賈洪濤,胡曉君,邱奉同,張 莉
(臨沂大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,山東臨沂 276005)
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小麥專用復(fù)方抗旱型浸種劑和包衣劑對(duì)小麥幼苗SOD、POD和CAT同工酶表達(dá)的影響
賈洪濤,胡曉君,邱奉同,張 莉
(臨沂大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,山東臨沂 276005)
為從抗氧化酶同工酶表達(dá)方面了解小麥專用復(fù)方抗旱型浸種劑和包衣劑對(duì)小麥抗旱性的調(diào)節(jié)作用,以小麥品種臨麥2號(hào)為材料,采用盆栽試驗(yàn)法,研究了小麥專用復(fù)方抗旱型浸種劑和包衣劑處理種子對(duì)干旱脅迫下小麥幼苗超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化物酶(POD)、過氧化氫酶(CAT)同工酶表達(dá)的影響。結(jié)果表明,干旱脅迫下,小麥幼苗Mn-SOD和Fe-SOD表達(dá)量(活性)高于對(duì)照,而Cu/Zn-SOD同功酶表達(dá)量(活性)降低。與對(duì)照相比,干旱脅迫下,POD同工酶中的Rf 0.05、Rf 0.13、Rf 0.22和Rf 0.61條帶表達(dá)量降低,抗旱型包衣劑和浸種劑處理種子均提高干旱脅迫下Rf 0.05、Rf 0.13和Rf 0.61條帶的表達(dá)量,而普通包衣劑處理增加了Rf 0.18、Rf 0.22條帶的表達(dá)量。干旱脅迫降低了CAT同功酶Rf 0.04、Rf 0.76條帶的表達(dá)量,其中Rf 0.04表達(dá)量降幅較大,而抗旱型包衣劑和浸種劑處理種子均提高干旱脅迫下這兩個(gè)條帶的表達(dá)量,尤其是Rf 0.04的表達(dá)量顯著超過對(duì)照。說明抗旱型包衣劑和浸種劑能夠調(diào)控小麥幼苗抗氧化酶同工酶的表達(dá),進(jìn)而增強(qiáng)植株的抗氧化能力,提高小麥的抗旱性。
小麥;干旱脅迫;抗旱型浸種劑;抗旱型包衣劑;同工酶電泳
植物細(xì)胞內(nèi)存在產(chǎn)生活性氧自由基的多種代謝途徑和高效率清除這些自由基的抗氧化系統(tǒng)[1-2]。在逆境脅迫下,植株體內(nèi)活性氧自由基產(chǎn)生與清除動(dòng)態(tài)平衡被打破,并導(dǎo)致自由基離子積累,進(jìn)而導(dǎo)致膜脂過氧化或脫脂化,破壞膜結(jié)構(gòu)及其完整性,引起膜透性增大,引起代謝紊亂[2-3]。
超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化物酶(POD)、過氧化氫酶(CAT)是三種重要的抗氧化酶。其中,SOD以Cu/Zn-SOD、Mn-SOD和Fe-SOD三種金屬蛋白的形式存在。Cu/Zn-SOD被氰化鉀和過氧化氫所抑制,F(xiàn)e-SOD被過氧化氫所抑制,Mn-SOD對(duì)氰化鉀和過氧化氫不敏感,且已證明這三種SOD均存在于植物體中[4-6]。干旱會(huì)引起小麥幼苗SOD活性增高[9]。在干旱脅迫下,抗旱的小麥品種SOD活性升高且具持續(xù)性[8]。5%和15% PEG6000脅迫后,小麥種子萌發(fā)期POD、CAT活性均呈上升趨勢(shì),但高濃度處理先升高而后降低[9]。在干旱和鹽脅迫下,小麥根部POD同工酶活性升高,但沒有酶帶變化,葉片POD同工酶活性降低且在鹽脅迫下少了一條譜帶[10]。但有研究表明,干旱脅迫下小麥幼苗根和葉POD同工酶A、B、C區(qū)的酶帶數(shù)目增加,且酶帶顏色均有不同程度的加深,根和葉中POD活性顯著增強(qiáng)[11];抗旱性不同的小麥品種功能葉POD同工酶活性和酶譜在受到干旱脅迫后均會(huì)發(fā)生變化,某些同工酶活性的增加與小麥的抗旱性呈正相關(guān)[12]。上述研究結(jié)果說明, 抗氧化酶活性與小麥抗旱性密切相關(guān),因此可通過栽培等措施對(duì)其進(jìn)行調(diào)節(jié),以增強(qiáng)植株抗旱能力。
化學(xué)調(diào)控是提高小麥抗旱能力的一種重要方法。在干旱條件下施FA后小麥幼苗的SOD和POD活性增高,植株抗旱能力增強(qiáng)[13]。使用種衣劑可使SOD活性升高,起到延緩小麥植株衰老和誘導(dǎo)產(chǎn)生抗逆性的作用[14]。外源精胺能夠提高水分脅迫下小麥葉片SOD、CAT 和 POD 活性,且抗旱性弱的品種的保護(hù)酶活性增幅高于抗旱性強(qiáng)的品種[15]。在干旱脅迫下,低濃度外源NO供體硝普鈉處理可顯著提高小麥幼苗葉片 SOD、POD和CAT 活性,緩解膜脂過氧化[16]。噴灑殼聚糖提高了干旱脅迫下小麥幼苗SOD、 POD 及 CAT 活性[17]。雖然單一成分的化控物質(zhì)可提高小麥抗旱能力,但效果往往有限,因此開發(fā)有更好效果的復(fù)合型化控試劑或產(chǎn)品十分必要。
我們自主研發(fā)的小麥專用復(fù)方抗旱型浸種劑和包衣劑含有植物所需的大量和微量元素、植物生理活性物質(zhì)、植物抗逆調(diào)控因子等成分,使用其處理小麥種子后,幼苗抗旱能力顯著提高[18]。目前,有關(guān)小麥專用復(fù)方抗旱型浸種劑和包衣劑作用機(jī)理的研究很少。本研究試圖從抗氧化酶同工酶表達(dá)方面探討抗旱型包衣劑和浸種劑對(duì)小麥幼苗抗旱性的調(diào)節(jié)機(jī)制,以期為此種浸種劑和包衣劑的推廣應(yīng)用及新產(chǎn)品的開發(fā)提供參考。
1.1材 料
供試小麥為臨麥2號(hào),種子購于山東省臨沂市種子公司。小麥專用復(fù)方抗旱型浸種劑和包衣劑均由本課題組成員賈洪濤主持研制。
1.2培養(yǎng)條件
試驗(yàn)采用盆栽方式,用土采自大田耕層,土壤先過35目篩,風(fēng)干后混合均勻后裝入直徑30 cm、高35 cm的盆中,每盆6 kg。供試土壤pH 7.4,有機(jī)質(zhì)含量281 mg·kg-1,速效氮含量126.8 mg·kg-1,速效磷含量38.4 mg·kg-1,速效鉀含量118 mg·kg-1。
1.3材料處理
Yangzhou summit of 2018 World Green Design Forum held 7 60
選取大小一致、無病蟲害的小麥種子用于試驗(yàn)。試驗(yàn)設(shè)對(duì)照(CK)、干旱(D)、普通包衣劑+干旱(PD)、復(fù)方抗旱型包衣劑+干旱(FBD)和復(fù)方抗旱型浸種劑+干旱(FJD)5種處理。CK和D處理的種子均不進(jìn)行任何處理;PD處理使用江蘇銅山農(nóng)藥總廠生產(chǎn)的銅農(nóng)牌15%甲拌懸浮種衣劑對(duì)種子進(jìn)行人工包衣,包衣劑與種子比例為1∶80;FBD處理使用小麥專用復(fù)方抗旱型包衣劑進(jìn)行人工包衣,包衣劑與種子比例為1∶80;FJD處理使用小麥專用復(fù)方抗旱型浸種劑25 ℃浸泡種子12 h,中間攪拌三次,晾12 h播種,浸種與種子比例為1∶1.5。
1.4試驗(yàn)方法
將未處理及經(jīng)過包衣或浸種處理過的種子分別均勻播種于相應(yīng)的花盆中,每盆50粒,小麥幼苗長(zhǎng)到3片真葉時(shí)每盆定苗40株,CK處理土壤含水量維持在田間持水量的70%(通過稱重法控制),其他處理同時(shí)停止?jié)菜M(jìn)行干旱處理。待干旱處理的小麥幼苗葉片開始出現(xiàn)萎蔫、第一片葉下垂時(shí),所有處理取樣幼苗地上部分,進(jìn)行同工酶樣品制備。使用GE公司Image Scanner 掃描記錄同工酶電泳圖像,用Gel-Pro Analyzer分析記錄條帶數(shù),測(cè)量每條電泳條帶的累積光密度(IOD,亦稱積分光密度),用每條條帶的累積光密度值表示酶活性大小,并繪成Excel折線圖。
1.4.1同工酶樣品的制備
通過預(yù)試驗(yàn)比較了不同研究者常用的四種提取液電泳效果。四種提取液分別為提取液Ⅰ[0.10 mol·L-1Tris-HCl(pH 8.0)][19]、提取液Ⅱ[0.05 mol·L-1磷酸緩沖液(PBS,pH 6.6)][20]、提取液Ⅲ[0.10 mol·L-1Tris-HCl緩沖液(pH 7.2),含5% 蔗糖、0.5% (w/v) PVP、10 mmol·L-1β-巰基乙醇][21]和提取液Ⅳ[0.10 mol·L-1磷酸緩沖液(pH 7.8),含0.000 1 mol·L-1EDTA、1.0% (w/v) PVP和 0.5 % (v/v) Triton X-100]。提取液體積(mL)和新鮮材料重量(g)比例為 3∶1;研缽-20 ℃ 預(yù)冷,提取液4 ℃ 預(yù)冷;10 000 r·min-14 ℃ 離心30 min;Brandford法測(cè)定可溶性蛋白含量,小牛血清蛋白(BSA)作標(biāo)準(zhǔn)蛋白;-20 ℃保存提取液。
四種提取液中提取液Ⅲ和提取液Ⅳ電泳結(jié)果條帶較清晰,數(shù)量較多,因此本研究選用這兩種提取液作為同工酶提取液成分的依據(jù),并對(duì)其作了改良,改良后的配方為0.10 mol·L-1Tris-HCl緩沖液(pH 7.2)中含10% 甘油、0.002 mol·L-1EDTANa2、0.10% (v/v) Triton X-100、4.0% (w/v)PVP、1.0% β-巰基乙醇,提取液分裝后-20 ℃保存?zhèn)溆?。改良后提取液電泳圖像條帶更清晰,條帶更多,酶樣品-20 ℃儲(chǔ)藏時(shí)間更久。
1.4.2非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳
采用非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳;分離膠SOD濃度為10%,POD和CAT均為7.5%,濃縮膠濃度均為3%;上樣量統(tǒng)一為15 μg可溶性蛋白;穩(wěn)流,濃縮膠電流為10 mA·膠-1,樣品進(jìn)入分離膠后,加大電流至20 mA·膠-1[22]。電泳儀為美國通用電氣公司(GE)EPS301電源和Hoefer○RminiVE電泳槽,每個(gè)樣品分別點(diǎn)兩個(gè)泳道。
SOD同工酶電泳膠染色采用氯化硝基四氮唑藍(lán)(NBT)負(fù)染色法,不同SOD同工酶亞型的鑒定采用氯仿-乙醇抑制法、氰化鉀(KCN)抑制法和過氧化氫(H2O2)抑制法[6,23]。
POD同工酶電泳膠染色參照吳少伯的方法[24]并進(jìn)行了改良。改良后的染色液為每100 mL 0.05 mol·L-1pH 4.6乙酸緩沖液中包含0.1 g少量丙酮溶解的聯(lián)苯胺、70 mg抗壞血酸,染色前加入0.75 mL 3%H2O2。剝下凝膠,放入染色液中30 ℃暗處孵育,直至褐色條帶出現(xiàn),去離子水沖洗后掃描。
CAT同工酶染色采用改良淀粉-碘反應(yīng)方法[25]。具體步驟:灌制含0.1%可溶性淀粉的聚丙烯酰胺分離膠凝膠,電泳結(jié)束后,將膠剝離并沖洗兩遍,放入含100 mL含0.15 g H2O2、0.14 g Na2S2O3·H2O 的pH 7.0 PBS緩沖液(現(xiàn)配現(xiàn)用)中,室溫振蕩15 min,沖洗兩次,再放入去離子水配制的100 mL含0.0 747 g KI和1 mL冰乙酸(新鮮加入)的染色液中,室溫下振蕩至膠出現(xiàn)淺藍(lán)色時(shí)用掃描儀掃描記錄,連續(xù)掃描幾次,透明的條帶因藍(lán)色漸濃而呈現(xiàn)時(shí)間較短暫。
2.1小麥幼苗葉片SOD同工酶亞型鑒定結(jié)果
SOD同工酶電泳結(jié)果共顯示了5個(gè)條帶,分別是Rf 0.25、Rf 0.35、Rf 0.37、Rf 0.55、Rf 0.58(圖1)。H2O2抑制結(jié)果僅顯示Rf 0.25條帶,因?yàn)镃u/Zn-SOD在H2O2作用5 min內(nèi)會(huì)急劇失活,F(xiàn)e-SOD活性也受到較大影響,只有Mn-SOD活性比較穩(wěn)定,故Rf 0.25條帶應(yīng)為Mn-SOD;氯仿-乙醇抑制結(jié)果僅顯示Rf 0.55、Rf 0.58條帶,Mn-SOD和Fe-SOD在氯仿-乙醇溶液里會(huì)迅速失活,而Cu/Zn-SOD能保持24 h內(nèi)活性穩(wěn)定,故條帶Rf 0.55、Rf 0.58應(yīng)為Cu/Zn-SOD;氰化鉀抑制結(jié)果僅顯示Rf 0.25條帶,由于Mn-SOD在70 min內(nèi)穩(wěn)定,而Fe-SOD和Cu/Zn-SOD活性均不同程度下降,也說明Rf 0.25條帶應(yīng)為Mn-SOD;因三種抑制物質(zhì)均對(duì)Fe-SOD活性有影響,所以三種抑制物質(zhì)染色結(jié)果均看不到Rf 0.35和Rf 0.37,故這兩個(gè)條帶應(yīng)為Fe-SOD。
1:SOD亞型;2:CK;3:加入H2O2;4:加入氯仿-乙醇;5:加入KCN
1:SOD isozyme isoforms;2:CK;3:Adding H2O2;4:Adding choroform-ethanol;5:Adding KCN
圖1小麥葉片SOD亞型的鑒定結(jié)果
Fig.1Identification of SOD isozyme isoforms in the leaves of wheat seedlings
2.2小麥專用復(fù)方抗旱型浸種劑和包衣劑對(duì)小麥葉片SOD同工酶表達(dá)的影響
從圖2和圖3可以看出,干旱脅迫下,Mn-SOD活性變化幅度較小,其中FBD和FJD處理的Mn-SOD活性較CK略有升高;干旱脅迫下,各處理的Fe-SOD活性均較高,其中FBD和FJD處理較D處理下降,但略高于CK;Cu/Zn-SOD活性表現(xiàn)為FBD和FJD處理低于其他處理。
2.3小麥專用復(fù)方抗旱型浸種劑和包衣劑對(duì)小麥苗期葉片POD同工酶表達(dá)的影響
從圖4和圖5可以看出,干旱脅迫對(duì)小麥幼苗POD同工酶表達(dá)影響較大,使其條帶數(shù)量、寬度和顏色深淺均發(fā)生了變化。相對(duì)CK處理,D處理中Rf 0.05、Rf 0.13、Rf 0.22和Rf 0.61條帶表達(dá)量降低,而FBD和FJD處理表達(dá)量均提高,以Rf 0.61變化最顯著,且D和FBD處理增加了Rf 0.33、Rf 0.39條帶表達(dá)量;D和PD處理增加了Rf 0.18、Rf 0.22兩個(gè)條帶的表達(dá)量。
圖2 不同處理下小麥苗期葉片SOD同工酶的表達(dá)Fig.2 Expression of SOD isozyme in the leaves of wheat seedlings under different treatments
1:CK;2:D;3:PD;4:FBD; 5:FJD。下圖同The same as in the following figures
圖3不同處理下小麥苗期葉片SOD同工酶活性的差異
Fig.3Activity variation of SOD isozyme isoforms in the leaves of wheat seedlings under different treatments
圖4 不同處理下小麥苗期葉片POD同工酶的表達(dá)Fig.4 Expression of POD isozyme in the leaves of wheat seedlings under different treatments
圖5 不同處理下小麥苗期葉片POD同工酶活性的差異Fig.5 Activity variation of POD isozyme in the leaves of wheat seedlings under different treatments
2.4小麥專用復(fù)方抗旱型浸種劑和包衣劑對(duì)小麥苗期葉片CAT同工酶表達(dá)的影響
從圖6和圖7可以看出,小麥幼苗地上部分CAT同工酶電泳顯示Rf 0.04、Rf 0.76兩個(gè)條帶。D處理明顯降低了這兩個(gè)條帶的表達(dá)量,其中Rf 0.04變化幅度較大;FBD和FJD處理顯著增加了Rf 0.04、Rf 0.76的表達(dá)量,尤其是Rf 0.04變化較明顯。
圖6 不同處理下小麥苗期葉片CAT同工酶的表達(dá)Fig.6 Expression of CAT isozyme in the leaves of wheat seedlings under different treatments
干旱脅迫下,小麥幼苗SOD、POD和CAT同功酶活性和/或酶帶發(fā)生了變化。其中, Fe-SOD活性升高,Cu/Zn-SOD活性降低,Mn-SOD活性變化較小。一些研究結(jié)果顯示,干旱脅迫使SOD活性升高[7-10],這應(yīng)該是Fe-SOD活性變化的結(jié)果。本研究中,干旱脅迫導(dǎo)致POD同工酶活性降低,這與部分研究者的結(jié)果不一致。抗旱型包衣劑和抗旱型浸種劑處理顯著增加了POD同工酶Rf 0.05、Rf 0.13和Rf 0.61條帶的表達(dá)量,尤其是Rf 0.61條帶變化最顯著,這與一些研究者的結(jié)果相一致[13-18]。干旱脅迫下,CAT同功酶Rf 0.04、Rf 0.76條帶表達(dá)量均降低,抗旱型包衣劑和抗旱型浸種劑處理顯著增加了這兩個(gè)條帶的表達(dá)量,這一結(jié)果尚未見文獻(xiàn)報(bào)道。用抗旱型包衣劑和抗旱型浸種劑處理能夠顯著增加小麥幼苗的抗旱能力[18]。馮彩平[12]認(rèn)為,POD同工酶酶帶活性的增加與小麥的抗旱性存在正相關(guān)關(guān)系。本研究結(jié)果顯示,抗旱型包衣劑包衣和抗旱型浸種劑浸種處理種子增加了Fe-SOD活性、POD同工酶活性和CAT同工酶活性,有助于增強(qiáng)小麥幼苗抗旱性。因此推測(cè)抗旱型包衣劑和抗旱型浸種劑對(duì)小麥幼苗抗氧化酶同工酶表達(dá)的影響可能與相關(guān)基因調(diào)控有關(guān),但還需要進(jìn)一步研究證實(shí)。
圖7 不同處理下小麥苗期葉片CAT同工酶活性的差異Fig.7 Activity variation of CAT isozyme in the leaves of wheat seedlings under different treatments
[1]曹錫清.脂質(zhì)過氧化對(duì)細(xì)胞與機(jī)體的作用[J].生物化學(xué)與生物物理進(jìn)展,1986(2):17-21.
Cao X Q.The effects of lipid peroxidation on the cell and organism [J].ProgressinBiochemistryandBiophysics,1986(2):17-21.
[2]Elster F E.Oxygen activation and oxygen toxicity [J].AnnualReviewPlantPhysiology,1982,33:73-96.
[3]王寶山.生物自由基與植物膜傷害[J].植物生理學(xué)通訊,1988(2):12-16.
Wang B S.Biological free radicals and membrane damage of plants [J].PlantPhysiologyComunications,1988(2):12-16.
[4]Foster J G,Edwards G E.Localization of superoxide dismutase in leaves of C3and C4plants [J].PlantCellPhysiology,1980,21(5):895-906.
[5]Fridovich I.Superoxide dismutases [J].AnnualReviewofBiochemistry,1975,44:147-159.
[6]Lee D H,Kim Y S,Lee C B.The inductive responses of the antioxidant enzymes by salt stress in the rice (OryzasativaL.) [J].JournalofPlantPhysiology,2001,158(6):737-745
[7]黃國存,崔四平,馬春紅,等.干旱對(duì)小麥幼苗SOD活性和CaM水平的影響[J].華北農(nóng)學(xué)報(bào),1995,10(1):40-44.
Huang G C,Cui S P,Ma C H,etal.Influence of water stress on sod activities and calmodulin levels [J].ActaAgriculturaeBoreali-Sinica,1995,10(1):40-44.
[8]于同泉,劉宗萍,路 萍,等.水分脅迫小麥SOD、MDA動(dòng)態(tài)變化與抗旱性的關(guān)系[J].北京農(nóng)學(xué)院學(xué)報(bào),1995,10(6):22-25.
Yu T Q,Liu Z P,Lu P,etal.The relations between dynamie state change of SOD,MDA in water-stressed wheat seeding and wheat drought resistance [J].JournalofBeijingAgriculturalCollege,1995,10(6):22-25.
[9]陳 軍,高貴珍,方雪梅,等.干旱脅迫對(duì)小麥萌發(fā)期POD、CAT活性的影響[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2014,42(17):5360-5361,5389.
Chen J,Gao G Z,Fang X M,etal.Effects of drought stress on activity of POD and CAT in wheat during generation period [J].JournalofAnhuiAgriculturalScience,2014,42(17) :5360-5361,5389.
[10]時(shí)麗冉,張文文.干旱和鹽脅迫對(duì)小麥過氧化物同工酶的影響[J].衡水學(xué)院學(xué)報(bào),2008,10(4):50-52.
Shi L R,Zhang W W.Effect of drought stress and salt stress on isoperoxidases of wheat [J].JournalofHengshuiUniversity,2008,10(4):50-52.
[11]裴冬麗.干旱脅迫對(duì)小麥幼苗過氧化物酶同工酶的影響[J].湖北農(nóng)業(yè)科學(xué),2011,50(8):1530-1532.
Pei D L.Effect of drought stress on peroxidase isoenzyme of wheat seedlings [J].HubeiAgriculturalScience,2011,50(8):1530-1532 .
[12]馮彩平.土壤干旱對(duì)冬小麥功能葉過氧化物酶同工酶及抗旱性的影響[J].水土保持通報(bào),1996,16(4):46-50.
Feng C P.Effects of soil drought on peroxidase isoenzyme in winter wheat leaves and drought resistance [J].BulletinofSoilandWaterConservation,1996,16(4):46-50.
[13]陳玉玲,曹 敏,李云蔭,等.干旱條件下黃腐酸對(duì)冬小麥幼苗中內(nèi)源 ABA 和 IAA 水平以及SOD和POD 活性的影響[J].植物生理學(xué)通訊,2000,36(4):11-14.
Chen Y L,Cao M,Li Y Y,etal.Effect of fulvic acid on ABA,IAA and activities of superoxide dismutase and peroxydase in winter wheat seedling under drought condition [J].PlantPhysiologyComunications,2000,36(4):11-14.
[14]史國安,付國占,劉豐明.種衣劑對(duì)小麥幼苗膜脂過氧化及某些酶活性的影響[J].麥類作物學(xué)報(bào),1997,17(4):62-64.
Shi G A,Fu G Z,Liu F M.Affects of seed-coating agent on membrane lipid peroxidation and some enzymes activities in wheat seedlings [J].JournalofTriticeaeCrops,1997,17(4):62-64.
[15]覃鳳云,呂金印,陸 璃,等.外源精胺對(duì)水分脅迫下小麥幼苗保護(hù)酶活性的影響[J].西北植物學(xué)報(bào),2006,26(1):86-91.
Qin F Y,Lu J Y,Lu L,etal.Effects of exogenous spermine on protect enzyme activities in wheat seedling under water stress [J].ActaBotanicaBoreali-OccidentaliaSinica,2006,26(1):86-91.
[16]李 慧,張 倩,王金科,等.外源 NO對(duì)干旱脅迫下小麥幼苗抗氧化酶活性的影響[J].江西農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2010,22(12):1-3.
Li H,Zhang Q,Wang J K,etal.Effects of exogenous nitric oxide on activity of anti-oxidative enzymes in wheat seedling under drought stress [J].ActaAgriculturaeJiangxi,2010,22(12):1-3.
[17]朱啟忠,姜 山,張真豪.干旱脅迫下殼聚糖對(duì)小麥幼苗保護(hù)酶活性的影響[J].干旱區(qū)資源與環(huán)境,2012,26(5):145-147.
Zhu Q Z,Jiang S,Zhang Z H.Effects of chitosan on protective enzyme activities in seedlings of wheat under drought stress [J].JournalofAridLandResourcesandEnvironment,2012,26(5):145-147.
[18]賈洪濤,曹善東,杜立樹.小麥專用復(fù)方抗旱型浸種劑和包衣劑抗旱機(jī)理的初步研究[J].麥類作物學(xué)報(bào),2010,30(3):496-499.
Jia H T,Cao S D,Du L S.Study of drought resistance effectiveness of wheat compound anti-drought seed soaking agent and seed coating agent on wheat seedlings under drought stress [J].JournalofTriticeaeCrops,2010,30(3):496-499.
[19]孫 靜,王憲澤.鹽脅迫對(duì)小麥過氧化物酶同工酶基因表達(dá)的影響[J].麥類作物學(xué)報(bào),2006,26(1):42-44.
Sun J,Wang X Z.Effects of salt stress on gene expression of peroxidase isozyme in wheat [J].JournalofTriticeaeCrops,2006,26(1):42-44.
[20]Tanwja S R,Abrol Y P ,Sachar R C.Modulation of O-diphenolase and monophenolase enzymes during wheat grain development [J].CerealChemistry,1974,51:457-464.
[21]Siva R,Krishnamurthy K V.Isozyme diversity inCassiaauriculataL.[J].AfricanJournalofBiotechnology,2005,4 (8):772-775.
[22]趙世杰,史國安,董新純.植物生理學(xué)實(shí)驗(yàn)指導(dǎo)[M].北京:中國農(nóng)業(yè)科學(xué)技術(shù)出版社,2002:136-139,142-143.
Zhao S J,Shi G A,Dong X C.Experiment Guide of Plant Physiology [M].Beijing:Chinese Agricultural Science and Technology Press,2002:136-139,142-143.
[23]羅廣華,王愛國,付愛根.鑒別超氧化物歧化酶類型的定位染色法[J].生物化學(xué)與生物物理進(jìn)展,1996,23(4):356-359.
Luo G H,Wang A G,Fu A G.The location staining method for distinguishing diferent types of SOD [J].ProgressinBiochemistryandBiophysics,1996,23(4):356-359.
[24]吳少伯.植物組織中蛋白質(zhì)及同功酶的聚丙烯酚胺凝膠盤狀電泳[J].植物生理學(xué)通訊,1979(1):30-33.
Wu S B.The polyacrylamide disk gel electrophoresis of protein and isozyme from plant tissue [J].PlantPhysiologyComunications,1979(1):30-33.
[25]Manchenko G P.Handbook of Detection of Enzymes on Electrophoretic Gels(Second Edition) [M].Boca Raton London New York Washington,D C:CRC Press,2003:158-159.
The Effects of Compound Anti-drought Seed Soaking Agent and Seed Coating Agent on SOD, POD and CAT Isozyme Expression in Wheat Seedlings
JIA Hongtao,HU Xiaojun,QIU Fengtong,ZHANG Li
(Institute of Life Science,Linyi University,Linyi,Shandong 276001,China)
The effects of anti-drought seed soaking agent and seed coating agent on the oxidation reduction system isozyme expression were explored with wheat variety Linmai 2 under drought stress by controlling soil moisture in plant pots. The results showed that the Mn-SOD and Fe-SOD isozyme amount (activity) were higher than control; Cu/Zn-SOD isozyme amount (activity) was lower than control under drought stress; The POD isozyme expression results showed that the amount of band Rf 0.05, Rf 0.13, Rf 0.22 and Rf 0.61 was less than contrast under drought treatment; The amount of band Rf 0.05, Rf 0.13 and Rf 0.61 were exceeded over control by the treatments of “ anti-drought seed soaking agent” and “anti-drought seed coating agent” under drought stress; The new bands of Rf 0.18 and Rf 0.22 appeared under “drought stress” and “anti-drought seed soaking with drought stress” .The CAT expression showed that the amounts of band Rf 0.04 and Rf 0.76 were lower than control under “drought stress” treatment;The amounts of band Rf 0.04 and Rf 0.76,especially Rf 0.04 were significantly higher than control under the “anti-drought seed soaking with drought stress” and “anti-drought seed coating with drought stress” treatments. In summary, the seeds treated by drought-resistant seed soaking agent or seed coating agent could enhance isozyme expression by upgrading oxidation reduction system under drought stress, which increased drought-resistant and antioxidant ability of wheat seedling.
Wheat; Drought stress; Drought-resistant seed soaking agent; Drought-resistant seed coating agent; Isozyme electrophoresis
時(shí)間:2016-05-10
2015-11-15
2015-12-21
山東省科技攻關(guān)項(xiàng)目(2009GG10009040); 國家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(No.31000744);山東省中青年科學(xué)家獎(jiǎng)勵(lì)項(xiàng)目(BS2010SW004)
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S512.1;S311
A
1009-1041(2016)05-0647-06
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