朱峰++陳孝仁++錢坤++紀(jì)兆林++孔維文++楊益眾
摘要:植物NAC1轉(zhuǎn)錄因子在調(diào)控植物的抗生物脅迫反應(yīng)中起著重要的作用。為探究生物逆境相關(guān)NAC1轉(zhuǎn)錄因子的功能,通過生物信息學(xué)的方法對8個生物逆境脅迫相關(guān)NAC1蛋白氨基酸序列一致性、氨基酸組成、理化性質(zhì)、親/疏水性、保守結(jié)構(gòu)域、磷酸化位點、亞細(xì)胞定位、二級結(jié)構(gòu)及三級結(jié)構(gòu)等進(jìn)行了預(yù)測和分析。結(jié)果表明,8個生物逆境脅迫相關(guān)NAC1蛋白N-端保守性較強(qiáng),包括5個保守的亞結(jié)構(gòu)域,共同組成NAC1結(jié)構(gòu)域。C-端含有多個保守的氨基酸,具有轉(zhuǎn)錄激活功能。同時蛋白中含有多個絲氨酸(S)、蘇氨酸(T)和酪氨酸(Y)磷酸化位點。8個NAC1蛋白都為親水性蛋白,大多定位于細(xì)胞核,個別定位于細(xì)胞質(zhì)或葉綠體。二級結(jié)構(gòu)則以α-螺旋和β-折疊為主。8個NAC1蛋白三維結(jié)構(gòu)上的相似性暗示了功能上存在相似。本研究結(jié)果為進(jìn)一步挖掘生物逆境相關(guān)NAC1轉(zhuǎn)錄因子的功能和改良植物抗生物逆境特性提供理論依據(jù)。
關(guān)鍵詞:生物脅迫;NAC1轉(zhuǎn)錄因子;生物信息學(xué);抗生物逆境特性
中圖分類號: Q78文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A
文章編號:1002-1302(2016)10-0043-06
收稿日期:2016-04-14
基金項目:國家自然科學(xué)基金(編號:31500209);江蘇省高校自然科學(xué)研究面上項目(編號:15KJB210007);江蘇省揚州市自然科學(xué)基金-青年科技人才項目(編號:YZ2015106)。
作者簡介:朱峰(1985—),男,江西九江人,博士,講師,主要從事植物病理與分子生物學(xué)研究。E-mail:zhufeng@yzu.edu.cn。
[ZK)]
NAC(NAM/ATAF/CUC)轉(zhuǎn)錄因子家族是目前發(fā)現(xiàn)的最大的一類植物特有的轉(zhuǎn)錄因子,在其他真核生物中尚未發(fā)現(xiàn)該家族成員[1-2]。NAC家族的命名源于矮牽牛(Petunia hybrida)NAM(no apical meristem)和擬南芥(Arabidopsis thaliana)[WTBX][STBX]ATAF1、ATAF2[WTBZ][STBZ]以及[WTBX][STBX]CUC2[WTBZ][STBZ](cup-shaped cotyledon)基因[3-4]。研究表明,NAC轉(zhuǎn)錄因子具有多種功能,在植物的生長發(fā)育、器官建成、激素信號應(yīng)答及逆境脅迫中均發(fā)揮重要的作用,已成為當(dāng)前植物基因功能及表達(dá)網(wǎng)絡(luò)調(diào)控研究中的熱點[2,5-6],如枝頂端分生組織發(fā)育[7]、植物的衰老[8-10]、細(xì)胞分裂[11]、植物激素調(diào)控與信號轉(zhuǎn)導(dǎo)[12-13]和參與生物脅迫中植物的防御反應(yīng)[14-16]等。
NAC轉(zhuǎn)錄因子是一個龐大的家族,大量的NAC基因被識別,其中在擬南芥中已發(fā)現(xiàn)117個NAC基因,水稻中發(fā)現(xiàn)151個NAC基因,葡萄中發(fā)現(xiàn)79個NAC基因,煙草中發(fā)現(xiàn)152個NAC基因[17]。越來越多的研究表明了NAC1基因在調(diào)控植物的抗生物脅迫反應(yīng)起著重要的作用。辣椒[WTBX][STBX]CaNAC1[WTBZ][STBZ]在細(xì)菌性斑點病菌侵染后快速誘導(dǎo),而且非寄主病菌侵染和抗病信號分子SA和ET處理后也能誘導(dǎo)[WTBX][STBX]CaNAC1[WTBZ][STBZ]強(qiáng)烈的表達(dá)[18]。先前的研究表明假單胞桿菌可以誘導(dǎo)番茄[WTBX][STBX]SlNAC1[WTBZ][STBZ]基因的表達(dá)[19],進(jìn)一步研究表明番茄[WTBX][STBX]SlNAC1[WTBZ][STBZ]在調(diào)控植物抗性抵抗假單胞桿菌侵染起著重要的作用,并且番茄[WTBX][STBX]SlNAC1[WTBZ][STBZ]和本生煙[WTBX][STBX]NbNAC1[WTBZ][STBZ]有高度的同源性,抑制[WTBX][STBX]NbNAC1[WTBZ][STBZ],削弱植物的抗性,增加本生煙對假單胞桿菌的敏感性[20]。葡萄[WTBX][STBX]VvNAC1[WTBZ][STBZ]基因調(diào)控葡萄的防御反應(yīng)應(yīng)答壞死型和活體營養(yǎng)型病原菌的入侵,在擬南芥中過量表達(dá)[WTBX][STBX]VvNAC1[WTBZ][STBZ]基因可以增強(qiáng)植物對壞死型和活體營養(yǎng)型病原菌的入侵,并且防御相關(guān)的植物激素(如SA、MeJA、ABA和乙烯)可以誘導(dǎo)葡萄[WTBX][STBX]VvNAC1[WTBZ][STBZ]基因的表達(dá)[21]。在大麥中過量表達(dá)[WTBX][STBX]HvSNAC1[WTBZ][STBZ]基因能夠增強(qiáng)大麥對鐮刀菌的抗性,減輕葉斑病癥狀[22]。一些研究表明,NAC轉(zhuǎn)錄因子在應(yīng)答病毒入侵時也起著一定的作用。番茄曲葉病毒(tomato leaf curl virus,TLCV)能夠誘導(dǎo)番茄[WTBX][STBX]SlNAC1[WTBZ][STBZ]基因的表達(dá),并且該病毒編碼的Ren(geminiviral replication enhancer)蛋白能與[WTBX][STBX]SlNAC1[WTBZ][STBZ]蛋白相互作用,過量表達(dá)SlNAC1后可以加速TLCV的DNA積累[23]。
因此本研究將通過生物信息學(xué)的方法對生物逆境脅迫相關(guān)的普通煙[WTBX][STBX]NtNAC1[WTBZ][STBZ]、番茄[WTBX][STBX]SlNAC1[WTBZ][STBZ]、擬南芥[WTBX][STBX]AtATAF1[WTBZ][STBZ]、辣椒[WTBX][STBX]CaNAC1[WTBZ][STBZ]、大麥[WTBX][STBX]HvSNAC1[WTBZ][STBZ]、小麥[WTBX][STBX]TaNAC1[WTBZ][STBZ]、水稻[WTBX][STBX]OsNAC1[WTBZ][STBZ]和葡萄[WTBX][STBX]VvNAC1[WTBZ][STBZ]轉(zhuǎn)錄因子的理化性質(zhì)、等電點、親/疏水性、序列一致性、磷酸化位點、保守結(jié)構(gòu)域、亞細(xì)胞定位、二級結(jié)構(gòu)和蛋白三維結(jié)構(gòu)等進(jìn)行預(yù)測和比較分析,旨在為進(jìn)一步挖掘生物逆境相關(guān)NAC1轉(zhuǎn)錄因子的功能和改良植物抗生物逆境特性提供理論支持。
1材料與方法
1.1材料
從NCBI(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/)的GenBank上下載普通煙[WTBX][STBX]NtNAC1[WTBZ][STBZ]、番茄[WTBX][STBX]SlNAC1[WTBZ][STBZ]、擬南芥[WTBX][STBX]AtATAF1[WTBZ][STBZ]、辣椒[WTBX][STBX]CaNAC1[WTBZ][STBZ]、大麥[WTBX][STBX]HvSNAC1[WTBZ][STBZ]、小麥[WTBX][STBX]TaNAC1[WTBZ][STBZ]、水稻[WTBX][STBX]OsNAC1[WTBZ][STBZ]和葡萄[WTBX][STBX]VvNAC1[WTBZ][STBZ]轉(zhuǎn)錄因子的氨基酸序列。
1.2NAC1蛋白氨基酸序列比對及系統(tǒng)發(fā)生樹構(gòu)建
利用DNAMAN軟件進(jìn)行氨基酸序列一致性分析。利用在線程序Clustal Omega(http://www.ebi.ac.uk/Tools/msa/clustalo/)進(jìn)行氨基酸多重序列比對。利用MEGA 5.0軟件[24]構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)生樹,采取遺傳距離建樹法的相鄰連接法(neighbor-joining,NJ)建樹,對構(gòu)建的樹進(jìn)行自檢(bootstrap),重復(fù)設(shè)定為1 000。
1.3NAC1蛋白一級結(jié)構(gòu)及理化特性分析
利用在線程序ProtParam(http://web.expasy.org/protparam/)對蛋白理化性質(zhì)進(jìn)行分析[25]。利用在線程序ProtScale(http://web.expasy.org/protscale/)進(jìn)行氨基酸疏水性分析,利用NetPhos 2.0 Server (http://www.cbs.dtu.dk/services/NetPhos/)進(jìn)行蛋白磷酸化位點修飾分析[26]。
1.4NAC1蛋白二級結(jié)構(gòu)預(yù)測及亞細(xì)胞定位分析
[JP2]利用在線程序SOPMA(https://npsa-prabi.ibcp.fr/cgi-bin/npsa_automat.pl?page=npsa_sopma.html)預(yù)測α-螺旋(alpha helix)、β-折疊(extended strand)、β-轉(zhuǎn)角(beta turn)、無規(guī)卷曲(random coil)等蛋白二級結(jié)構(gòu)。利用在線程序WoLF PSORT(http://www.genscript.com/wolf-psort.html)進(jìn)行蛋白亞細(xì)胞定位[27]。
1.5NAC1蛋白三級結(jié)構(gòu)預(yù)測
利用SWISS-MODEL workspace (http://swissmodel.expasy.org/workspace/) 對蛋白的三維結(jié)構(gòu)進(jìn)行同源模擬[28]。其中[WTBX][STBX]SlNAC1、CaNAC1、AtATAF1 TaNAC1、NtNAC1、OsNAC1和HvSNAC1[WTBZ][STBZ]的模板PDB號都是3ulxA,VvNAC1的模板PDB號是1ut7B。然后通過UCSF Chimera軟件將蛋白三維結(jié)構(gòu)讀取出來[29]。
2結(jié)果與分析
2.1NAC1蛋白氨基酸序列比對及系統(tǒng)發(fā)生樹構(gòu)建
通過DNAMAN軟件對這8個生物逆境脅迫相關(guān)NAC1蛋白氨基酸序列的一致性進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)它們的氨基酸序列一致性為46.52%。進(jìn)一步通過在線程序Clustal Omega對它們進(jìn)行多重序列比對,尋找NAC1中的保守區(qū)域。如圖1所示,8個生物逆境脅迫相關(guān)NAC1轉(zhuǎn)錄因子在氨基酸序列N-端保守性較強(qiáng),其結(jié)構(gòu)域由高度保守的約150個氨基酸殘基組成。C-端氨基酸則具有高度的多樣性,但C-端仍有幾個較為保守的氨基酸,如酪氨酸(Y)、亮氨酸(L)、纈氨酸(V)、絲氨酸(S)。利用MEGA 5.0軟件對這8個生物逆境脅迫相關(guān)NAC1蛋白構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹。如圖2所示,SlNAC1和CaNAC1親緣關(guān)系最近,和AtATAF1親緣關(guān)系稍近,與 NtNAC1 的親緣關(guān)系最遠(yuǎn)。[FL)]
[FK(W33][TPZF1.tif][FK)]
[FK(W8][TPZF2.tif][FK)]
2.2NAC1蛋白理化性質(zhì)及親疏水性分析
利用在線程序ProtParam預(yù)測NAC1蛋白的理化性質(zhì)(表1),結(jié)果表明,NtNAC1、OsNAC1、SlNAC1和CaNAC1為穩(wěn)定蛋白,而TaNAC1、VvNAC1、HvSNAC1和AtATAF1為不穩(wěn)定蛋白。由預(yù)測的等電點可知,生物逆境脅迫相關(guān)NAC1蛋白中堿性等電點居多,如NtNAC1、SlNAC1、CaNAC1、TaNAC1和VvNAC1,也有酸性等電點,如OsNAC1、HvSNAC1、AtATAF1。從蛋白組成可以看出,NtNAC1中精氨酸(Arg)含量最高,TaNAC1中亮氨酸(Leu)含量最高,OsNAC1和HvSNAC1中丙氨酸(Ala)含量最高,VvNAC1和AtATAF1中脯氨酸(Pro)含量最高,SlNAC1和CaNAC1中賴氨酸(Lys)含量最高。
另外由表1可以看出,8個生物逆境脅迫相關(guān)NAC1蛋白的親水性平均系數(shù)都為負(fù)值,說明它們都是親水性蛋白,其中SlNAC1的親水性平均系數(shù)最小,說明SlNAC1蛋白的親水性最強(qiáng)。為了進(jìn)一步證實NAC1蛋白都屬于親水性蛋白,利用在線程序ProtScale對8個生物逆境脅迫相關(guān)NAC1蛋白進(jìn)行疏水性/親水性預(yù)測(圖3)。根據(jù)氨基酸分值越低親水性越強(qiáng)和分值越高疏水性越強(qiáng)的規(guī)律,介于+0.5至-0.5之間
的主要為兩性氨基酸,從整體來看,這8個生物逆境脅迫相關(guān)NAC1蛋白氨基酸的分值為負(fù)值,也就說明了它們都為親水性蛋白。從圖3還可以看出,SlNAC1蛋白氨基酸整體上的分值是最低的,說明了SlNAC1蛋白的親水性最好。這也證實了在線程序ProtParam預(yù)測8個生物逆境脅迫相關(guān)NAC1蛋白都為親水性蛋白的結(jié)果。其中在SlNAC1多肽鏈中第252位的谷氨酸(Glu)具有最低分值為-3.122,親水性最強(qiáng),第44位的異亮氨酸(Ile)具有最高分值2.389,疏水性最強(qiáng)。
2.3NAC1蛋白磷酸化分析
蛋白質(zhì)合成后,化學(xué)修飾是一種對其活性進(jìn)行調(diào)節(jié)的重要形式。因此對氨基酸序列翻譯后修飾的預(yù)測和分析可以為認(rèn)識蛋白質(zhì)的亞細(xì)胞定位以及推測蛋白功能提供重要的幫助。蛋白質(zhì)磷酸化(protein phosphorylation)是生物界最普遍也是最重要的一種蛋白質(zhì)翻譯后修飾。蛋白質(zhì)磷酸化和去磷酸化是原核和真核生物細(xì)胞表達(dá)調(diào)控的關(guān)鍵環(huán)節(jié),對許多生物的細(xì)胞功能起開關(guān)調(diào)控作用。如蛋白激酶C的磷酸化對于基因表達(dá)、細(xì)胞分化、機(jī)體代謝和增殖起著重要的作用。其中蛋白磷酸化主要有氨基酸序列中蘇氨酸(T)、酪氨酸(Y) 和絲氨酸(S)的磷酸化。因此利用NetPhos 2.0 Server在線程序?qū)@8個NAC1蛋白氨基酸磷酸化位點進(jìn)行了預(yù)測。生物逆境脅迫相關(guān)NAC1蛋白的磷酸化位點數(shù)量如表2所示。結(jié)果顯示,這8個生物逆境脅迫相關(guān)NAC1蛋白中絲氨酸磷酸化位點最多。
2.4NAC1蛋白二級結(jié)構(gòu)預(yù)測及亞細(xì)胞定位分析
蛋白質(zhì)的二級結(jié)構(gòu)主要有α-螺旋、 β-折疊、β-轉(zhuǎn)角和無規(guī)卷曲等。如表3所示,通過在線程序SOPMA的預(yù)測,結(jié)果表明,生物逆境脅迫相關(guān)NAC1蛋白中無規(guī)卷曲的比例較高(38.66%~54.33%),它具有連接其他二級結(jié)構(gòu)元件的作用;此外的主要二級結(jié)構(gòu)元件有α-螺旋(18.69%~32.80%)和β-折疊(14.63%~24.57%)。生物逆境脅迫相關(guān)NAC1蛋白二級結(jié)構(gòu)預(yù)測見圖4,它們在二級結(jié)構(gòu)上也具有較高的相似性。尤其是SlNAC1和CaNAC1中的二級結(jié)構(gòu)(如α-螺旋和β-折疊)出現(xiàn)的氨基酸殘基的位置比較相近,同樣[WTBX][STBX]OsNAC1和HvSNAC1[WTBZ][STBZ]中的二級結(jié)構(gòu)出現(xiàn)的氨基酸殘基的位置也很相近。
利用在線程序WOLF PSORT分別對8個NAC1成員蛋白質(zhì)的亞細(xì)胞定位進(jìn)行分析,結(jié)果以得分形式表現(xiàn)。結(jié)果(表4)表明,TaNAC1定位于細(xì)胞質(zhì)的可能性較大,CaNAC1定位于葉綠體的可能性較大,其余蛋白定位于細(xì)胞核,這也從側(cè)面表明了這些轉(zhuǎn)錄因子的存在及其發(fā)揮功能的場所主要是細(xì)胞核。
2.5NAC1蛋白三維結(jié)構(gòu)分析
蛋白質(zhì)三級結(jié)構(gòu)的預(yù)測和分析對理解蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)和功能
3討論與結(jié)論
植物轉(zhuǎn)錄因子的研究不僅是當(dāng)前生物科學(xué)研究領(lǐng)域的熱點,而且是功能基因組學(xué)研究的重要內(nèi)容之一。大量研究表明,NAC轉(zhuǎn)錄因子在植物生長發(fā)育中具有重要的調(diào)控作用[2],而且也參與植物對干旱、高鹽、低溫等非生物和病原菌侵染等生物脅迫的抗逆反應(yīng)、激素信號途徑的轉(zhuǎn)導(dǎo)、機(jī)體的凋亡等方面[2,5-6]。越來越多的研究表明,[WTBX][STBX]NAC1[WTBZ][STBZ]基因在調(diào)控植物的抗生物脅迫(如細(xì)菌、真菌、病毒的侵染)方面起著重要的作用。因此本研究重點針對[WTBX][STBX]NAC1[WTBZ][STBZ]基因進(jìn)行了生物信息學(xué)分析。
氨基酸序列比對結(jié)果表明NAC1轉(zhuǎn)錄因子在N-端保守性非常強(qiáng),其結(jié)構(gòu)域可以分為5個亞結(jié)構(gòu)域。研究表明,NAC轉(zhuǎn)錄因子C-端富含酸性氨基酸、谷氨酰胺和脯氨酸等氨基酸時,一般是轉(zhuǎn)錄激活區(qū)域[30-32]。本研究比對結(jié)果顯示,生物逆境脅迫相關(guān)NAC1轉(zhuǎn)錄因子的C-端氨基酸組成比較符合這個特征,推測參與轉(zhuǎn)錄激活。近年來,關(guān)于核定位信號 (nuclear localization signal,NLS)的研究已經(jīng)越來越深入,大致可分為以下3類[33]:(1)單一型(monopartite)NLS。這種NLS最初發(fā)現(xiàn)存在于猿猴病毒40的大T抗原中,包含7個氨基酸(PKKKRKV)的短肽[34]。單一型NLS一般是由4~8個氨基酸組成的短肽,富含帶正電荷的Lys-和Arg-,通常還含有Pro。(2)雙分型(bipartite)NLS。這種NLS是由2簇堿性氨基酸組成,中間是由10~12個非保守性氨基酸分隔而形成的序列。研究表明雙向的信號可能是標(biāo)準(zhǔn)的NLS[35]。Nogueira等發(fā)現(xiàn)SsNAC23包含1個雙向的核定位信號[36-37]。(3)其他類型NLS。除上述2類典型的NLS外,還有一些沒有特定序列特征的NLS,它們主要存在于可在細(xì)胞核和細(xì)胞質(zhì)間穿梭的蛋白質(zhì)中。本研究中8個生物逆境脅迫NAC1轉(zhuǎn)錄因子大多定位于細(xì)胞核,由亞細(xì)胞定位的結(jié)果可以推斷,具有相近生物學(xué)功能的NAC1蛋白可能定位于相同的亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)。
對這些生物逆境脅迫NAC1蛋白的二級結(jié)構(gòu)進(jìn)行分析進(jìn)一步得知這些蛋白均屬于親水蛋白,但他們在親水程度方面存在差異。SlNAC1蛋白的親水性最強(qiáng),表明SlNAC1蛋白更易水解。蛋白三維結(jié)構(gòu)與其生物學(xué)功能息息相關(guān)[38]。通過SWISS-MODEL workspace 對NAC1蛋白三維結(jié)構(gòu)進(jìn)行同源模擬,結(jié)果發(fā)現(xiàn),SlNAC1、CaNAC1和AtATAF1結(jié)構(gòu)相似,包含A鏈和B鏈,各自形成1個對稱的同源二聚體。目前,已有研究通過晶體衍射的方法將擬南芥ANAC蛋白和水稻脅迫響應(yīng)NAC1蛋白的結(jié)構(gòu)解析出來。結(jié)果證實它們的晶體結(jié)構(gòu)為1個對稱的同源二聚體,并且每個單體包含6個反向平行的β-折疊和3個α-螺旋[39-40]??傮w來看,8種成員的二級結(jié)構(gòu)中的α-螺旋、β-折疊和無規(guī)卷曲具有較高的保守性。這也從某種程度上反映了它們在三級結(jié)構(gòu)上的相似性以及生物學(xué)功能的相似性。
綜上所述,NAC1轉(zhuǎn)錄因子保守結(jié)構(gòu)域的序列將直接影響到NAC1蛋白的親水性、疏水性、亞細(xì)胞定位、二級結(jié)構(gòu)以及三級結(jié)構(gòu)的形成等,進(jìn)而影響NAC1蛋白的生理功能。因此本研究應(yīng)用生物信息學(xué)的方法對已知蛋白序列NAC1進(jìn)行序列比對、分析、推斷和預(yù)測其結(jié)構(gòu)和功能,為進(jìn)一步挖掘生物逆境相關(guān)NAC1轉(zhuǎn)錄因子的功能和改良植物抗生物逆境特性提供理論依據(jù)。
參考文獻(xiàn):
[1]Riechmann J L,Heard J,Martin G,et al. Arabidopsis transcription factors:genome-wide comparative analysis among eukaryotes[J]. Science,2000,290(5499):2105-2110.
[2]Olsen A N,Ernst H A,Leggio L L,et al. NAC transcription factors:structurally distinct,functionally diverse[J]. Trends in Plant Science,2005,10(2):79-87.
[3]Souer E,Vanhouwelingen A,Kloos D,et al. The no apical meristem gene of petunia is required for pattern formation in embryos and flowers and is expressed at meristem and primordia boundaries[J]. Cell,1996,85(2):159-170.
[4]Aida M,Ishida T,F(xiàn)ukaki H,et al. Genes involved in organ separation in Arabidopsis:an analysis of the cup-shaped cotyledon mutant[J]. The Plant Cell,1997,9(6):841-857.
[5]Zheng X,Chen B,Lu G,et al. Overexpression of a NAC transcription factor enhances rice drought and salt tolerance[J]. Biochemical and Biophysical Research Communications,2009,379(4):985-989.
[6]Nuruzzaman M,Sharoni A M,Satoh K,et al. Comprehensive gene expression analysis of the NAC gene family under normal growth conditions,hormone treatment,and drought stress conditions in rice using near-isogenic lines (NILs) generated from crossing Aday Selection (drought tolerant) and IR64[J]. Molecular Genetics and Genomics,2012,287(5):389-410.
[7]Nikovics K,Blein T,Peaucelle A,et al. The balance between the MIR164A and CUC2 genes controls leaf margin serration in Arabidopsis[J]. The Plant Cell,2006,18(11):2929-2945.
[8]Guo Y,Gan S. AtNAP,a NAC family transcription factor,has an important role in leaf senescence[J]. The Plant Journal,2006,46(4):601-612.
[9]Uauy C,Distelfeld A,F(xiàn)ahima T,et al. A NAC gene regulating senescence improves grain protein,zinc,and iron content in wheat[J]. Science,2006,314(583):1298-1301.[ZK)]
[10]Balazadeh S,Siddiqui H,Allu A D,et al. A gene regulatory network controlled by the NAC transcription factor ANAC092/AtNAC2/ORE1 during salt-promoted senescence[J]. The Plant Journal:for Cell and Molecular Biology,2010,62(2):250-264.
[11]Kim S Y,Kim S G,Kim Y S,et al. Exploring membrane-associated NAC transcription factors in Arabidopsis:implications for membrane biology in genome regulation[J]. Nucleic Acids Research,2007,35(1):203-213.
[12]He X J,Mu R L,Cao W H,et al. AtNAC2,a transcription factor downstream of ethylene and auxin signaling pathways,is involved in salt stress response and lateral root development[J]. The Plant Journal,2005,44(6):903-916.
[13]Kim S G,Lee A K,Yoon H K,et al. A membrane-bound NAC transcription factor NTL8 regulates gibberellic acid-mediated salt signaling in Arabidopsis seed germination[J]. The Plant Journal,2008,55(1):77-88.
[14]Delessert C,Kazan K,Wilson I W,et al. The transcription factor ATAF2 represses the expression of pathogenesis-related genes in Arabidopsis[J]. The Plant Journal,2005,43(5):745-757.
[15]Lin R M,Zhao W S,Meng X B,et al. Rice gene OsNAC19 encodes a novel NAC-domain transcription factor and responds to infection [JP2]by Magnaporthe grisea[J]. Plant Science,2007,172(1):120-130.
[16]Donze T,Qu F,Twigg P,et al. Turnip crinkle virus coat protein inhibits the basal immune response to virus invasion in Arabidopsis by binding to the NAC transcription factor TIP[J]. Virology,2014,449(20):207-214.
[17]Nuruzzaman M,Sharoni A M,Kikuchi S. Roles of NAC transcription factors in the regulation of biotic and abiotic stress responses in plants[J]. Frontiers in Microbiology,2013,4(4):248.
[18]Oh S K,Lee S,Yu S H,et al. Expression of a novel NAC domain-containing transcription factor (CaNAC1) is preferentially associated with incompatible interactions between chili pepper and pathogens[J]. Planta,2005,222(5):876-887.
[19]Mysore K S,Crasta O R,Tuori R P,et al. Comprehensive transcript profiling of Pto-and Prf-mediated host defense responses to infection by Pseudomonas syringae pv. tomato[J]. The Plant Journal,2002,32(3):299-315.
[20]Huang W,Miao M,Kud J,et al. SlNAC1,a stress-related transcription factor,is fine-tuned on both the transcriptional and the post-translational level[J]. The New Phytologist,2013,197(4):1214-1224.
[21]Le Hénanff G,Profizi C,Courteaux B,et al. Grapevine NAC1 transcription factor as a convergent node in developmental processes,abiotic stresses,and necrotrophic/biotrophic pathogen tolerance[J]. Journal of Experimental Botany,2013,64(16):4877-4893.
[22]Mcgrann G R,Steed A,Burt C A,et al. Contribution of the drought tolerance-related Stress-responsive NAC1 transcription factor to resistance of barley to Ramularia leaf spot[J]. Molecular Plant Pathology,2015,16(2):201-209.
[23]Selth L A,Dogra S C,Rasheed M S,et al. A NAC domain protein interacts with tomato leaf curl virus replication accessory protein and [JP3]enhances viral replication[J]. The Plant Cell,2005,17(1):311-325.
[24]Tamura K,Peterson D,Peterson N,et al. MEGA5:molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood,evolutionary distance,and maximum parsimony methods[J]. Molecular Biology and Evolution,2011,28(10):2731-2739.
[25]Gasteiger E,Hoogland C,Gattiker A,et al. Protein identification and analysis tools on the ExPASy server [M]. The proteomics protocols handbook. New York:Humana Press,2005:571-607.
[26]Blom N,Gammeltoft S,Brunak S. Sequence and structure-based prediction of eukaryotic protein phosphorylation sites[J]. Journal of Molecular Biology,1999,294(5):1351-1362.
[27]Horton P,Park K J,Obayashi T,et al. WoLF PSORT:protein localization predictor[J]. Nucleic Acids Research,2007,35(Web Server issue):W585-W587.
[28]Arnold K,Bordoli L,Kopp J,et al. The SWISS-MODEL workspace:a web-based environment for protein structure homology modelling[J]. Bioinformatics,2006,22(2):195-201.
[29]Zhu F,Xu M,Wang S,et al. Prokaryotic expression of pathogenesis related protein 1 gene from Nicotiana benthamiana:antifungal activity and preparation of its polyclonal antibody[J]. Biotechnology Letters,2012,34(5):919-924.
[30]Sadowski I,Ma J,Triezenberg S,et al. GAL4-VP16 is an unusually [JP3]potent transcriptional activator[J]. Nature,1988,335(6190):563-564.
[31]Courey A J,Holtzman D A,Jackson S P,et al. Synergistic activation by the glutamine-rich domains of human transcription factor Sp1[J]. Cell,1989,59(5):827-836.
[32]Mermod N,Oneill E A,Kelly T J,et al. The proline-rich transcriptional activator of CTF/NF-I is distinct from the replication and DNA binding domain[J]. Cell,1989,58(4):741-753.[ZK)][HT][HJ][HT][FL)]
[KH*4D]
[HT8.]
[33]陶華平. 核定位信號研究進(jìn)展[J]. 生物學(xué)通報,2014,49(8):5-10.
[34]Kalderon D,Richardson W D,Markham A F,et al. Sequence requirements for nuclear location of simian virus 40 large-T antigen[J]. Nature,1984,311(5981):33-38.
[35][JP3]Dingwall C,Laskey R A. Nuclear targeting sequences—a consensus?[J]. Trends in Biochemical Sciences,1991,16(12):478-481.
[36]Nogueira F S,Schlogl P S,Camargo S R,et al. SsNAC23,a member of the NAC domain protein family,is associated with cold,herbivory and water stress in sugarcane[J]. Plant Science,2005,169(1):93-106.
[37]李偉,韓蕾,錢永強(qiáng),等. 非生物逆境脅迫相關(guān)NAC轉(zhuǎn)錄因子的生物信息學(xué)分析[J]. 西北植物學(xué)報,2012,32(3):454-464.
[38]康美玲,周振華,田忠景,等. 抗逆性轉(zhuǎn)錄因子NAC的生物信息學(xué)分析[J]. 湖北農(nóng)業(yè)科學(xué),2014,53(17):4199-4204.
[39]Ernst H A,Olsen A N,Larsen S,et al. Structure of the conserved domain of ANAC,a member of the NAC family of transcription factors[J]. EMBO Reports,2004,5(3):297-303.
[40]Chen Q,Wang Q,Xiong L,et al. A structural view of the conserved domain of rice stress-responsive NAC1[J]. Protein & Cell,2011,2(1):55-63.