李笑梅,馬慧玲
(哈爾濱商業(yè)大學 黑龍江省高校食品科學與工程重點實驗室,黑龍江 哈爾濱 150076)
兩株素食者腸道菌產(chǎn)β-葡萄糖苷酶考察及產(chǎn)酶條件優(yōu)化
李笑梅,馬慧玲
(哈爾濱商業(yè)大學 黑龍江省高校食品科學與工程重點實驗室,黑龍江 哈爾濱 150076)
采用對硝基苯基-β-D-葡萄糖苷法,與黑曲霉相比較考察素食者腸道菌LJ-G1、LJ-Q2產(chǎn)β-葡萄糖苷酶能力,再經(jīng)單因素、響應面試驗對菌種的產(chǎn)酶條件進行優(yōu)化。結(jié)果表明:LJ-G1、LJ-Q2菌株均能產(chǎn)β-葡萄糖苷酶,且LJ-Q2產(chǎn)酶能力高于LJ-G1,與黑曲霉相比較,在發(fā)酵時間短于64 h時LJ-G1、LJ-Q2產(chǎn)酶能力高于黑曲霉;LJ-Q2菌種的最優(yōu)產(chǎn)酶條件為:培養(yǎng)基pH 8.0、培養(yǎng)溫度38 ℃、培養(yǎng)時間38 h。在最優(yōu)條件下進行驗證實驗,酶活力達到1.70 IU/mL。加入大豆異黃酮原料進行發(fā)酵培養(yǎng),得到游離大豆異黃酮轉(zhuǎn)化率為39.4%。
素食者;腸道菌;β-葡萄糖苷酶;產(chǎn)酶條件
β-葡萄糖苷酶(β-glucosidase)又叫β-D-葡萄糖苷水解酶,可以將結(jié)合型的大豆異黃酮水解為糖基和游離型的大豆苷元[1-2]。在人體內(nèi)糖苷型的異黃酮不能直接被吸收,而是先被小腸的β-葡萄糖苷酶水解后脫去糖基進入血液中,才能發(fā)揮各種生理作用[3]。腸道細菌在異黃酮的代謝中起到了關鍵的作用[4],部分益生菌還可以將大豆苷元進一步代謝為雌馬酚,與苷元相比它與雌激素受體的結(jié)合力更強[5]。
現(xiàn)今產(chǎn)β-葡萄糖苷酶的菌種研究主要集中在酵母[6]、曲霉、木霉以及細菌內(nèi)[7]。其中曲霉被普遍認為是產(chǎn)β-葡萄糖苷酶的優(yōu)良菌種,尤以黑曲霉的效率最高[5]。但是黑曲霉發(fā)酵到達產(chǎn)酶高峰期要96~144 h[8-9],工業(yè)化生產(chǎn)周期較長成本較大。近幾年益生菌產(chǎn)β-葡萄糖苷酶發(fā)酵大豆異黃酮呈現(xiàn)研究熱,有些益生菌[10-11]不僅可以轉(zhuǎn)化糖苷型大豆異黃酮,還有維持腸道、生殖系統(tǒng)、皮膚等正常菌群,抗感染、助降低膽固醇、抑制癌細胞和增強免疫功能等[12]。LJ-G1、LJ-Q2兩株菌是從素食者糞便中分離出來的具有代謝大豆異黃酮產(chǎn)雌馬酚的能力[13-14],大豆苷元是此代謝過程的中間產(chǎn)物之一[1],所以推測兩種菌株可能有產(chǎn)β-葡萄糖苷酶的能力,而且兩種腸道菌的生長曲線表明[15],指數(shù)生長期6~24 h、穩(wěn)定期24~39 h活菌數(shù)達到最大值。據(jù)此研究探討LJ-G1、LJ-Q2腸道菌產(chǎn)β-葡萄糖苷酶特性及產(chǎn)酶條件優(yōu)化,旨在為豐富產(chǎn)β-葡萄糖苷酶菌種理論知識,也為后續(xù)開發(fā)以復合生物發(fā)酵法制備大豆苷元提供適宜的菌株資源和工藝技術(shù)參數(shù),具有實際應用意義。
1.1 菌株與試劑
對照菌株:黑曲霉(Aspergillus niger)由哈爾濱商業(yè)大學食品工程學院微生物實驗室提供;菌株LJ-G1、LJ-Q2從素食者糞便中分離獲得。
對硝基苯酚、檸檬酸 天津市光復精細化工研究所;對硝基苯基-β-D-吡喃葡萄糖苷 上海金穗生物科技有限公司;所有試劑均為分析純。
1.2 培養(yǎng)基
腦心浸出液培養(yǎng)基(brain heart influsion broth,BHI)青島海博生物技術(shù)有限公司。
麩皮培養(yǎng)基:麩皮0.5%、(NH4)2SO40.4%、K2HPO40.3%、MgSO40.05%、CaCl20.05%、FeSO40.005%、ZnCl20.000 14%、吐溫-80 20 μL,pH 4.8。
1.3 儀器與設備
Agilent 1200LC高效液相色譜 美國安捷倫公司;722型光柵分光光度計 上海精密科學儀器有限公司;LDZX-30KBS立式壓力蒸汽滅菌器 上海申安醫(yī)療器械廠;超凈操作臺 上海凈化設備有限公司;YQX-II型培養(yǎng)箱 上海新苗醫(yī)療機械有限公司。
1.4 方法
1.4.1 產(chǎn)β-葡萄糖苷酶菌株的初篩方法
采用顯色反應[16],判斷是否產(chǎn)β-葡萄糖苷酶。用0.1%的剛果紅對形成單菌落的平板染色處理10 min,再用1 mol/L的NaCl溶液脫色20 min,如果菌落周圍產(chǎn)生透明圈說明該菌有產(chǎn)β-葡萄糖苷酶的能力。
1.4.2 3 種菌產(chǎn)β-葡萄糖苷酶酶活力比較
采用以對硝基苯基-β-D-吡喃葡萄糖苷(4-nitrophenylβ-D-glucopyranoside,pNPG)為底物測定酶活力[17-19]。
1.4.2.1 對硝基苯酚標準曲線的繪制
用pH 5.0的磷酸氫二鈉-檸檬酸緩沖溶液配制濃度為0、10、20、30、40、50、60 μmol/L的對硝基苯酚溶液,分別取2 mL上述稀釋后的溶液至10 mL比色管中,于45 ℃水浴鍋中水浴30 min后,加入4 mL 0.5 mol/L的碳酸鈉溶液,混合均勻,于試管架中冷卻至室溫。在400 nm波長處測定吸光度(A400nm),繪制標準曲線。
1.4.2.2 培養(yǎng)基中酶活力的測定
將所試菌種黑曲霉接種于麩皮液體培養(yǎng)基中,28 ℃培養(yǎng)24~144 h;LJ-G1、LJ-Q2腸道菌分別接種于BHI液體培養(yǎng)基中,37 ℃厭氧培養(yǎng)24~144 h,每12 h測一次酶活力。各培養(yǎng)時段的培養(yǎng)基經(jīng)3 000 r/min離心20 min,得3 種粗酶液,各吸取2 mL于比色管中,再分別加入10 mL pH 5.0的緩沖液,2 mL 50 mmol/L對硝基苯基-β-D-吡喃葡萄糖苷溶液。其余實驗過程同1.4.2.1節(jié)。參比溶液:以2 mL未發(fā)酵培養(yǎng)基代替發(fā)酵培養(yǎng)基。
酶活力定義:每分鐘水解生成1 μmol/L對硝基苯酚所需要的酶量為一個酶活力單位。按公式(1)計算酶活力[20-23]。
式中:X為發(fā)酵培養(yǎng)基中粗酶液酶活力/(IU/mL);c為根據(jù)實際樣液的吸光度計算出的對硝基苯酚濃度/(μmol/L);N為試樣溶液反應前的總稀釋倍數(shù);t為反應時間/min;V為酶反應液用量/mL。
1.4.3 產(chǎn)酶條件單因素試驗
在篩選出產(chǎn)酶優(yōu)勢菌株的前提下,進行產(chǎn)酶單因素試驗。固定因素水平設定為培養(yǎng)基pH 7.0、接種量5%、培養(yǎng)溫度37 ℃、培養(yǎng)時間36 h,在此基礎條件下,以酶活力為評價指標,選出適宜因素水平范圍。
1.4.3.1 培養(yǎng)基初始pH值對菌種產(chǎn)酶酶活力的影響
在接種量5%、培養(yǎng)溫度37 ℃、培養(yǎng)時間36 h條件下,分別考察培養(yǎng)基初始pH 4.0、5.0、6.0、7.0、8.0、9.0、10.0對菌種產(chǎn)酶活力的影響。
1.4.3.2 培養(yǎng)時間對菌種產(chǎn)酶酶活力的影響
在培養(yǎng)基初始pH 7.0、接種量5%、培養(yǎng)溫度37 ℃條件下,分別考察培養(yǎng)時間在24、36、48、60、72 h時對菌種產(chǎn)酶活力的影響。
1.4.3.3 培養(yǎng)溫度對菌種產(chǎn)酶酶活力的影響
在培養(yǎng)基初始pH 7.0、接種量5%、培養(yǎng)時間36 h條件下,分別考察培養(yǎng)溫度為33、35、37、39、41 ℃時對菌種產(chǎn)酶活力的影響。
1.4.3.4 接種量對菌種產(chǎn)酶酶活力的影響
在培養(yǎng)基初始pH 7.0、培養(yǎng)溫度37 ℃、培養(yǎng)時間36 h條件下,分別考察1%、3%、5%、7%、9%接種量對菌種酶活力的影響。
1.4.4 響應曲面優(yōu)化產(chǎn)酶條件
以單因素試驗結(jié)果為依據(jù),設計培養(yǎng)基初始pH值、培養(yǎng)溫度、培養(yǎng)時間三因素做響應曲面試驗。以培養(yǎng)基中的酶活力為指標,確定最佳產(chǎn)酶條件。
1.4.5 最優(yōu)產(chǎn)酶條件下大豆苷元轉(zhuǎn)化率的測定
采用高效液相色譜法測定,固定相為Agilent1200 LC C18柱(250 mmh4.6 mm,5 μm),流動相為甲醇-水,0 min 20∶80(V/V,下同),40 min 60∶40,進行梯度洗脫,流速為1.2 mL/min,柱溫為40 ℃,檢測波長為259 nm。將配制成的0.048、0.096、0.144、0.192、0.24 mg/mL系列質(zhì)量濃度大豆異黃酮混合標準溶液[18]依次進樣。利用峰面積繪制標準曲線。根據(jù)公式(2)計算大豆異黃酮含量。
式中:ρ為由各類型大豆異黃酮回歸方程得出其質(zhì)量濃度/(μg/mL);m為樣品質(zhì)量/g;V為定容體積/mL。
將菌液接種培養(yǎng)基中,再加入0.3 g大豆異黃酮粉,在最優(yōu)條件下發(fā)酵培養(yǎng),然后培養(yǎng)液經(jīng)3 000 r/min離心30 min,吸取上清液進入高效液相色譜進行檢測,與未接菌培養(yǎng)基進行比較,計算游離型大豆異黃酮轉(zhuǎn)化率。
式中:m1為原料中游離型異黃酮含量/mg;m2為發(fā)酵后游離型異黃酮含量/mg。
2.1 產(chǎn)β-葡萄糖苷酶能力顯色反應結(jié)果
LJ-G1桿菌、LJ-Q2球菌均產(chǎn)生透明圈,說明兩種菌具有產(chǎn)β-葡萄糖苷酶的能力。
2.2 3 種菌產(chǎn)β-葡萄糖苷酶活力比較
圖1 3 種菌產(chǎn)β-葡萄糖苷酶酶活力的比較Fig.1 Comparison of β-glucosidase activities from three strains
由圖1可知,3 種菌在培養(yǎng)36 h時均產(chǎn)酶,酶活力最高的是LJ-Q2,達到1.60 IU/mL。此時黑曲霉產(chǎn)酶能力最低,隨著培養(yǎng)時間的增加,黑曲霉產(chǎn)酶能力逐漸增加,而LJ-Q2、LJ-G1產(chǎn)酶能力逐漸降低,當培養(yǎng)時間達到64 h時,3 種菌產(chǎn)酶能力相同,之后產(chǎn)酶能力從大到小順序為黑曲霉>LJ-Q2>LJ-G1。故以下優(yōu)化試驗均用LJ-Q2菌種。
2.3 產(chǎn)酶條件單因素試驗
2.3.1 培養(yǎng)基初始pH值對菌種產(chǎn)酶活力的影響
一銨國內(nèi)市場高位盤整,出廠報價受成本支撐,仍處高位,價格暫無下滑風險。二銨方面,秋季節(jié)市場需求釋放,出口市場較為穩(wěn)定,內(nèi)銷市場仍在加大,估計后期冬儲市場價格仍會有所上揚。
圖2 培養(yǎng)基初始pH值對菌種產(chǎn)酶活力的影響Fig.2 Effect of initial medium pH on β-glucosidase activity
如圖2所示,當培養(yǎng)基初始pH值為4.0時菌株產(chǎn)酶能力較低,當pH值為8.0時產(chǎn)酶能力達到最高,之后酶活力開始下降,表明LJ-Q2在培養(yǎng)基初始pH值為7.0~9.0時產(chǎn)酶能力相對較強。
2.3.2 培養(yǎng)時間對菌種產(chǎn)酶活力的影響
圖3 培養(yǎng)時間對菌種產(chǎn)酶活力的影響Fig.3 Effect of incubation time on β-glucosidase activity
如圖3所示,菌株在培養(yǎng)時間達到36 h時產(chǎn)酶能力達到最高,之后酶活力隨培養(yǎng)時間的延長而下降,表明該菌的最適培養(yǎng)時間在24~48 h。
2.3.3 培養(yǎng)溫度對菌種產(chǎn)酶活力的影響
圖4 培養(yǎng)溫度對菌種產(chǎn)酶活力的影響Fig.4 Effect of culture temperature on β-glucosidase activity
如圖4所示,培養(yǎng)溫度為33 ℃時,菌株產(chǎn)酶能力較低,當培養(yǎng)溫度達到39 ℃時菌株產(chǎn)酶能力達到最高,此后隨著溫度升高酶活力下降,表明該菌最適培養(yǎng)溫度為37~41 ℃。
2.3.4 接種量對菌種產(chǎn)酶活力的影響
圖5 接種量對菌種產(chǎn)酶活力的影響Fig.5 Effect of inoculum amount on β-glucosidase activity
如圖5所示,接種量1%時,菌株產(chǎn)酶能力較低,隨著接種量的增加,菌株產(chǎn)酶能力隨之增大,當接種量達到5%時,菌株產(chǎn)酶能力達到最高,此后隨著接種量升高酶活力變化不顯著(P>0.05),表明該菌種最適接種量為5%。
2.4 響應面試驗結(jié)果分析
表1 培養(yǎng)條件響應面試驗方案設計及結(jié)果Table 1 Response surface design and results for the optimization of culture conditions
培養(yǎng)條件響應面試驗各因素和水平見表1,酶活力最高為1.60 IU/mL。產(chǎn)酶條件響應面回歸方程及顯著性分析見表2。利用Design-Expert軟件對表2的響應曲面法試驗設計結(jié)果的數(shù)據(jù)進行了多元回歸擬合分析,得到回歸方程:
表2 響應面回歸方程系數(shù)及顯著性檢驗Table 2 Significance test of all coefficients in the regression model
由表2可知,試驗所選用的模型高度顯著(P<0.000 1),模型的校正決定系數(shù)=0.951 1,說明該模型能解釋95.11%響應值的變化,相關系數(shù)R=0.993 0,說明該模型擬合程度良好,試驗誤差小,該模型是合適的。從回歸方程系數(shù)顯著性檢驗可知,模型一次項A、B極顯著(P<0.01),C顯著(P<0.05);二次項AB、AC極顯著(P<0.01),BC不顯著(P>0.05),各因素對酶活力的影響程度排序為A>B>C。
圖6 培養(yǎng)基初始pH值、培養(yǎng)時間、培養(yǎng)溫度間的交互作用對酶活力影響的響應面圖Fig.6 Response surface plots for the effect of time, initial medium pH and temperature on β-glucosidase activity
由圖6a可知,當培養(yǎng)溫度為39 ℃時,隨培養(yǎng)時間的延長,酶活力逐漸增加,當培養(yǎng)時間在38 h左右時酶活力達到最大,之后又慢慢下降。隨著培養(yǎng)基初始pH值的增加,酶活力增大,在培養(yǎng)基初始pH值為8左右時,酶活力為最大,之后又呈下降趨勢。
由圖6b可知,當培養(yǎng)時間為39 h時,隨著培養(yǎng)基初始pH值的增大,酶活力逐漸增大,當培養(yǎng)基初始pH值在8左右時酶活力達到最大,之后又慢慢下降。隨著培養(yǎng)溫度的增加,酶活力增大,在培養(yǎng)溫度為38 ℃左右時,酶活力為最大,之后又呈下降趨勢。
由圖6c可知,當培養(yǎng)基初始pH值為8時,隨培養(yǎng)時間的延長,酶活力逐漸增大,當培養(yǎng)時間在38 h左右時酶活力達到最大,之后又慢慢下降。隨著培養(yǎng)溫度的增加,酶活力增大,在培養(yǎng)溫度為38 ℃左右時,酶活力為最大,之后又呈下降趨勢。
響應面產(chǎn)酶條件優(yōu)化結(jié)果為:培養(yǎng)基初始pH 8.04、培養(yǎng)溫度38.31 ℃、培養(yǎng)時間38.21 h。根據(jù)實際情況校正值為:培養(yǎng)基pH 8.0、培養(yǎng)溫度38 ℃、培養(yǎng)時間38 h,在此條件下測得酶活力為1.7 IU/mL,比未優(yōu)化前酶活力1.60 IU/mL提高了6.2%。
2.5 發(fā)酵培養(yǎng)游離型大豆異黃酮苷元轉(zhuǎn)化率結(jié)果
表3 3 種游離型大豆異黃酮含量Table 3 Contents of three soybean isoflavone aglycons before and after fermentation mg
由表3可知,發(fā)酵后3 種游離型大豆異黃酮含量比發(fā)酵前高,共增加了1.89 mg,根據(jù)公式(3)計算游離型大豆異黃酮轉(zhuǎn)化率為39.4%。
素食者糞便分離到的腸道菌LJ-G1和LJ-Q2有產(chǎn)β-葡萄糖苷酶的能力,在38 ℃培養(yǎng)36 h時、產(chǎn)酶能力比黑曲霉高。LJ-Q2菌株響應面試驗產(chǎn)酶條件優(yōu)化結(jié)果為:培養(yǎng)基初始pH 8.0、培養(yǎng)溫度38 ℃、培養(yǎng)時間38 h。在此條件下酶活力達到1.70 IU/mL,比未優(yōu)化前酶活力提高了6.2%。此條件應用于發(fā)酵大豆異黃酮其轉(zhuǎn)化率為 39.4%。近幾年對腸道菌產(chǎn)β-葡萄糖苷酶多有研究。Raimondi等[24]研究了雙歧桿菌屬8 個菌種的22 個菌株轉(zhuǎn)化大豆苷的能力,發(fā)現(xiàn)在發(fā)酵7 d內(nèi),除Bifidobacteria longum MB220和Bifidobacteria longum MB224外,其他菌株都能水解大豆苷,其中Bifidobacteria adolescentis MB116在生長穩(wěn)定期的早期就有最高的酶活力,酶活力達0.92 U/mg。也有研究表明鏈球菌[25]等細菌可轉(zhuǎn)化結(jié)合型大豆異黃酮。LJ-Q2腸道菌與黑曲霉相比雖然產(chǎn)酶活力低,但是達到峰值的時間短于黑曲霉108 h,以進一步轉(zhuǎn)化成雌馬酚,因此,LJ-Q2腸道菌具有很好的應用前景。接下來的工作將探討LJ-Q2腸道菌與其他產(chǎn)β-葡萄糖苷酶的腸道益生菌進行復合,以提高產(chǎn)β-葡萄糖苷酶的能力,應用于大豆苷元的制備,這對今后雌馬酚的轉(zhuǎn)化也有著重要的意義。
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Comparison of Two β-Glucosidase-Producing Strains from the Intestinal Tract of Vegetarians and Optimizaiton of Fermentation Conditions for β-Glucosidase Production
LI Xiaomei, MA Huiling
(Key Laboratory of Food Science and Engineering, Harbin University of Commerce, Harbin 150076, China)
The β-glucosidase-producing capacity of strains LJ-G1 and LJ-Q2 isolated from the feces of vegetarians was measured using 4-nitrophenol-β-D-glucoside (pNPG) as substrate and compared with that of Aspergillus niger. The fermentation conditions for β-glucosidase production by the selected strain were optimized using combination of single factor method and response surface methodology. The results showed that both intestinal strains were able to produce β-glucosidase, and LJ-Q2 had higher β-glucosidase-producing capacity than LJ-G1. LJ-G1 and LJ-Q2 had higher β-glucosidase-producing capacity than Aspergillus niger in 64 h of fermentation. The optimal fermentation conditions for β-glucosidase production were determined as follows: culture medium pH, 8.0; temperature, 38 ℃; and time, 38 h. The experimental value of β-glucosidase activity produced under the optimized conditions was 1.70 IU/mL. The fermentation process could convert 39.4% of soybean isoflavones into aglycones.
vegetarians; intestinal bacteria; β-glucosidase; fermentation conditions for β-glucosidase production
10.7506/spkx1002-6630-201607023
TS201.3
A
1002-6630(2016)07-0123-05
李笑梅, 馬慧玲. 兩株素食者腸道菌產(chǎn)β-葡萄糖苷酶考察及產(chǎn)酶條件優(yōu)化[J]. 食品科學, 2016, 37(7): 123-127.
DOI:10.7506/spkx1002-6630-201607023. http://www.spkx.net.cn
LI Xiaomei, MA Huiling. Comparison of two β-glucosidase-producing strains from the intestinal tract of vegetarians and optimizaiton of fermentation conditions for β-glucosidase production[J]. Food Science, 2016, 37(7): 123-127. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630-201607023. http://www.spkx.net.cn
2015-06-18
黑龍江省科技廳應用技術(shù)項目(G013B203);黑龍江省自然科學基金項目(C201201);黑龍江省高校科技創(chuàng)新團隊建設計劃項目(2010td04)
李笑梅(1960—),女,教授,本科,研究方向為食品科學。E-mail:lixm0451@163.com