胞貼壁長(zhǎng)滿(mǎn)1/2~1/3的小孔底部后,取雜交瘤細(xì)胞上清液進(jìn)行間接ELISA檢測(cè)。取呈現(xiàn)強(qiáng)陽(yáng)性的亞克隆進(jìn)行擴(kuò)大培養(yǎng),如此反復(fù)2~4次,待所克隆孔中上清液中的抗體陽(yáng)性率為100%時(shí),進(jìn)行擴(kuò)大培養(yǎng),建株后分裝、凍存。
1.3.3 腹水的制備及純化 Balb/c雌性小鼠提前1周腹腔注射0.5 mL降植烷;取凍存細(xì)胞株,復(fù)蘇后,大量培養(yǎng)繁殖,收集細(xì)胞,用不完全培養(yǎng)基洗滌2次后,再用10 mL不完全培養(yǎng)基懸浮,計(jì)數(shù);每只小鼠腹腔注射1.5×107個(gè)單克隆細(xì)胞,待小鼠腹部明顯膨大時(shí)采集腹水,1 000 r/min離心10 min,去除上層脂肪和下層纖維蛋白及細(xì)胞,收集中層即為小鼠腹水,取部分腹水利用ELISA法測(cè)定其效價(jià),其余分裝后于-70 ℃凍存?zhèn)溆谩?/p>
1.4 單克隆抗體的鑒定
1.4.1 抗體效價(jià)的測(cè)定 采用間接ELISA法測(cè)定單克隆抗體的效價(jià),分別以不同濃度的CPPU-H1-BSA包被抗原包被酶標(biāo)板,將單克隆抗體從1∶2 000開(kāi)始倍比稀釋作為1抗,以HRP-羊抗鼠IgG作為二抗,進(jìn)行間接ELISA法測(cè)定,選擇OD450 nm為1.0左右的抗體最高稀釋倍數(shù)作為單克隆抗體的效價(jià)。
1.4.2 抗體的亞型鑒定 采用間接ELISA法對(duì)單克隆抗體的亞型進(jìn)行鑒定。
1.5 間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA法的建立
1.5.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)的繪制 根據(jù)間接ELISA棋盤(pán)方陣滴定法確定的最佳抗原包被濃度以及抗體稀釋倍數(shù)進(jìn)行間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA試驗(yàn),在此過(guò)程中確定最佳競(jìng)爭(zhēng)時(shí)間、封閉時(shí)間、酶標(biāo)二抗反應(yīng)時(shí)間以及競(jìng)爭(zhēng)模式。根據(jù)最佳反應(yīng)條件,用甲醇將競(jìng)爭(zhēng)抗原濃度稀釋至0.1、0.3、0.9、2.7、8.1、24.3、72.9 ng/mL進(jìn)行間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA試驗(yàn)。以CPPU的濃度對(duì)數(shù)為橫坐標(biāo)、競(jìng)爭(zhēng)抑制率為縱坐標(biāo)建立間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn),計(jì)算CPPU的IC50值。
1.5.2 單克隆抗體特異性分析 選擇四螨嗪、赤霉素、噻苯隆分別代替CPPU作為競(jìng)爭(zhēng)抗原,采用間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA法建立標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn),并分別計(jì)算IC50值,按公式計(jì)算交叉反應(yīng)率CR(%):CR=(IC50 CPPU/IC50其他藥物)×100%。
1.6 加標(biāo)回收率測(cè)定
將市場(chǎng)上購(gòu)買(mǎi)的葡萄經(jīng)充分破碎后,準(zhǔn)確稱(chēng)取5.0 g葡萄漿樣品,分別加入一定量的CPPU標(biāo)準(zhǔn)溶液,使其濃度分別為10、20、50 ng/g,每個(gè)濃度3個(gè)重復(fù);分別往每個(gè)樣品中加入15 mL乙腈和3 g氯化鈉,振蕩提取10 min后,4 500 r/min離心10 min,靜置20 min,取5 mL上清液氮?dú)獯蹈珊笥眉状紡?fù)溶后用于ELISA檢測(cè),計(jì)算相應(yīng)的加標(biāo)回收率。
2 結(jié)果與分析
2.1 CPPU完全抗原的鑒定
在波長(zhǎng)為200~360 nm范圍內(nèi),對(duì)半抗原、載體蛋白以及人工抗原的紫外吸收特性進(jìn)行分析,以鑒定完全抗原是否合成成功。由圖1可知,CPPU-H1-BSA在280 nm處有BSA的特征吸收峰,在316 nm以及260 nm處存在CPPU-H1的2個(gè)特征吸收峰,說(shuō)明CPPU-H1-BSA偶聯(lián)成功;OVA在279 nm處存在特征吸收峰,CPPU-H2在291 nm處存在特征吸收峰,而CPPU-H2-OVA的特征吸收峰在283 nm處,證明CPPU-H2-OVA偶聯(lián)成功。
2.2 抗血清效果分析
抗血清的效價(jià)與抗血清中特異性抗體濃度成正比,而活化的B淋巴細(xì)胞是抗體分泌細(xì)胞,因此,效價(jià)越高則活化的B淋巴細(xì)胞越多。在融合時(shí)選用效價(jià)高的小鼠脾細(xì)胞有利于融合出針對(duì)目標(biāo)抗原的雜交瘤細(xì)胞。采用棋盤(pán)方陣滴定法確定最佳的包被抗原濃度為2 μg/mL,其中3號(hào)小鼠抗血清效價(jià)最高。分別采用濃度為0、500 ng/mL的CPPU作為競(jìng)爭(zhēng)抗原,對(duì)不同小鼠的抗血清進(jìn)行間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA檢測(cè),記錄OD450 nm并計(jì)算抑制率,其結(jié)果如表1所示。從表1中可以看出在競(jìng)爭(zhēng)抗原CPPU濃度達(dá)到500 ng/mL時(shí),3號(hào)小鼠抗血清的抑制率超過(guò)90%,因此,選用3號(hào)小鼠的脾細(xì)胞進(jìn)行細(xì)胞融合。
2.3 單克隆抗體細(xì)胞篩選
經(jīng)過(guò)細(xì)胞融合、篩選,得到了1株穩(wěn)定分泌抗CPPU抗體的雜交瘤細(xì)胞B7B6 24。經(jīng)過(guò)多次傳代、凍存和復(fù)蘇,該株雜交瘤細(xì)胞能保持很好的抗體分泌能力且效價(jià)穩(wěn)定。
2.4 單克隆抗體亞型鑒定
經(jīng)降植烷處理后的小鼠腹腔注射B7B6 24雜交瘤細(xì)胞,10~15 d后采集腹水。以2 μg/mL包被抗原包被酶標(biāo)板,采用間接ELISA方法檢測(cè)腹水抗體的亞型,檢測(cè)結(jié)果顯示B7B6 24的抗體亞型為IgG1。采用間接ELISA方法測(cè)定單克隆抗體B7B6 24的腹水效價(jià)為1∶32 000。
2.5 間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA法的建立
2.5.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)繪制 根據(jù)間接ELISA棋盤(pán)方陣滴定法確定的最佳抗原包被濃度以及抗體稀釋倍數(shù)進(jìn)行間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA試驗(yàn),在此過(guò)程中確定最佳競(jìng)爭(zhēng)時(shí)間、封閉時(shí)間、酶標(biāo)二抗反應(yīng)時(shí)間以及競(jìng)爭(zhēng)模式。4 ℃包被12 h;抗原最佳包被濃度2 μg/mL,單克隆抗體稀釋倍數(shù)為1∶32 000;5%脫脂奶粉封閉120 min;板內(nèi)競(jìng)爭(zhēng)反應(yīng)模式;37 ℃競(jìng)爭(zhēng)反應(yīng)90 min;酶標(biāo)二抗?jié)舛葹?∶4 000;酶標(biāo)二抗反應(yīng)時(shí)間為60 min。
由圖2可知,線(xiàn)性回歸方程為y=-0.316 3Ln(x)+0.686 5(R2=0.990 1),其IC50值為3.89 ng/mL。
2.5.2 單克隆抗體特異性分析 通過(guò)間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA法檢測(cè),表明B7B6 24雜交瘤細(xì)胞所產(chǎn)生的單克隆抗體與四螨嗪、赤霉素、噻苯隆的交叉反應(yīng)率均小于0.39%(表2),表明所制備的單克隆抗體對(duì)CPPU具有高度的特異性。
2.6 加標(biāo)回收率
在葡萄樣品中加入3種不同濃度的CPPU標(biāo)準(zhǔn)品溶液并進(jìn)行提取,采用間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA法進(jìn)行測(cè)定樣品加標(biāo)回收率,檢測(cè)結(jié)果如表3所示。有結(jié)果可知,樣品平均加標(biāo)回收率在91.4%~112.4%之間,變異系數(shù)在5.9%~14.4%之間(表3),表明該方法具有較好的準(zhǔn)確性和靈敏度。
3 小結(jié)與討論
以活性酯法制備的CPPU-H1-OVA為免疫抗原免疫小鼠,獲得的小鼠脾細(xì)胞與SP2/0鼠骨髓瘤細(xì)胞融合,經(jīng)篩選,得到了一株穩(wěn)定分泌抗CPPU抗體的雜交瘤細(xì)胞B7B6 24;將其注射入小鼠腹腔,獲得腹水,經(jīng)鑒定腹水抗體亞型為IgG1,效價(jià)為1∶32 000;使用該抗體建立了間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA檢測(cè)方法,該方法中最佳包被條件為4 ℃包被12 h、抗原最佳包被濃度2 μg/mL、單克隆抗體稀釋倍數(shù)為1∶32 000、5%脫脂奶粉封閉120 min、采用板內(nèi)競(jìng)爭(zhēng)反應(yīng)模式37 ℃競(jìng)爭(zhēng)反應(yīng)90 min、酶標(biāo)二抗?jié)舛葹?∶4 000、酶標(biāo)二抗反應(yīng)時(shí)間為60 min,IC50值可以達(dá)到3.89 ng/mL;抗體與其它幾種農(nóng)藥交叉反應(yīng)很??;平均加標(biāo)回收率為91.4%~112.4%,變異系數(shù)為5.9%~14.4%。因此可以運(yùn)用本研究所建立的間接競(jìng)爭(zhēng)ELISA方法對(duì)葡萄等果品中CPPU殘留量進(jìn)行初步檢測(cè)與篩選。
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