王洋,周家華
(1.東南大學(xué) 醫(yī)學(xué)院,江蘇 南京 210009; 2.東南大學(xué) 附屬中大醫(yī)院,江蘇 南京 210009)
外周和門靜脈血中循環(huán)腫瘤細(xì)胞在胰腺癌診治中的研究現(xiàn)狀及應(yīng)用前景
王洋1,周家華2
(1.東南大學(xué) 醫(yī)學(xué)院,江蘇 南京 210009; 2.東南大學(xué) 附屬中大醫(yī)院,江蘇 南京 210009)
胰腺癌是惡性程度最高的腫瘤之一,早期診斷率及5年生存率低。目前胰腺癌循環(huán)腫瘤細(xì)胞檢測技術(shù)繁多,其靈敏度和特異性不盡相同,外周血和門靜脈血中循環(huán)腫瘤細(xì)胞數(shù)量及標(biāo)志物表達(dá)對(duì)胰腺癌的診斷、預(yù)后具有提示作用。本文作者對(duì)外周和門靜脈血中循環(huán)腫瘤細(xì)胞在胰腺癌診治中的研究現(xiàn)狀作一綜述。
循環(huán)腫瘤細(xì)胞; 胰腺癌; 門靜脈血; 檢測; 預(yù)后; 綜述
目前胰腺癌(pancreatic carcinoma,PC)是惡性程度最高的腫瘤之一,在西方國家為第四大癌癥相關(guān)的主要死亡原因,其5年生存率僅為1%~4%,中位生存期為4~6個(gè)月[1]。盡管對(duì)無淋巴結(jié)侵犯的胰腺癌患者行外科手術(shù)切除可使其5年生存率提高至20%~25%,但大多數(shù)患者就診時(shí)已存在肝臟或腹腔轉(zhuǎn)移。腹部增強(qiáng)CT、磁共振等影像學(xué)檢查是目前唯一可行的診斷方法,但無法顯示<5 mm的微小病灶或轉(zhuǎn)移灶。腫瘤標(biāo)志物包括CA19- 9、CEA等,其敏感性及特異性均有限[2],僅具備一定參考價(jià)值。而近來出現(xiàn)的循環(huán)腫瘤DNA(ctDNA)、外泌體(exosome)等血清學(xué)指標(biāo)仍處于實(shí)驗(yàn)階段,尚未投入臨床應(yīng)用。目前胰腺癌的早期診斷在技術(shù)上難以實(shí)現(xiàn),但對(duì)腫瘤細(xì)胞的早期發(fā)現(xiàn)將有利于減緩腫瘤進(jìn)展及病灶轉(zhuǎn)移,降低患者死亡率。大量研究[3- 6]證實(shí),腫瘤細(xì)胞存在于胰腺癌患者的外周血及門脈系統(tǒng)中。循環(huán)腫瘤細(xì)胞(circulating tumor cells, CTCs)是來源于原發(fā)腫瘤或轉(zhuǎn)移灶、獲得脫離細(xì)胞基底膜的能力并入侵通過組織基質(zhì)進(jìn)入血管的腫瘤細(xì)胞,其在腫瘤復(fù)發(fā)和轉(zhuǎn)移過程中的作用逐漸得到重視。隨著細(xì)胞檢測及鑒定技術(shù)的發(fā)展,對(duì)外周血及門靜脈中CTCs的檢測使胰腺癌的早期診斷、化療效果評(píng)估及預(yù)后判斷成為可能?,F(xiàn)就近年來胰腺癌CTCs的檢測技術(shù)、研究現(xiàn)狀及應(yīng)用前景進(jìn)行綜述。
1.1 分離和富集
CTCs與循環(huán)血細(xì)胞相比數(shù)量極少,在10 ml外周血中可能僅存在1~2個(gè),而在同樣體積血液中存在107的白細(xì)胞和超過1010的紅細(xì)胞。因此對(duì)CTCs的分離須過濾掉血液中其他細(xì)胞的干擾,特定地篩選出這些數(shù)量稀少的腫瘤細(xì)胞。
1.1.1 物理富集方法
物理富集方法是根據(jù)CTCs與血細(xì)胞間密度、直徑等物理性質(zhì)不同而進(jìn)行分離的方法,目前最常用的物理富集方法為密度梯度離心法及濾過膜分離法。
1.1.1.1 密度梯度離心法 密度梯度離心法是一種較為傳統(tǒng)的細(xì)胞富集技術(shù),利用特定介質(zhì)使不同密度的細(xì)胞在離心管內(nèi)通過重力作用分層、分離,其常用介質(zhì)為氯化銫、蔗糖等。CTCs較外周血單核細(xì)胞具有低密度特點(diǎn),在此基礎(chǔ)上建立的OncoQuick系統(tǒng)較常規(guī)方法增加了多孔屏障,能使分離出的目的細(xì)胞更加純化,從而提高CTC的檢出率[7],但仍有特異性低的缺點(diǎn)。
1.1.1.2 濾過膜分離法 ISET以及ScreenCell?過濾裝置根據(jù)細(xì)胞大小不同進(jìn)行分揀,其濾孔直徑在8.0 mm或以下,已能夠從結(jié)腸癌、肝癌、軟組織肉瘤、非小細(xì)胞肺癌等惡性腫瘤中的外周血中分離出CTCs[8- 11]。其優(yōu)勢在于能夠快速分離活細(xì)胞或固定細(xì)胞,不依賴于上皮標(biāo)志物,已被證實(shí)其靈敏度高于單純利用上皮標(biāo)志物抗體的檢測方法。該技術(shù)成本低廉,且分離過程中能保持細(xì)胞完整性,避免對(duì)細(xì)胞形態(tài)的破壞而影響進(jìn)一步的細(xì)胞培養(yǎng)、細(xì)胞形態(tài)學(xué)及分子生物學(xué)分析。但其缺點(diǎn)仍為特異性不足,易致CTCs丟失或白細(xì)胞混入。
1.1.2 生物富集方法
生物富集方法是根據(jù)CTCs和血細(xì)胞間生物標(biāo)志物的差異進(jìn)行分離的方法。免疫磁珠分離法是最常用的生物富集方法,其利用特異性的單克隆標(biāo)記磁珠結(jié)合腫瘤細(xì)胞表面特異性抗原(通常為epithelial cell adhesion molecule,EpCAM)進(jìn)行細(xì)胞分選。唯一被FDA認(rèn)證的CellSearch系統(tǒng)現(xiàn)已應(yīng)用于轉(zhuǎn)移性乳腺癌、結(jié)腸癌及前列腺癌的檢測和治療中,但對(duì)胰腺癌的檢測應(yīng)用較少。該技術(shù)受限于在外周循環(huán)中存在非腫瘤的上皮細(xì)胞[12],這種現(xiàn)象甚至已經(jīng)在健康受試者體內(nèi)得到證實(shí),并且上皮標(biāo)志物通常在腫瘤細(xì)胞發(fā)生上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化(epithelial- mesenchymal transition,EMT)過程中丟失,因此該法同樣存在假陽性和假陰性的缺陷。
1.2 檢測和鑒定
1.2.1 細(xì)胞計(jì)數(shù)
細(xì)胞計(jì)數(shù)法是根據(jù)細(xì)胞的抗原表達(dá)來分離和計(jì)數(shù)CTCs,大多使用抗上皮特異性抗原的抗體。其優(yōu)點(diǎn)在于保證了CTCs完整性,能進(jìn)一步分析其細(xì)胞形態(tài)學(xué)和分子學(xué)特征,而缺點(diǎn)在于缺乏腫瘤特異性抗體。
流式細(xì)胞術(shù)(flow cytometry,F(xiàn)CM)是通過單克隆抗體對(duì)腫瘤細(xì)胞特異性標(biāo)志物的識(shí)別實(shí)現(xiàn)分選和計(jì)數(shù),并且該技術(shù)可同時(shí)檢測CTCs多種生物學(xué)特性,包括細(xì)胞內(nèi)DNA含量、細(xì)胞活力以及細(xì)胞內(nèi)或表面特異標(biāo)志物等,但其缺點(diǎn)是靈敏度偏低。Catenacci等[13- 14]使用FACS(fluorescence activated cell sorting)系統(tǒng)成功將胰十二指腸切除術(shù)中采集的門靜脈CTCs進(jìn)行計(jì)數(shù),證實(shí)其數(shù)量多于同時(shí)采集的外周血中CTCs。
1.2.2 免疫熒光染色
免疫熒光染色基于腫瘤相關(guān)抗原或特異性標(biāo)志物與單克隆抗體結(jié)合,通過顯色反應(yīng)來判斷目的細(xì)胞特性,常用標(biāo)志物有EpCAM、CK、CA19- 9等。使用雙重免疫熒光染色還能夠證明兩種標(biāo)志物在同一細(xì)胞中表達(dá),并對(duì)其定位加以區(qū)分。該檢測方法較為簡便,且敏感性和特異性較高。但在一些良性上皮增殖性疾病、手術(shù)、炎癥和組織創(chuàng)傷等情況下,部分上皮細(xì)胞可進(jìn)入外周血,這些細(xì)胞表面存在同樣的特異性抗原,易致假陽性發(fā)生;同時(shí),在發(fā)生EMT過程中,部分CTCs表面特異性標(biāo)志物表達(dá)減弱甚至丟失,導(dǎo)致假陰性的發(fā)生。Poruk等[15]通過對(duì)46例PDAC患者外周血CTCs的CK、Vimentin及CD45進(jìn)行染色,將其分為上皮樣CTCs和間質(zhì)樣CTCs,得出兩者數(shù)量分別與腫瘤總體生存期(overall survival,OS)及早期復(fù)發(fā)有關(guān)。基于該技術(shù)改進(jìn)的iFish(immunostaining- fluorescence in situ hybridization)染色在胰腺癌、胃癌中也得到應(yīng)用[16- 17]。
1.2.3 核酸檢測
逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈反應(yīng)(reverse transcriptase- polymerase chain reaction,RT- PCR)檢測腫瘤的過表達(dá)或突變基因的mRNA,相對(duì)于復(fù)雜的DNA檢測是一種很好的替代方法。腫瘤細(xì)胞死亡后,RNA在血液中快速降解,對(duì)其檢測可以代表腫瘤細(xì)胞的完整特性,而細(xì)胞碎片或游離RNA則不具備這一優(yōu)勢。RT- PCR采用熒光探針與擴(kuò)增序列特定寡核酸序列相結(jié)合,從而使擴(kuò)增時(shí)出現(xiàn)假陽性的可能最小化,并可以同時(shí)對(duì)多種突變進(jìn)行定量檢測。相對(duì)于免疫細(xì)胞化學(xué)(immunocytochemistry,ICC)來說,該方法更為客觀,并且更易實(shí)現(xiàn)自動(dòng)化,RT- qPCR已逐漸應(yīng)用于胰腺癌CTCs檢測中[18- 19]。
1.2.4 微流體芯片
微流體芯片技術(shù)(CTC- chip)是基于微流體學(xué)和免疫學(xué)的CTCs檢測技術(shù),由Nagrath等[20]首先報(bào)道。芯片表層包被EpCAM抗體,當(dāng)外周血樣本通過芯片時(shí),EpCAM+細(xì)胞附著于微流體柱表面。通常將CK(cytokeratin)和DAPI(4′,6- diamidino- 2- phenylindole)作為陽性分選,CD45作為陰性分選,因此其敏感性和特異性均非常高。在其基礎(chǔ)上改進(jìn)的人字形芯片(herringbone- chip,HBChip),增加了目的細(xì)胞和芯片的交互數(shù)量,可以處理更大容量血液樣本,提高了腫瘤細(xì)胞的分離效率。Wen等[21]利用CMx系統(tǒng)將胰十二指腸切除術(shù)中采集的門靜脈血中符合panCK+/CD45-/DAPI+條件的細(xì)胞篩選出,并得出其數(shù)量與腫瘤肝轉(zhuǎn)移密切相關(guān)。
2.1 CTCs與胰腺癌診斷
CTCs作為生物標(biāo)志物在胰腺癌中的作用與其他實(shí)體瘤中相似,其在外周血中數(shù)量稀少,大量腫瘤晚期患者檢測率仍偏低,而鮮有文獻(xiàn)報(bào)道其檢測假陽性,因此檢測特異性明顯優(yōu)于敏感性。但如前所述,目前檢測方法繁多,對(duì)CTCs細(xì)胞定義也不盡相同,使得各方法間很難比較。
CTCs對(duì)于胰腺癌的診斷價(jià)值,各研究結(jié)論不一。Allard等[12]利用CellSearch系統(tǒng)在16例PDAC患者外周血中6例檢測出CTCs(37.5%)。Rhim等[22]使用GEM- chip法對(duì)32例胰腺病變患者外周血進(jìn)行檢測,在11例PC患者中8例檢測出CTCs(73%),21例囊性病變患者中7例檢測出CTCs(33%),而在19例健康對(duì)照者中均未檢測出CTCs。Poruk等[15]利用ISET系統(tǒng)在44例可切除PDAC患者中40例檢測出CTCs(90%),得到間質(zhì)樣CTCs與患者術(shù)后短期復(fù)發(fā)相關(guān)(P=0.043)。Yang等[16]利用密度梯度離心及iFish法在25例PDAC患者中檢測出103個(gè)CTC細(xì)胞,而其數(shù)量與腫瘤分期及CA19- 9水平并無關(guān)聯(lián)。
CTCs對(duì)胰腺癌的診斷陽性率仍明顯低于超聲內(nèi)鏡穿刺(endoscopic ultrasonography- fine needle aspiration,EUS- FNA),但其特異度普遍在95%以上,與內(nèi)鏡取得活檢病理結(jié)果相一致,進(jìn)一步行分子生物學(xué)研究可提高其診斷準(zhǔn)確性,并且其在費(fèi)用以及安全性方面明顯優(yōu)于超聲內(nèi)鏡。因此,CTCs檢測可作為潛在的輔助檢查手段,在將來投入臨床應(yīng)用。
2.2 CTCs與胰腺癌預(yù)后
現(xiàn)有眾多證據(jù)表明,CTCs的存在提示胰腺癌患者較差的預(yù)后。Kurihara等[23]利用CellSearch法在26例PC患者中11例檢測出CTCs(42%),這部分患者具有較短的總體生存期(P<0.001)。Poruk等[15]利用ISET系統(tǒng)在44例可切除PDAC患者中40例檢測出CTCs(90%),得到上皮樣CTCs與患者預(yù)后相關(guān)(P=0.008)。Yang等[16]利用密度梯度離心及iFish法在25例PDAC患者中檢測出103個(gè)CTCs,而CTC≥3·(7.5 ml)-1提示腫瘤較差預(yù)后(P=0.037)。
盡管有研究得出CTCs數(shù)量與胰腺癌預(yù)后無顯著性關(guān)聯(lián),但結(jié)果仍提示存在這一趨勢,若將其較少樣本量納入考慮,則該結(jié)論的可信度將有所增加,因此仍須進(jìn)行大樣本研究及長期跟蹤隨訪來提高其準(zhǔn)確性。
2.3 CTCs與門靜脈系統(tǒng)
Jiao等[24]利用CellSearch系統(tǒng)對(duì)29例結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移患者肝切除術(shù)中獲取的7.5 ml門靜脈血CTCs進(jìn)行計(jì)數(shù),發(fā)現(xiàn)其中位數(shù)[87·(7.5 ml)-1]多于同時(shí)采集的外周靜脈血[1·(7.5 ml)-1]。Catenacci等[13]最近利用超聲內(nèi)鏡及細(xì)針穿刺對(duì)18例胰腺膽管癌(PBCs)患者門靜脈血CTCs進(jìn)行獲取和計(jì)數(shù),同樣發(fā)現(xiàn)其中位數(shù)[111.8·(7.5 ml)-1]顯著多于同時(shí)采集的外周血[0.7·(7.5 ml)-1],且在不可切除PBCs患者中數(shù)量多于可切除PBCs患者。
肝臟對(duì)消化道腫瘤CTCs具有過濾作用,使CTCs進(jìn)入全身循環(huán)的數(shù)量明顯減少,其機(jī)制類似于肝臟對(duì)藥物的“首過消除”效應(yīng)。胰十二指腸切除術(shù)中收集的門靜脈血CTCs數(shù)量與術(shù)后肝轉(zhuǎn)移相關(guān),其陽性預(yù)測值達(dá)到84.6%,陰性預(yù)測值達(dá)到87.2%[21],而外周血中CTCs的低檢測率限制了其提示作用。這一結(jié)論對(duì)門靜脈血高水平CTCs患者術(shù)后進(jìn)行輔助治療具有指導(dǎo)意義。近來有學(xué)者嘗試將轉(zhuǎn)移起始細(xì)胞(metastasis- initiating cells,MICs)作為預(yù)后指標(biāo),然而其僅存在于具有高水平CTCs數(shù)量的血液中,于單個(gè)血液樣本中難以捕獲,且缺少特異性標(biāo)志物,因此并沒有實(shí)際應(yīng)用意義[21]。
Arnoletti等[14]對(duì)21例PDAC患者術(shù)前及術(shù)后外周血、術(shù)中腫瘤切除前后門靜脈血中CTCs性質(zhì)進(jìn)行比較,發(fā)現(xiàn)門靜脈血CTCs具有更高水平K- RASmutmRNA轉(zhuǎn)錄以及組蛋白乙?;?,且在腫瘤切除后進(jìn)一步升高,預(yù)示著腫瘤切除后CTCs仍具有一定轉(zhuǎn)錄活性,且可以被M- MDSC(myeloid- derived suppressor cells with immature monocytic nature)所誘導(dǎo)的免疫抑制環(huán)境所增強(qiáng)。而在門靜脈血中CTCs數(shù)量也與M- MDSC水平密切相關(guān),提示門靜脈的免疫抑制微環(huán)境對(duì)CTCs的免疫逃逸具有促進(jìn)作用。門靜脈系統(tǒng)中存在的渦流對(duì)其內(nèi)腫瘤細(xì)胞具有滯留作用,增加細(xì)胞和細(xì)胞間、細(xì)胞和血管間物質(zhì)交換,促進(jìn)腫瘤細(xì)胞活化和其在局部組織中的駐留。這也解釋了門靜脈相對(duì)于外周血中CTCs的特殊性。
在胰腺癌手術(shù)當(dāng)中對(duì)門靜脈血的獲取將有利于檢測其中活化且具有轉(zhuǎn)移潛能的腫瘤細(xì)胞,而這項(xiàng)技術(shù)也將隨著超聲內(nèi)鏡的應(yīng)用得到進(jìn)一步推廣。
就目前胰腺癌的早期診斷和轉(zhuǎn)移監(jiān)測而言,CTCs(尤其門靜脈CTCs)具有重要意義,利用循環(huán)血CTC實(shí)時(shí)檢測來代替腫瘤組織活檢,將能極大程度改善患者治療的適應(yīng)性及減少創(chuàng)傷,避免不必要的有創(chuàng)性檢查及過度治療。此外,有研究證實(shí)CTCs可通過一種“腫瘤自身種植”機(jī)制完全復(fù)制原發(fā)腫瘤的特性,在浸潤血管中自由出入,即能夠從血液中重新返回原位灶繼續(xù)生長引起腫瘤復(fù)發(fā),并促進(jìn)血管形成及基質(zhì)募集[25]。而在部分PDAC癌前病變模型中,CTC檢測可在腫瘤形成之前即呈現(xiàn)陽性,因此其釋放入血可認(rèn)為是發(fā)生在腫瘤形成中的早期事件,這也支持了CTCs檢測能夠用于監(jiān)測胰腺癌進(jìn)展的觀點(diǎn)。進(jìn)一步行癌細(xì)胞特異性基因突變研究,在未來可能實(shí)現(xiàn)以CTCs為目標(biāo)的靶向治療。相較乳腺癌、肺癌、結(jié)腸癌等其他上皮腫瘤來說,胰腺癌仍然缺乏特異性足夠高的腫瘤標(biāo)志物,且CTCs檢測率相對(duì)較低,檢測成本相對(duì)較高,目前尚缺少大規(guī)模、前瞻性研究來指導(dǎo)其臨床應(yīng)用。胰腺癌術(shù)中采集的門靜脈血CTCs相較外周血檢測率明顯升高,且對(duì)胰腺癌轉(zhuǎn)移具有提示作用,在超聲內(nèi)鏡進(jìn)一步推廣后其安全性及實(shí)用性將大為提高。
總而言之,作為新興的“液體活檢”項(xiàng)目,CTCs檢測對(duì)于腫瘤的無創(chuàng)實(shí)時(shí)監(jiān)測、個(gè)體化治療或?qū)⒋笥兄?,個(gè)體化用藥也將更多依賴于CTCs而非腫瘤活檢組織的細(xì)胞學(xué)及分子生物學(xué)分析。
[1] JEMAL A,SIEGEL R,WARD E,et al.Cancer statistics[J].CA Cancer J Clin,2009,59(4):225- 249.
[2] PLEBANI M,BASSO D,DEL F G,et al.Clinical utility of TPS,TPA and CA 19- 9 measurement in pancreatic cancer[J].Oncology,1993,50(6):436- 440.
[3] ALIXPANABIERES C,PANTEL K.The circulating tumor cells:liquid biopsy of cancer[J].Klin Lab Diagn,2014(4):60.
[4] PANTEL K,ALIXPANABIRES C,RIETHDORF S.Cancer micrometastases[J].Nat Rev Clin Oncol,2009,6(6):339- 351.
[5] KHOJA L,BACKEN A,SLOANE R,et al.A pilot study to explore circulating tumour cells in pancreatic cancer as a novel biomarker[J].Br J Cancer,2011,106(3):508- 516.
[6] CHAPMAN C G,WAXMAN I.Portal- vein blood samples as a new diagnostic entity for pancreatic cancer[J].Expert Rev Gastroenterol Hepatol,2016,10(6):665- 667.
[7] BOBEK V,GURLICH R,ELIASOVA P,et al.Circulating tumor cells in pancreatic cancer patients:enrichment and cultivation[J].World J Gastroenterol,2014,20(45):17163- 17170.
[8] VONA G,SABILE A,LOUHA M,et al.Isolation by size of epithelial tumor cells :a new method for the immunomorphological and molecular characterization of circulatingtumor cells[J].Am J Pathol,2000,156(1):57- 63.
[9] CHINEN L T,MELLO C A,ABDALLAH E A,et al.Isolation,detection,and immunomorphological characterization of circulating tumor cells (CTCs) from patients with different types of sarcoma using isolation by size of tumor cells:a window on sarcoma- cell invasion[J].Onco Targets Ther,2014,7(5):1609- 1617.
[10] HOFMAN V,LONG E,ILIE M,et al.Morphological analysis of circulating tumour cells in patients undergoing surgery for non- small cell lung carcinoma using the isolation by size of epithelial tumour cell (ISET) method[J].Cytopathology,2012,23(1):30- 38.
[11] DESITTER I,GUERROUAHEN B S,BENALIFURET N,et al.A new device for rapid isolation by size and characterization of rare circulating tumor cells[J].Anticancer Res,2011,31(2):427- 441.
[12] ALLARD W J,MATERA J,MILLER M C,et al.Tumor cells circulate in the peripheral blood of all major carcinomas but not in healthy subjects or patients with nonmalignant diseases[J].Clin Cancer Res,2004,10(20):6897- 6904.
[13] CATENACCI D V,CHAPMAN C G,XU P,et al.Acquisition of portal venous circulating tumor cells from patients with pancreaticobiliary cancers by endoscopic ultrasound[J].Gastroenterology,2015,149(7):1794- 1803.
[14] ARNOLETTI J P,ZHU X,ALMODOVAR A J,et al.Portal venous blood circulation supports immunosuppressive environment and pancreatic cancer circulating tumor cell activation.[J].Pancreas,2016,46(1):116- 123.
[15] PORUK K E,RD V V,SAUNDERS T,et al.Circulating tumor cell phenotype predicts recurrence and survival in pancreatic adenocarcinoma[J].Ann Surg,2016,264(6):1073- 1081.
[16] YANG G,ZHU Y,ZHANG Z,et al.Clinical significance of pancreatic circulating tumor cells using combined negative enrichment and immunostaining- fluorescence in situ hybridization[J].J Exp Clin Cancer Res,2016,35(1):1- 8.
[17] LI Y,ZHANG X,GE S,et al.Clinical significance of phenotyping and karyotyping of circulating tumor cells in patients with advanced gastric cancer[J].Oncotarget,2014,5(16):6594- 6602.
[18] SERGEANT G,ROSKAMS T,van PELT J,et al.Perioperative cancer cell dissemination detectedwith a real- time RT- PCR assay for EpCAM is not associated with worse prognosis in pancreaticductal adenocarcinoma[J].BMC Cancer,2011,11(47):1471- 1478.
[19] de ALBUQUERQUE A,KUBISCH I,BREIER G,et al.Multimarker gene analysis of circulating tumor cells in pancreatic cancer patients:a feasibility study[J].Oncology,2012,82(1):3- 10.
[20] NAGRATH S,SEQUIST L V,MAHESWARAN S,et al.Isolation of rare circulating tumour cells in cancer patients by microchip technology[J].Nature,2007,450(7173):1235- 1239.
[21] WEN T Y,HSUN- CHUAN K,BE- ING H,et al.A high circulating tumor cell count in portal vein predicts liver metastasis from periampullary or pancreatic cancer:a high portal venous CTC count predicts liver metastases[J].Medicine,2016,95(16) :e3407.
[22] RHIM A D,THEGE F I,SANTANA S M,et al.Detection of circulating pancreas epithelial cells in patients with pancreatic cystic lesions[J].Gastroenterology,2014,146(3):647- 651.
[23] KURIHARA T,ITOI T,SOFUNI A,et al.Detection of circulating tumor cells in patients with pancreatic cancer:a preliminary result[J].J Hepatobiliary Pancreat Sci,2008,15(2):189- 195.
[24] JIAO L R,APOSTOLOPOULOS C,JACOB J,et al.Unique localization of circulating tumor cells in patients with hepatic metastases[J].J Clin Oncol,2009,27(36):6160- 6165.
[25] KIM M Y,OSKARSSON T,ACHARYYA S,et al.Tumor self- seeding by circulating cancer cells[J].Cell,2009,139(7):1315- 1326.
2017- 01- 27
2017- 05- 20
江蘇省重點(diǎn)研發(fā)計(jì)劃項(xiàng)目(7790000085)
王洋(1991-),男,江蘇南京人,在讀碩士研究生。E- mail:840238489@qq.com
周家華 E- mail:zhoujh@seu.edu.cn
王洋,周家華.外周和門靜脈血中循環(huán)腫瘤細(xì)胞在胰腺癌診治中的研究現(xiàn)狀及應(yīng)用前景[J].東南大學(xué)學(xué)報(bào):醫(yī)學(xué)版,2017,36(4):673- 677.
R44; R735.9
A
1671- 6264(2017)04- 0673- 05
10.3969/j.issn.1671- 6264.2017.04.037
東南大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版)2017年4期