国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

腸道對共生微生物的免疫耐受機制

2017-03-16 17:35樂佳清王佳堃浙江大學奶業(yè)科學研究所杭州310058
動物營養(yǎng)學報 2017年5期
關(guān)鍵詞:免疫耐受免疫系統(tǒng)共生

樂佳清 王佳堃(浙江大學奶業(yè)科學研究所,杭州310058)

腸道對共生微生物的免疫耐受機制

樂佳清 王佳堃*
(浙江大學奶業(yè)科學研究所,杭州310058)

動物體腸道中存在數(shù)以億計的微生物,這些共生的微生物能輔助動物體消化代謝和維持腸道穩(wěn)態(tài)。但微生物及其代謝產(chǎn)物同樣可以作為抗原影響腸道的正常功能。正常情況下,腸道免疫系統(tǒng)能準確辨識共生微生物及其代謝產(chǎn)物,對其做出免疫耐受,維持內(nèi)環(huán)境穩(wěn)態(tài);此外,腸道免疫系統(tǒng)還可以避免由于對無害抗原產(chǎn)生反應而造成免疫資源的浪費。免疫耐受已被廣泛應用于臨床醫(yī)學,用于減少器官移植后排斥現(xiàn)象的發(fā)生,降低子宮對胎兒的免疫排斥反應等。但就如何利用免疫耐受機制減緩反芻動物瘤胃酸中毒,提高瘤胃微生物蛋白質(zhì)的合成和利用效率,完善益生素的飼用規(guī)程仍鮮有報道。為此,本綜述就免疫耐受的一般概念和應用、腸道免疫系統(tǒng)的組成和功能、腸道共生微生物的免疫原性以及腸道免疫耐受的形成機制進行了闡述。

腸道共生微生物;腸道免疫系統(tǒng);腸道免疫耐受;作用機制

微生物是動物消化道內(nèi)不可或缺的組成部分。經(jīng)過長期的進化,動物體與微生物形成了一定意義上的互利共生和相互制約。微生物能輔助動物機體消化代謝、抑制病原菌定植和維持消化道穩(wěn)態(tài)。同時微生物自身如細菌DNA和其代謝產(chǎn)物內(nèi)毒素等含有的大量免疫刺激物,可以影響消化道的正常功能,甚至這些免疫刺激物能夠穿過消化道屏障,轉(zhuǎn)移到不同部位,致其他器官感染發(fā)生病變[1]。消化道作為動物機體接觸外界環(huán)境中抗原物質(zhì)最廣泛的部位,正常情況下,一方面需要對無害的抗原如食物、共生微生物等做出免疫耐受,即具有免疫活性的細胞接觸抗原性物質(zhì)時所表現(xiàn)的一種無應答狀態(tài),避免由于對無害抗原起反應而浪費免疫資源[2];另一方面對病原體產(chǎn)生免疫排斥與清除。了解腸道如何準確識別不同種類的物質(zhì)并產(chǎn)生2種不同的免疫反應,有助于改進益生素的應用策略;選擇性地改善反芻動物瘤胃微生物蛋白質(zhì)的組成,減少免疫消耗。為此,本文就免疫耐受的一般概念和應用、腸道免疫系統(tǒng)的組成和功能、腸道共生微生物的免疫原性以及腸道免疫耐受的形成機制進行闡述。

1 免疫耐受的一般概念和應用

免疫耐受是指具有抗原特異性應答功能的T細胞和B細胞,在受抗原刺激后,不能被激活,不能產(chǎn)生特異性的免疫效應細胞和抗體,從而不能執(zhí)行特異性免疫應答的現(xiàn)象[3]。引起免疫耐受的抗原被稱為耐受原。免疫耐受分為天然免疫耐受和獲得性免疫耐受。自身組織的抗原可以引起天然免疫耐受,而病原微生物等非自身的抗原,在一定條件下可以成為耐受原引起獲得性免疫耐受[4]。免疫耐受也可以通過人為模擬天然免疫的方式進行人工誘導[4]。由于免疫耐受具有記憶性,機體在對某一抗原已形成免疫耐受的情況下,再次接觸同一抗原時,會對該抗原產(chǎn)生特異性的無應答反應,但對其他抗原仍然有免疫應答的能力[5],免疫耐受被廣泛應用于臨床醫(yī)學。在器官移植前,通過誘導受體對供體(抗原)產(chǎn)生免疫耐受以避免器官移植后產(chǎn)生排斥現(xiàn)象[6]。Scandling等[6]在進行主要組織相容性抗原(humen leukocyte antigen,HLA)相符的腎移植時,對受試者進行供者骨髓的移植,其結(jié)果顯示超過1/2的患者都不再需要服用臨床常規(guī)的免疫抑制劑。Correale等[7]通過對多發(fā)性硬化癥(multiple sclerosis,MS)患者進行蠕蟲感染后其MS的綜合征癥狀出現(xiàn)緩解,而再進行抗蠕蟲感染后MS復發(fā)。免疫耐受在防治自然流產(chǎn)和胎兒宮內(nèi)生長受限等癥狀中也具有重要作用。Arck等[8]的研究表明,妊娠早期,胎兒的絨毛外滋養(yǎng)細胞(extravillous trophoblast,EVT)會侵入蛻膜組織,和母體蛻膜免疫細胞(decidual immune cells,DIC)等直接接觸,建立母體和胎兒的精細交互對話。這種交互對話可以促進建立母體和胎兒的免疫耐受微環(huán)境,使胎兒在子宮內(nèi)正常生長發(fā)育。免疫耐受在動物的飼養(yǎng)中同樣具有重要作用。王泳翔等[9]研究發(fā)現(xiàn),奶牛妊娠期口服孕酮可以誘導外周血中調(diào)節(jié)性T細胞增加,進而降低子宮對胎兒的免疫排斥反應。幼齡動物補飼益生素等生物添加劑效果優(yōu)于成年動物,其深層機制也離不開免疫耐受這一理論。

2 腸道免疫系統(tǒng)的組成和功能

腸道免疫系統(tǒng)是機體免疫系統(tǒng)的一部分,普遍存在于腸道黏膜并直接接觸外部環(huán)境中的抗原。腸道免疫系統(tǒng)不僅在識別和清除病原體的過程中發(fā)揮著重要作用,也是對食物、共生微生物等有益物質(zhì)形成免疫耐受的重要部位[10]。腸道免疫系統(tǒng)主要由腸道相關(guān)淋巴組織(gut-associated lymphoid tissue,GALT)構(gòu)成。從形態(tài)和功能方面可以將GALT分為2個部位,首先是由黏膜淋巴結(jié)組成的GALT,主要包括派氏集合淋巴小結(jié)(Peyer’s patches,PP結(jié))和腸系膜淋巴結(jié)(mesenteric lymph nodes,MLN),是免疫反應的誘導部位;其次是由廣泛分布在黏膜上皮和固有層的白細胞組成的GALT,主要包括固有層單核細胞和上皮內(nèi)淋巴細胞(intraepithelial lymphocyte,IEL),是免疫反應的效應部位[11]。

PP結(jié)位于小腸的黏膜下層,含有大量的B細胞、T細胞、巨噬細胞(macrophages,M?細胞)和樹突狀細胞(dendritic cell,DC細胞)。PP結(jié)和腸腔間由濾泡相關(guān)上皮單細胞(follicle-associated epithelium,F(xiàn)AE)相隔分開。FAE和黏膜中的上皮細胞不同,它的消化酶含量較低,刷狀緣不明顯以及不含聚合物免疫球蛋白(immunoglobulin,Ig)A的受體[11]。FAE最顯著的特點是含有微褶曲(microfold,M)細胞。M細胞具有較高的跨細胞轉(zhuǎn)運活性,因此一般認為它是腸道免疫系統(tǒng)的起始位點[11]。

MLN是機體內(nèi)最大的淋巴結(jié),其發(fā)育和PP結(jié)等不同,不受大部分細胞因子的影響,如腫瘤壞死因子(tumor necrosis factor,TNF)和受體等。現(xiàn)有的研究認為MLN可能是一個外部環(huán)境和黏膜再循環(huán)通路之間的十字路口[11]。

固有層中滲透了很多的淋巴細胞和骨髓細胞。如T細胞、B細胞、M?細胞、中性粒細胞、其他粒細胞和肥大細胞。這些細胞在調(diào)控免疫反應中都具有重要作用。

IEL主要是CD3+T細胞,其次還包括分泌型免疫球蛋白A(SIgA)+ B細胞和自然殺傷細胞(natural killer cell,NK細胞)。這些細胞可通過穿孔素、顆粒酶和Fas受體等消滅入侵的病原體和體內(nèi)變性的細胞。此外,這些細胞也可通過分泌白細胞介素(interleukin,IL)-22、TNF-2α、轉(zhuǎn)化生長因子-β(transforming growth factor-β,TGF-β)等來調(diào)節(jié)其他淋巴細胞與上皮細胞,實現(xiàn)免疫功能[2]。固有層淋巴細胞(LPL)主要包括CD4+T細胞和SIgA+ B細胞。T細胞主要調(diào)節(jié)免疫反應,能分泌IL-10和TGF-β等下調(diào)免疫反應,也可影響B(tài)細胞產(chǎn)生SIgA[2]。B細胞則是通過分泌SIgA發(fā)揮免疫功能。SIgA可以和抗原發(fā)生特異性結(jié)合,阻止抗原入侵并破壞黏膜屏障。

3 腸道共生微生物的免疫原性

動物體腸道中存在數(shù)量眾多的微生物,這群微生物寄居在腸道中,與動物體形成了一定意義上的互利共生和相互制約。這些共生微生物可以作為抗原刺激腸道中特定的免疫細胞,使其活化、增殖和分化,最終產(chǎn)生特異性抗體或者致敏淋巴細胞誘發(fā)免疫應答。這種可以誘導免疫應答的特性,被稱為免疫原性[12]。共生微生物自身和代謝產(chǎn)物含有大量免疫原性物質(zhì)。首先,共生微生物中含有較多的核酸,其大多無免疫原性,但當其與蛋白質(zhì)結(jié)合形成核蛋白后則具有免疫原性。其次,共生微生物中數(shù)量龐大的細菌細胞壁含有的肽聚糖(peptidoglycan)、磷壁酸(teichoic-acid)和脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)等組分,其中部分組分具有免疫原性。已有研究表明,革蘭氏陰性菌的細胞壁組分LPS作為一種內(nèi)毒素(endotoxicity)具有強的免疫原性,當其大量作用于機體的腸道等組織時會引起免疫反應,從而引發(fā)炎癥等疾病[13]。此外,共生微生物經(jīng)過消化等代謝作用后產(chǎn)生的大分子蛋白質(zhì)、多糖和小分子多肽等同樣具有免疫原性。

然而,由于腸道微生物區(qū)系的建立過程與免疫系統(tǒng)的完善過程基本同步,動物體出生時都是無菌的,但在出生后的極短時間內(nèi)微生物在腸道內(nèi)定植,由于新生動物的免疫系統(tǒng)調(diào)節(jié)網(wǎng)絡(luò)較為脆弱,所以微生物等抗原接觸后,極易導致終生或長期的耐受性,即對微生物產(chǎn)生特異性的無應答反應[14]。正常情況下,由于腸道對共生微生物免疫耐受的作用,腸道中存在著的大量共生微生物不會引起過度的免疫反應。因此,研究和了解腸道對共生微生物的免疫耐受機制可以將其有效應用于醫(yī)學防治疾病和動物營養(yǎng)等,具有重要的應用價值。

4 腸道對共生微生物免疫耐受的機制

腸道對共生微生物的免疫耐受機制也分為天然性免疫耐受機制和獲得性免疫耐受機制。

腸道由于缺乏識別某些微生物抗原的受體或腸道細胞表面存在抑制性受體和結(jié)構(gòu)均可使腸道對共生微生物產(chǎn)生天然性免疫耐受。目前研究已發(fā)現(xiàn)PP結(jié)中的M?細胞在腸道對共生微生物形成天然免疫耐受中具有重要作用。

腸道內(nèi)成熟的T細胞和B細胞遇到共生微生物等抗原可以形成獲得性免疫耐受。獲得性免疫耐受有多種類型。首先,成熟T細胞或B細胞的活化需要2種或以上的信號進行啟動,而當部分信號因子被抑制時,T細胞或B細胞就不能被活化,從而處于無反應狀態(tài),形成獲得性免疫耐受[15]。DC細胞、Toll樣受體(Toll-like receptors,TLR)和過氧化物酶體增殖物激活受體(peroxisome proliferator-activated receptor,PPAR)γ均參與了這一類型免疫耐受的形成。其次,當共生微生物等無害抗原由于某些原因不與免疫細胞接觸,處于被忽視狀態(tài),從而可以形成免疫耐受[3]。共生微生物自身特性和腸型堿性磷酸酶(intestinal alkaline phosphatase,ALPI)在這一免疫耐受形成中具有重要作用。再次,通過T-B細胞或T-T細胞之間的FasL(CD178)和Fas(CD95)的結(jié)合,可以啟動活化誘導的細胞死亡(activation induced cell death,AICD)即細胞凋亡(cell apoptosis),使對共生微生物等無害抗原具有反應性的T細胞或B細胞被消除[5,16]。其中,F(xiàn)asL和Fas的表達量受許多因素的控制,如干擾素和IL等。有研究認為IL-2和IL-12含量的減少會使Fas介導的抗原特異性T細胞細胞凋亡增強[17]。最后是免疫調(diào)節(jié)細胞的作用,如調(diào)節(jié)性T細胞(regulatory cells,Treg細胞)分泌抑制性細胞因子形成免疫耐受[18]。

以下是對M?細胞、DC細胞、TLR、PPAR-γ、共生微生物自身特性、ALPI和Treg細胞參與腸道對共生微生物的免疫耐受機制作具體的闡述。

4.1 M?細胞參與的免疫耐受機制

M?細胞屬于白細胞的一種,可以吞噬和消化細胞碎片、微生物、癌細胞和外來物質(zhì)等,在腸道中廣泛存在。目前的研究認為M?細胞至少存在2種亞型,M1型經(jīng)典M?細胞和M2型非經(jīng)典M?細胞。M1型M?細胞被認為是通過分泌干擾素-γ(IFN-γ)和LPS等被活化,參與促炎反應的調(diào)節(jié),在宿主防御致病菌和病毒感染中發(fā)揮重要作用。M1型M?細胞可以促進核轉(zhuǎn)錄因子-κB(NF-κB)依賴性炎性趨化因子的轉(zhuǎn)錄,分泌誘導型一氧化氮合酶(iNOS)和促炎因子如TNF、IL-6等,并誘導Th1反應,清除病原體[19]。M2型M?細胞則通過IL-4、IL-13和免疫復合物等被活化,根據(jù)被活化的方式不同從而又分為M2a、M2b、M2c。它們參與抗炎反應的調(diào)節(jié),也與組織重建、纖維化和腫瘤疾病等相關(guān)?;罨腗2型M?細胞不能產(chǎn)生TNF、IL-6等促炎因子,卻主要分泌抗炎因子IL-10。同時,M2型M?細胞誘導產(chǎn)生的信號會抑制M1型M?細胞產(chǎn)生趨化因子的過程。Mantovani等[20]的研究表明了IL-4和IL-10可以抑制依賴IFN-γ的炎性趨化因子CXCL10和CCL5等的產(chǎn)生;同時,IL-10可以抑制IκB激酶(IKK)的活性進而抑制NF-κB的活化。不同亞型的M?細胞對不同微生物的識別不同,因此,腸道共生微生物可能通過M2型M?細胞的識別進而形成免疫耐受。

M?細胞依靠其表面的多糖等受體進行識別從而發(fā)揮功能,而部分腸道共生微生物可能由于無相應多糖或多糖被細胞表面的糖蛋白覆蓋等原因,使巨噬細胞無法識別,進而形成免疫耐受[21-22]。

Smythies等[23]的試驗顯示,人類腸道中的M?細胞不表達某些受體,包括LPS的受體CD14,IgA Fc段(Fcα)的受體CD89和IL-2的受體CD25等。此外,腸道內(nèi)的M?細胞也不產(chǎn)生促炎細胞因子,包括IL-1、IL-6等,但在應對一系列炎癥刺激時保留吞噬和殺菌的功能。

4.2 DC細胞參與的免疫耐受機制

DC細胞既是一種抗原遞呈細胞,也是腸道黏膜免疫的調(diào)節(jié)因子。它在PP結(jié)中廣泛存在,主要有3種亞型。第1種表達CD11b分子,同時受到CD40L刺激或者被金黃色葡萄球菌殺死后會在體內(nèi)分泌IL-10;第2種表達CD8αα分子;第3種不表達CD11b分子,也不表達CD8α分子,被稱為雙陰性DC細胞[24]。DC細胞可以調(diào)節(jié)CD4+輔助性T細胞的多樣性。接觸抗原后,CD4+輔助性T細胞會分化成不同的類型,主要有3種類型,其中Th1細胞分泌IFN-γ,Th2細胞分泌IL-4和IL-13,Th3細胞分泌TGF-β,Tr-1細胞分泌IL-10以及Treg細胞[25]。Th3、Tr-1和Treg細胞可以抑制免疫反應,可能在免疫耐受中起到重要作用。不同亞型的DC細胞直接導致了CD4+輔助性T細胞分化反應的差異性。CD8α+型DC細胞分泌IL-12,并誘導了Th1細胞的反應。CD11b+型DC細胞則是分泌IL-10并誘導CD4+抗原特異性T細胞分泌大量的IL-10并分化成Treg細胞引起免疫耐受。

正常情況下,腸道中大部分DC細胞處于未成熟狀態(tài),未成熟的DC細胞表面只表達較低水平的主要組織相容性復合體(MHC)類分子,仍具有很強的抗原攝取和加工的能力[26]。但由于未成熟的DC細胞基本不表達CD40、CD80和CD86等可以激活T細胞的輔助分子而不能使T細胞活化,形成免疫耐受狀態(tài)。Dumitriu等[27]的研究顯示,腫瘤細胞的刺激能誘發(fā)DC細胞分泌TGF-β,并抑制成熟DC細胞表面CD86等的表達,使其轉(zhuǎn)變成未成熟的DC細胞。這種未成熟的DC細胞可以誘導初始CD4+T細胞分化為Treg細胞,從而促使機體對腫瘤細胞形成免疫耐受。

因此,腸道共生微生物一方面可能通過促進具有免疫耐受功能的未成熟DC細胞的活化間接影響CD4+輔助性T細胞的分化,進而抑制了參與免疫反應的T細胞或B細胞的活化,形成免疫耐受;另一方面腸道共生微生物可以刺激成熟DC細胞轉(zhuǎn)變成未成熟DC細胞以形成免疫耐受。

4.3 TLR參與的免疫耐受機制

腸道黏膜上皮層中的一些細胞如腸上皮細胞(intestinal epithelial cell,IEC)、DC細胞和M?細胞等表面都廣泛存在一種模式識別受體,即Toll樣受體家族(TLRs)。腸道免疫系統(tǒng)依靠TLRs識別病原相關(guān)分子模式(pathogen-associated molecular pattern,PAMP)進行物質(zhì)識別。不同的TLR可以識別不同PAMP,由此進行信號轉(zhuǎn)導。TLR1/TLR2復合體識別三酰基脂肽,TLR2/TLR6復合體識別二?;?,TLR3識別雙鏈RNA,TLR4/MD-2復合體識別LPS,TLR5識別鞭毛蛋白,TLR7識別咪唑喹啉,TLR8識別單鏈RNA,TLR9識別細菌的CpG DNA[28]。TLR識別PAMP后使TLR的胞內(nèi)區(qū)與連接蛋白(myeloid differentiation factor 88,MyD88)的C端TIR(Toll/IL-1R)域結(jié)合。之后MyD88和IL-1受體相關(guān)激酶(IL-1 receptor associated kinase,IRAK)的N端結(jié)合形成復合體,激發(fā)IRAK的自磷酸化。然后促使轉(zhuǎn)接蛋白TNF受體相關(guān)因子-6(TRAF-6)寡聚化,接著激活絲裂原活化蛋白3激酶(mitogen activated protein 3 kinase,MAP3K)中的轉(zhuǎn)化生長因子激酶1(transforming growth factor beta-activated kinase 1,TAK1),進而激活I(lǐng)KKα和IKKβ的活化,促使IκB蛋白磷酸化和被降解[29]。最終NF-κB游離釋放,同時轉(zhuǎn)位到核內(nèi),和其他轉(zhuǎn)錄因子一起誘發(fā)促炎因子IL-1、IL-8等的表達,調(diào)控免疫應答[28]。這是經(jīng)典的MyD88依賴型TLR信號傳導途徑。也有研究發(fā)現(xiàn)了MyD88非依賴型的信號傳導途徑,主要通過包含Toll/IL-1的接頭蛋白(TIRAP,也稱Mal)和含TIR結(jié)構(gòu)域的接頭蛋白誘導的IFN-β(TRIF,也稱TICAM-1)分別與TLR2或TLR4以及TLR3結(jié)合,介導NF-κB信號途徑。此外,MyD88依賴型和非依賴型信號傳導途徑都可以誘發(fā)CD80和CD86的表達,激發(fā)獲得性免疫應答。

然而最新的研究認為,TLR介導的信號傳導途徑中的某些變化同樣可以起到免疫耐受的作用。例如羅佳等[30]通過構(gòu)建腸道益生菌和病原菌鞭毛蛋白的系統(tǒng)發(fā)育樹,比對鞭毛蛋白的TLR5識別序列,發(fā)現(xiàn)TLR對共生微生物和病原微生物的識別位點不同。病原菌和益生菌不同的鞭毛蛋白識別區(qū)域可能是鞭毛細菌適應TLR5識別的結(jié)果,據(jù)此宿主能夠?qū)Σ≡鸵嫔M行區(qū)分。由此,TLR可能無法識別部分共生微生物,從而無法激活NF-κB通路,間接抑制了參與免疫反應的T細胞和B細胞的活化,進而形成免疫耐受。

另有研究表明,腸上皮細胞表面的某些TLR激活后,會抑制IκB降解,進而抑制NF-κB通路,間接抑制參與免疫反應的T細胞和B細胞的活化形成免疫耐受;而基底側(cè)的某些TLR激活則會促進IκB降解,從而激活NF-κB通路,進而促進免疫應答[1,31]。Jongdae等[32]通過對NF-κB的活化和cDNA的基因芯片分析,表明位于腸上皮細胞頂部及基底側(cè)的TLR9有不同的功能,對腸道的穩(wěn)態(tài)的維持具有重要作用。與之相對應的,有研究認為IEC表面缺少部分TLR,如TLR4等。Naik等[33]通過比較TLR2和TLR4在人外周血單個核細胞和人腸上皮細胞中的表達情況,發(fā)現(xiàn)TLR2在人外周血單個核細胞中的mRNA表達水平較高,同時也在人腸上皮細胞中表達;而TLR4則只在人外周血單個核細胞中表達。他們認為TLR4的缺乏與腸上皮細胞對LPS的低反應性有關(guān)。同時認為盡管TLR2在腸上皮細胞中存在,但其僅在腸道中細菌細胞壁達到病理性高濃度時被激活。

4.4 PPAR-γ參與的免疫耐受機制

過氧化酶體(peroxisome)在機體內(nèi)可以起到去除分子氧和氫過氧化物的作用,并與糖脂、膽酸、膽固醇合成和脂肪酸氧化相關(guān)。脂肪酸樣的化學物質(zhì)可以刺激過氧化物酶體的增殖,被稱為過氧化酶體增殖劑(peroxisome proliferation,PP)。激活過氧化酶體增殖劑的受體就是PPARs,其在不同的物種中存在3種亞型,分別為PPAR-α、PPAR-β/δ和PPAR-γ[34]。PPAR-α調(diào)節(jié)過氧化物酶體增殖劑的基因轉(zhuǎn)錄和肝臟過氧化物酶增生;PPAR-β在骨骼肌和棕色脂肪中調(diào)控脂肪酸的代謝[35]。目前對PPAR-γ的研究最為廣泛,PPAR-γ主要在脂肪組織、巨噬細胞和大腸等中表達。PPAR-γ與其配體15-脫氧-Δ12,14-前列腺素J2(15d-PGJ2)的相互作用可以調(diào)控免疫反應。研究表明PPAR-γ和15d-PGJ2的結(jié)合可以抑制LPS誘導活性蛋白-1(active protein-1,AP-1)、NF-κB、信號傳導及轉(zhuǎn)錄激活因子(signal transducer and activator of transcription 1,STAT1)等介導的轉(zhuǎn)錄通路。PPAR-γ與NF-κB間通過蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)的作用,抑制了NF-κB與炎癥因子基因啟動區(qū)的同源順式元件結(jié)合,抑制了NF-κB通路,間接抑制了參與免疫反應的T細胞和B細胞的活化,進而形成免疫耐受[36]。Knethen等[37]的研究發(fā)現(xiàn),15d-PGJ2與格列酮類能通過活化PPAR-γ從而抑制聚羥基脂肪酸酯(PHA)誘導的T細胞增殖及IL-2的基因表達,進而抑制活化的T細胞與IL-2啟動子中同源順式元件相結(jié)合?;罨腜PAR-γ可通過一系列的信號轉(zhuǎn)導抑制促炎因子TNF-α、IL-1、IL-2和IL-6的生成,具有抗炎癥作用。Kelly等[38]的研究指出,多形擬桿菌可以觸發(fā)PPAR-γ與NF-κB轉(zhuǎn)錄復合體上的REL-A亞基相結(jié)合,形成一個復雜的從細胞核到細胞質(zhì)的運輸,從而抑制NF-κB激活的促炎因子的轉(zhuǎn)錄表達。賴長華等[39]的試驗結(jié)果顯示,LPS刺激引起斷奶仔豬IL-1、IL-6和TNF-α mRNA表達量增加,同時PPAR-γmRNA的表達量也明顯增加。這些最新的研究結(jié)果表明共生微生物能通過誘導活化PPAR-γ抑制NF-κB的活性并間接抑制參與免疫反應的T細胞和B細胞的活化,實現(xiàn)對共生微生物的免疫耐受。

4.5 共生微生物自身特性參與的免疫耐受機制

共生微生物與致病菌存在很大差異,首先大部分共生微生物不能表達黏附因子和侵入因子,因此不能侵入腸道黏液層,同時小腸蠕動時可以將共生微生物沖離腸道表面,使其不能黏附在腸上皮表面,破壞上皮屏障,從而削弱了共生微生物定居到腸壁的能力[40]。其次腸道黏液層由黏蛋白組成,黏蛋白中的結(jié)合位點可以和腸上皮細胞上的結(jié)合位點形成競爭,阻止微生物黏附到腸上皮,促使在黏液層中的微生物在腸蠕動時被清除[25]。致病菌可以分泌黏蛋白酶分解黏蛋白以破壞腸道黏液層,而部分共生微生物不僅不分解黏蛋白還可以促進黏蛋白的分泌,增強腸上皮緊密連接的功能并且抑制某些致病菌的黏附。最后,研究已經(jīng)發(fā)現(xiàn)內(nèi)毒素是革蘭氏陰性菌細胞壁的主要組成成分,其本質(zhì)是LPS。LPS由o-特異性鏈、外核心、內(nèi)核心和類脂A構(gòu)成,類脂A是LPS的生物活性組分[41]。Golenbock等[41]的研究認為,部分共生微生物具有五聚化類脂A(pentacylated lipid A),而致病菌則是六聚化類脂A(hexacylated lipid A),這可能是共生微生物只表現(xiàn)低的內(nèi)毒素毒性的原因,因此共生微生物不會引起劇烈的炎癥反應。這些共生微生物的特性可以避免共生微生物與免疫細胞接觸,從而引起免疫耐受。

4.6 ALPI參與的免疫耐受機制

堿性磷酸酶(alkaline phosphatase,ALP)是廣泛分布于機體肝臟、腸和胎盤等組織中經(jīng)由肝臟向膽外排出的一種酶。這種酶能通過催化作用去除核酸分子5′端的磷酸基團,使DNA或RNA片段的5′-P端轉(zhuǎn)換成5′-OH[42]。它不是單一的酶,而是一組同工酶。ALP在牛、羊和小鼠等多種動物體內(nèi)同樣存在。ALPI是來自腸絨毛上皮與成纖維細胞的一種ALP。ALPI可以作用于革蘭氏陰性細菌細胞壁中LPS,去除LPS的磷酸基團,從而達到抑制LPS引起的炎癥反應的作用。Sayeda等[43]通過對有無添加牛小腸ALP的小鼠分別進行鼠傷寒沙門氏菌和艱難梭菌的感染,發(fā)現(xiàn)添加了牛小腸ALP的小鼠與不添加牛小腸ALP的小鼠相比,其鼠傷寒沙門氏菌和艱難梭菌的定植明顯減少,抑制了炎癥反應。ALPI可以降解共生微生物的抗原如LPS,避免這類抗原與免疫細胞接觸,從而引起免疫耐受。

4.7 Treg細胞參與的免疫耐受機制

Treg細胞即抑制性T細胞,由于其表達高水平的叉狀頭轉(zhuǎn)錄因子(FOXP3),它又被稱為CD4+CD25+、CD4+CD25high或者CD4+CD25highFOXP3+T細胞等。對比其他輔助性T細胞,在腸道免疫系統(tǒng)中Treg細胞分化優(yōu)勢明顯,在免疫耐受中起重要作用。它主要調(diào)控抗原提呈細胞的功能,其中參與調(diào)節(jié)的有細胞毒T淋巴細胞相關(guān)抗原4(CTLA-4)、CD39和淋巴細胞活化基因3(LAG-3)[4]。干擾Treg細胞會引發(fā)由Th1、Th2和Th17介導的類風濕性關(guān)節(jié)炎、過敏性炎癥、炎癥性腸病和Ⅰ型糖尿病的產(chǎn)生。Qureshi等[44]的研究表明,CTLA-4含有2個配體(CD80和CD86)以及反應受體CD28。Treg細胞通過和DC細胞表面的CD80、CD86結(jié)合,使CTLA-4經(jīng)胞吞作用從相對的細胞中捕獲2個配體,轉(zhuǎn)移后,這種共刺激的配體被表達CTLA-4的細胞降解移除,導致由CD28引起的T細胞活化通路受損,從而抑制T細胞的活化[44]。LAG-3則是一種由調(diào)節(jié)性T細胞表達的CD4相關(guān)的跨膜蛋白,可以與主要組織相容性復合體Ⅱ(MHC Ⅱ)結(jié)合。MHC Ⅱ由于丙烯腈的競爭發(fā)生交聯(lián)引發(fā)了由免疫受體酪氨酸激活基序(immunoreceptor tyrosine-based activation motif,ITAM)介導的抑制性信號通路,包括IgG Fc段受體(FcγRγ)和細胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶(extracellular regulated protein kinases,ERK)介導的對蛋白酪氨酸磷酸酶-1(SHP-1)的補充,從而抑制了DC細胞的成熟和進行免疫刺激作用的能力,并進一步抑制了T細胞的活化[45]。此外,CD39,一種細胞表面相關(guān)的外核苷酸酶,可用于凈化Treg細胞使其具有較強的抑制功能。CD4+CD39+T細胞可以催化裂解三磷酸腺苷(ATP)轉(zhuǎn)變?yōu)橄佘账?AMP),然后進一步裂解腺苷[46]。Treg細胞能夠產(chǎn)生IL-10、TGF-β和IL-35等抑制性的細胞因子,他們可以抑制T細胞的功能從而導致免疫耐受的形成[3]。共生微生物可以促進MLN和PP結(jié)中CD4+Foxp3+Treg細胞的增殖和功能發(fā)揮,導致機體對共生微生物的免疫耐受。例如,Young等[47]將CD4+VEGFR1high T細胞轉(zhuǎn)入RAG2基因敲除的小鼠,可以改善小鼠由于缺少淋巴細胞引起的炎癥性腸病。Bae等[48]的研究發(fā)現(xiàn),黃芩黃素可以通過芳香烴受體誘導Treg細胞分化,上調(diào)Treg細胞相關(guān)因子的表達,增強腸道屏障功能從而改善食物過敏的癥狀,減少血清IgE和效應T細胞的作用。綜上,共生微生物可能通過促進Treg細胞的活化和功能發(fā)揮形成免疫耐受。

5 小 結(jié)

雖然本文從M?細胞、DC細胞、TLR、PPAR-γ、共生微生物自身特性、ALPI和Treg細胞參與的免疫耐受機制等多個方面綜述了現(xiàn)有腸道對共生微生物的免疫耐受機制,但腸道免疫系統(tǒng)是一個復雜的網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu),腸道共生微生物種類和定植過程復雜,現(xiàn)有研究多為孤立的、單一角度的驗證。因此,系統(tǒng)生物學的發(fā)展,有望從整體出發(fā),對免疫耐受給出更全面的解釋,為深入闡釋微生物與宿主互作提供支撐。同時,腸道對共生微生物的免疫耐受機制研究可以為反芻動物的科學飼養(yǎng)提供基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。當前,反芻動物營養(yǎng)大力提倡促進微生物蛋白的合成,由此可能引起腸道內(nèi)微生物區(qū)系的改變,從而引發(fā)腸道免疫系統(tǒng)產(chǎn)生免疫反應并引發(fā)炎癥。而腸道對共生微生物的免疫耐受機制研究可以為避免或抑制免疫反應的產(chǎn)生提供策略。此外,高精料添加引起的瘤胃酸中毒已成為反芻動物飼養(yǎng)的關(guān)鍵問題。高精料添加影響消化道微生物區(qū)系組成,而腸道對共生微生物的免疫耐受機制研究可以為選擇性地改善反芻動物瘤胃微生物的組成提供策略,使得在不影響動物正常消化代謝的情況下緩解瘤胃酸中毒,并達到不引發(fā)炎癥等疾病的目的。

[1] 張羽萌,田菲,郭曉奎.腸道淋巴組織與共生細菌對腸道環(huán)境穩(wěn)態(tài)的共同維持[J].中國微生態(tài)學雜志,2010,22(9):854-856.

[2] 徐凱進,李蘭娟.腸道正常菌群與腸道免疫[J].國外醫(yī)學·流行病學傳染病學分冊,2005,32(3):181-183.

[3] 朱小慧.免疫耐受機制的研究進展[J].細胞與分子免疫學雜志,2011,27(5):593-595.

[4] 李七渝,張紹祥.免疫耐受機制研究進展[J].免疫學雜志,2002,18(3):98-101.

[5] ANDERSON M S,SU M A.AIRE expands:new roles in immune tolerance and beyond[J].Nature Reviews Immunology,2016,16(4):247-258.

[6] SCANDLING J D,BUSQUE S,DEJBAKHSH-JONES S,et al.Tolerance and withdrawal of immunosuppressive drugs in patients given kidney and hematopoietic cell transplants[J].American Journal of Transplantation,2012,12(5):1133-1145.

[7] CORREALE J,FAREZ M F.The impact of parasite infections on the course of multiple sclerosis[J].Journal of Neuroimmunology,2011,233(1/2):6-11.

[8] ARCK P C,HECHER K.Fetomaternal immune cross-talk and its consequences for maternal and offspring’s health[J].Nature Medicine,2013,19(5):548-556.

[9] 王泳翔,楊凌,畢江華,等.孕酮在反芻動物早期妊娠中的免疫耐受作用[J].中國畜牧獸醫(yī),2015,42(2):493-497.

[10] 左增妍,張彩.腸道黏膜免疫耐受機制研究進展[J].現(xiàn)代免疫學,2015,35(1):68-71.

[12] LUO X,MILLER S D,SHEA L D.Immune tolerance for autoimmune disease and cell transplantation[J].Annual Review of Biomedical Engineering,2016,18:181-205.

[13] HAZIAK K,HERMAN A P,TOMASZEWSKA-ZAREMBA D.Effects of central injection of anti-LPS antibody and blockade of TLR4 on GnRH/LH secretion during immunological stress in anestrous ewes[J].Mediators of Inflammation,2014,2014:867170.

[14] CUKROWSKA B,KOZKOVH,RˇEHKOVZ,et al.Specific antibody and immunoglobulin responses after intestinal colonization of germ-free piglets with non-pathogenicEscherichiacoliO86[J].Immunobiology,2001,204(4):425-433.

[15] ZHOU F,ZHANG G X,ROSTAMI A.Apoptotic cell-treated dendritic cells induce immune tolerance by specifically inhibiting development of CD4+effector memory T cells[J].Immunologic Research,2016,64(1):73-81.

[16] MALCHOW S,LEVENTHAL D S,LEE V,et al.Aire enforces immune tolerance by directing autoreactive T cells into the regulatory T cell lineage[J].Immunity,2016,44(5):1102-1113.

[17] 魏家臣.Fas/FasL介導凋亡細胞機制及其病理生理意義[J].國外醫(yī)學:外科學分冊,2003(1):21-23.

[18] MIYARA M,SAKAGUCHI S.Natural regulatory T cells:mechanisms of suppression[J].Trends in Molecular Medicine,2007,13(3):108-116.

[19] 李丹,任亞娜,范華驊.巨噬細胞的分類及其調(diào)節(jié)性功能的差異[J].生命科學,2011,23(3):249-254.

[20] MANTOVANI A,SICA A,SOZZANI S,et al.The chemokine system in diverse forms of macrophage activation and polarization[J].Trends in Immunology,2004,25(12):677-686.

[21] 儲成艷,吳云紅,朱亮.巨噬細胞在移植排斥中的作用及其機制的研究進展[J].細胞與分子免疫學雜志,2015,31(12):1721-1723,1727.

[22] 秦惠玉.巨噬細胞與免疫耐受[J].上海免疫學雜志,1987,7(6):369-372.

[23] SMYTHIES L E,SELLERS M,CLEMENTS R H,et al.Human intestinal macrophages display profound inflammatory anergy despite avid phagocytic and bacteriocidal activity[J].Journal of Clinical Investigation,2005,115(1):66-75.

[24] SATO A,IWASAKI A.Intestinal epithelial barrier and mucosal immunity——Peyer’s patch dendritic cells as regulators of mucosal adaptive immunity[J].Cellular and Molecular Life Sciences,2005,62(12):1333-1338.

[25] 束弋.腸道黏膜免疫系統(tǒng)的研究進展[J].微生物與感染,2007,2(1):59-62.

[26] 谷紅紅.樹突狀細胞與免疫耐受[J].國際輸血及血液學雜志,2013,36(4):464-467.

[27] DUMITRIU I E,DUNBAR D R,HOWIE S E,et al.Human dendritic cells produce TGF-β1 under the influence of lung carcinoma cells and prime the differentiation of CD4+CD25+Foxp3+regulatory T cells[J].The Journal of Immunology,2009,182(5):2795-2807.

[28] 楊利娜,邊高瑞,朱偉云.單胃動物腸道微生物菌群與腸道免疫功能的相互作用[J].微生物學報,2014,54(5):480-486.

[29] WANG S,CHARBONNIER L M,RIVAS M N,et al.MyD88 adaptor-dependent microbial sensing by regulatory T cells promotes mucosal tolerance and enforces commensalism[J].Immunity,2015,43(2):289-303.

[30] LUO J,LI W,DUAN Y F,et al.Host discriminates between probiotics and pathogens:impact of toll like receptor 5-flagellin interaction and evolution[J].Microbiology,2014,41(7):1368-1375.

[31] PETERSON L W,ARTIS D.Intestinal epithelial cells:regulators of barrier function and immune homeostasis[J].Nature Reviews Immunology,2014,14(3):141-153.

[32] LEE J,MO J H,KATAKURA K,et al.Maintenance of colonic homeostasis by distinctive apical TLR9 signalling in intestinal epithelial cells[J].Nature Cell Biology,2006,8(12):1327-1336.

[33] NAIK S,KELLY E J,MEIJER L,et al.Absence of toll-like receptor 4 explains endotoxin hyporesponsiveness in human intestinal epithelium[J].Journal of Pediatric Gastroenterology & Nutrition,2001,32(4):449-453.

[34] ISSEMANN I,GREEN S.Activation of a member of the steroid hormone receptor superfamily by peroxisome proliferators[J].Nature,1990,347(6294):645-650.

[35] 傅小雅,黃嫻.過氧化物酶體增殖劑激活受體的研究進展和應用前景[J].中國熱帶醫(yī)學,2008,8(2):321-325.

[36] NENCIONI A,WESSELBORG S,BROSSART P.Role of peroxisome proliferator-activated receptor γ and its ligands in the control of immune responses[J].Critical Reviews in Immunology,2003,23(1/2):1-13.

[37] VON KNETHEN A,BRüNE B.PPARgamma-an important regulator of monocyte/macrophage function[J].Archivum Immunologiae et Therapiae Experimentalis,2003,51(4):219-226.

[38] KELLY D,CAMPBELL J I,KING T P,et al.Commensal anaerobic gut bacteria attenuate inflammation by regulating nuclear-cytoplasmic shuttling of PPAR-γ and RelA[J].Nature Immunology,2004,5(1):104-112.

[39] 徐世文,櫻桃,李術(shù).PPAR-γ功能的研究進展[J].東北農(nóng)業(yè)大學學報,2011,42(9):1-6.

[40] 王愛麗,武慶斌,孫慶林.腸道菌群與腸道黏膜免疫系統(tǒng)的相互作用機制[J].中國微生態(tài)學雜志,2009,21(4):382-385.

[41] GOLENBOCK D T,HAMPTON R Y,QURESHI N,et al.Lipid A-like molecules that antagonize the effects of endotoxins on human monocytes[J].The Journal of Biological Chemistry,1991,266(29):19490-19498.

[42] KIM E E,WYCKOFF H W.Reaction mechanism of alkaline phosphatase based on crystal structures:two-metal ion catalysis[J].Journal of Molecular Biology,1991,218(2):449-464.

[43] ALAM S N,YAMMINE H,MOAVEN O,et al.Intestinal alkaline phosphatase prevents antibiotic-induced susceptibility to enteric pathogens[J].Annals of Surgery,2014,259(4):715-722.

[44] QURESHI O S,ZHENG Y,NAKAMURA K,et al.Trans-endocytosis of CD80 and CD86:a molecular basis for the cell extrinsic function of CTLA-4[J].Science,2011,332(6029):600-603.

[45] LIANG B T,WORKMAN C,LEE J,et al.Regulatory T cells inhibit dendritic cells by lymphocyte activation gene-3 engagement of MHC class Ⅱ[J].The Journal of Immunology,2008,180(9):5916-5926.

[46] MANDAPATHIL M,LANG S E,GORELIK E,et al.Isolation of functional human regulatory T cells (Treg) from the peripheral blood based on the CD39 expression[J].Journal of Immunological Methods,2009,346(1/2):55-63.

[47] SHIN J Y,YOON I H,LIM J H,et al.CD4+VEGFR1high T cell as a novel Treg subset regulates inflammatory bowel disease in lymphopenic mice[J].Cellular & Molecular Immunology,2015,12(5):592-603.

[48] BAE M J,SHIN H S,SEE H J,et al.Baicalein induces CD4+Foxp3+T cells and enhances intestinal barrier function in a mouse model of food allergy[J].Scientific Reports,2016,6:32225.

*Corresponding author, professor, E-mail: jiakunwang@zju.edu.cn

(責任編輯 武海龍)

Intestinal Immune Tolerance Mechanism of Symbiotic Microorganisms

LE Jiaqing WANG Jiakun*
(InstituteofDairyScience,ZhejiangUniversity,Hangzhou310058,China)

There are millions of microorganisms in the intestine of animals. These symbiotic microorganisms can assist digestion and metabolism of organisms and maintain intestinal stability. However, the microorganisms and their metabolites can also serve as an antigen affect the normal function of the intestine. Under normal circumstances, the intestinal immune system can accurately identify symbiotic microorganisms and their metabolites to make immune tolerance and maintain the stability of the internal environment. On the other hand, it avoids reaction to harmless antigens caused by the waste of immune resources. Immune tolerance has been widely used in clinical medicine to reduce the occurrence of rejection after organ transplantation and decrease uterine immune rejection of the fetus. However, there is little report on how to use the immune tolerance mechanism to reduce the rumen acidosis of ruminants and improve the synthesis and utilization efficiency of ruminal microbial protein, and to improve the feeding regulations of probiotics. Therefore, this review describes the general concepts and applications of immune tolerance, the composition and function of the intestinal immune system, the immunogenicity of intestinal symbiotic microorganisms and the mechanisms of intestinal immune tolerance.[ChineseJournalofAnimalNutrition, 2017, 29(5):1489-1497]

intestinal symbiotic microorganisms; intestinal immune system; intestinal immune tolerance; mechanism

10.3969/j.issn.1006-267x.2017.05.006

2016-11-04

中央高?;究蒲袠I(yè)務(wù)費專項資金資助(2015FZA6016)

樂佳清(1992—),女,浙江嘉興人,碩士研究生,從事反芻動物營養(yǎng)研究。E-mail: 945841362@qq.com

*通信作者:王佳堃,教授,博士生導師,E-mail: jiakunwang@zju.edu.cn

S811.2

A

1006-267X(2017)05-1489-09

猜你喜歡
免疫耐受免疫系統(tǒng)共生
身體的保護傘——免疫系統(tǒng)
慢性HBV感染免疫耐受期患者應精準抗病毒治療
動態(tài)監(jiān)測脾臟大小和肝硬度值協(xié)助判斷慢性HBV感染免疫耐受期患者是否需要抗病毒治療
HBV感染免疫耐受期患者不建議抗病毒治療
一類具有抗原性的腫瘤-免疫系統(tǒng)的定性分析
全球和我國HBV感染免疫耐受期患者人數(shù)估計更正說明
人與熊貓 和諧共生
保護好你自己的免疫系統(tǒng)
共生
優(yōu)生共生圈培養(yǎng)模式探索