竇嬌瑩，楊志偉

(1.甘肅省中醫(yī)院檢驗(yàn)科，蘭州 730050;2.寧夏醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院病原生物學(xué)與免疫學(xué)系，銀川 750004)

·論著·

嗜肺軍團(tuán)菌momp基因疫苗的制備及其免疫原性研究*

竇嬌瑩1,2，楊志偉2

(1.甘肅省中醫(yī)院檢驗(yàn)科，蘭州 730050;2.寧夏醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院病原生物學(xué)與免疫學(xué)系，銀川 750004)

摘要:目的構(gòu)建真核重組質(zhì)粒GFP-momp作為核酸疫苗，已構(gòu)建的原核重組質(zhì)粒pET-momp表達(dá)的蛋白作為蛋白疫苗，二者聯(lián)合免疫BALB/c雌性小鼠，觀察其免疫原性。方法(1)以嗜肺軍團(tuán)菌DNA作為模板，擴(kuò)增得到momp基因，并克隆至pEGFP-C1載體獲得重組質(zhì)粒GFP-momp。鑒定正確后，將其轉(zhuǎn)染到NIH3T3細(xì)胞，利用熒光顯微鏡觀察GFP-momp的表達(dá)。(2)選取BALB/c雌性小鼠60只,平均分為4組,即磷酸鹽緩沖液(PBS)組(A組)、空質(zhì)粒pEGFP-C1組(B組)、DNA疫苗組(C組)、聯(lián)合疫苗組(D組)。以重組質(zhì)粒GFP-momp作為DNA疫苗，重組質(zhì)粒GFP-momp和MOMP蛋白作為聯(lián)合疫苗，第1天A組肌肉注射PBS 50 μL，B組注射pEGFP-C1 50 μg，C、D組各注射GFP-momp 50 μg；第14天各組以相同劑量追加免疫1次；第21天A、B、C組用相同劑量再追加免疫1次，D組注射10 μg純化的MOMP蛋白。借助對(duì)各試驗(yàn)組小鼠的抗體水平、脾淋巴細(xì)胞增殖活性、細(xì)胞毒性T淋巴細(xì)胞(CTL)殺傷活性等指標(biāo)的動(dòng)態(tài)檢測(cè)，來(lái)評(píng)價(jià)DNA疫苗與蛋白疫苗的免疫原性。結(jié)果擴(kuò)增出831 bp的momp基因，構(gòu)建重組質(zhì)粒GFP-momp，轉(zhuǎn)染入NIH3T3細(xì)胞并在細(xì)胞內(nèi)表達(dá)出綠色熒光蛋白。在淋巴細(xì)胞增殖試驗(yàn)中：A組和B組比較差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)；C組和D組淋巴細(xì)胞增殖活性均高于B組，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)；C組高于D組，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。間接ELISA測(cè)定血清中抗原特異性抗體水平結(jié)果顯示，A、B兩組比較差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)；C、D兩組均高于B組，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)；D組抗體滴度高于C組，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。CTL殺傷活性試驗(yàn)結(jié)果顯示，A、B兩組比較差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)；C、D兩組均高于B組，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)； D組殺傷活性高于C組，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。結(jié)論成功構(gòu)建momp基因的真核表達(dá)載體并在NIH3T3細(xì)胞中得到表達(dá)，并進(jìn)一步得出嗜肺軍團(tuán)菌momp基因誘導(dǎo)產(chǎn)生的DNA疫苗和DNA-蛋白疫苗均能產(chǎn)生細(xì)胞免疫和體液免疫，具有免疫原性。

關(guān)鍵詞:嗜肺軍團(tuán)菌；momp基因；疫苗

軍團(tuán)菌是存在于天然水和土壤中的胞內(nèi)寄生菌，廣泛存在于潮濕含鐵的管道,如空調(diào)、淋浴器等與人類生活密切相關(guān)的地方,大大增加了人類與該菌的接觸概率[1]。人畜可因吸入含軍團(tuán)菌的氣溶膠而感染。作為胞內(nèi)寄生菌，軍團(tuán)菌可借助侵入宿主的巨噬細(xì)胞來(lái)逃避吞噬體和溶酶體的殺傷作用，并在宿主細(xì)胞中生長(zhǎng)繁殖。目前已知的軍團(tuán)菌以嗜肺軍團(tuán)菌(Lp)1型最為常見，它是引起社區(qū)獲得性肺炎和院內(nèi)感染肺炎的重要病原菌[2]。軍團(tuán)菌感染目前沒有有效的特異性預(yù)防措施，因此，研究高效的疫苗已成為現(xiàn)階段臨床的迫切需求。本研究利用生物及免疫信息學(xué)方法進(jìn)行比對(duì)分析后發(fā)現(xiàn)，主要外膜蛋白(MOMP)是基因表達(dá)的相對(duì)分子質(zhì)量為30×103的外膜蛋白，具有良好的免疫原性。本研究擬構(gòu)建重組質(zhì)粒GFP-momp作為DNA疫苗對(duì)小鼠進(jìn)行免疫，已構(gòu)建的重組質(zhì)粒pET-momp誘導(dǎo)表達(dá)的重組蛋白MOMP作為蛋白疫苗，觀察該基因的免疫原性，為疫苗方面的研究奠定基礎(chǔ)，現(xiàn)報(bào)道如下。

1材料與方法

1.1菌株和質(zhì)粒Lp 1型菌株由四川大學(xué)陳建平教授惠贈(zèng)；重組MOMP蛋白由作者前期構(gòu)建。EcoRⅠ和HindⅢ限制性內(nèi)切酶購(gòu)自fermentas公司；DNA 提取及純化試劑盒購(gòu)于北京天根公司；質(zhì)粒提取試劑盒購(gòu)自 Omega 公司。試驗(yàn)動(dòng)物：BALB/c雌性小鼠，6～8周齡，SPF級(jí)，體質(zhì)量約18 g，購(gòu)自北京維通利華實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限公司，動(dòng)物合格證號(hào)：0239997。

1.2方法

1.2.1Lp基因組DNA的提取參考DNA提取試劑盒操作步驟進(jìn)行。

1.2.2Lpmomp基因的PCR擴(kuò)增根據(jù)Pub Med相關(guān)文獻(xiàn)的momp基因序列，設(shè)計(jì)并合成引物，分別在5′端加上EcoRⅠ和HindⅢ內(nèi)切酶位點(diǎn)。 上游 5′-ATA ATA TAG GAA TTC GGT ACG ATG GGT CCA GTA TG-3′ ，下游 5′-CCC AAG CTT TTA GAC ATT GCC AAC ATA TTT TAA GC-3′。PCR擴(kuò)增體系：基因組DNA 1 μL，上、下游引物各1 μL，Taq mix 25 μL，無(wú)RNA酶水22 μL。擴(kuò)增條件：95 ℃ 預(yù)變性5 min； 95 ℃ 變性30 s； 48 ℃退火45 s； 72 ℃延伸1.5 min；30 個(gè)循環(huán)； 72 ℃總延伸7 min。

1.2.3提取質(zhì)粒pEGFP-C1按照質(zhì)粒提取試劑盒操作步驟提取質(zhì)粒pEGFP-C1。

1.2.4momp重組質(zhì)粒的構(gòu)建用EcoRⅠ和HindⅢ對(duì)擴(kuò)增的momp基因和載體pEGFP-C1進(jìn)行雙酶切，在16 ℃下進(jìn)行連接，轉(zhuǎn)化于制備好的感受態(tài)細(xì)胞，均勻涂布于含卡那霉素的LB固體培養(yǎng)基，37 ℃培養(yǎng)12 h。

1.2.5陽(yáng)性重組克隆的篩選、鑒定將單個(gè)菌落接種于含有卡那霉素的LB培養(yǎng)液中，培養(yǎng)并提取質(zhì)粒，用Hind Ⅲ和EcoRⅠ進(jìn)行單、雙酶切鑒定。以酶切鑒定陽(yáng)性的重組質(zhì)粒為模板，擴(kuò)增后電泳觀察。

1.2.6重組質(zhì)粒序列測(cè)定取鑒定陽(yáng)性的重組質(zhì)粒菌體，送上海生工生物技術(shù)公司進(jìn)行測(cè)序。

1.2.7轉(zhuǎn)染將鑒定正確的含重組GFP-momp、空質(zhì)粒pEGFP-C1的單個(gè)菌落增菌，按試劑盒說(shuō)明書提取無(wú)內(nèi)毒素質(zhì)粒用于轉(zhuǎn)染。同時(shí)將處于對(duì)數(shù)期的NIH3T3細(xì)胞種于24孔細(xì)胞培養(yǎng)板，每孔約1×106個(gè)，培養(yǎng)至細(xì)胞達(dá)板底面積80%時(shí)用于轉(zhuǎn)染。試驗(yàn)分正常NIH3T3細(xì)胞組、空質(zhì)粒PEGFP-C1組、重組GFP-momp組。

1.2.8重組質(zhì)粒在細(xì)胞中的篩選及表達(dá)轉(zhuǎn)染48 h后用300 μg/mL的G418進(jìn)行篩選，并于72 h后檢測(cè)GFP-momp在細(xì)胞中的瞬時(shí)表達(dá)。

1.2.9動(dòng)物免疫取BALB/c雌性小鼠60只，平均分為4組，即PBS組(A組)、空質(zhì)粒pEGFP-C1組(B組)、DNA疫苗組(C組)、聯(lián)合疫苗組(D組)。采用肌肉注射法進(jìn)行免疫接種。第1周A組每只小鼠注射PBS 50 μL，B組每只注射空質(zhì)粒pEGFP-C1 50 μg，C組注射重組質(zhì)粒GFP-momp50 μg，D組注射重組質(zhì)粒GFP-momp50 μg；第14天各組相同劑量追加免疫一次；第21天A、B、C組用相同劑量追加免疫1次，D組注射10 μg 純化的MOMP蛋白。

1.2.10用間接ELISA檢測(cè)血清中特異性抗體取免疫后第14、21、28天每組各5只小鼠，眼部采血，以純化后MOMP蛋白作為包被抗原。測(cè)定血清中抗原特異性抗體水平，并設(shè)陰性對(duì)照孔。若陽(yáng)性對(duì)照孔平均OD值/陰性對(duì)照孔平均OD值大于2.1則判斷為陽(yáng)性，出現(xiàn)陽(yáng)性反應(yīng)的待測(cè)血清最高稀釋度即為抗體滴度。

1.2.11檢測(cè)細(xì)胞免疫反應(yīng)開始免疫后第14、21、28天，每組分別取5只小鼠，無(wú)菌條件下取出脾臟，制成細(xì)胞懸液。細(xì)胞活性大于95%以上備用。

1.2.12檢測(cè)淋巴細(xì)胞增殖活性(MTS法)調(diào)整脾淋巴細(xì)胞濃度至1×106/mL，100 μL/孔加到96孔板，分別加ConA(終濃度5 μg/mL)，并設(shè)對(duì)照孔(不加ConA)。每只小鼠3個(gè)復(fù)孔，在37 ℃,5% CO2孵箱中培養(yǎng)72 h。吸取20 μL的 CellTiter 96?Aqueous試劑到含有100 μL培養(yǎng)液的細(xì)胞中培養(yǎng)4 h。測(cè)量OD值。計(jì)算刺激指數(shù)(SI)作為淋巴細(xì)胞增殖程度的指標(biāo)。SI=試驗(yàn)孔OD值/對(duì)照孔OD值的均值

1.2.13細(xì)胞毒性T淋巴細(xì)胞(CTL)殺傷活性檢測(cè)(LDH法)以重組GFP-momp轉(zhuǎn)染出的陽(yáng)性細(xì)胞作為檢測(cè)CTL殺傷活性的靶細(xì)胞。PBS組、空質(zhì)粒組、重組GFP-momp組、GFP-momp/MOMP蛋白組小鼠脾淋巴細(xì)胞作為效應(yīng)細(xì)胞。調(diào)整效應(yīng)細(xì)胞與靶細(xì)胞的細(xì)胞數(shù)之比為10∶1，并設(shè)效應(yīng)細(xì)胞、靶細(xì)胞對(duì)照孔及空白對(duì)照孔，均設(shè)3個(gè)平行孔。同時(shí)設(shè)靶細(xì)胞LDH自然釋放孔，靶細(xì)胞+100 μL RPMI1640；靶細(xì)胞LDH差異最大釋放孔，靶細(xì)胞+90 μL RPMI1640+10 μL裂解液；效應(yīng)細(xì)胞LDH自然釋放孔，100 μLRPMI1640 的效應(yīng)細(xì)胞。37 ℃孵育4 h。加入相應(yīng)底物50 μL，避光孵育30 min。加50 μL終止液，測(cè)量490 nm處的OD值。

2結(jié)果

2.1重組質(zhì)粒GFP-momp的PCR擴(kuò)增結(jié)果用引物對(duì)重組GFP-momp進(jìn)行擴(kuò)增,得到約800 bp大小的產(chǎn)物(圖1)。

注：M為DL2000 marker;1為 PCR產(chǎn)物;2為陰性對(duì)照。

圖1GFP-momp基因的PCR 擴(kuò)增產(chǎn)物

2.2GFP-momp的酶切鑒定用HindⅢ對(duì)質(zhì)粒單酶切，得到5 500 bp左右的產(chǎn)物；用BamHⅠ和HindⅢ進(jìn)行雙酶切，同一泳道出現(xiàn)4 700 bp和800 bp兩種產(chǎn)物，并與pEGFP-C1空質(zhì)粒及momp基因位置相一致(圖2)。

注：M1為1kb marker；1為HindⅢ單酶切GFP-momp產(chǎn)物；2為 HindⅢ和EcoRⅠ雙酶切GFP-momp產(chǎn)物；3為HindⅢ單酶切pEGFP-C1產(chǎn)物;4為 PCR產(chǎn)物；M2為DL2000 marker。

圖2重組質(zhì)粒GFP-momp的酶切結(jié)果

2.3熒光顯微鏡下觀察結(jié)果在熒光顯微鏡下發(fā)現(xiàn)被重組質(zhì)粒GFP-momp轉(zhuǎn)染的NIH3T3胞漿中有較強(qiáng)的綠色熒光，同一視野下可見清晰的細(xì)胞形態(tài)，證實(shí)重組質(zhì)粒GFP-momp轉(zhuǎn)染成功。同時(shí)空質(zhì)粒pEGFP-C1轉(zhuǎn)染的細(xì)胞和正常細(xì)胞對(duì)照組均未見綠色熒光(圖3)。

2.4小鼠體內(nèi)抗原特異性抗體滴度檢測(cè)見表1。開始免疫后第14、21、28天小鼠內(nèi)眥采血分離血清，采用ELISA測(cè)定血清中抗原特異性抗體水平。檢測(cè)結(jié)果顯示，A組和B組比較差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)，且A、B兩組組內(nèi)分析后差異也無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。C組和D組滴度大于B組，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)；D組比C組抗體水平高，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)，且C組和D組組內(nèi)分析顯示，隨免疫時(shí)間延長(zhǎng)，抗體滴度也隨之增大，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

注： a為重組質(zhì)粒GFP-momp轉(zhuǎn)染的NH3T3細(xì)胞的表達(dá)(熒光)；b為重組質(zhì)粒GFP-momp轉(zhuǎn)染的NH3T3細(xì)胞的表達(dá)(普光)；c為空質(zhì)粒pEGFP-C1轉(zhuǎn)染的NH3T3細(xì)胞(熒光)；d為空質(zhì)粒pEGFP-C1轉(zhuǎn)染的NH3T3細(xì)胞(普光)；e為正常細(xì)胞對(duì)照組(熒光)；f為正常細(xì)胞對(duì)照組(普光)。

圖3　熒光顯微鏡檢測(cè)重組質(zhì)粒GFP-momp在

注：與B組比較，*P<0.05；與C組比較，#P<0.05。

2.5用MTS法檢測(cè)淋巴細(xì)胞增殖活性SI值見表2。開始免疫后第14、21、28天動(dòng)態(tài)檢測(cè)結(jié)果顯示，A組和B組淋巴細(xì)胞增殖活性SI值比較，差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)，且A、B兩組組內(nèi)分析后差異也無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。C組和D組均高于B組，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)； D組比C組活性高，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)，且C組和D組組內(nèi)分析顯示，隨免疫時(shí)間延長(zhǎng)，增殖活性SI值隨之增大，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

表2　　4組開始免疫后第14、21、28天小鼠淋巴細(xì)胞

注：與B組比較，*P<0.05；與C組比較，#P<0.05。

2.6CTL殺傷活性檢測(cè)見表3。開始免疫后第14、21、28天，檢測(cè)CTL殺傷活性，檢測(cè)結(jié)果顯示，A組和B組比較，差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)，且A、B兩組組內(nèi)分析后差異也無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。C組和D組殺傷活性大于B組，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)；D組比C組殺傷活性高，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)，且C組和D組組內(nèi)分析顯示，隨免疫時(shí)間延長(zhǎng)，殺傷活性也隨之增大，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

表3　　4組開始免疫后第14、21、28天小鼠CTL

注：與B組比較，*P<0.05；與C組比較，#P<0.05。

3討論

細(xì)菌的外膜蛋白(OMP)在細(xì)菌致病過程中起重要作用，因?yàn)槠洳粌H可刺激體液免疫，也可刺激細(xì)胞免疫，顯示了良好的免疫原性[3]。目前，軍團(tuán)菌疫苗中的DNA疫苗作為第3代疫苗已引起人們的廣泛關(guān)注，且DNA疫苗具有容易獲取，使用安全，保存容易等優(yōu)點(diǎn)，還可以用其他疫苗來(lái)加強(qiáng)免疫效果。目前美國(guó)食品藥品監(jiān)督管理局批準(zhǔn)HIV、埃博拉病毒、瘧疾等多種DNA疫苗進(jìn)入臨床試驗(yàn)[4]。核酸疫苗引發(fā)的免疫應(yīng)答相對(duì)較弱，尤其在大動(dòng)物及人體內(nèi)不足以引起足夠的免疫保護(hù)效果[5]。所以研究發(fā)現(xiàn)了多種提高核酸疫苗免疫效果的方法，其中用一種疫苗進(jìn)行初始免疫，再用另一種或多種不同類型的疫苗進(jìn)行加強(qiáng)免疫，即Prime-Boost免疫策略通常會(huì)產(chǎn)生比單一疫苗更強(qiáng)的免疫反應(yīng)，特別是能產(chǎn)生更強(qiáng)的細(xì)胞免疫應(yīng)答[6]。在誘導(dǎo)細(xì)胞免疫應(yīng)答方面有比較好的作用，并顯示了很好的應(yīng)用前景。本研究將所構(gòu)建的重組質(zhì)粒GFP-momp作DNA疫苗及重組質(zhì)粒pET-momp表達(dá)的蛋白作為蛋白疫苗，對(duì)小鼠進(jìn)行免疫，檢測(cè)其體內(nèi)細(xì)胞免疫、體液免疫的相關(guān)性指標(biāo)，結(jié)果初步分析表明，使用不同的免疫策略，產(chǎn)生的免疫應(yīng)答方式和強(qiáng)度有所不同。C、D兩組抗體滴度水平均高于A、B兩組，說(shuō)明C、D兩組均能產(chǎn)生較好的特異性抗體；但D組抗體水平只略高于C組，這可能是因?yàn)镈組與C組相比只進(jìn)行了一次蛋白免疫；C、D兩組在動(dòng)態(tài)監(jiān)測(cè)抗體水平的情況下，組內(nèi)也有差異，推測(cè)該值隨時(shí)間增加抗體也會(huì)增加，這與Ferraz等[7]所得結(jié)果一致。然而，細(xì)胞免疫應(yīng)答方面的結(jié)果卻有所不同，C、D兩組細(xì)胞免疫水平均高于A、B兩組，說(shuō)明C、D兩組均能產(chǎn)生較好的細(xì)胞免疫；但是與C組相比較，D組細(xì)胞免疫水平明顯高于C組，分析其原因可能是因?yàn)槎卟捎昧瞬煌拿庖叻椒?，前者為單一的DNA免疫，后者為Prime-Boost免疫策略；且C、D兩組組內(nèi)同一時(shí)間點(diǎn)的數(shù)據(jù)水平也隨免疫時(shí)間增加而相應(yīng)提高。以上結(jié)果與Prime-Boost策略的基本原理相符，且與Ferraz等[7]采用表達(dá)結(jié)核桿菌Apa(富含丙氨酸-脯氨酸的抗原)、Hsp 65和Hsp 70的DNA疫苗初次免疫、卡介苗加強(qiáng)的策略免疫小鼠及Belyakov等[8]用DNA疫苗初次免疫、重組MVA病毒加強(qiáng)免疫研究初次免疫-加強(qiáng)免疫策略結(jié)果一致。同時(shí)，張璐等[9]在DNA疫苗和蛋白疫苗聯(lián)合免疫對(duì)HIV包膜蛋白gp120體液免疫的影響中證實(shí)，DNA和蛋白疫苗共同免疫有利于提高艾滋病疫苗誘導(dǎo)的抗體反應(yīng)水平。另外，其他一些研究小組結(jié)果也顯示Prime-Boost策略可以明顯提高疫苗的保護(hù)效果[10-11]。 Lp作為一種胞內(nèi)寄生菌，其感染機(jī)體后產(chǎn)生的免疫應(yīng)答主要是細(xì)胞免疫，結(jié)果顯示Prime-Boost策略能產(chǎn)生較好的細(xì)胞免疫應(yīng)答，有助于胞內(nèi)菌的預(yù)防。

本研究結(jié)果表明，以Prime-Boost免疫策略為依據(jù)的DNA疫苗初次免疫，蛋白疫苗加強(qiáng)免疫的方法使Lp感染后的抗體水平有所提高，對(duì)淋巴細(xì)胞增殖活性和CTL殺傷活性也明顯提高。

因此，momp基因制備的DNA疫苗對(duì)小鼠有免疫原性，為L(zhǎng)p有效疫苗的研究提供了理論依據(jù)及應(yīng)用價(jià)值。

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Preparation and immunogenicity ofmompgene vaccine of Legionella Pneumophilia*

DOUJiaoying1,2,YANGZhiwei2

(1.DepartmentofClinicalLaboratory,ChineseTraditionalChineseMedicineofGansu,Lanzhou730050,China; 2.DepartmentofPathogenicBiologyandImmunology,SchoolofBasicMedicine,NingxiaMedicalUniversity,Yinchuan750004,China)

Abstract:ObjectiveTo observe the immunogenicity of the DNA vaccine induced by eukaryotic recombinant plasmid GFP-momp combined with protein vaccine induced by prokaryotic recombinant plasmid pET-momp in BALB/c female mice immunized intramuscularly.MethodsThe MOMP gene amplified from DNA of Legionella pneumophila by PCR were cloned into pEGFP-C1 vector,which produced the recombinant plasmid named as GFP-momp.GFP-momp was analyzed with restriction endonuclease digestion,PCR and DNA sequencing techniques.The NIH3T3 cell was transfected by recombinant plasmid GFP-momp through lipofection.The stable expression products of MOMP were observed by the fluorescent microscope.Sixty BALB/c female mice were divided into 4 groups averagely,the PBS control group (A group),the plasmid pEGFP-C1 control group (B group),DNA vaccine experimental group (C group) and the combination vaccine experimental group (D group).By recombinant plasmid the GFP-momp combined with MOMP protein,mice of group A were given intramuscular injection PBS 50 μL and mice of group B were injected with pEGFP-C1 50μg.In addition,mice of group C and D were injected GFP-momp 50 μg in the first day.Each group injected the same dose immunization once in the fourteenth day.Then mice of group A,B and C were injected with the same dose of an additional immunization and in the twenty-first day and that of the group D were injected with 10 μg purified MOMP protein.Then antibody levels,lymphocyte proliferation activity and CTL killing activity were tested to evaluate the immunogenicity of DNA vaccines and combined vaccine.Results831 bp momp gene was amplified.Under the fluorescent microscope,green fluorescent was observed in the cell cytoplasm.In the lymphocyte proliferation test,there was no significant difference between group A and B (P>0.05).Proliferative activity of group C and D were significantly higher than that of group B (P<0.05).And proliferative activity of group C was significantly higher than that of group D (P<0.05).The indirect ELISA results showed that antigen-specific levels of serum antibody in A Group and B Group had no significant difference (P<0.05).And the levels of serum antigen-specific antibody of group C and D were significantly higher than that of group B (P<0.05).Antibody titer of group D was significantly higher than that of group C (P<0.05).CTL killing activity experiments showed that there was no significant difference between group A and B (P>0.05).The activity of group C and D were significantly higher than that of group B (P<0.05) and the activity of group D was also significantly than that of group C (P<0.05).ConclusionThe recombinant plasmid GFP-momp is constructed and expressed successfully in the NIH3T3 cells.DNA vaccine and DNA protein vaccine induced by Legionella pneumophila bacteria momp gene have immunogenicity which can generate cellular and humoral immune responses.

Key words:Legionella pneumophila;momp gene;vaccine

* 基金項(xiàng)目：國(guó)家自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(30860264)。

作者簡(jiǎn)介：竇嬌瑩，女，技師，主要從事微生物與免疫學(xué)檢驗(yàn)研究。

DOI:10.3969/j.issn.1673-4130.2016.11.001

文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼：A

文章編號(hào)：1673-4130(2016)11-1449-04

(收稿日期：2016-01-28修回日期：2016-03-22)