莊金秋,梅建國,張 穎,莫 玲,劉吉山
(山東省濱州畜牧獸醫(yī)研究院,濱州 256600)
綜述與專論
牛副流感病毒3型實驗室檢測方法研究進展
莊金秋,梅建國,張 穎,莫 玲,劉吉山
(山東省濱州畜牧獸醫(yī)研究院,濱州 256600)
牛呼吸道疾病綜合征是引起世界范圍內(nèi)飼養(yǎng)牛發(fā)病和死亡的主要原因,嚴重危害著世界養(yǎng)牛業(yè)的發(fā)展。牛副流感病毒3型是引起牛呼吸道疾病綜合征的主要病原之一,主要引起成年牛和犢牛的肺炎、支氣管肺炎等。文章綜述了近年來牛副流感病毒3型的最新實驗室檢測方法研究進展,以期為預(yù)防和控制疾病提供參考。
牛副流感病毒3型;牛呼吸道疾病綜合征;檢測;研究進展
牛呼吸道疾病綜合征(bovine respiratory disease complex,BRDC)是引起世界范圍內(nèi)飼養(yǎng)牛發(fā)病和死亡的主要原因,嚴重危害著世界養(yǎng)牛業(yè)的發(fā)展。牛副流感病毒3型(bovine parainfluenza virus type 3,BPIV3)與牛呼吸道合胞體病毒(bovine respiratorysyncytialvirus,BRSV)、牛病毒性腹瀉病毒(bovine viraldiarrhea virus,BVDV)、牛傳染性鼻氣管炎病毒(infectious bovine rhinotracheitis virus,IBRV)一起構(gòu)成了BRDC的主要病原。BPIV3通常被稱為“運輸熱”病毒,為副黏病毒科呼吸道病毒屬的成員。BPIV3感染主要引起成年牛和犢牛的肺炎、支氣管肺炎和被感染肺葉的實質(zhì)性病變。此病在臨床上主要表現(xiàn)為發(fā)熱、流淚、流鼻涕和呼吸加快等癥狀。BPIV3最早分離于美國,目前在牛群中的感染已呈世界性分布。BPIV3有3個基因型,分別為A型、B型和C型,國內(nèi)分離株主要為A型和C型。BPIV3本身致病力不強,但在其他繼發(fā)性細菌(特別是多殺性巴氏桿菌或溶血性巴氏桿菌)及外界誘因(特別是長途運輸中受寒、饑餓、擁擠、氣候惡劣等)的聯(lián)合作用下,則可產(chǎn)生嚴重呼吸道癥狀,甚至可引起病牛的死亡。目前我國對BPIV3的研究尚處于起步階段,在臨床預(yù)防和治療中還沒有安全、高效的疫苗和藥物。本文綜述了近年來BPIV3的最新實驗室檢測方法研究進展,以期為預(yù)防和控制疾病提供參考。
病原學檢測方法最常用的為病毒的分離與鑒定,采集病牛的鼻拭子擦拭液或病變組織,經(jīng)處理后接種牛腎傳代細胞(MDBK)培養(yǎng)。BPIV3在細胞上通常會產(chǎn)生典型的細胞病變(CPE),如細胞融合和蝕斑等。有一些毒株不會產(chǎn)生明顯的CPE,可以通過使用紅細胞吸附試驗來確認是否有病毒的存在,常用的方法有牛紅細胞吸附試驗法和豚鼠紅細胞吸附試驗法,但有些毒株要在體外適應(yīng)一段時間后才能出現(xiàn)紅細胞吸附現(xiàn)象。電鏡觀察BPIV3是具有囊膜的病毒,并且大小在150~250 nm。劉鵬[1]利用MDBK細胞從黑龍江某牛場病牛鼻液中分離到1株可產(chǎn)生特定的CPE,經(jīng)過理化特性和核酸序列測定分析后確定為A型BPIV3。呂闖等[2]在我國山東省首次分離到基因C型的BPIV3。
2.1 血凝和血凝抑制試驗(HA和HI)
副黏病毒為主要的紅細胞凝集性病毒,BPIV3可以凝集雞、豚鼠和人的“O”型紅細胞,根據(jù)這一特性可以鑒定BPIV3。由于牛血清具有非特異性的血凝抑制活性,在進行HI試驗前應(yīng)進行預(yù)處理,以消除非特異性反應(yīng)。BPIV3感染程度較輕的牛不出現(xiàn)臨床癥狀,但HI效價一般可達1∶40;感染后出現(xiàn)臨床癥狀的牛血清的HI效價則可達1∶640,甚至更高。在檢測時最好有急性期和康復(fù)期的雙份血清的結(jié)果才有說服力。HA和HI試驗因成本低、操作方便、能在短時間內(nèi)獲得結(jié)果等優(yōu)點而成為該病毒常用的檢測方法,但BPIV3在保存和運輸過程中均存在很大的變異性,試驗往往會導(dǎo)致假陰性的誤判。
2.2 免疫熒光試驗
王海勇[3]初步建立了檢測BPIV3的直接免疫熒光方法,具有良好的敏感性和特異性,檢測到BPIV3的最小劑量為10 TCID50/mL,為BPIV3抗原的檢測提供了重要的手段。
2.3 中和試驗
中和試驗是經(jīng)典的鑒定BPIV3的血清學檢測方法?;糁驹频龋?]為了解我國北方3?。▍^(qū))牛副流感病毒3型的感染狀況,從內(nèi)蒙古、吉林、山西3個省采集牛血清樣品482份,采用病毒中和試驗方法進行BPIV3抗體檢測。結(jié)果482份血清中BPIV3陽性共439份,陽性率為91.08%,表明這3?。▍^(qū))牛群中普遍存在BPIV3的感染。王海勇等[5]從黑龍江、遼寧、新疆、云南、貴州、廣西、河北、山東、河南、江西、湖南和福建12個省份采集牛血清樣品2 489份,采用血清中和試驗進行BPIV3抗體檢測,結(jié)果除江西省血清樣品陽性率為27.8%之外,其他省份陽性率均高于50%;2 489份血清樣品中陽性樣品數(shù)為1 932份,總體陽性率為77.6%。表明BPIV3在我國流行比較廣泛,迫切需要對該病毒進行深入研究以有效防控BPIV3感染。中和試驗準確性高,許多新建立的方法必須都以該方法作為標準進行比較。但是,該方法操作復(fù)雜,試驗周期長,限制了其在臨床上的快速診斷。
2.4 ELISA
吳海濤[6]和史鴻飛[7]分別用原核表達的BPIV3 HN蛋白和N蛋白作為包被抗原初步建立了檢測BPIV3抗體的間接ELISA方法。劉鵬[1]利用純化后的重組N蛋白作為包被抗原,建立了間接ELISA方法。應(yīng)用該法對黑龍江省部分地區(qū)的603份牛血清樣本進行檢測,BPIV3的抗體陽性率為78.44%。周玉龍等[8]以原核表達的BPIV3 HJ-1株重組HN蛋白為包被抗原,建立了間接ELISA方法,與病毒中和試驗符合率高達96%。呂闖[9]用碳酸鹽緩沖液(CBS)將BPIV3粗分離病毒液作200倍稀釋包被ELISA板,以制備的BPIV3核衣殼蛋白的5E5單抗為待阻斷抗體,通過方陣滴定試驗確定最佳反應(yīng)條件,初步建立了固相阻斷ELISA(SPB-ELISA),對231份免疫牛血清及54份來自哈爾濱周邊地區(qū)的牛血清進行抗體檢測,結(jié)果免疫牛血清中陽性血清樣品數(shù)為220份,陽性率為95.2%;哈爾濱周邊地區(qū)牛血清中陽性血清樣品數(shù)為34份,陽性率為62.9%。任建樂[10]成功制備了7株針對NP蛋白的單克隆抗體,并對其中效價高的5株單克隆抗體進行了表位鑒定,鑒定出兩個抗原表位。用針對上述兩個不同抗原表位的單抗6F8和7G9建立了雙抗體夾心ELISA(DAS-ELISA)方法。李麗陽等[11]以純化的兔抗BPIV3多克隆抗體(PAb)作為包被抗體,鼠抗BPIV3單克隆抗體(MAb)作為檢測抗體,采用棋盤滴定法確定DAS-ELISA的最適工作條件,建立了BPIV3雙抗體夾心ELISA方法。利用該方法和RT-PCR法對75份牛鼻拭子臨床樣品進行檢測,兩者符合率為94.6%。楊建樂等[12]通過分析NP和HN蛋白主要抗原表位區(qū)并對其串聯(lián)后原核表達,以純化的重組蛋白為包被抗原建立了間接ELISA方法,對采自山東、遼寧和天津的270份臨床血清樣本檢測后總的陽性率為82.59%(223/270)。ELISA方法適用于獸醫(yī)基層臨床樣品的大規(guī)模檢測。
3.1 RT-PCR
Vaucher等[13]根據(jù)BPIV3的HN基因的保守區(qū)域設(shè)計引物建立了RT-PCR方法,在所有的檢測樣品中都能夠檢測到大小為1 009 bp的目的條帶。國內(nèi)劉鵬[1]根據(jù)BPIV3HN基因序列設(shè)計引物,建立了RT-PCR方法。劉曉樂等[14]分別針對BPIV3NP蛋白和BVDV E2基因設(shè)計2對引物,經(jīng)優(yōu)化反應(yīng)條件建立了快速鑒別BPIV3和BVDV的雙重RT-PCR方法,BPIV3的敏感度可達10-3TCID50/0.1mL。Thonur等[15]針對IBRV的糖蛋白B基因、BRSV核衣殼基因、BPIV3的核蛋白基因設(shè)計的多重反轉(zhuǎn)錄定量PCR(mRT-qPCR),通過對臨床541份樣品檢測與傳統(tǒng)的病毒分離和間接免疫熒光抗體試驗技術(shù)比較,證明了該方法更快速,特異性高,并且比病毒分離和間接免疫熒光抗體技術(shù)更加敏感。索陽等[16]選擇BVDV的5′UTR序列附近保守核苷酸序列,BRSV的F基因的保守區(qū)及BPIV3高度保守性NP蛋白基因設(shè)計引物,建立了可用于檢測上述3種病毒的三重RT-PCR方法。該三重RT-PCR技術(shù)能檢出10 pg的BVDV、1pg的BPIV3和10 pg的BRSV。倪宏斌等[17]從新疆石河子、奎屯、庫爾勒、沙灣、阿克蘇地區(qū)的5個規(guī)?;膛霾杉?月齡以內(nèi)犢牛鼻液206份,其中發(fā)病犢牛180份,相同日齡健康犢牛46份,通過采用雙抗體夾心ELISA的方法檢測BPIV3抗原,RT-PCR方法檢測BPIV3M基因,并挑選不同地區(qū)的8株病毒進行序列分析比較其同源性,進行基因分型。結(jié)果ELISA方法檢測的感染率僅為2.43%,PCR方法檢測的感染率為35.44%。擴增的M基因序列同源性為97.90%,與參考的BPIV3 A亞型毒株的同源性為96.4%~99.6%,將其劃分為BPIV3 A亞型。
3.2 熒光定量RT-PCR
董秀梅等[18]基于BPIV3M基因設(shè)計引物及探針,建立了Taq Man實時熒光定量RT-PCR檢測方法,用于快速定量檢測BPIV3。
3.3 RT-LAMP
師新川等[19]依據(jù)BPIV3NP基因保守序列設(shè)計4條特異性引物,建立了RT-LAMP方法,整個反應(yīng)過程只需60min,檢測最低限達0.069 fg/μL,為普通RT-PCR靈敏度的1 000倍。在反應(yīng)體系中添加熒光染料后,可通過肉眼直接判斷有無擴增產(chǎn)物而不需要凝膠電泳,在基層的快速檢測中具有較好的應(yīng)用前景。
3.4 液相芯片技術(shù)
Anderson等[20]用美國Luminex公司研制的液相芯片技術(shù)設(shè)計了多重檢測牛血清抗體技術(shù),可以在一個血清樣本中同時檢測病原BVDV、IBRV、BPIV3、BRSV相應(yīng)的抗體,并與ELISA相比較,其敏感度、特異性基本一致,實現(xiàn)了一個液相反應(yīng)體系下檢測多種病原抗體的技術(shù),該技術(shù)最高可同時檢測多達100種病原,在未來傳染病診斷技術(shù)中有很好的應(yīng)用前景。
目前我國牛群中已經(jīng)普遍存在BPIV3的感染,嚴重危害著養(yǎng)牛業(yè)的健康發(fā)展。由于此病尚無特效治療藥物和方法,且隨著我國養(yǎng)牛業(yè)的集約化發(fā)展,不少牛舍養(yǎng)殖密度大、空氣質(zhì)量差,這些因素的存在為該病的傳播和流行提供了可能。本文所述的檢測方法各有優(yōu)缺點,在實際應(yīng)用中可以根據(jù)具體情況及對檢測結(jié)果的要求來選擇合適的檢測方法,也可以將多種方法結(jié)合使用。隨著檢測方法的不斷改進以及新技術(shù)的不斷創(chuàng)新,BPIV3的檢測方法也將日趨發(fā)展完善,相信研制更加靈敏、特異、方便、適用于基層的檢測技術(shù)指日可待,這必將為預(yù)防牛呼吸道疾病的發(fā)生具有重要意義。
[1] 劉鵬.牛副流感病毒3型的分離鑒定和間接ELISA方法建立及初步應(yīng)用[D].黑龍江大慶:黑龍江八一農(nóng)墾大學,2010.
[2] 呂闖,朱遠茂,董秀梅,等.牛副流感病毒3型NP單抗的制備及初步應(yīng)用[J].中國預(yù)防獸醫(yī)學報,2011,33(12):970-973.
[3] 王海勇.牛副流感病毒3型血清學調(diào)查及其單克隆抗體的制備與應(yīng)用[D].北京:中國農(nóng)業(yè)科學院,2014.
[4] 霍志云,童欽,胡嘉欣,等.北方三?。▍^(qū))牛副流感病毒3型的血清學調(diào)查[J].動物醫(yī)學進展,2012,33(9):124-126.
[5] 王海勇,童欽,王煒,等.我國牛副流感病毒3型血清學調(diào)查[J].中國預(yù)防獸醫(yī)學報,2014,36(2):154-156.
[6] 吳海濤.牛副流感病毒3型的分離鑒定和間接ELISA方法建立及初步應(yīng)用[D].黑龍江大慶:黑龍江八一農(nóng)墾大學,2010.
[7] 史鴻飛.牛副流感病毒3型山東分離株核衣殼蛋白表達鑒定、多抗制備及應(yīng)用[D].北京:中國農(nóng)業(yè)科學院,2010.
[8] 周玉龍,任亞超,朱戰(zhàn)波,等.牛副流感病毒3型HN基因原核表達及間接ELISA方法建立[J].病毒學報,2012,28(1):23-28.
[9] 呂闖.牛副流感病毒3型NP單抗制備及固相阻斷ELISA的建立和應(yīng)用[D].北京:中國農(nóng)業(yè)科學院,2012.
[10]任建樂.牛副流感病毒3型NP蛋白單抗制備及其抗原表位鑒定與雙抗夾心ELISA建立[D].北京:中國農(nóng)業(yè)科學院,2015.
[11]李麗陽,李艷婷,余麗蕓,等.牛副流感病毒3型雙抗體夾心ELISA檢測方法的建立[J].中國預(yù)防獸醫(yī)學報,2016,38(2):132-136.
[12]楊建樂,趙貴民,侯佩莉,等.牛副流感病毒3型抗體間接ELISA檢測方法的建立與初步應(yīng)用[J].動物醫(yī)學進展,2016,37(11):19-24.
[13]Vaucher R D,Simonetti A B,Roehe PM.RT-PCR for detection of bovineparainfluenza virus type3(BPIV-3)[J].Acta Scientiae Veterinariae,2008,36(3):215-220.
[14]劉曉樂,張敏敏,陳穎鈺,等.牛副流感病毒3型RT-PCR檢測方法的建立[J].中國奶牛,2011(22):1-4.
[15] Thonur L,Maley M,Gilray J,et al.One-step multiplex real time RT-PCR for the detection of bovine respiratory syncytial virus,bovine herpesvirus 1 and bovine parainfluenza virus 3[J].BMC Veterinary Research,2012,8:37-45.
[16]索陽,陳繼勇.牛病毒性腹瀉病毒、牛呼吸道合胞體病毒和牛副流感病毒3型三重RT-PCR檢測方法的建立及應(yīng)用[J].畜牧與獸醫(yī),2013,45(6):10-13.
[17]倪宏斌,剡根強,張坤,等.新疆部分地區(qū)牛副流感病毒3型的檢測與基因分型[J].畜牧與獸醫(yī),2016,48(12):72-75.
[18]董秀梅,朱遠茂,蔡虹,等.牛副流感病毒3型TaqMan實時熒光定量RT-PCR檢測方法的建立及應(yīng)用[J].中國獸醫(yī)科學,2014,44(6):617-623.
[19]師新川,溫永俊,王鳳雪,等.牛副流感病毒3型RT-LAMP檢測方法的建立及應(yīng)用[J].中國畜牧獸醫(yī),2012,39(11):31-34.
[20]Anderson S,Wakeley P,Wibberley G,etal.Developmentand evaluation ofa Luminexmultiplex serologyassay todetectantibodies tobovine herpes virus 1,parainfluenza 3 virus,bovine viral diarrhoea virus,and bovine respiratory syncytial virus,with comparison to existing ELISA detection methods[J].Journal of Immunological Methods,2011,366(1-2):79-88.
Progress in the Detection Methodsof the Bovine Parainfluenza Virus Type 3
Zhuang Jinqiu,Mei Jianguo,Zhang Ying,etal
(Binzhou AcademyofAnimalScience&VeterinaryMedicine,Binzhou 256600,Shandong,China)
Bovine respiratory disease complex is themain causeof themorbidity andmortalityof feeding cattle in theworld,which seriously endangers the developmentof theworld's cattle industry.Bovine parainfluenza virus type 3 isoneof themajor causesof bovine respiratory disease complex,whichmainly causes pneumonia and bronchopneumonia in adultcattle and calves.This paper reviewed the latest laboratory detectionmethodsofbovine parainfluenza virus type 3 in recentyears,so as to provide reference for prevention and controlofdisease.
bovineparainfluenzavirus type3;bovine respiratory disease complex;detection;progress
S858.23
A
2095-3887(2017)04-0046-04
10.3969/j.issn.2095-3887.2017.04.013
2017-06-01
山東省重點研發(fā)計劃項目(2015GSF121027);山東省現(xiàn)代農(nóng)業(yè)產(chǎn)業(yè)技術(shù)體系牛產(chǎn)業(yè)創(chuàng)新團隊項目(SDAIT-09-12)
莊金秋(1978-),女,副研究員,碩士,主要從事細胞培養(yǎng)和動物用病毒疫苗研制。