馮　霞,趙　欣,*

(1.重慶第二師范學(xué)院 生物與化學(xué)工程系,重慶 400067;2.重慶第二師范學(xué)院 重慶市功能性食品協(xié)同創(chuàng)新中心,重慶 400067)

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不同容器發(fā)酵水豆豉預(yù)防CCl4誘導(dǎo)肝損傷的研究

馮霞1,2,趙欣1,2,*

(1.重慶第二師范學(xué)院 生物與化學(xué)工程系,重慶 400067;2.重慶第二師范學(xué)院 重慶市功能性食品協(xié)同創(chuàng)新中心,重慶 400067)

本研究對(duì)不同容器發(fā)酵水豆豉的抗氧化能力以及肝損傷預(yù)防效果進(jìn)行了研究。和肝損傷組小鼠相比(CCl4誘導(dǎo)肝損傷),濃度為4 g/kg的水豆豉乙醇提取物處理的各組小鼠的肝臟重量,肝指數(shù),血清ALT、AST、LDH、MDA、IL-6、IL-12、TNF-α和IFN-γ水平顯著降低(p<0.05),SOD、GSH-Px的水平顯著提高(p<0.05)。通過RT-PCT實(shí)驗(yàn)也可以看出較肝損傷組水豆豉可以上調(diào)小鼠肝臟的Mn-SOD、Gu/Zn-SOD、CAT的表達(dá),下調(diào)iNOS、COX-2、IL-lβ、TNF-α表達(dá)。通過實(shí)驗(yàn)結(jié)果可以看出,玻璃容器發(fā)酵水豆豉(GVFS)的肝損傷預(yù)防效果和抗氧化效果顯著優(yōu)于陶瓷容器發(fā)酵水豆豉(CVFS)和塑料容器發(fā)酵水豆豉(PVFS)(p<0.05)。

水豆豉,容器,CCl4,肝損傷,抗氧化

水豆豉是我國(guó)的一種傳統(tǒng)發(fā)酵食品,大豆通過短時(shí)間的發(fā)酵制成水豆豉,在西南地區(qū)水豆豉常作為調(diào)味品使用。同時(shí),在中國(guó)古代醫(yī)書上對(duì)水豆豉的功效也有記載,水豆豉也作為一味中藥使用,具有開胃健脾,清熱解毒等功效;現(xiàn)代科學(xué)也證明水豆豉可作為功能性食品使用,有抗氧化、抗突變和預(yù)防癌癥等功效[1]。水豆豉是通過細(xì)菌進(jìn)行自然發(fā)酵的大豆制品,浸泡水量、發(fā)酵時(shí)間、發(fā)酵溫度、后發(fā)酵時(shí)間等都能影響其理化性質(zhì)和功能性作用[2],發(fā)酵容器的材質(zhì)也可導(dǎo)致發(fā)酵溫度、水分等因素產(chǎn)生差異,從而使大豆產(chǎn)品的發(fā)酵過程出現(xiàn)差別,影響其品質(zhì)[3]。家庭發(fā)酵水豆豉常使用玻璃、陶瓷和塑料容器。在韓國(guó)有研究表明,發(fā)酵容器的差異對(duì)發(fā)酵大豆食品(大醬)的品質(zhì)產(chǎn)生了影響,造成產(chǎn)品的品質(zhì)出現(xiàn)較大差別[4]。

急性肝損傷是一種急性肝功能異常的病理狀況,四氯化碳(CCl4)是一種可以造成急性肝損傷的化學(xué)物質(zhì),被常用于基礎(chǔ)科學(xué)研究[5]。四氯化碳對(duì)肝臟的損傷作用與氧化應(yīng)激和脂質(zhì)過氧化反應(yīng)有密切關(guān)系,當(dāng)CCl4進(jìn)入肝臟后,通過細(xì)胞色素P450的激活,生成OOCCl3·和OOCCl3·這兩種自由基,在體內(nèi)引起脂質(zhì)過氧化反應(yīng),對(duì)肝細(xì)胞膜的產(chǎn)生損害,影響肝臟的結(jié)構(gòu)和功能,同時(shí)造成Ca2+內(nèi)流,進(jìn)一步損傷肝細(xì)胞,加重肝損傷[6]。另外,CCl4還通過其代謝產(chǎn)物刺激肝臟枯否細(xì)胞大量釋放促炎性細(xì)胞因子,使肝損傷的程度增加[7]。研究表明,水豆豉也具有較好的抗氧化效果[8],因此水豆豉可能通過其抗氧化能力起到預(yù)防和抑制CCl4誘導(dǎo)造成的肝損傷。本研究對(duì)塑料、陶瓷、玻璃這三種常用容器對(duì)水豆豉的肝損傷預(yù)防效果進(jìn)行比較,并驗(yàn)證水豆豉的肝損傷預(yù)防作用與其抗氧化能力之間的關(guān)系。研究結(jié)果可以積累水豆豉發(fā)酵容器造成品質(zhì)變化的理論依據(jù),便于指導(dǎo)工業(yè)化生產(chǎn)水豆豉。

1　材料與方法

1.1材料與儀器

大豆黑龍江省嫩江縣黑龍江農(nóng)墾總局大西江農(nóng)場(chǎng)出產(chǎn)(2014年秋季)。

丙氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(ALT)、天門冬氨酸氨基轉(zhuǎn)換酶(AST)、乳酸脫氫酶(LDH)、總超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)、丙二醛(MDA)南京建成生物工程研究所;IL-6、IL-12、TNF-α、IFN-γ細(xì)胞因子美國(guó)BioLegend公司;CycleTESTTM PLUS DNA染色試劑盒德國(guó)Becton Dickinson公司;Trizol試劑、oligodT18、RNase、dNTP 和MLV美國(guó)Invitrogen公司;RT-PCR引物iNOS、COX-2、IL-lβ、TNF-α、Mn-SOD、Gu/Zn-SOD和CAT天根生化科技有限公司;其余試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。

雄性SPF級(jí)昆明小鼠50只(6周齡,體重20～25 g,動(dòng)物許可證號(hào):SCXK(渝)2012-0001)購(gòu)自于重慶醫(yī)科大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心。

LD2X-50FB立式壓力蒸汽滅菌鍋江西華科精密儀器有限公司;PYX-DHS-50X65BS隔水式電熱恒溫培養(yǎng)箱上海百典儀器設(shè)備有限公司;UV9600紫外分光光度計(jì)北京北分瑞利分析儀器(集團(tuán))公司;Bio-Rad小型水平電泳槽美國(guó)Bio-Rad公司;ABI 2720 PCR儀美國(guó)Applied Biosystems公司。

1.2實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1不同容器發(fā)酵水豆豉及提取精選后的大豆與蒸餾水按1∶2比例(重量比)浸泡12 h,然后將大豆放置于高壓蒸氣滅菌鍋中蒸煮(105℃,60 min)。將蒸煮后的大豆冷卻至36℃后置于陶瓷、塑料和玻璃容器中放入恒溫培養(yǎng)箱中保溫發(fā)酵(36℃,72 h)。將發(fā)酵完成后的水豆豉進(jìn)行冷凍干燥然后粉碎,加入20倍量的80%乙醇(v/v)提取12 h,重復(fù)提取3次并合并提取液,用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀減壓蒸干溶劑得到水豆豉提取物待用。

1.2.2動(dòng)物誘導(dǎo)肝損傷實(shí)驗(yàn)將KM小鼠喂養(yǎng)1周適應(yīng)環(huán)境后隨機(jī)平均分為5組,分別是對(duì)照組、肝損傷組、陶瓷容器發(fā)酵水豆豉(CVFS)喂養(yǎng)組、塑料容器發(fā)酵水豆豉(PVFS)喂養(yǎng)組和玻璃容器發(fā)酵水豆豉(GVFS)喂養(yǎng)組,每組10只小鼠。正常組和對(duì)照組小鼠在3周實(shí)驗(yàn)過程中每天灌胃0.2 mL蒸餾水,CVFS、PVFS和GVFS喂養(yǎng)組小鼠每日按濃度4 g/kg分別灌胃0.2 mL陶瓷容器發(fā)酵水豆豉、塑料容器發(fā)酵水豆豉和玻璃容器發(fā)酵水豆豉組提取物溶液,持續(xù)3周。3周后對(duì)除對(duì)照組外其余各組小鼠實(shí)施絕食24 h后腹腔皮下注射CCl4(0.2 mL,CCl4∶橄欖油=1∶1),取心臟血及肝臟待用[5],同時(shí)測(cè)定其中肝指數(shù),指數(shù)按公式計(jì)算:肝指數(shù)=(小鼠肝臟重量/小鼠體重)×100。

1.2.3小鼠血清指標(biāo)檢測(cè)將取得的小鼠血漿在4000 r/min下離心分離10 min后取上層血清,按試劑盒說明書測(cè)定小鼠血清中ALT、AST、LDH、SOD、GSH-Px和MDA的含量。

1.2.4小鼠細(xì)胞因子檢測(cè)將取得的小鼠血漿在4000 r/min下離心分離10 min后取上層血清,按試劑盒說明書使用ELISA測(cè)定小鼠血清中IL-6、IL-12、TNF-α和IFN-γ的細(xì)胞因子水平。

1.2.5用RNAzol試劑提取各組小鼠肝臟組織中的總RNA,然后將其濃度稀釋到1 μg/μL。在2 μL RNA 提取液中按次序分別加入1 μL的 oligodT18、RNase、dNTP、MLV 酶和10 μL的 5×buffer,然后合成cDNA(條件為:37℃ 120 min,99℃ 4 min,4℃ 3 min)。然后以反轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈反應(yīng)法擴(kuò)增iNOS(上游引物:5′-AGA GAG ATC GGG TTC ACA-3′;下游引物:5′-CAC AGA ACT GAG GG TAC A-3′)、COX-2(上游引物:5′-TTA AAA TGA GAT TGT CCG AA-3′;下游引物:5′-AGA TCA CCT CTG CCT GAG TA-3′)、IL-lβ(上游引物:5′-CTC CAT GAG CTT TGT ACA AGG-3′;下游引物:5′-TGC TGA TGT ACC AGT TGG GG-3′)、TNF-α(上游引物:5′-CTC CCT CCA GAA AAG ACA CCA T-3′;下游引物:5′-ATC ACC CCG AAG TTC AGT AGA CAG-3′)、Mn-SOD(上游引物:5′-TTC AAT AAG GAG CAG GGA C-3′;下游引物:5′-CAG TGT AAG GCT GAC GGT TT-3′)、Gu/Zn-SOD(上游引物:5′-GAA GAG AGG CAT GTT GGA GA-3′;下游引物:5′-CCA ATT ACA CCA CGA GCC AA-3′)和CAT(上游引物:5′-AGA TAC TCC AAG GCG AAG GTG-3′;下游引物:5′-AAA GCC ACG AGG GTC ACG AAC-3′)的mRNA表達(dá),同時(shí)GAPDH(持家基因,上游引物:5′-CGG AGT CAA CGG ATT TGG TC-3′；下游引物5′-AGC CTT CTC CAT GGT CGT GA-3′)作為內(nèi)參照同樣進(jìn)行擴(kuò)增。最后以瓊脂(含1%濃度溴化乙錠)電泳檢查PCR擴(kuò)增產(chǎn)物,并用Image1.44軟件定量分析表達(dá)強(qiáng)度[9]。

1.2.6活性大豆異黃酮的測(cè)定將活性大豆異黃酮(大豆黃素和金雀異黃素)標(biāo)準(zhǔn)品溶于80%的乙醇中,配制成濃度為0.002～0.020 g/L的標(biāo)準(zhǔn)溶液。以Kromasil C18色譜柱(4.6 mm×25 mm,5 μm);流動(dòng)相﹕40%甲醇;流速為1.0 mL/min;檢測(cè)器靈敏度為0.02AUFS;檢測(cè)波長(zhǎng)為260 nm;柱溫為50℃;取標(biāo)準(zhǔn)溶液20 μL注入六通閥中,測(cè)定峰面積。求得回歸方程為Y大豆黃素=148338+1.70×108X(r=0.999);Y金雀異黃素=-316706+4.20×108X(r=0.995),得到標(biāo)準(zhǔn)曲線。取不同容器發(fā)酵水豆豉樣品2 g,粉碎后加10倍量的蒸餾水稀釋后4000 r/min離心取上清液,在80℃烘箱中干燥烘干。干燥物用200 mL的80%乙醇在恒溫水浴(80℃)中回流提取兩次,每次2 h,然后合并提取液,減壓蒸干,用無水乙醇定容至10 mL作為待測(cè)液,將待測(cè)液測(cè)定后對(duì)照標(biāo)準(zhǔn)曲線得到水豆豉中活性大豆異黃酮的含量[10]。

表2　實(shí)驗(yàn)小鼠血清的ALT、AST和LDH水平

1.3數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)

對(duì)所有的實(shí)驗(yàn)進(jìn)行3次平行實(shí)驗(yàn),然后將3次實(shí)驗(yàn)結(jié)果取平均值,使用SAS9.1統(tǒng)計(jì)軟件采用one-way ANOVA 分析方法分析各組數(shù)據(jù)在p<0.05水平上是否具有顯著差異[9]。

2　結(jié)果與分析

2.1不同容器發(fā)酵水豆豉對(duì)小鼠肝指數(shù)的影響

由表1可知,誘導(dǎo)肝損傷后CCl4處理各小鼠的體重較對(duì)照組小鼠有所下降,肝損傷組小鼠下降最多,水豆豉處理各組小鼠的體重沒有顯著差異(p>0.05)。CCl4處理各小鼠的肝臟重量較對(duì)照組小鼠顯著增加(p<0.05),灌胃水豆豉提取物各組小鼠的肝臟重量比肝損傷組小鼠小,GVFS可以最大的緩解CCl4造成的肝組織重量上升。通過測(cè)得的小鼠體重和肝臟重量加以計(jì)算觀察到肝損傷組小鼠的肝指數(shù)顯著高于其他各組(p<0.05),對(duì)照組小鼠最低,GVFS、PVFS和CVFS喂養(yǎng)組小鼠的肝指數(shù)依次增加。肝損傷狀態(tài)下,小鼠體重會(huì)出現(xiàn)下降,肝臟重量會(huì)增加,導(dǎo)致肝指數(shù)較正常小鼠大大提高[11],本實(shí)驗(yàn)也得到相似的結(jié)果,CCl4導(dǎo)致小鼠體重下降,肝臟重量增加,肝指數(shù)上升,水豆豉可以顯著緩解這些現(xiàn)象,且GVFS的作用較另外兩種容器發(fā)酵的水豆豉效果更好。

2.2不同容器發(fā)酵水豆豉對(duì)小鼠血清ALT、AST和LDH水平的影響

AST和ALT都是轉(zhuǎn)氨酶,肝功能出現(xiàn)異常時(shí)在體內(nèi)會(huì)出現(xiàn)顯著變化,臨床上常用檢測(cè)血清中的AST、ALT 的酶學(xué)指標(biāo)來判斷肝功能是否正常,ALT 和AST在正常情況下穩(wěn)定的分別分布在肝細(xì)胞漿和肝細(xì)胞的細(xì)胞漿、線粒體中,肝臟受損時(shí)AST,ALT 釋放入血液中使血液中的AST,ALT水平出現(xiàn)異常的上升[11]。LDH是一種在體內(nèi)廣泛分布的酶,在肝臟中也有大量的分布,在肝臟損傷情況下,肝組織中的LDH水平會(huì)出現(xiàn)異常的大幅度上升,因此LDH在肝臟中的水平也作為肝損傷的重要評(píng)價(jià)指標(biāo)[5]。由表2可知,肝損傷組小鼠的血清ALT、AST和LDH水平顯著高于其他各組(p<0.05),對(duì)照組小鼠的ALT、AST和LDH水平最低。GVFS、PVFS和CVFS喂養(yǎng)可以緩解CCl4導(dǎo)致的ALT、AST和LDH水平上升,且GVFS的效果最明顯。

表1　實(shí)驗(yàn)小鼠的體重、肝臟重量和肝指數(shù)

注:CVFS,陶瓷容器發(fā)酵水豆豉;PVFS,塑料容器發(fā)酵水豆豉;GVFS,玻璃容器發(fā)酵水豆豉。不同字母表示各組數(shù)據(jù)平均值之間存在顯著性差異(p<0.05),表2～表4,圖1、圖2同。

2.3不同容器發(fā)酵水豆豉對(duì)小鼠血清SOD、GSH-Px和MDA水平的影響

SOD和GSH-Px都是體內(nèi)重要的抗氧化功效物質(zhì),SOD和GSH-Px在血清中的含量高意味體內(nèi)受到氧化損傷的程度低;MDA是體內(nèi)脂質(zhì)過氧化的重要表現(xiàn),其異常升高代表體內(nèi)受到嚴(yán)重的脂質(zhì)過氧化[12]。CCl4在肝臟中導(dǎo)致脂質(zhì)過氧化,損傷肝臟組織[6]。由表3可知,對(duì)照組小鼠血清中SOD、GSH-Px含量最高,MDA含量最低;肝損傷組小鼠呈現(xiàn)出相反的趨勢(shì),血清中的SOD、GSH-Px含量最低,MDA含量最高。GVFS喂養(yǎng)組小鼠的SOD、GSH-Px含量顯著高于PVFS和CVFS喂養(yǎng)組,MDA含量顯著低于PVFS和CVFS喂養(yǎng)組(p<0.05)。GVFS喂養(yǎng)后,較CCl4誘導(dǎo)肝損傷組,小鼠的血清SOD、GSH-Px水平升高,MDA水平下降,GVFS可能通過降低體內(nèi)受氧化程度,從而起到抑制和預(yù)防肝損傷的作用。

2.4不同容器發(fā)酵水豆豉對(duì)小鼠血清IL-6、IL-12、TNF-α和IFN-γ細(xì)胞因子水平的影響

IL-6、IL-12、TNF-α和IFN-γ細(xì)胞因子都是重要的炎癥因子,機(jī)體出現(xiàn)肝損傷導(dǎo)致的炎癥后這些細(xì)胞因子顯示出比正常狀態(tài)下更高的水平[13]。本實(shí)驗(yàn)中也得到相似的結(jié)果,CCl4導(dǎo)致肝臟損傷并出現(xiàn)炎癥,由表4可知,肝損傷組的IL-6、IL-12、TNF-α和IFN-γ細(xì)胞因子水平最高,水豆豉可以使各組受到CCl4作用的小鼠細(xì)胞因子水平下降,GVFS使這些細(xì)胞因子在小鼠體內(nèi)下降的程度最大。

表3　實(shí)驗(yàn)小鼠血清的SOD、GSH-Px和MDA水平

2.5不同容器發(fā)酵水豆豉對(duì)小鼠肝臟中iNOS、COX-2、IL-lβ和TNF-α的mRNA表達(dá)的影響

COX-2 是一種肝細(xì)胞受損后表達(dá)會(huì)異常上升的誘導(dǎo)酶,在CCl4導(dǎo)致的肝損傷中,COX-2 的表達(dá)比正常小鼠大幅度提高;iNOS 和COX-2在CCl4致肝損傷的情況下表達(dá)呈正相關(guān),iNOS表達(dá)也上升[13]。IL-lβ和TNF-α也是重要的炎癥相關(guān)基因,在正常人群的肝臟中表達(dá)不明顯,在肝損傷情況下出現(xiàn)強(qiáng)烈的表達(dá)[14]。由圖1可知,對(duì)照組小鼠肝臟中的iNOS、COX-2、IL-lβ和TNF-αmRNA表達(dá)最弱,肝損傷組小鼠最高。水豆豉可以顯著下調(diào)肝損傷小鼠肝臟中的iNOS、COX-2、IL-lβ和TNF-α表達(dá),且GVFS下調(diào)的幅度最大,GVFS喂養(yǎng)組小鼠肝臟中的iNOS、COX-2、IL-lβ和TNF-α表達(dá)僅為肝損傷組小鼠的0.21、0.65、0.32和0.66倍。iNOS、COX-2、IL-lβ和TNF-α均可作為肝損傷的治療靶點(diǎn),GVFS可以顯著降低肝組織中的iNOS、COX-2、IL-lβ和TNF-α表達(dá),起到抑制肝損傷的作用。

圖1　不同容器發(fā)酵水豆豉灌胃小鼠肝臟中iNOS、COX-2、IL-lβ和TNF-α表達(dá)水平Fig.1　mRNA expression levels of iNOS,COX-2,IL-lβ and TNF-α in liver of different vessels fermented Shuidouchi intragastric administrated mice

表4　實(shí)驗(yàn)小鼠血清的IL-6、IL-12、TNF-α和IFN-γ細(xì)胞因子水平

2.6不同容器發(fā)酵水豆豉對(duì)小鼠肝臟中Mn-SOD、Gu/Zn-SOD和CAT的mRNA表達(dá)的影響

SOD在動(dòng)物體存在三種異構(gòu)體,分別是Mn-SOD、Gu/Zn-SOD和EC-SOD,體內(nèi)低水平的Mn-SOD和Gu/Zn-SOD會(huì)造成自由基的大量產(chǎn)生,加劇肝損傷程度。CAT作為生物防御體系中的一種關(guān)鍵酶,可以清除體內(nèi)的氧自由基和促進(jìn)過氧化氫分解,從而避免CCl4導(dǎo)致肝臟損傷后產(chǎn)生的大量氧自由基加劇肝損傷[15]。由圖2可知,對(duì)照組小鼠肝臟中Mn-SOD、Gu/Zn-SOD和CAT的mRNA表達(dá)最強(qiáng),CCl4可導(dǎo)致這些表達(dá)顯著下降(p<0.05),不同容器發(fā)酵水豆豉的提取物可以顯著緩解這些表達(dá)在肝臟中下降,且GVFS的緩解作用最為強(qiáng)烈,GVFS組小鼠肝臟中的Mn-SOD、Gu/Zn-SOD和CAT表達(dá)達(dá)到肝損傷組小組的1.95、14.33和1.40倍,高于PVFS和CVFS組。由此可見,水豆豉可以通過加強(qiáng)肝組織中的抗氧化表達(dá)來緩解和抑制肝損傷,而GVFS的作用最優(yōu),即采用玻璃發(fā)酵的水豆豉具有更好的效果。

圖2　不同容器發(fā)酵水豆豉灌胃小鼠肝臟中Mn-SOD、Gu/Zn-SOD和CAT表達(dá)水平Fig.2　mRNA expression levels of Mn-SOD,Gu/Zn-SOD and CAT in liver of different vessels fermented Shuidouchi intragastric administrated mice

2.7不同容器發(fā)酵水豆豉的活性異黃酮含量比較

活性大豆異黃酮具有較強(qiáng)的抗氧化效果,也具有抑制炎癥的作用[16]。經(jīng)過檢測(cè)可知不同容器發(fā)酵的水豆豉中的活性大豆異黃酮(大豆黃素和金雀異黃素)含量具有顯著差異,GVFS的大豆黃素和金雀異黃素含量均顯著(p<0.05)高于PVFS和CVFS。GVFS的抗氧化效果和肝損傷預(yù)防效果優(yōu)于PVFS和CVFS的原因可能來源于其活性大豆異黃酮高于PVFS和CVFS。

表5　不同容器發(fā)酵水豆豉中大豆黃素和金雀異黃素的含量

3　結(jié)論

對(duì)不同容器發(fā)酵水豆豉的通過其抗氧化能力對(duì)CCl4誘導(dǎo)肝損傷的預(yù)防效果進(jìn)行了研究,通過小鼠體內(nèi)實(shí)驗(yàn)證明了不同容器發(fā)酵水豆豉間抗氧化能力有所差異,且產(chǎn)生的肝損傷預(yù)防效果也有顯著差異。GVFS喂養(yǎng)的肝損傷小鼠的肝指數(shù)、血清的ALT、AST、LDH、MDA、IL-6、IL-12、TNF-α和IFN-γ水平顯著低于CVFS、PVFS組;血清中SOD、GSH-Px顯著高于CVFS、PVFS組(p<0.05)。通過RT-PCR分析肝組織看出GVFS可以下調(diào)iNOS、COX-2、IL-lβ、TNF-α表達(dá)和上調(diào)Mn-SOD、Gu/Zn-SOD、CAT表達(dá),且作用同樣強(qiáng)于CVFS和PVFS。對(duì)水豆豉中活性大豆異黃酮含量進(jìn)行了比較,可以看出GVFS含有的大豆黃素和金雀異黃素顯著高于PVFS和CVFS。實(shí)驗(yàn)結(jié)果可以體現(xiàn)出GVFS通過抗氧化能力起到的肝損傷抑制作用強(qiáng)于CVFS和PVFS,玻璃容器用來發(fā)酵水豆豉可以生產(chǎn)出保健功效更好的水豆豉產(chǎn)品。

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Study on preventive effects of different vessels fermented Shuidouchi on CCl4induced hepatic damage

FENG Xia1,2,ZHAO Xin1,2,*

(1.Department of Biological and Chemical Engineering,Chongqing University of Education,Chongqing 400067,China; 2.Chongqing Collaborative Innovation Center of Functional Food, Chongqing University of Education,Chongqing 400067,China)

The antioxidation and hepatic damage preventive effects of different vessels fermented Shuidouchi were investigated.The 4 g/kg Shuidouchi ethanol extracts treated mice could significantly(p<0.05)reduce the liver weight,liver index,serum levels of ALT,AST,LDH,MDA,IL-6,IL-12,TNF-α,IFN-γ,and significant(p<0.05)raise the SOD,GSH-Px serum levels compared to the hepatic damage group mice(CCl4induced hepatic damage).By the RT-PCR assay,Shuidouchi could increase the Mn-SOD,Gu/Zn-SOD,CAT expressions and decrease iNOS,COX-2,IL-lβ,TNF-αexpressions compared to the control mice.From these results,the glass vessel fermented Shuidouchi(GVFS)had the better hepatic damage preventive effects and antioxidation effects than ceramic vessel fermented Shuidouchi(CVFS)and plastic vessel fermented Shuidouchi(PVFS)(p<0.05).

Shuidouchi;vessel;CCl4;hepatic damage;antioxidant

2015-09-07

馮霞(1976-)，女，碩士，副教授，研究方向：食品營(yíng)養(yǎng)和功能性食品，E-mail:fengxia@foods.ac.cn。

趙欣(1981-)，男，博士，教授，研究方向：食品的功能性作用，E-mail:zhaoxin@zhaoxin.org。

重慶市教委科學(xué)技術(shù)研究項(xiàng)目資助(KJ1401415)。

TS201.4

A

1002-0306(2016)07-0338-05

10.13386/j.issn1002-0306.2016.07.056