国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

1,25-二羥基維生素D3通過誘導(dǎo)基質(zhì)金屬蛋白酶7的表達(dá)上調(diào)小鼠腸道中活性防御素

2016-09-13 03:24:14陳子碩
中國測試 2016年8期
關(guān)鍵詞:菌群剪切引物

陳子碩,劉 譽(yù)

(四川大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,四川 成都 610064)

1,25-二羥基維生素D3通過誘導(dǎo)基質(zhì)金屬蛋白酶7的表達(dá)上調(diào)小鼠腸道中活性防御素

陳子碩,劉譽(yù)

(四川大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,四川 成都 610064)

為探索維生素D對腸道先天免疫抗菌肽——α-防御素1(alpha-1-defensin,DEFA1)剪切酶基質(zhì)金屬蛋白酶7 (matrix metalloproteinase 7,MMP-7)的調(diào)控,利用維生素D受體基因敲除小鼠(Vitamin D receptor knock-out,VDR-KO)與腸道細(xì)胞系作為研究模型,通過免疫組化染色、qRT-PCR及免疫印跡等研究方法,發(fā)現(xiàn)其腸道細(xì)胞中MMP-7的轉(zhuǎn)錄水平與蛋白水平較野生型(wild type,WT)小鼠顯著降低,并且DEFA1的表達(dá)量也較低,表明維生素D可以調(diào)控腸道MMP-7的表達(dá),從而影響DEFA1的成熟。同時,體外細(xì)胞實(shí)驗(yàn)表明:1,25-二羥基維生素D3能夠上調(diào)腸道細(xì)胞MMP-7的轉(zhuǎn)錄水平和蛋白水平。初步表明,維生素D通過調(diào)控MMP-7的表達(dá)影響DEFA1的成熟,而維生素D缺失,MMP-7下調(diào)從而DEFA1下調(diào),進(jìn)一步可能造成腸道菌群失調(diào),導(dǎo)致多種慢性疾病的發(fā)生。

1,25-二羥基維生素D3;維生素D受體基因敲除鼠;基質(zhì)金屬蛋白酶7;α防御素

0 引言

維生素D(VD)是一種調(diào)節(jié)鈣磷代謝的主要維生素,在免疫以及癌癥、疾病感染、組織纖維化、脂肪肝和酒精肝的防治中具有重要作用[1]。大量臨床數(shù)據(jù)表明,維生素D在多種慢性疾病中普遍缺失[1]。維生素D的活性形式為1,25-二羥基維生素D3,通過與維生素D受體(VDR)結(jié)合行使功能。VDR是核受體家族的重要轉(zhuǎn)錄因子,與特異VDR順式元件(VD response element,VDRE)結(jié)合后,被激活的復(fù)合體招募到共激活因子或抑制因子,從而促使或抑制特定基因的轉(zhuǎn)錄[2]。

大量研究表明,VD能夠影響多種免疫細(xì)胞的分化、成熟,抑制Th1反應(yīng)中IL-2、IL-12和IFN-γ等促炎癥因子的表達(dá)[3],誘導(dǎo)T調(diào)節(jié)細(xì)胞的產(chǎn)生[4],促進(jìn)Th2反應(yīng)IL-4、IL-5和IL-10等抑炎癥因子的表達(dá)[5]。本課題組前期研究表明,在Balb/C小鼠中VDR在皮膚、小腸、肝臟和胰島中均有表達(dá),尤其在腸道的表達(dá)量最高,約為皮膚的20倍,胰腺的100倍,肝臟的1000倍。臨床數(shù)據(jù)和研究發(fā)現(xiàn),VD能夠抑制腸道炎癥[6],抑制腸道纖維化[7]和腫瘤[8]的產(chǎn)生和發(fā)展,促進(jìn)腸道上皮細(xì)胞緊密連接蛋白的表達(dá)[9],維持腸道潘氏細(xì)胞功能[10]等,這些表明腸道是VD作用的重要器官,VD在維持腸道穩(wěn)態(tài)中具有重要作用。

潘氏細(xì)胞位于小腸利氏腺窩的基部[11],在受到膽堿和腸道微生物刺激時,會分泌大量α-防御素(α-defensin,DEFA)及其他抗菌分子和促炎癥因子,如溶菌酶、磷脂酶a2、白介素17和腫瘤壞死因子等[11-12]。DEFA是一類由6個高度保守二硫鍵連接的半胱氨酸骨架陽離子多肽[13]。在小鼠的小腸中,潘氏細(xì)胞受到細(xì)菌產(chǎn)物刺激時,DEFA在腺窩處的局部濃度可達(dá)到25~100mg/mL,是腸道先天免疫的主要成分[14]。在潘氏細(xì)胞中,基質(zhì)金屬蛋白酶7(MMP-7)是特異剪切DEFA的酶,DEFA前體N端經(jīng)MMP-7剪切后,暴露其帶有正電荷的活性區(qū)域,形成約3.5kD的活性DEFA[15]。研究表明,MMP-7基因敲除小鼠的腸道無法對前體DEFA進(jìn)行剪切,從而缺乏活性形式的DEFA,使腸道對細(xì)菌感染高度敏感,在低劑量的致病菌鼠傷寒沙門氏菌的感染下,MMP-7基因敲除的小鼠與對照組小鼠相比死亡更多、更快[16]。維生素D對腸道的免疫調(diào)節(jié)非常重要,但其對MMP-7的作用機(jī)制仍不清晰。本文檢測了維生素D對DEFA活性剪切酶MMP-7的表達(dá)調(diào)控,從一個新的角度出發(fā)探討維生素D對腸道免疫的調(diào)節(jié)作用。

1 材料與方法

1.1材料

Caco2細(xì)胞由中國科學(xué)院細(xì)胞庫提供,HT29細(xì)胞由本實(shí)驗(yàn)室保存。DMEM高糖(Hyclone)培養(yǎng)基,含10%胎牛血清 (Clark),1%青霉素-鏈霉素雙抗(Thermo)。1,25-二羥基維生素D3,購于SIGMA公司。雜合子維生素D受體基因敲除小鼠B6.129S4-Vdr<tm1Mbd>/J(006133),購于美國Jackson Lab。小鼠飼料:高磷高鈣飼料,購于北京華阜康生物科技股份有限公司。VDR抗體(12550),購于Cell Signaling Technology;MMP-7抗體(sc-8832),購自Santa Cruz Biotechnology;GAPDH抗體購于成都正能生物科技公司;α-defensin 1抗體由南加州大學(xué)凱克醫(yī)學(xué)中心Yoshihiro Eriguchi提供。山羊抗兔IgG-HRP(sc-2004),山羊抗小鼠IgG-HRP(sc-2005),和驢抗山羊IgG-HRP(sc-2020)均購于Santa Cruz Biotechnology。通用型山羊抗兔檢測試劑盒(PV-6000),山羊二步法超敏檢測試劑盒 (PV-9003),DAB檢測試劑盒(ZLI9017)均購于北京中杉金橋公司。TRizol試劑購于Transgen公司;反轉(zhuǎn)錄試劑盒購于羅氏公司;熒光定量試劑購于Bio-Rad公司。

1.2方法

1.2.1VDR基因敲除小鼠的鑒定與飼養(yǎng)

將購于美國Jackson Lab的VDR基因敲除雜合子小鼠雌雄1∶1兩兩配對進(jìn)行交配。約3~4周后,雌鼠產(chǎn)下小鼠。待F1代小鼠斷奶后(約3周),將其從母鼠處分出至新的籠子內(nèi),按雌雄分開。剪取小鼠尾尖約0.5~1cm,提取基因組DNA并進(jìn)行PCR,通過1.5%瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行鑒定。所使用的引物為Mutant:5′-CACGAGACTAGTGAGACGTG-3′;Wild type:5′-CTCCATCCCCATGTGTCTTT-3′;Common:5′-TTCTTCAGTGGCCAGCTCTT-3′。凝膠顯影后,只有一條500bp大小條帶的為VDR基因敲除純合子,有兩條分別為382bp和500bp條帶的為雜合子,只有一條382bp大小的條帶為野生型小鼠。所有小鼠均飼養(yǎng)在獨(dú)立通氣籠具(IVC)系統(tǒng)中,25℃恒溫,12h晝夜交替飼養(yǎng),小鼠飼料和飲水供給充足,動物飼養(yǎng)與實(shí)驗(yàn)完全遵守美國國立衛(wèi)生研究院(NIH)頒布的實(shí)驗(yàn)動物管理使用條例的規(guī)定。

1.2.2免疫組織化學(xué)染色

將新鮮的小鼠回腸取出,從前段剪取約1cm長度,用4%多聚甲醛4℃固定24~48h,酒精梯度脫水,二甲苯透明,浸蠟,石蠟包埋、切片。將野生型和VDR基因敲除小鼠的回腸切片置于二甲苯中脫蠟兩次,每次10min,然后分別置于100%,95%,75%酒精各5min,流水沖洗;將回腸切片置于抗原修復(fù)液中,煮沸15~20min。根據(jù)所檢測抗原等電點(diǎn)的不同,檢測VDR、MMP-7時使用檸檬酸緩沖液(pH 6.0),檢測DEFA1時使用Tris-EDTA緩沖液(pH 9.0);然后用3%雙氧水處理10min,水洗,0.3%Triton X-100穿孔10min,PBS洗3次,每次5min;3%BSA室溫封閉1h,根據(jù)抗體使用說明配置一抗,4℃孵育過夜,PBS洗3次;二抗室溫孵育1 h,PBS洗3次;DAB顯色,置于顯微鏡下觀察顯色程度,水洗終止顯色;蘇木精復(fù)染,水洗,酒精梯度脫水,干燥后用中性樹脂封片,倒置顯微鏡明場拍照檢測。

1.2.3細(xì)胞培養(yǎng)與處理

Caco2細(xì)胞和HT29細(xì)胞用含10%胎牛血清和1%雙抗的DMEM培養(yǎng)基于5%CO2,37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。將細(xì)胞按照5×105接種于六孔板中,待細(xì)胞至60%~70%匯合度時,更換為無血清DMEM培養(yǎng)基,血清饑餓12h;然后吸去培養(yǎng)基,更換為含1%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基,實(shí)驗(yàn)組加入100nmol/L的1,25-二羥基維生素D3、對照組加入相同體積的乙醇作為陰性對照,處理24h。收集細(xì)胞,提取RNA或蛋白質(zhì),進(jìn)行后續(xù)qRT-PCR和Western blot檢測。

1.2.4qRT-PCR檢測MMP-7基因的表達(dá)

在收集的細(xì)胞或組織樣本中加入TRizol,按照說明書步驟進(jìn)行RNA提取,隨后立即取1g總RNA按照羅氏的反轉(zhuǎn)錄試劑盒進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,將所得的cDNA稀釋5倍后,作為模板,利用熒光定量試劑進(jìn)行qPCR,檢測MMP-7的表達(dá)。待測基因引物序列如下:人CYP24al上游引物:5′-CGACTACCGC AAAGAAGGCTA-3′,下游引物:5′-ACCATTTGTTCA GTTCGCTGT-3′;人MMP-7上游引物:5′-GTTTAGA AGCCAAACTCAAGG-3′,下游引物:5′-CTTTGACA CTAATCGATCCAC-3′;人GAPDH上游引物:5′-CC TGGAGAAACCTGCCAAGTAT-3′,下游引物:5′-CTC GGCCGCCTGCTT-3′。小鼠MMP-7上游引物:5′-GCAGAAGTTCTTTGGCCTGC-3′,下游引物:5′-TA TCCGCAGTCCCCCAACTA-3′;小鼠RPL-19上游引物:5′-GAAGGTCAAAGGGAATGTGTTCA-3′,下游引物:5′-CCTTGTCTGCCTTCAGCTTGT-3′。qRTPCR反應(yīng)體系為20.0 μL,反應(yīng)條件:95℃預(yù)變性30 s,95℃ 10s,60℃ 30 s,總共40個循環(huán),采用2-ΔΔCT法計(jì)算相對表達(dá)量。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

1.2.5Western blot檢測蛋白表達(dá)

細(xì)胞總蛋白提?。簩⒓?xì)胞培養(yǎng)基棄盡,用預(yù)冷的1×PBS漂洗2~3次,用細(xì)胞刮將細(xì)胞盡數(shù)刮下,4℃800g離心10min收集細(xì)胞。棄盡PBS后加入適量的RIPA(50 mmol/L Tris-HCl,pH 7.8;150 mmol/L NaCl;1.0%Triton X-100;0.1%SDS;PMSF 1mmol/L)裂解液于冰上,每10 min渦旋震蕩30 s,30 min后,4℃最大轉(zhuǎn)速離心30min,吸取上清,即細(xì)胞總蛋白。所得蛋白用BCA法測得濃度,隨后加入5×SDSPAGE上樣緩沖液,于金屬浴中100℃加熱10min。然后將制得的蛋白樣品于12%的SDS-PAGE進(jìn)行電泳,4℃轉(zhuǎn)于PVDF膜上,5%的脫脂牛奶室溫封閉1h,一抗4℃孵育過夜,PBST洗3次,每次10 min;二抗室溫孵育1 h,PBST洗3次,ECL顯影成像。

2 結(jié)果

2.1DEFA1在VDR-KO小鼠的回腸中表達(dá)量降低

VDR基因敲除(VDR-KO)小鼠通過基因打靶技術(shù),在VDR基因第2個外顯子內(nèi)插入一段序列,使VDR基因不能正常翻譯表達(dá)[17]。親代雜合子小鼠交配后,通過PCR檢測子代小鼠的基因型(見圖1),分別鑒定出VDR-KO小鼠(VDR-/-)、雜合子小鼠(VDR+/-)和野生型(WT)小鼠(VDR+/+)。

圖1 子代小鼠基因型鑒定

免疫組化染色表明,VDR-KO小鼠的回腸中無陽性著色區(qū)域(見圖2),而WT小鼠回腸內(nèi)VDR主要分布在腸腺窩和絨毛中,并且VDR主要分布于細(xì)胞核。為了研究VDR對腸道防御素DEFA1的影響,利用免疫組化染色,在WT小鼠和VDR-KO小鼠中檢測了DEFA1的表達(dá)情況。如圖2所示,VDR-KO小鼠回腸腺窩底部的DEFA1表達(dá)量較WT小鼠顯著降低。

2.2DEFA1的活性剪切酶MMP-7在VDR-KO

小鼠中表達(dá)降低

在小鼠的腸道中,DEFA的成熟、活化及分泌主要由MMP-7介導(dǎo)[15]。在VDR-KO小鼠中DEFA1的下調(diào)可能是由其剪切酶MMP-7的下調(diào)引起的。因此利用免疫組化染色和qRT-PCR發(fā)現(xiàn),與WT小鼠相比,VDR-KO小鼠回腸中MMP-7蛋白與mRNA表達(dá)量降低,并且具有顯著差異(見圖3)。初步表明,在VDR-KO小鼠中,MMP-7的表達(dá)量降低,造成MMP-7對DEFA1的剪切作用減弱,使得DEFA1的表達(dá)量下調(diào)。

2.31,25-二羥基維生素D3在腸道細(xì)胞系中上調(diào)MMP-7

為了驗(yàn)證VD-VDR能夠調(diào)控MMP-7的表達(dá),選取兩株人腸道細(xì)胞系進(jìn)行體外實(shí)驗(yàn)。通過qRTPCR檢測發(fā)現(xiàn),經(jīng)過100 nmol/L 1,25(OH)2VD3處理后,VDR下游的靶基因CYP24al表達(dá)量顯著增加,在Caco2細(xì)胞中約增加2000倍,HT29細(xì)胞中約增加300倍(見圖4(a))。同時1,25(OH)2VD3處理后,MMP-7的mRNA表達(dá)量于Caco2細(xì)胞和HT29細(xì)胞中均顯著上調(diào)(見圖4(b))。此外,利用Westernblot檢測發(fā)現(xiàn),VDR和MMP-7的蛋白水平顯著上調(diào)(見圖4(c)),初步表明1,25(OH)2VD3通過上調(diào)VDR,進(jìn)而上調(diào)MMP-7的表達(dá)。

圖2 DEFA1在VDR基因敲除小鼠回腸中的表達(dá)量降低

圖3 MMP-7在VDR基因敲除小鼠回腸中的表達(dá)

3 討論

在前期的實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),飲食缺乏VD的小鼠和VDR-KO小鼠腸道存在慢性炎癥,并且腸道菌群的組成也發(fā)生顯著變化。推測這種改變與腸道防御素的下調(diào)相關(guān)。腸道防御素對腸道表皮干細(xì)胞具有保護(hù)作用,可以防止多種有害菌定殖在腺窩處[18]。小腸腺窩處的防御素含量約有毫克級,而防御素在微克級便可發(fā)揮其抗菌活性,所以這些防御素足以有效保護(hù)腺窩[19]。小腸中的微生物含量與結(jié)腸微生物的比例約為1∶104到1∶106,防御素給小腸提供了一個抗菌的環(huán)境,使得臨近大腸的菌群沒有過多的定殖到小腸中[20]。由于對防御素的敏感性不同,腸道菌群中各種菌的相對豐度有所差異,所以腸道菌的分布與菌群構(gòu)成部分受到防御素的支配[21]。防御素還具有旁路信號分子作用,如小鼠的隱窩素3,可引起鹽和水的分泌反應(yīng)[22],還可以誘導(dǎo)白介素8(IL-8)的分泌[23]。在之前的實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),小鼠灌胃α-防御素5 (DEFA5)后,可以重新平衡飲食介導(dǎo)的VD缺失小鼠腸道菌群。

圖4 1,25-二羥基維生素D3在腸道細(xì)胞系中上調(diào)MMP-7

研究證明維生素D可以直接誘導(dǎo)防御素的表達(dá)[24],如人的β防御素2、3和4,在其啟動子上具有VDR順式元件(VDRE)[25]。然而單純的VD并不能夠明顯誘導(dǎo)其表達(dá),需要NF-B通路的共同作用[26]。在實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),VD并不能明顯的誘導(dǎo)DEFA的表達(dá),而更多的是通過調(diào)控MMP-7從而調(diào)控活性形式的DEFA表達(dá)量。在人體中,與小鼠防御素直系同源人的防御素前體主要是由胰蛋白酶的異構(gòu)體剪切[14]。而通過實(shí)驗(yàn)結(jié)果推測,在人體中MMP-7也同樣能夠剪切DEFA介導(dǎo)其成熟。此外,MMP-7作為一種基質(zhì)金屬蛋白酶,其在多種外分泌和粘膜表皮中表達(dá),如皮膚,唾液腺,胰腺,肝臟,乳腺,腸道,泌尿生殖道和肺等[27],其底物包括一些細(xì)胞外基質(zhì)組分如纖連蛋白、明膠、IV型膠原、層黏連蛋白和彈力蛋白等。MMP-7對它們的剪切導(dǎo)致基質(zhì)分解,這對細(xì)胞的遷移和組織的重構(gòu)十分重要[27]。研究表明,在組織損傷、修復(fù)過程中,MMP-7通過剪切趨化因子CXCL1抑制炎癥反應(yīng)[28],剪切E-cadherin等細(xì)胞粘附蛋白促進(jìn)傷口邊緣細(xì)胞遷移[29],從而促進(jìn)傷口修復(fù)。因此,研究結(jié)果也暗示了VD可能通過調(diào)控MMP-7從而促進(jìn)組織損傷修復(fù)。通過生物信息學(xué)分析,我們發(fā)現(xiàn)在MMP-7基因的啟動子區(qū)域-1285位和-1006位,存在VDR結(jié)合作用元件——VDRE序列。因此推測,維生素D可能是通過VDR/VDRE作用于MMP-7的啟動子,在轉(zhuǎn)錄水平上調(diào)控MMP-7的表達(dá),因此需要進(jìn)一步實(shí)驗(yàn)證明。

4 結(jié)束語

VD在腸道免疫中具有重要的作用,本文發(fā)現(xiàn)通過誘導(dǎo)MMP-7的表達(dá)可增加腸道免疫成分DEFA的表達(dá)量,從而調(diào)節(jié)腸道菌群,這為以后腸道菌群以及腸道免疫相關(guān)疾病的治療提供了新的思路。

[1]YUAN-PING H,MING K,SUJUN Z,et al.Vitamin D in liver diseases:from mechanisms to clinical trials[J]. Journal of Gastroenterology&Hepatology,2013,28(28):49-55.

[2]FARACH-CARSONM C,RIDALLl A L.Dual 1,25-dihydroxyvitamin D3signal response pathways in osteoblasts:Cross-talk between genomic and membraneinitiatedpathways[J].American Journal of Kidney Diseases,1998,31(4):729-742.

[3]CANTORNA M T,SNYDER L,LIN Y D,et al.Vitamin D and 1,25(OH)2dregulation of tcells[J].Nutrients,2015,7(4):3011-3021.

[4]MORALES-TIRADO V,WICHLAN D G,LEIMING T E,et al.1α,25-dihydroxyvitamin D3(vitamin D3)catalyzes suppressive activity on human natural regulatory T cells,uniquely modulates cell cycle progression and augments FOXP3[J].Clinical Immunology,2011,138(2):212-221.

[5]BOONSTRA A,BARRAT F J,CRAIN C,et al.1 alpha,25-Dihydroxyvitamind3hasadirecteffecton naive CD4(+)T cells to enhance the development of Th2 cells[J].Journal of Immunology,2001,167(9):4974-4980.

[6]HLAVATY T,KRAJCOVICOVA A,KOLLER T,et al. Higher vitamin D serum concentration increases health relatedqualityoflifeinpatientswithinflammatory bowel diseases[J].World Journal of Gastroenterology,2014,20(42):15787-15796.

[7]TAO Q,WANG B,ZHENG Y,et al.Vitamin D prevents the intestinal fibrosis via induction of vitamin D receptor and inhibition of transforming growth factor-beta1/smad3 pathway[J].Digestive Diseases&Sciences,2014,60(4):868-875.

[8]ZHENG W,WONG K E,ZHANG Z,et al.Inactivation of the vitamin D receptor in APC min/+mice reveals a critical role for the vitamin D receptor in intestinal tumor growth[J].International Journal of Cancer Journal International Du Cancer,2012,130(1):10-19.

[9]CHEN S W,WANG P Y,ZHU J,et al.Protective Effect of 1,25-Dihydroxyvitamin D3on Lipopolysaccharide-In duced Intestinal Epithelial Tight Junction Injury in Caco-2 Cell Monolayers[J].Inflammation,2014,38(1):375-383.

[10]WU S,ZHANG Y G,LU R,et al.Intestinal epithelial vitamin D receptor deletion leads to defective autophagy in colitis[J].Gut,2015,64(7):1082-1094.

[11]STAPPENBECK T S.Paneth cell development,differentiation and function:new molecular cues[J].Gastroenterology,2009,137(1):30-33.

[12]OUELLETTE A J.Paneth cells and innate mucosal immunity[J].CurrentOpinion in Gastroenterology,2010,26 (6):547-553.

[13]SMITH G P.Normal Immune Function and Barrier:Defensins[M].Encyclopedia of Medical Immunology.New York:Springer,2014:805-807.

[14]GHOSH D,PORTER E,SHEN B,et al.Paneth cell trypsin is the processing enzyme for human defensin-5[J]. Nature Immunology,2002,3(6):583-590.

[15]AYABE T,SATCHELL D P,PESENDORFER P,et al. Activation of paneth cell α-defensins in mouse small intestine[J].Journal of Biological Chemistry,2002,277(7):5219-5228.

[16]YOSHINORIS,HIROKIT,SATCHELL D P,et al. Structural determinants of procryptdin recognition and cleavage by matrix metalloproteinase-7[J].Journal of Biological Chemistry,2003,278(278):7910-9.

[17]LI Y C,PIRRO A E,AMLING M,et al.Targeted ablation of the vitamin D receptor:an animal model of vitamin D-dependent rickets type II with alopecia[J]. Proc Natl Acad Sci Usa,1997,94(18):9831-5.

[18]AYABE T,SATCHELL D P,WILSON C L,et al. Secretion of microbicidal alpha-defensins by intestinal Paneth cells in response to bacteria[J].Nature Immunology,2000,1(2):113-118.

[19]KELLY P,F(xiàn)EAKINS R,DOMIZIO P,et al.Panethcell granule depletion in the human small intestine under infective and nutritional stress[J].Clinical&Experimental Immunology,2004,135(2):303-309.

[20]BEVINS C L.Paneth cell defensins:key effector molecules of innate immunity[J].Biochemical Society Transactions,2006,34(2):263-6.

[21]OUELLETTE A J.Defensin-mediated innate immunity in the small intestine[J].Best Practice&Research Clinical Gastroenterology,2004,18(2):405-19.

[22]GANG Y,DIDIER M,SELSTED M E,et al.Cryptdin 3 forms anion selective channels in cytoplasmic membranes of human embryonic kidney cells[J].Ajp Gastrointestinal&Liver Physiology,2002,282(5):730.

[23]LIN P W,SIMON P O,GEWIRTZ A T,et al.Paneth cell cryptdins act in vitro as apical paracrine regulators of the innate inflammatory response[J].Journal of Biological Chemistry,2004,279(19):19902-7.

[24]YAN C,F(xiàn)ANTACONE M L,GOMBART A F.Regulation of antimicrobial peptide gene expression by nutrients and by-products of microbial metabolism[J].European Journal of Nutrition,2012,51(8):899-907.

[25]DAI X J,SAYAMA K,TOHYAMA M,et al.PPARγ mediates innate immunity by regulating the 1α,25-dihydroxyvitamin D3induced hBD-3 and cathelicidin in human keratinocytes[J].Journal of Dermatological Science,2010,60(3):179-186.

[26]TIAN-TIANW,BASELD,DAVID L,et al.Direct and indirect induction by 1,25-dihydroxyvitamin D3of the NOD2/CARD15-defensin beta2 innate immune pathway defective in Crohn disease[J].Journal of Biological Chemistry,2010,285(4):2227-2231.

[27]WILLIAMP,STEVEN S.Matrix metalloproteinases in lung biology[J].Respiratory Research,2001,2(1):10-19.

[28]LIQ,PARKP W,WILSON C L,et al.Matrilysin shedding of syndecan-1 regulates chemokine mobilization and transepithelial efflux of neutrophils in acute lung injury[J].Cell,2002,111(5):635-46.

[29]CALEY M P,MARTINS V L,O'TOOLE E A.Metalloproteinases and wound healing[J].Advances in Wound Care,2015,4(4):225-234.

(編輯:莫婕)

1,25(OH)2VD3up regulates activation of α-defensins through induction of MMP-7 in mouse intestine

CHEN Zishuo,LIU Yu
(College of Life Sciences,Sichuan University,Chengdu 610064,China)

The aim of this study was to find the role of VD in regulating the active form of αdefensin 1(DEFA1),one of the antibacterial peptides in mouse intestine.It showed that the active DEFA1 was much lower in VDR knock-out mice compared to the wild type(WT)mice. Both mRNA and protein of matrix metalloproteinase-7(MMP-7),the cleaved enzyme of DEFA1,as detected by immumohistochemical staining and qRT-PCR,were at a relatively low level.In vitro experiment showed that VD can induce the expression of MMP-7 in colon cells.Thus,it suggested that VD can regulate the expression of MMP-7.When VD was deficient,MMP-7 was down-regulated and so was the active form of DEFA1,it might lead to impairment of intestinal innate immunity and dysbiosis and drive chronic disorders.

1,25(OH)2VD3;Vitamin D receptor knock-out mice;matrix metalloproteinase-7;αdefensin

A

1674-5124(2016)08-0057-07

10.11857/j.issn.1674-5124.2016.08.012

2016-03-20;

2016-04-25

陳子碩(1990-),女,江蘇徐州市人,碩士研究生,專業(yè)方向?yàn)榇x綜合征、腸道菌群細(xì)胞生物學(xué)。

猜你喜歡
菌群剪切引物
DNA引物合成起始的分子基礎(chǔ)
高中生物學(xué)PCR技術(shù)中“引物”相關(guān)問題歸類分析
“云雀”還是“貓頭鷹”可能取決于腸道菌群
中老年保健(2022年2期)2022-08-24 03:20:50
SSR-based hybrid identification, genetic analyses and fingerprint development of hybridization progenies from sympodial bamboo (Bambusoideae, Poaceae)
“水土不服”和腸道菌群
科學(xué)(2020年4期)2020-11-26 08:27:06
寬厚板剪切線控制系統(tǒng)改進(jìn)
山東冶金(2018年5期)2018-11-22 05:12:46
混凝土短梁斜向開裂后的有效剪切剛度與變形
火炬松SSR-PCR反應(yīng)體系的建立及引物篩選
土-混凝土接觸面剪切破壞模式分析
肉牛剩余采食量與瘤胃微生物菌群關(guān)系
黎城县| 遵义县| 津南区| 通化县| 轮台县| 昂仁县| 磐安县| 麻江县| 新巴尔虎右旗| 新乐市| 多伦县| 长丰县| 汉川市| 图片| 东乡族自治县| 西青区| 科技| 桑日县| 上林县| 武平县| 司法| 从江县| 晋江市| 策勒县| 山东省| 五指山市| 沙河市| 霍邱县| 简阳市| 晋中市| 仙居县| 钦州市| 隆德县| 桐柏县| 遂宁市| 芦山县| 龙川县| 图们市| 广西| 镇远县| 沭阳县|