包玉龍,張三潤,薩日娜,鄭明霞,邢萬金,周好樂
(1.內(nèi)蒙古醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院,內(nèi)蒙古 呼和浩特 010059;2.鄂爾多斯市衛(wèi)生學(xué)校,內(nèi)蒙古 鄂爾多斯 017000;3.內(nèi)蒙古大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,內(nèi)蒙古 呼和浩特 010022)
軟體動物扇貝橫紋肌中類肌聯(lián)蛋白的純化
包玉龍1,張三潤1,薩日娜2,鄭明霞1,邢萬金3,周好樂1
(1.內(nèi)蒙古醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院,內(nèi)蒙古 呼和浩特 010059;2.鄂爾多斯市衛(wèi)生學(xué)校,內(nèi)蒙古 鄂爾多斯 017000;3.內(nèi)蒙古大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,內(nèi)蒙古 呼和浩特 010022)
利用含1 mol/L尿素的0.15 mol/L磷酸鉀緩沖液(pH=7.0)從扇貝橫紋肌肌原纖維中提取了相對分子質(zhì)量為2.0×106的類肌聯(lián)蛋白.將類肌聯(lián)蛋白提取液添加到DEAE-TOYOPEARL 650M型層析柱,利用陰離子交換柱層析法對其進(jìn)行了純化,并利用共沉淀法研究了扇貝類肌聯(lián)蛋白與纖維型肌動蛋白(F-actin)的相互作用.結(jié)果表明:纖維型肌動蛋白不產(chǎn)生沉淀,但扇貝類肌聯(lián)蛋白和纖維型肌動蛋白產(chǎn)生共沉淀,類肌聯(lián)蛋白可能是存在于軟體動物橫紋肌中的一種新型的肌聯(lián)蛋白樣蛋白.
軟體動物;扇貝;肌聯(lián)蛋白樣蛋白;蛋白提??;蛋白純化;蛋白相互作用
肌聯(lián)蛋白是相對分子質(zhì)量約為3.0×106的巨大彈性蛋白質(zhì)[1],由1個(gè)分子連接肌小節(jié)的Z線到M線[2-3].肌聯(lián)蛋白的彈性與肌小節(jié)的結(jié)構(gòu)維持和被動張力有關(guān)[4].這種彈性性質(zhì)與存在于肌小節(jié)I帶區(qū)域的免疫球蛋白(immunoglobulin,Ig)結(jié)構(gòu)域、PEVK區(qū)域、特殊序列有關(guān)[2,5-7].
另一方面,在無脊椎動物橫紋肌中從其一級結(jié)構(gòu)到抗體交叉反應(yīng)上,存在很多類似肌聯(lián)蛋白的肌聯(lián)蛋白樣蛋白(connectin-like protein).如線蟲TTN-1(C.elegansTTN-1)、小龍蝦凸出蛋白(crayfish projectin)、昆蟲凸出蛋白等[8-12].
在軟體動物平滑肌中,在細(xì)肌絲(thin filament)與粗肌絲(thick filament)相互作用而產(chǎn)生收縮后,存在一種叫作捕捉(catch)的結(jié)構(gòu),它能利用少量能量維持長時(shí)間的張力.這種狀態(tài)與相對分子質(zhì)量為53萬的肌聯(lián)蛋白樣蛋白顫搐蛋白(twitchin)有關(guān).貽貝顫搐蛋白的一級結(jié)構(gòu)已被確定,它是由24個(gè)Ig結(jié)構(gòu)域和15個(gè)纖連蛋白3型(fibronectin type 3,F(xiàn)n)結(jié)構(gòu)域組成,在C末端附近存在1個(gè)激酶結(jié)構(gòu)域.在肌小節(jié)中定位于粗肌絲,與肌球蛋白等粗肌絲組成的蛋白相結(jié)合[13-14].
到目前為止,軟體動物肌聯(lián)蛋白樣蛋白,除了顫搐蛋白以外尚未有報(bào)道.關(guān)于軟體動物橫紋肌收縮、舒展時(shí)肌小節(jié)結(jié)構(gòu)維持的機(jī)制尚不明確.在對扇貝橫紋肌全蛋白提取液進(jìn)行SDS-PAGE檢測時(shí),發(fā)現(xiàn)在相對分子質(zhì)量為2.0×106(類肌聯(lián)蛋白)的位置出現(xiàn)了條帶,并與脊椎動物肌聯(lián)蛋白抗體產(chǎn)生交叉反應(yīng).因此,該蛋白可能是存在于軟體動物中的新型的肌聯(lián)蛋白樣蛋白,可能對軟體動物橫紋肌的結(jié)構(gòu)維持與被動張力的產(chǎn)生起到?jīng)Q定性的作用.本實(shí)驗(yàn)對扇貝橫紋肌中存在的相對分子質(zhì)量為2.0×106的蛋白進(jìn)行提取純化,探討了該蛋白與肌動蛋白的相互作用.
1.1 材料
在蝦夷扇貝(Mizuhopectenyessoensis)橫紋肌中提取扇貝類肌聯(lián)蛋白;在兔骨骼肌中提取球型肌動蛋白.
1.2 實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1 SDS-PAGE和蛋白印記實(shí)驗(yàn)
SDS-PAGE采用Laemmli[15]的方法進(jìn)行,使用無濃縮膠的2.3%~4%,2%~15%,2%~6%的梯度凝膠,凝膠染色使用考馬斯亮藍(lán).
蛋白印記時(shí),先用SDS-PAGE將蛋白質(zhì)分離后,再轉(zhuǎn)膜到硝酸纖維素(NC)膜上[16].使用含3%明膠(Gelatin)的TBS緩沖液(pH=7.5)將此膜封閉,使用含1%明膠的TBS緩沖液(pH=7.5)稀釋的一抗進(jìn)行反應(yīng).TBS緩沖液漂洗后,使用含1%明膠的TBS緩沖液(pH=7.5)稀釋的辣根過氧化物酶(HRP)標(biāo)記的二抗進(jìn)行反應(yīng).用TBS緩沖液漂洗后,用3,3,-二氨基聯(lián)苯胺(DAB)顯色.
1.2.2 扇貝類肌聯(lián)蛋白的提取
在肌原纖維緩沖液(40 mmol/L KCl,5 mmol/L 磷酸鉀(pH=7.0),1 mmol/L MgCl2,0.1 mmol/L EGTA)中將扇貝橫紋肌粉碎,5 000 r/min離心5 min,棄上清,此步反復(fù)6次,制備肌原纖維.然后用1 mmol/L NaHCO3將肌原纖維漂洗10 min,6 000 r/min離心10 min,棄上清,此步反復(fù)3次;待充分膨脹后,再用30 mmol/L NaCl漂洗10min,6 000 r/min離心10 min,棄上清.離心后的殘?jiān)?.1 mol/L磷酸鉀(pH=7.0)提取15 min,6 000 r/min離心20 min,棄上清液,保留殘?jiān)?用蒸餾水將此殘?jiān)?次,使殘?jiān)械碾x子強(qiáng)度降下來后,再用30 mmol/L NaCl洗滌3次.最后使用含1 mol/L尿素的0.15 mol/L磷酸鉀(pH =7.0)提取5 min,7 000 r/min離心20 min,得到的上清液即為扇貝類肌聯(lián)蛋白提取液.
1.2.3 扇貝類肌聯(lián)蛋白的純化
將扇貝類肌聯(lián)蛋白提取液添加到用0.15 mol/L磷酸鉀(含1 mol/L尿素,pH=7.0)平衡的DEAE-TOYOPEARL 650M(TOSOH)型層析柱,然后用0.25 mol/L磷酸鉀(含1 mol/L尿素,pH=7.0)洗脫,得到扇貝類肌聯(lián)蛋白的粗純化組分.
將得到的粗純化組分在含2 mol/L尿素的0.15 mol/L磷酸鉀(pH=7.0)中透析12 h,再度添加到用0.15 mol/L磷酸鉀(含2 mol/L尿素)平衡的DEAE-TOYOPEARL 650M(TOSOH)型層析柱中,用含2 mol/L尿素的0.25 mol/L磷酸鉀緩沖液洗脫,得到扇貝類肌聯(lián)蛋白的純化組分.
1.2.4 共沉淀實(shí)驗(yàn)
將扇貝類肌聯(lián)蛋白純化組分經(jīng)0.15 mol/L磷酸鉀緩沖液(pH=7.0)透析一夜后,13 000 r/min離心20 min,取上清液作為類肌聯(lián)蛋白使用.對上清液進(jìn)行BCA法蛋白濃度測定,其質(zhì)量濃度為228 mg/mL.肌聯(lián)蛋白和肌動蛋白物質(zhì)的量比約為1∶190,因此肌動蛋白的質(zhì)量濃度為160 mg/mL,應(yīng)混合的肌聯(lián)蛋白質(zhì)量濃度為60 mg/mL.但實(shí)驗(yàn)中考慮到扇貝類肌聯(lián)蛋白純化物中的雜質(zhì)蛋白較多,估算扇貝類肌聯(lián)蛋白約占1/3,因此用扇貝類肌聯(lián)蛋白原始的質(zhì)量濃度228 mg/mL和肌動蛋白質(zhì)量濃度160 mg/mL進(jìn)行實(shí)驗(yàn).將類肌聯(lián)蛋白(228 mg/mL)和肌動蛋白(160 mg/mL)在45 mmol/L磷酸鉀緩沖液(pH=7.0)、10 mmol/L KCl 24℃條件下反應(yīng)1 h;13 000 r/min,離心30 min,分離上清和沉淀,用2%~15%的梯度凝膠進(jìn)行分離觀察.
2.1 扇貝橫紋肌蛋白的提取
利用2.3%~4.0%梯度凝膠分離的扇貝橫紋肌全蛋白提取物的結(jié)果表明,相對分子質(zhì)量2.0×105以上的位置出現(xiàn)了4個(gè)條帶.相對分子質(zhì)量約為2.0×106的蛋白為類肌聯(lián)蛋白,相對分子質(zhì)量為5.3×105的蛋白為顫搐蛋白,其他蛋白尚不清楚(見圖1A).
使用脊椎動物肌聯(lián)蛋白單克隆抗體(Mc3Bq)進(jìn)行的蛋白印記結(jié)果表明,相對分子質(zhì)量5.3×105的顫搐蛋白和類肌聯(lián)蛋白產(chǎn)生了交叉反應(yīng),但與類肌聯(lián)蛋白的反應(yīng)較弱(見圖1B).
2.2 扇貝類肌聯(lián)蛋白的提取
從0.15 mol/L磷酸鉀(含1 mol/L尿素,pH=7.0)溶液提取的類肌聯(lián)蛋白的SDS-PAGE結(jié)果可以看出,扇貝類肌聯(lián)蛋白提取液中除了類肌聯(lián)蛋白以外還含有大量的肌球蛋白、肌動蛋白等其他蛋白質(zhì)(見圖2).
圖1 扇貝橫紋肌全蛋白提取液的SDS-PAGE和蛋白印跡
圖2 扇貝類肌聯(lián)蛋白提取液SDS-PAGE
2.3 扇貝類肌聯(lián)蛋白的純化
使用陰離子交換柱層析法對類肌聯(lián)蛋白進(jìn)行第一次純化的結(jié)果表明,用0.25 mol/L磷酸鉀(含1 mol/L尿素,pH=7.0) 階段洗脫后,出現(xiàn)了明顯的洗脫高峰.對純化的各組分進(jìn)行的SDS-PAGE結(jié)果顯示,流出液當(dāng)中沒有出現(xiàn)扇貝類肌聯(lián)蛋白的條帶,說明扇貝類肌聯(lián)蛋白被層析柱充分吸附.而在洗脫峰d點(diǎn)的洗脫液中出現(xiàn)了較粗的扇貝類肌聯(lián)蛋白條帶,說明得到了較高濃度的扇貝類肌聯(lián)蛋白的粗純化組分.但其粗純化組分中混有較多的肌球蛋白和肌動蛋白(見圖3A).
A第一次柱層析;B第二次柱層析
為了去除扇貝類肌聯(lián)蛋白粗純化組分中的雜質(zhì)蛋白,進(jìn)行第二次柱層析.結(jié)果表明,在利用含0.25 mol/L磷酸鉀(pH=7.0)洗脫時(shí),出現(xiàn)了洗脫峰,對其洗脫組分進(jìn)行的SDS-PAGE結(jié)果顯示,各洗脫組分均含有較高濃度的扇貝類肌聯(lián)蛋白,但仍混有少量的肌球蛋白和肌動蛋白,未能將其完全除去(見圖3B).
2.4 扇貝類肌聯(lián)蛋白與纖維型肌動蛋白的結(jié)合性
T 未離心;S 上清液;P 沉淀圖4 扇貝類肌聯(lián)蛋白與肌動蛋白的共沉淀實(shí)驗(yàn)
將得到的類肌聯(lián)蛋白純化組分與兔骨骼肌的纖維型肌動蛋白進(jìn)行共沉淀實(shí)驗(yàn).SDS-PAGE檢測結(jié)果表明,僅對纖維型肌動蛋白離心分離后,纖維型肌動蛋白大部分在上清中可見;僅對類肌聯(lián)蛋白離心分離后,類肌聯(lián)蛋白有近一半在上清,另一半存在于沉淀;而對類肌聯(lián)蛋白和纖維型肌動蛋白反應(yīng)后的混合物進(jìn)行分離后,纖維型肌動蛋白和類肌聯(lián)蛋白幾乎都存在于沉淀中(見圖4).這表明,纖維型肌動蛋白和類肌聯(lián)蛋白發(fā)生了結(jié)合.
扇貝類肌聯(lián)蛋白難溶于鹽,在不用尿素的條件下提取量非常少,因此,在提取時(shí)加入了尿素,以得到高濃度的類肌聯(lián)蛋白(見圖2).在加入1 mol/L和2 mol/L尿素的實(shí)驗(yàn)條件下,未發(fā)現(xiàn)差異,所以本實(shí)驗(yàn)使用了較低濃度的1 mol/L尿素進(jìn)行提取.在提取類肌聯(lián)蛋白時(shí)加入尿素使得類肌聯(lián)蛋白的提取量大大增加,但同時(shí)其他蛋白的提取量也隨之增加,所以進(jìn)行柱層析時(shí)出現(xiàn)了阻塞的現(xiàn)象,因此,使用10倍體積的液體量進(jìn)行提取,使類肌聯(lián)蛋白的提取量增加的同時(shí),降低了其他蛋白的濃度,解決了層析柱阻塞的問題.SDS-PAGE的結(jié)果顯示,在類肌聯(lián)蛋白提取液中除了類肌聯(lián)蛋白以外還混有肌球蛋白等多種蛋白質(zhì),但通過初次的陰離子交換柱層析法去除了大量的雜質(zhì)蛋白(見圖3A).在粗純化組分中,除了類肌聯(lián)蛋白以外還有未能去除的肌球蛋白等.因此,對粗純化組分再度利用柱層析進(jìn)行了純化.再度純化時(shí),為了降低蛋白間的相互作用,在加入了2 mol/L尿素的0.15 mol/L 磷酸鉀緩沖液(pH=7.0)中進(jìn)行12 h的透析.在加入2 mol/L尿素的條件下,再度進(jìn)行陰離子交換柱層析,得到了類肌聯(lián)蛋白的純化組分(見圖3B).與加入1 mol/L尿素的條件下進(jìn)行的柱層析相比較,不附著于樹脂柱的肌球蛋白的量增加,洗脫出的類肌聯(lián)蛋白的比例增加.
為闡明扇貝類肌聯(lián)蛋白的性質(zhì),我們研究了類肌聯(lián)蛋白與肌動蛋白間的相互作用.因?yàn)轭惣÷?lián)蛋白純化組分中含有尿素,使用不含尿素的溶液(0.15 mol/L 磷酸鉀,pH=7.0)進(jìn)行透析后,進(jìn)行了結(jié)合實(shí)驗(yàn).類肌聯(lián)蛋白和纖維型肌動蛋白的結(jié)合實(shí)驗(yàn)結(jié)果證明,類肌聯(lián)蛋白和纖維型肌動蛋白可相互結(jié)合(見圖5).結(jié)合的原因可能是:(1)類肌聯(lián)蛋白和纖維型肌動蛋白直接結(jié)合;(2)類肌聯(lián)蛋白和纖維型肌動蛋白通過與類肌聯(lián)蛋白純化組分中未被去除的肌球蛋白相互作用而結(jié)合.我們的結(jié)果雖然不能否定類肌聯(lián)蛋白純化組分中未能完全去除的肌球蛋白與肌動蛋白相互作用而產(chǎn)生沉淀,但從類肌聯(lián)蛋白純化組分中含有的肌球蛋白的量與類肌聯(lián)蛋白相比其量較少,與類肌聯(lián)蛋白的沉淀和纖維型肌動蛋白的沉淀相比較,類肌聯(lián)蛋白和纖維型肌動蛋白混合反應(yīng)后,兩者的沉淀比例明顯增加,表明類肌聯(lián)蛋白和纖維型肌動蛋白極可能是直接相結(jié)合的.
綜上所述,扇貝類肌聯(lián)蛋白與顫搐蛋白一樣可以和肌動蛋白相互作用.軟體動物中存在的顫搐蛋白已證實(shí)是與肌動蛋白、肌球蛋白相互作用的肌聯(lián)蛋白樣蛋白.本實(shí)驗(yàn)的結(jié)果表明,扇貝類肌聯(lián)蛋白與顫搐蛋白一樣具有與肌動蛋白結(jié)合的能力.因此類肌聯(lián)蛋白可能是存在于軟體動物橫紋肌中的一種新型的肌聯(lián)蛋白樣蛋白.有關(guān)該蛋白的一級結(jié)構(gòu)及其在肌原纖維中的定位,以及進(jìn)一步證明該蛋白是軟體動物橫紋肌中的一種新型的肌聯(lián)蛋白樣蛋白還需更深入的研究.
[1] MARUYAMA K.Connectin,an elastic filamentous protein of striated muscle[J].Int Rev Cytol,1986,104:81-114.
[2] FURST D O,OSBORN M,NAVE R,et al.The organization of titin filaments in the half-sarcomere revealed by monoclonal antibodies in immunoelectron microscopy: a map of ten nonrepetitive epitopes starting at the Z line extends close to the M line[J].J Cell Biol,1988,106:1563-1572.
[3] MARUYAMA K.Connectin,an elastic protein of striated muscle[J].Biophys Chem,1994,50: 73-85.
[4] NEIVA-SOUSA M,ALMEIDA-COELHO J,F(xiàn)ALCO-PIRES I,et al.Titin mutations: the fall of Goliath[J].Heart Fail Rev,2015,20(5):579-588.
[5] LINKE W A,HAMDANI N.Gigantic business: titin properties and function through thick and thin[J].Circ Res,2014,114(6):1052-1068.
[6] GRITSYNA IU V,SALMOV N N,VIKHLIANTSEV I M,et al.Changes in gene expression and content of titin(connectin) in striated muscles of chronically etihanol-fed rats[J].Mol Biol(Mosk),2013,47(6):996-1003.
[7] OHTSUKA S,HANASHIMA A,KUBOKAWA K,et al.Amphioxus connectin exhibits merged structure as invertebrate connectin in I-band region and vertebrate connectin in A-band region[J].J Mol Biol,2011,409(3): 415-426.
[8] FORBES J G,F(xiàn)LAHERTY D B,MA K,et al.Extensive and modular intrinsically disordered segments inC.elegansTTN-1 and implications in filament binding,elasticity and oblique striation[J].J Mol Biol,2010,398(5):672-689.
[9] YUAN C C,MA W,SCHEMMEL P,et al.Elastic proteins in the flight muscle ofManducasexta[J].Arch Biochem Biophys,2015,568:16-27.
[10] AYME-SOUTHGATE A J,TURNER L,SOUTHGATE R J.Molecular analysis of the muscle protein projectin in Lepidoptera[J].J Insect Sci,2013(13):88.
[11] AYME-SOUTHGATE A,PHILIPP R A,SOUTHGATE R J.Projectin PEVK domain,splicing variants and domain structure in basal and derived insects[J].Insect Mol Biol,2011,20(3):347-356.
[12] HU D H,MATSUNO A,TERAKADO K,et al.Projectin is an invertebrate connectin(titin): isolation from crayfish claw muscle and localization in crayfish claw muscle and insect flight muscle[J].J Muscle Res Cell Motil,1990,11(6):497-511.
[13] FUNABARA D,WATANABE D,SATOH N,et al.Genome-wide survey of genes encoding muscle proteins in the pearl oyster,Pinctada fucata[J].Zoolog Sci,2013,30(10):817-825.
[14] BUTLER T M,SIEGMAN M J.A force-activated kinase in a catch smooth muscle[J].J Muscle Res Cell Motil,2011,31(5/6):349-358.
[15] LAEMMLI U K.Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4[J].Nature,1970,227(5259): 680-685.
[16] TOWBIN H,STAEHELIN T,GORDON J.Electrophoretic transfer of proteins from polyacrylamide gels to nitrocellulose sheets: procedure and some applications[J].Biotechnology,1992,24:145-149.
(責(zé)任編輯:方 林)
Purification of similar-connectin in scallop striated muscle
BAO Yu-long1,ZHANG San-run1,Sarina2,ZHENG Ming-xia1,XING Wan-jin3,ZHOU Hao-le1
(1.College of Basic Medical,Inner Mongolia Medical University, Hohhot 010059,China;2.Erdos Health School,Erdos 017000,China;3.College of Life Science,Inner Mongolia University,Hohhot 010022,China)
The similar-connectin was extracted with 0.15 mol/L buffer of potassium phosphate(pH=7.0),in which 1 mol/L urea was added,from the scallop striated myofibrils.Then the supernatant containing the similar-connectin was loaded onto DEAE-Toyopearl 650M column( anion exchange column chromatography),the protein was purified.Finally,tested the interaction of the similar-connectin on F-actin with co-sedimentation assay.The results showed that F-actin alone did not precipitate,but when similar-connectin was added in,F(xiàn)-actin co-precipitated with the similar-connectin,indicating that similar-connectin may be a new type of connectin-like protein in scallop striated muscle.
mollusks;scallop;connetin-like protein;protein extraction;protein purification;protein interaction
1000-1832(2016)04-0111-05
10.16163/j.cnki.22-1123/n.2016.04.024
2015-10-22
國家自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(31460600);內(nèi)蒙古自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(2014MS08106).
包玉龍(1976—),男,博士研究生,講師,主要從事分子細(xì)胞生物學(xué)研究;通訊作者:周好樂(1962—),女,教授,主要從事動物遺傳學(xué)研究.
Q 952 [學(xué)科代碼] 180·5727
A