張洋洋, 陳良安
(1.中國(guó)人民解放軍總醫(yī)院, 北京 海淀區(qū) 100853 2.承德醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院, 河北 承 德 067000)
鮑曼不動(dòng)桿菌毒力機(jī)制研究進(jìn)展
張洋洋1,2, 陳良安1
(1.中國(guó)人民解放軍總醫(yī)院, 北京 海淀區(qū) 100853 2.承德醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院, 河北 承 德 067000)
鮑曼不動(dòng)桿菌; 毒力機(jī)制; 毒力因子; 感 染
鮑曼不動(dòng)桿菌(Acinetobacter baumannii)是一種嚴(yán)格需氧、非乳糖發(fā)酵的革蘭氏陰性球桿菌,在醫(yī)院環(huán)境中廣泛存在,是醫(yī)院獲得性感染的重要條件致病菌之一,可以引起呼吸系統(tǒng)、泌尿系統(tǒng)、血源性、皮膚和傷口等全身多系統(tǒng)的感染[1]。鮑曼不動(dòng)桿菌生存能力強(qiáng),易引起院內(nèi)爆發(fā)流行和持續(xù)流行,多重耐藥菌株、甚至全耐藥菌株的日益增多,增加了臨床治療難度,使得感染患者的病死率居高不下。目前,對(duì)于鮑曼不動(dòng)桿菌的研究主要集中在分子流行病學(xué)和耐藥機(jī)制方面,對(duì)其毒力機(jī)制的研究尚處于起步階段。近些年,高通量測(cè)序技術(shù)迅速發(fā)展,全基因組數(shù)據(jù)日益增多,結(jié)合基因敲除技術(shù)和動(dòng)物模型實(shí)驗(yàn),鮑曼不動(dòng)桿菌毒力機(jī)制的研究逐漸有了一些成果。目前發(fā)現(xiàn)的與鮑曼不動(dòng)桿菌毒力有關(guān)的因子主要包括:外膜孔蛋白(Outer membrane porin),脂多糖(lipopolysaccharide,LPS),磷脂酶(phospholipase),鐵載體(siderophore)和生物被膜相關(guān)蛋白(Biofilm-associated protein,Bap)等。本文將結(jié)合各個(gè)感染階段毒力因子的作用,對(duì)鮑曼不動(dòng)桿菌毒力機(jī)制進(jìn)行總結(jié)。
細(xì)菌的生存和播散是導(dǎo)致感染的始發(fā)因素,鮑曼不動(dòng)桿菌具有極強(qiáng)的生存能力,并且能夠在醫(yī)院廣泛傳播,與其生物被膜形成能力有關(guān)。生物被膜是細(xì)菌在其依附的載體表面形成的膜性結(jié)構(gòu),在該結(jié)構(gòu)中細(xì)菌被嵌入由其自身分泌的蛋白質(zhì)、多糖、核酸組成的聚合物內(nèi),細(xì)菌細(xì)胞之間緊密連接并相互協(xié)調(diào)。生物被膜中的鮑曼不動(dòng)桿菌抵抗干燥、營(yíng)養(yǎng)缺乏等不利于生存的能力增強(qiáng),抗消毒劑和耐藥性也增強(qiáng)[2],因此能夠在醫(yī)院環(huán)境中長(zhǎng)期存在,鮑曼不動(dòng)桿菌定植于呼吸機(jī)、尿管、甚至便攜X線成像設(shè)備或輪椅等都可導(dǎo)致交叉感染[3]。
細(xì)菌生物被膜形成是一個(gè)復(fù)雜的連續(xù)性過(guò)程,涉及多種毒力因子。首先由csuA/BABCDE基因編碼的蛋白質(zhì)形成菌毛黏附到非生物體表面,形成微菌落。其中csuAB、csuA、csuB三個(gè)基因編碼的蛋白質(zhì)為菌毛的亞單位,csuC和csuD分別編碼形成伴侶蛋白和引導(dǎo)分子,參與菌毛蛋白質(zhì)的轉(zhuǎn)運(yùn),csuE編碼黏附素分子[4,5]。csu基因簇合成菌毛及黏附過(guò)程受BfmR/S雙組分調(diào)節(jié)系統(tǒng)的調(diào)節(jié),反應(yīng)調(diào)控子BfmR在伴侶蛋白和引導(dǎo)分子的表達(dá)過(guò)程中是必需的,感受器激酶BfmS可以感應(yīng)細(xì)菌外界條件如營(yíng)養(yǎng)、干燥等變化而調(diào)節(jié)bfmR的表達(dá)[6]。此外,csu的表達(dá)還可受GacS感受器激酶的調(diào)節(jié)[7]。Bap存在于細(xì)胞表面,能夠介導(dǎo)細(xì)胞間的相互作用,促進(jìn)生物被膜進(jìn)一步形成,并且能夠維持生物被膜在非生物體表面的成熟結(jié)構(gòu)[8]。pgaABCD編碼形成的β-1,6-多聚乙酰葡萄糖胺(PNAG)是構(gòu)成生物被膜胞外聚合物的重要成分[9]。OmpA、不動(dòng)桿菌三聚自主轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白(Acinetobacter trimeric autotransporter,Ata)和細(xì)胞外多糖在生物被膜形成過(guò)程中也發(fā)揮著輔助作用[10~12]。
鮑曼不動(dòng)桿菌形成生物被膜的能力在不同菌株間有很大差異,目前尚未發(fā)現(xiàn)與分離地區(qū)、分子分型存在一致性關(guān)系。不同分離部位的菌株生物被膜形成能力可能存在一定差異,但尚無(wú)一致性結(jié)論。Rodriguez-Bano等[13]的研究顯示,分離于血標(biāo)本和尿液標(biāo)本的菌株較分離于呼吸道的菌株生物被膜形成能力強(qiáng),但新近一項(xiàng)研究顯示分離于痰標(biāo)本的鮑曼不動(dòng)桿菌菌株較分離于血標(biāo)本的菌株生物被膜形成能力更強(qiáng)[14]。鮑曼不動(dòng)桿菌耐藥性與生物被膜形成能力的關(guān)系也尚無(wú)一致性結(jié)論,Rodriguez-Bano等[13]的研究認(rèn)為生物被膜形成能力強(qiáng)的菌株對(duì)環(huán)丙沙星、亞胺培南的耐藥性降低,但有多個(gè)研究[15,16]證實(shí),多藥耐藥菌株的更易形成生物被膜。鮑曼不動(dòng)桿菌生物被膜形成能力與毒力的關(guān)系也尚無(wú)定論,但生物被膜的形成促進(jìn)了鮑曼不動(dòng)桿菌在醫(yī)院環(huán)境中的生存及定植,從而導(dǎo)致該細(xì)菌在院內(nèi)傳播引發(fā)院內(nèi)感染已獲一致認(rèn)可。
鮑曼不動(dòng)桿菌能黏附于多種真核細(xì)胞,包括喉上皮細(xì)胞、氣管上皮細(xì)胞和肺泡上皮細(xì)胞等,與宿主細(xì)胞的黏附是導(dǎo)致感染的第一步。鮑曼不動(dòng)桿菌黏附于宿主細(xì)胞和黏附于非生物體不同,認(rèn)為與csuA/BABCDE編碼形成的菌毛無(wú)明顯關(guān)系,但研究顯示csuE突變菌株對(duì)A549細(xì)胞黏附增強(qiáng)[17]。OmpA突變菌株與野生株相比明顯喪失了對(duì)肺泡上皮細(xì)胞的黏附力[10],說(shuō)明OmpA與鮑曼不動(dòng)桿菌對(duì)宿主細(xì)胞的黏附密切相關(guān),但具體機(jī)制或與宿主細(xì)胞表面何種受體結(jié)合尚不清楚。Bap也與鮑曼不動(dòng)桿菌的黏附機(jī)制有關(guān),表達(dá)Bap的鮑曼不動(dòng)桿菌菌株與Bap缺陷株相比,對(duì)人支氣管上皮細(xì)胞和人新生角化細(xì)胞黏附顯著增加,其機(jī)制可能與Bap提高了細(xì)菌表面的疏水性有關(guān)[18]。Omp33-36通過(guò)與上皮細(xì)胞表面的纖連蛋白(fibronectin)結(jié)合介導(dǎo)鮑曼不動(dòng)桿菌與宿主細(xì)胞的黏附[19]。Ata能夠與多種宿主細(xì)胞外基質(zhì)成分粘連[12],對(duì)鮑曼不動(dòng)桿菌與宿主細(xì)胞的黏附也具有重要作用。
不同鮑曼不動(dòng)桿菌菌株對(duì)真核細(xì)胞的黏附能力存在差異,而同一菌株對(duì)不同種類細(xì)胞的黏附力亦可不同[10,17]。張杜超等[20]的研究顯示,鮑曼不動(dòng)桿菌在非生物體表面形成生物被膜的能力與對(duì)肺泡上皮細(xì)胞黏附能力呈正比,但不同黏附能力的菌株對(duì)患者預(yù)后無(wú)顯著影響。
鮑曼不動(dòng)桿菌與宿主細(xì)胞黏附后啟動(dòng)侵襲機(jī)制而進(jìn)入細(xì)胞內(nèi),作為非典型的細(xì)胞內(nèi)致病菌,侵入宿主細(xì)胞也是該細(xì)菌躲逃避疫識(shí)別的一種方式。目前研究認(rèn)為,與鮑曼不動(dòng)桿菌侵襲有關(guān)的因子主要有OmpA[21]、Omp33-36[22]和磷脂酶D[23],這些因子的缺失或滅活等均可導(dǎo)致鮑曼不動(dòng)桿菌對(duì)真核細(xì)胞侵襲能力下降甚至喪失,但其詳細(xì)機(jī)制尚需進(jìn)一步研究。
鐵元素是鮑曼不動(dòng)桿菌生存的必需物質(zhì)之一,是其有氧傳遞鏈細(xì)胞色素和多種酶類的重要組成成分。鮑曼不動(dòng)桿菌最主要的鐵攝取系統(tǒng)依賴于鐵載體-acinetobactin,在細(xì)菌細(xì)胞內(nèi)合成的acinetobactin被能夠被釋放至細(xì)胞外,從而結(jié)合鐵蛋白、乳鐵蛋白中的鐵,攜鐵后再進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)將鐵供給細(xì)菌利用[24]。鮑曼不動(dòng)桿菌進(jìn)入宿主細(xì)胞后,參與acinetobactin合成和轉(zhuǎn)運(yùn)的基因bauA和basD表達(dá)上調(diào),鐵攝取增多[24]。此外,鮑曼不動(dòng)桿菌還存在能夠攝取血紅蛋白降解釋放的血紅素以及二價(jià)鐵的鐵攝取系統(tǒng)[25],各類鐵攝取系統(tǒng)在不同的鮑曼不動(dòng)桿菌菌株的表達(dá)存在一定差異[26,27]。真核細(xì)胞能夠啟動(dòng)自噬系統(tǒng)清除進(jìn)入其內(nèi)的外源性異物,鮑曼不動(dòng)桿菌的Omp33-36能夠干擾宿主細(xì)胞的自噬系統(tǒng),從而維持其在宿主細(xì)胞內(nèi)的生存和增殖[22]。鮑曼不動(dòng)桿菌還可編碼同源重組蛋白R(shí)ecA,該蛋白可以修復(fù)細(xì)菌損失的DNA,因而可以避免宿主細(xì)胞氧化應(yīng)激等環(huán)境對(duì)細(xì)菌DNA造成的致命損傷[28]。
鮑曼不動(dòng)桿菌具有細(xì)胞毒性,誘導(dǎo)宿主細(xì)胞凋亡和壞死是其致病的關(guān)鍵所在,OmpA[10]、Omp33-36[22]、BauA和BasD[24]等多種因子參與這一過(guò)程。鮑曼不動(dòng)桿菌可直接將毒力因子分泌到胞外,也可以形成外膜囊泡(outer membrance vesicles,OMVs),將毒力因子分泌其中,由OMVs攜帶毒力因子作用于宿主細(xì)胞。OMVs由細(xì)菌的外膜、磷脂、脂多糖和周質(zhì)蛋白組成,OmpA在囊泡中含量最高并能夠調(diào)節(jié)OMVs的合成。雖然在宿主細(xì)胞尚未發(fā)現(xiàn)OmpA的受體,在染色體和線粒體上也未發(fā)現(xiàn)OmpA的作用靶位點(diǎn),但OmpA可以誘導(dǎo)宿主細(xì)胞發(fā)生凋亡級(jí)聯(lián)反應(yīng),編碼OmpA的基因缺失可導(dǎo)致被侵襲的細(xì)胞凋亡數(shù)量明顯減少。進(jìn)一步研究顯示,OmpA誘導(dǎo)上皮細(xì)胞凋亡與誘導(dǎo)生成IL-8等細(xì)胞因子有關(guān)。磷脂酶C基因缺失的鮑曼不動(dòng)桿菌菌株較野生型菌株誘導(dǎo)上皮細(xì)胞凋亡減少,說(shuō)明磷脂酶C對(duì)誘導(dǎo)宿主細(xì)胞凋亡也發(fā)揮著作用。
鮑曼不動(dòng)桿菌血源性感染是常見的院內(nèi)感染之一,尤其以ICU患者和免疫低下人群易發(fā)。血清中的補(bǔ)體可以結(jié)合在細(xì)菌細(xì)胞膜上直接溶解細(xì)菌,巨噬細(xì)胞可以吞噬細(xì)菌,此外還有自然殺傷細(xì)胞等,鮑曼不動(dòng)桿菌可通過(guò)多種因子作用逃避這些免疫機(jī)制。鮑曼不動(dòng)桿菌LpsB敲除菌株對(duì)血清補(bǔ)體的抵抗力降低,說(shuō)明LpsB在鮑曼不動(dòng)桿菌抵抗血清補(bǔ)體中發(fā)揮著作用。此外,LPS還能夠防御抗菌肽LL-37對(duì)細(xì)菌的殺傷作用。EpsA和Ptk能夠促進(jìn)K1莢膜多糖的合成,K1莢膜多糖能夠保護(hù)鮑曼不動(dòng)桿菌逃避宿主的天然免疫系統(tǒng)。鮑曼不動(dòng)桿菌分泌的蛋白酶也可以通過(guò)降解補(bǔ)體分子和抗體來(lái)介導(dǎo)免疫逃避。
鮑曼不動(dòng)桿菌感染呈逐年上升趨勢(shì),多重耐藥菌株的比例不斷增加,導(dǎo)致病死率居高不下,雖然對(duì)其耐藥機(jī)制的研究有了很大進(jìn)展,但治療手段仍極為匱乏。如果能夠有效地阻斷鮑曼不動(dòng)桿菌的致病環(huán)節(jié),將其對(duì)宿主的毒力降至最低,不失為一種新的治療手段。因此本文重點(diǎn)總結(jié)了鮑曼不動(dòng)桿菌各個(gè)感染階段的毒力因子和毒力機(jī)制研究進(jìn)展,目前對(duì)其毒力機(jī)制的了解還很有限,但隨著測(cè)序技術(shù)的發(fā)展,全基因組、轉(zhuǎn)錄組、蛋白質(zhì)組等多組學(xué)的結(jié)合,并借助基因敲除、剪輯等分子生物學(xué)技術(shù)和動(dòng)物模型,在不久的將來(lái)我們將能夠?qū)︴U曼不動(dòng)桿菌毒力機(jī)制獲得全面的認(rèn)識(shí),從而尋找到新的治療手段,解決這一臨床難題。
[1] Gonzalez-Villoria AM,Valverde-Garduno V. Antibiotic-ResistantAcinetobacter baumannii Increasing Success Remains a Challenge as a Nosocomial Pathogen[J].Pathog, 2016, 2016:7318075.
[2] Longo F, Vuotto C, Donelli G. Biofilm formation in Acinetobacter baumannii[J].New Microbiol, 2014, 37(2):119~127.
[3] Munoz-Price LS, Fajardo-Aquino Y, Arheart KL, et al. Aerosolization of Acinetobacter baumannii in a trauma ICU[J].Crit Care Med, 2013, 41(8):1915~1918.
[4] Tomaras AP, Dorsey CW, Edelmann RE, et al. Attachment to and biofilm formation on abiotic surfaces by Acinetobacter baumannii: involvement of a novel chaperone-usher pili assembly system[J].Microbiology, 2003, 149(12):3473~3484.
[5] Mc Queary CN, Actis LA. Acinetobacter baumannii biofilms: variations among strains and correlations with other cell properties[J].Microbiol, 2011, 49(2):243~250.
[6] Tomaras AP, Flagler MJ, Dorsey CW, et al .Characterization of a two-component regulatory system from Acinetobacter baumannii that controls biofilm formation and cellular morphology[J].Microbiology, 2008, 154(11):3398~3409.
[7] Cerqueira GM, Kostoulias X, Khoo C, et al. A global virulence regulator in Acinetobacter baumannii and its control of the phenylacetic acid catabolic pathway [J].Infect Dis, 2014, 210(1):46~55.
[8] De Gregorio E,Del Franco M,Martinucci M, et al. Biofilm-associated protein: news from Acinetobacter[J].BMC Genomics, 2015, 14(16):933.
[9] Choi AH, Slamti L, Avci FY, et al. The pgaABCD locus of Acinetobacter baumannii encodes the production of poly-beta-1-6-NDeacetylglucosamine, which is critical for biofilm formation[J].Bacteriol, 2009, 191:5953~5963.
[10] Gaddy JA, Tomaras AP, Actis LA. The Acinetobacter baumannii 19606 OmpA protein plays a role in biofilm formation on abiotic surfaces and in the interaction of this pathogen with eukaryotic cells[J].Infect Immun, 2009, 77(8): 3150~3160.
[11] Doi Y,Murray GL,Peleg AY. Acinetobacter baumannii: evolution of antimicrobial resistance-treatment options[J].Semin Respir Crit Care Med, 2015, 36(1):85~98.
[12] Bentancor LV, Camacho-Peiro A, Bozkurt-Guzel C, et al. Identification of Ata, a multifunctional trimeric autotransporter of Acinetobacter baumannii[J].Bacteriol, 2012, 194(15):3950~3960.
[13] Rodriguez-Bano J, Marti S, Soto S, et al. Biofilm formation in Acinetobacter baumanii: associated features and clinical implications[J].Clin Microbiol Infect, 2008, 14(3): 276~278.
[14] Vijayakumar S,Rajenderan S,Laishram S, et al. BiofilmFormationandMotilityDependon theNatureof theAcinetobacterbaumanniiClinicalIsolates [J].Front Public Health, 2016, 24(4):105.
[15] Lee HW, Koh YM, Kim J, et al. Capacity of multidrug-resistant clinical isolates of Acinetobacter baumanii to form biofilm and adhere to epithelial cell surfaces[J].Clin Microbiol Infect, 2008, 14(1): 49~54.
[16] Sanchez CJ, Mende K, Beckius ML, et al. Biofilm formation by clinical isolates and the implications in chronic infections[J].BMC Infect Dis, 2013, 13: 47.
[17] De Breij A, Gaddy J, Van der Meer J, et al. CsuA/BABCDE-dependent pili are not involved in the adherence of Acinetobacter baumannii ATCC19606(T) to human airway epithelial cells and their inflammatory response[J].Res Microb, 2009, 160(3):213~218.
[18] Brossard KA, Campagnari AA. The acinetobacter baumannii biofilm-associated protein plays a role in adherence to human epithelial cells[J].Infect Immun, 2012, 80(1):228~233.
[19] Smani Y, Dominguez-Herrera J, Pachón J. Association of the outer membrane protein Omp33 with fitness and virulence of acinetobacter baumannii[J].Infect Dis, 2013, 208(10):1561~1570.
[20] Zhang D, Xia J, Xu Y, et al. Biological features of biofilm-forming ability of acinetobacter baumannii strains derived from 121 elderly patients with hospital-acquired pneumonia[J].Clin Exp Med, 2016, 16(1):73~80.
[21] Choi CH, Lee JS, Lee YC, et al. Acinetobacter baumannii invades epithelial cells and outer membrane protein A mediates interactions with epithelial cells[J]. BMC Microbiol, 2008, 8:216.
[22] Rumbo C, Tomás M, Fernández Moreira E, et al. The Acinetobacter baumannii Omp33-36 porin is a virulence factor that induces apoptosis and modulates autophagy in human cells[J].Infect Immun. 2014, 82(11):4666~4680.
[23] Stahl J,Bergmann H,Gttig S,et al. Acinetobacter baumannii virulence is mediated by the concerted action of three phospholipases D[J].PLoS One,2015, 10(9):e0138360.
[24] Gaddy JA, Arivett BA, McConnell MJ, et al. Role of acinetobactin-mediated iron acquisition functions in the interaction of acinetobacter baumannii strain ATCC 19606T with human lung epithelial cells, Galleria mellonella caterpillars, and mice[J].Infect Immun, 2012, 80(3):1015~1024.
[25] Zimbler D L, Penwell W F, Gaddy J A, et al. Iron acquisition functions expressed by the human pathogen Acinetobacter baumannii[J].Biometals, 2009, 22(1): 23~32.
[26] Dorsey CW, Beglin MS, Actis LA. Detection and analysis of iron uptake components expressed by Acinetobacter baumannii clinical isolates[J].Clin Microbiol, 2003, 41(9):4188~ 4193.
[27] Mortensen BL,Skaar EP. The contribution of nutrient metalacquisition and metabolism to acinetobacter baumannii survival within the host[J].Front Cell Infect Microbiol,2013, 3:95.
[28] Aranda J, Bardina C, Beceiro A, et al. Acinetobacter baumannii Rec protein A in repair of DNA damage, antimicrobial resistance, general stress response and virulence[J].Bacteriol, 2011, 193(15):3740~3747.
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陳良安,Email:chenliangan301@163.com, 張 慶2, 龐桂芬2, 楊林瀛2
全軍醫(yī)學(xué)科技“十二五”科研項(xiàng)目,(編號(hào):BWS11J057)
1006-6233(2017)02-0340-04
A 【doi】10.3969/j.issn.1006-6233.2017.02.053
文獻(xiàn)綜述