王煥,張慧,崔凱,馮衍生
(1新鄉(xiāng)市中心醫(yī)院,河南新鄉(xiāng)453000;2新鄉(xiāng)醫(yī)學(xué)院)
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慢性腎臟病患者腎組織中Klotho基因啟動(dòng)子羥甲基化水平觀察
王煥1,張慧2,崔凱1,馮衍生2
(1新鄉(xiāng)市中心醫(yī)院,河南新鄉(xiāng)453000;2新鄉(xiāng)醫(yī)學(xué)院)
目的觀察慢性腎臟病(CKD)患者Klotho基因啟動(dòng)子羥甲基化水平變化,并探討其與CKD臨床病理參數(shù)的關(guān)系。方法1~3期CKD患者58例,腎臟穿刺取腎臟組織(CKD組);腎結(jié)核患者31例,取手術(shù)切除的正常腎臟組織(對照組)。將各組抽提的全基因組DNA分為兩份,一份以15 mmol/L高釕酸鉀、0.05 mol/L氫氧化鈉氧化后,進(jìn)行亞硫酸鹽轉(zhuǎn)化;另一份直接進(jìn)行亞硫酸鹽轉(zhuǎn)化。用特異引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,焦磷酸測序,檢測羥甲基化并計(jì)算其在甲基化中所占比例。分析Klotho基因啟動(dòng)子羥甲基化水平與CKD臨床病理參數(shù)的關(guān)系。結(jié)果對照組腎臟組織Klotho基因啟動(dòng)子羥甲基化修飾;CKD組腎臟組織Klotho基因啟動(dòng)子甲基化水平高于對照組,羥甲基化水平低于對照組(P均<0.05)。CKD患者Klotho基因啟動(dòng)子羥甲基化水平與eGFR呈正相關(guān)關(guān)系,與腎小管間質(zhì)纖維化面積及肌酐水平呈負(fù)相關(guān)。結(jié)論CKD患者腎臟組織中Klotho基因啟動(dòng)子羥甲基化水平降低,并與CKD臨床病理參數(shù)有關(guān)。Klotho基因啟動(dòng)子羥甲基化水平下降可能參與了CKD的發(fā)生發(fā)展。
慢性腎臟??;Klotho基因;基因啟動(dòng)子;羥甲基化
慢性腎臟病(CKD)是指一類在各種致病因子影響下,以腎臟慢性纖維化為病理特征的臨床疾病的總稱,發(fā)病率較高[1]。由于CKD缺乏有效治療手段,最終導(dǎo)致腎功能逐漸惡化,進(jìn)展為終末期腎病需行腎臟替代治療,嚴(yán)重影響患者生活質(zhì)量。研究[2~5]表明,腎臟功能發(fā)生異常多伴隨Klotho表達(dá)下降。Klotho基因啟動(dòng)子甲基化被證明與CKD有關(guān)。但對于Klotho基因啟動(dòng)子甲基化水平是如何發(fā)生動(dòng)態(tài)變化、其CpG島甲基化是否還存在其他種類修飾目前尚不清楚。近年研究較多的羥甲基化是一種以5甲基胞嘧啶(5mC)為基礎(chǔ)發(fā)生的氧化去甲基化修飾,被認(rèn)為是潛在的基因轉(zhuǎn)錄重新激活標(biāo)志。本研究觀察了CKD患者腎組織中Klotho啟動(dòng)子羥甲基化水平,并探討其與CKD臨床病理參數(shù)的關(guān)系。
1.1臨床資料選擇2008年7月~2013年7月在新鄉(xiāng)市中心醫(yī)院腎內(nèi)科行腎穿刺活檢的CKD患者共58例為CKD組,排除糖尿病、自身免疫疾病、腫瘤、乙型肝炎、丙型肝炎及曾使用激素或免疫抑制劑的患者。58例患者中,男28例、女30例,年齡(45.2±12.3)歲,膜性腎病20例、IgA腎病15例、局灶節(jié)段性腎小球硬化10例、新月體腎炎5例、高血壓腎小動(dòng)脈硬化3例、腎小球輕微病變5例,按照eGFR進(jìn)行分期1期25例、2期18例、3期15例,腎活檢術(shù)中取病理組織。選擇腎結(jié)核患者31例為對照組,男15例、女16例,年齡(48.5±1.2)歲,取手術(shù)切除的正常腎臟組織。兩組性別、年齡資料有可比性。CKD組eGFR、肌酐水平、腎小管間質(zhì)纖維化面積與對照組相比,P均<0.05。見表1。
表1 兩組患者年齡、eGFR、肌酐及腎小管間質(zhì)纖維化面積比較±s)
注:與對照組相比,*P<0.05。
1.2腎組織中Klotho基因啟動(dòng)子羥甲基化檢測抽提兩組腎臟組織總DNA 2 μg,分為兩組。氧化組進(jìn)行15 mmol/L高釕酸鉀、0.05 mol/L氫氧化鈉氧化(BSP)后,進(jìn)行亞硫酸鹽轉(zhuǎn)化(oxBS);未氧化組直接進(jìn)行oxBS[6]。oxBS后進(jìn)行PCR擴(kuò)增,利用Pyro Mark Assay Design2.0軟件設(shè)計(jì)引物,上游引物序列為5′-GGGAGTTGGGAGAAATAGG-3′,下游引物序列為5′-CCAACAACACCAACAACA-3′,測序引物序列為5′-GGGAGAGGGGGTGGG-3′,產(chǎn)物長度351 bp。其中上游引物5′端進(jìn)行生物素標(biāo)記。擴(kuò)增所得的PCR產(chǎn)物進(jìn)行切膠回收,進(jìn)行焦磷酸測序。氧化組中胞嘧啶會(huì)變成胸腺嘧啶,5mC不發(fā)生變化,5羥甲基化胞嘧啶(5hmC)會(huì)轉(zhuǎn)化成胸腺嘧啶;未氧化組中5mC、5hmC均不發(fā)生變化,據(jù)此可識別存在羥甲基化修飾的CpG位點(diǎn)。每個(gè)CpG位點(diǎn)的甲基化結(jié)果根據(jù)CpG對應(yīng)位點(diǎn)C/T百分比進(jìn)行分析。0代表胞嘧啶完全羥甲基化,100%代表胞嘧啶完全甲基化[7]。
1.3尿素氮、肌酐水平測定兩組清晨空腹抽取血樣,檢測血清尿素氮、肌酐。根據(jù)MDRD簡化公式計(jì)算eGFR[8]。
1.4腎小管間質(zhì)纖維化面積的測算將腎臟組織放于預(yù)先配好的固定液中進(jìn)行固定,再用低至高濃度酒精作脫水劑,逐漸脫去組織塊中的水分。再將組織置于透明劑二甲苯中透明,之后浸蠟包埋,在切片機(jī)上進(jìn)行切片,常規(guī)HE染色。病理結(jié)果根據(jù)盲法原則,由兩位病理醫(yī)師對腎小管萎縮和間質(zhì)纖維化占皮質(zhì)腎組織面積的百分比進(jìn)行評價(jià)。
1.5統(tǒng)計(jì)學(xué)方法采用SPSS17.0統(tǒng)計(jì)軟進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。計(jì)量資料比較采用方差分析;相關(guān)性分析采用Spearman相關(guān)分析法。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1各組腎組織中Klotho基因啟動(dòng)子甲基化、羥甲基化水平CKD1、2、3組腎組織Klotho基因啟動(dòng)子甲基化水平高于對照組,且Klotho基因啟動(dòng)子大部分CpG位點(diǎn)甲基化水平隨著CKD分期增高逐漸升高。對照組腎組織中Klotho基因啟動(dòng)子-81、-71、-63位點(diǎn)存在羥甲基化修飾;CKD組腎組織Klotho啟動(dòng)子羥甲基化水平顯著降低,且隨著病情嚴(yán)重程度增加,羥甲基化水平逐漸下降,其中在CKD2、3組-81、-71、-63位點(diǎn)BSP與oxBS差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(見表2)。
表2 各組腎組織Klotho基因啟動(dòng)子-86~-51位點(diǎn)CpG島羥甲基化水平
2.2CKD患者Klotho啟動(dòng)子羥甲基化率與臨床病理特征的相關(guān)性CKD患者整體羥甲基化水平與eGFR有關(guān)(F=276.035,P<0.01),-81位點(diǎn)(R2=0.848,P<0.01)、-71位點(diǎn)(R2=0.885,P<0.01)、-63位點(diǎn)(R2=0.709,P<0.01)羥甲基化水平與eGFR均呈正相關(guān)關(guān)系;CKD患者整體羥甲基化水平與肌酐水平有關(guān)(F=26.796,P<0.01),-81位點(diǎn)(R2=-0.773,P<0.01)、-71位點(diǎn)(R2=-0.782,P<0.01)、-63位點(diǎn)(R2=-0.728,P<0.01)羥甲基化水平與肌酐水平均呈負(fù)相關(guān)關(guān)系;CKD患者整體羥甲基化水平與腎小管間質(zhì)纖維化面積有關(guān)(F=124.285,P<0.01),-81位點(diǎn)(R2=-0.887,P<0.01)、-71位點(diǎn)(R2=-0.884,P<0.01)、-63位點(diǎn)(R2=-0.827,P<0.01)羥甲基化水平與腎小管間質(zhì)纖維化面積均呈負(fù)相關(guān)關(guān)系。
5mC作為第五種堿基,是DNA水平最常見的表觀遺傳學(xué)修飾,其可被甲基化結(jié)合蛋白(MBP)特異性識別,招募轉(zhuǎn)錄抑制復(fù)合體,通過改變?nèi)旧w構(gòu)象等方式抑制RNA pol聚合酶對啟動(dòng)子的結(jié)合,最終引起相應(yīng)基因沉默[9]。DNA的去甲基化有很多種方式[10~13],其中由羥甲基化酶(TET)介導(dǎo)的羥甲基化修飾在合子形成初期的重編程、早期胚胎發(fā)育、干細(xì)胞自我更新和分化、腫瘤發(fā)生和轉(zhuǎn)移等過程中均發(fā)揮重要作用[14]。由于5hmC不被MBP識別,因此并不引起轉(zhuǎn)錄沉默,被普遍認(rèn)為是基因轉(zhuǎn)錄表達(dá)重新激活的標(biāo)志。目前對5hmC的研究主要集中在全基因組水平,對單基因尤其是某個(gè)CpG島或CpG位點(diǎn)的研究很少。本研究采用oxBS結(jié)合常規(guī)BSP的方法,能夠在特定CpG位點(diǎn)水平有效識別并檢測羥甲基化修飾。
Klotho是一個(gè)抗衰老基因,其在腎臟、血漿及尿液中水平升高提示腎功能受到影響。此前已有研究表明Klotho基因啟動(dòng)子甲基化與其表達(dá)水平呈負(fù)相關(guān)[2]。Klotho基因中存在一些甲基化狀態(tài)保持相對穩(wěn)定的CpG位點(diǎn),其甲基化水平較高且并不隨腎功能異常而有明顯改變,通過對這些位點(diǎn)進(jìn)行oxBS分析,能夠反映羥甲基化修飾情況。本研究結(jié)果顯示,CKD組Klotho基因啟動(dòng)子羥甲基化水平低于對照組,且隨著CKD分期增高而下調(diào),提示Klotho基因啟動(dòng)子羥甲基化水平下調(diào)參與了CKD的發(fā)生發(fā)展。由于BSP無法區(qū)分5mC和5hmC,以及5hmC的形成需要5mC作為底物,在低甲基化狀態(tài)中是不存在羥甲基化修飾的,因此可以解釋-81、-71、-63位點(diǎn)始終保持較高的甲基化狀態(tài)。
本研究結(jié)果還顯示,CKD患者Klotho基因啟動(dòng)子羥甲基化水平與eGFR呈正相關(guān)關(guān)系,表明羥甲基化水平會(huì)隨著CKD進(jìn)展而下降,一旦腎功能出現(xiàn)障礙,羥甲基化水平變化幅度較整體甲基化水平變化更為敏感。我們還發(fā)現(xiàn),Klotho基因羥甲基化水平與腎小管間質(zhì)纖維化面積及肌酐水平均呈負(fù)相關(guān)關(guān)系,提示Klotho基因羥甲基化水平能在一定程度上反映CKD患者腎臟受損情況。
此前有研究認(rèn)為,CKD患者Klotho基因啟動(dòng)子發(fā)生超甲基化,同時(shí)其表達(dá)受到抑制。這種超甲基化的形成一方面是通過對普通胞嘧啶進(jìn)行甲基化修飾并轉(zhuǎn)化成5mC,這種變化主要發(fā)生在無羥甲基化修飾的CpG位點(diǎn);另一方面可能是抑制TET酶等功能,阻滯5hmC形成及其后的主動(dòng)去甲基化過程,這種變化主要發(fā)生在有羥甲基化修飾的CpG位點(diǎn)。我們推測,在正常腎臟組織中,Klotho基因啟動(dòng)子-81、-71、-63位點(diǎn)羥甲基化修飾同樣有利于Klotho基因的轉(zhuǎn)錄表達(dá),但為何羥甲基化修飾只出現(xiàn)在某些CpG位點(diǎn),原因仍然未知。
總之,本研究證明正常腎組織Klotho基因啟動(dòng)子上存在羥甲基化修飾,而CKD患者腎組織中Klotho基因啟動(dòng)子羥甲基化修飾水平顯著下降。Klotho基因啟動(dòng)子羥甲基化有望作為一種新的表觀遺傳學(xué)標(biāo)記用于CKD的早期診斷及病情評估。然而,由于腎穿刺活檢取材復(fù)雜,未來是否可以采用其他方法如外周血檢驗(yàn)來代替腎穿刺活檢尚需進(jìn)一步研究。對于Klotho基因羥甲基化對CpG位點(diǎn)的偏好性、涉及到哪個(gè)TET成員參與羥甲基化修飾作用、治療后Klotho基因啟動(dòng)子羥甲基化狀態(tài)如何變化,都有待于進(jìn)一步探索。
[1] 張路霞,王海燕.中國慢性腎臟病的現(xiàn)狀及挑戰(zhàn):來自中國慢性腎臟病流行病學(xué)調(diào)查的啟示[J].中華內(nèi)科雜志,2012,51(7):497-498.
[2] 陳靜,章曉燕,林靜,等.慢性腎臟病患者腎組織Klotho基因啟動(dòng)子的超甲基化與臨床病理的相關(guān)性[J].中華腎臟病雜志,2013,29(7):481-486.
[3] Chen J, Zhang X, Zhang H, et al. Elevated Klotho promoter methylation is associated with severity of chronic kidney disease[J]. PLoS One, 2013,8(11):e79856.
[4] Doi S, Zou Y, Togao O, et al. Klotho inhibits transforming growth factor-beta 1(TGF-beta1) signaling and suppresses renal fibrosis and cancer metastasis in mice[J]. J Biol Chem, 2011,286(10):8655-8665.
[5] Sastre C, Rubio-Navarro A, Buendia I, et al. Hyperlipidemia-assocaited renal damage decreases Klotho expression in kidneys from ApoE knockout mice[J]. PLoS One, 2013,8(12):e83713.
[6] Booth MJ, Branco MR, Ficz G, et al. Quantitative sequencing of 5-Methylcytosine and 5-Hydroxymethylcytosine at single-base resolution[J]. Science, 2012,336(6083):934-937.
[7] Wang Y, Liu C, Guo QL, et al. Intrathecal 5-azacytidine inhibits global DNA methylation and methyl-CpG-binding protein 2 expression and alleviates neuropathic pain in rats following chronic constriction injury[J]. Brain Res, 1418(2011):64-69.
[8] Levey AS, Coresh J, Greene T, et al. Using standardized serum creatinine values in the modification of diet in renal disease study equation for estimating glomerular filtration rate[J]. Ann Intern Med, 2006,145(4):247-254.
[9] Fuks F. DNA methylation and histone modifications: teaming up to silence genes[J]. Curr Opin Genet Dev, 2005,15(5):490-495.
[10] Zhu B, Zheng Y, Angliker H, et al. 5-Methy15-Methylcytosine DNA glycosylase activity is also present in the human MBD4 (G/T mismatch glycosylase) and in a related avian sequence[J]. Nucleic Acids Res, 2000,28(21):4157-4165.
[11] Ma DK, Jang MH, Guo JU, et al. Neuronal activity-induced Gadd45bpromotes epigenetic DNA demethylation and adult neurogenesis[J]. Science, 2009,323(5917):1074-1077.
[12] Metivier R, Gallais R, Tiffoche C, et al. cyclical dna methylation of transcriptionally active promoter[J]. Nature, 2008,4527(7183):45-50.
[13] Tahiliani M, Koh KP, Shen Y, et al. Conversion of 5-Methylcytosine to 5-Hydroxymethylcytosine in mammalian DNA by MLL partner TET1[J]. Science, 2009,324(5929):930-935.
[14] Shen L, Zhang Y. Enzymatic analysis of tet proteins key enzymes in the metabolism of DNA methylation[J]. Methods Enzymol, 2012,512:93-105.
馮衍生(E-mail: 47300725@qq.com)
10.3969/j.issn.1002-266X.2016.15.034
R692
B
1002-266X(2016)15-0089-03
2015-09-30)