李清亮,　周月涵,　丁　健,　段作營(yíng),　金　堅(jiān),　李華鐘

1. 江南大學(xué) 工業(yè)生物技術(shù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，江蘇無(wú)錫 214122；2. 江南大學(xué) 藥學(xué)院，江蘇無(wú)錫 214122

畢赤酵母GS115表達(dá)HSA-GCSFm的誘導(dǎo)工藝研究

李清亮1,周月涵1,丁健1,段作營(yíng)1,金堅(jiān)2,李華鐘1

1. 江南大學(xué) 工業(yè)生物技術(shù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，江蘇無(wú)錫 214122；2. 江南大學(xué) 藥學(xué)院，江蘇無(wú)錫 214122

摘要：本文探討了甲醇流加控制、添加胰蛋白胨和甲醇/山梨醇共混誘導(dǎo)對(duì)重組畢赤酵母GS115/pPIC9K-HSA-GCSFm表達(dá)HSA-GCSFm的影響。結(jié)果顯示：甲醇供應(yīng)充足條件下HSA-GCSFm表達(dá)水平僅為37 mg·L-1，而甲醇添加受限條件下HSA-GCSFm表達(dá)水平可達(dá)到239 mg·L-1；甲醇添加受限并添加胰蛋白胨條件下，HSA-GCSFm表達(dá)水平可以提高到266 mg·L-1；在此基礎(chǔ)上，流加山梨醇作為輔助碳源，表達(dá)水平可大幅提高至424 mg·L-1。通過(guò)對(duì)各誘導(dǎo)條件下OUR、胞外蛋白酶及碳流分配進(jìn)行分析后發(fā)現(xiàn)，將甲醇限制在低濃度同時(shí)添加胰蛋白胨與山梨醇，可以改善細(xì)胞代謝活性，增加細(xì)胞用于HSA-GCSFm合成的碳流分配量，降低胞外蛋白酶活性，從而提高了HSA-GCSFm的表達(dá)水平并緩解了HSA-GCSFm的降解。因此，該誘導(dǎo)工藝適于畢赤酵母高效表達(dá)HSA-GCSFm。

關(guān)鍵詞：畢赤酵母； HSA-GCSFm； 甲醇流加策略； 胰蛋白胨； 山梨醇

粒細(xì)胞集落刺激因子(Granulocyte Colony Stimulating Factor，G-CSF)由174個(gè)氨基酸殘基組成，分子量為19.6 kDa，是一種由單核細(xì)胞和纖維組織母細(xì)胞產(chǎn)生的糖蛋白[1, 2]。G-CSF作用于骨髓中性粒細(xì)胞系造血前體細(xì)胞，促進(jìn)其增殖、分化，促進(jìn)中性粒細(xì)胞的成熟和釋放，在臨床上可用于治療因放化療而引起的中性粒細(xì)胞減少與再生障礙性貧血[3-5]。但是，G-CSF分子量較小，易被腎小球過(guò)濾，導(dǎo)致其在體內(nèi)半衰期短。為了解決這一難題，本研究室將G-CSF突變體(GCSFm)與人血清白蛋白(Human Serum Albumin，HSA，66 kDa)進(jìn)行基因融合并在畢赤酵母GS115中成功表達(dá)。融合蛋白HSA-GCSFm(86 kDa左右)兼具HSA抗原性及G-CSF活性，且突變型融合蛋白活性高出野生型融合蛋白30倍，具有良好的應(yīng)用前景[6]。

典型的畢赤酵母發(fā)酵過(guò)程包括細(xì)胞生長(zhǎng)期和甲醇誘導(dǎo)期兩個(gè)階段。為了進(jìn)一步提高HSA-GCSFm產(chǎn)量，有必要從以下幾個(gè)方面對(duì)其誘導(dǎo)表達(dá)工藝進(jìn)行深入研究。首先，甲醇既作為誘導(dǎo)劑又作為碳源，其添加量對(duì)HSA-GCSFm表達(dá)水平有很大影響[7]。在誘導(dǎo)過(guò)程中確定最優(yōu)的甲醇添加量對(duì)于HSA-GCSFm的高效表達(dá)十分重要。此外，畢赤酵母表達(dá)的重組蛋白易被降解，不但影響目標(biāo)蛋白蛋白的產(chǎn)量還給后續(xù)的純化帶來(lái)困難[8]。因此在誘導(dǎo)表達(dá)過(guò)程中抑制其降解，也是提高HSA-GCSFm表達(dá)水平的有效途徑之一。有文獻(xiàn)報(bào)道，在甲醇誘導(dǎo)階段添加輔助碳源山梨醇也同樣可以提高目標(biāo)蛋白表達(dá)水平[9]。因此，本研究從以上三個(gè)方面出發(fā)，將甲醇流加、抑制HSA-GCSFm降解以及山梨醇共混流加相結(jié)合，以尋求適用于HSA-GCSFm高效表達(dá)的最佳誘導(dǎo)工藝。

1材料與方法

1.1實(shí)驗(yàn)菌株

重組畢赤酵母(Pichiapastoris)GS115(pPIC9K-HSA-GCSFm)，由江南大學(xué)藥學(xué)院分子藥理學(xué)實(shí)驗(yàn)室構(gòu)建[6]。

1.2主要試劑與儀器設(shè)備

酵母浸粉、胰蛋白胨均由英國(guó)Oxiod公司生產(chǎn)，尿微量白蛋白檢測(cè)試劑盒由上海名典生物工程公司生產(chǎn)，蛋白酶分析試劑盒由美國(guó)Invitrogen公司生產(chǎn)，其他試劑均為國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司產(chǎn)品。

蛋白電泳設(shè)備(美國(guó)Bio-Rad公司)，生化培養(yǎng)箱(上海安亭科學(xué)儀器廠)，恒溫?fù)u床(江蘇強(qiáng)樂(lè)實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司)，分光光度計(jì)(上海光譜儀器有限公司)，Multiskan MK3酶標(biāo)儀(美國(guó)Thermo公司)，尾氣分析儀(LKM2000A，韓國(guó)LOKAS公司)，GC112A氣象色譜儀(上海精密科學(xué)儀器有限公司)，F(xiàn)c-2002甲醇電極(華東理工大學(xué))。

1.3培養(yǎng)基

YPD培養(yǎng)基(1 L)：葡萄糖 20 g，酵母浸粉 10 g，胰蛋白胨 20 g。用于重組畢赤酵母種子培養(yǎng)。

初始培養(yǎng)基(3.5 L)：甘油 70 g，(NH4)2SO416.8 g，MgSO43.5 g，CaSO40.35 g，K2SO43.5 g，KOH 70 g，磷酸70 mL，PTM135 mL，pH 6.0。

甘油流加培養(yǎng)基(2 L)：甘油 1000 g，(NH4)2SO41 g，MgSO40.06 g，KH2PO40.5 g，組氨酸 4.0 g，PTM120 mL，pH 6.0。

甲醇補(bǔ)料培養(yǎng)基(1 L)：甲醇 500 mL，MgSO40.03 g，(NH4)2SO40.5 g，PTM110 mL，pH 6.0。

山梨醇補(bǔ)料培養(yǎng)基(1 L)：山梨醇 500 g。

PTM1(1 L)：MnSO4·H2O 3.0 g，CuSO4·5H2O 6.0 g，Na2MoO4·2H2O 0.2 g，CoCl2·6H2O 0.5 g，ZnCl220.04 g，F(xiàn)eSO4·7H2O 65.05 g，生物素0.4 g，濃H2SO45 mL，NaI 80 μg，H3BO30.02 g。

1.4分析方法

1.4.1菌體密度的測(cè)定

以ddH2O調(diào)零點(diǎn)，將發(fā)酵液進(jìn)行適當(dāng)稀釋，使稀釋液在600 nm的吸光度處于0.1～0.7范圍內(nèi)，細(xì)胞密度(OD600)=分光光度計(jì)讀數(shù)×稀釋倍數(shù)。

1.4.2發(fā)酵狀態(tài)在線測(cè)量

利用尾氣分析儀測(cè)定發(fā)酵尾氣中的O2和CO2分壓，將數(shù)據(jù)記錄于工業(yè)控制計(jì)算機(jī)中，按文獻(xiàn)[10]所報(bào)道的公式在線計(jì)算攝氧速率(oxygen uptake rate，OUR)和CO2釋放速率(carbon dioxide evolution rate，CER)。利用電子天平在線記錄甲醇流加瓶的質(zhì)量損失，并據(jù)此計(jì)算甲醇的實(shí)際添加量，以及特定發(fā)酵時(shí)刻和時(shí)間間隔內(nèi)的甲醇平均消耗速率。

1.4.3HSA-GCSFm濃度測(cè)定

利用尿微量蛋白檢測(cè)試劑盒測(cè)定樣品中HSA的含量，根據(jù)公式C(HSA-GCSFm)=1.30×C(HSA)來(lái)計(jì)算融合蛋白的濃度，其中1.30代表HSA-GCSFm與HSA的相對(duì)分子質(zhì)量之比。

1.4.4甲醇濃度與山梨醇濃度檢測(cè)方法

甲醇濃度采用氣相色譜儀測(cè)定，色譜條件見文獻(xiàn)所述[10]。

山梨醇濃度采用高效液相色譜法測(cè)定選用示差折光檢測(cè)器 (RID)，采用Aglient氨基柱(250×4.6 mm)，進(jìn)樣量20 μL，柱溫控制在30 ℃；流動(dòng)相包含70%乙腈和30%超純水，流速設(shè)定在1.0 mL·min-1。

1.4.5蛋白酶活性測(cè)定

參照參考文獻(xiàn)[11]進(jìn)行。

1.4.6SDS-PAGE蛋白電泳

參照參考文獻(xiàn)[12]進(jìn)行。

1.5培養(yǎng)方法

1.5.1畢赤酵母的高密度培養(yǎng)方法

在7 L發(fā)酵罐進(jìn)行畢赤酵母細(xì)胞高密度培養(yǎng)，初始裝液量為3.5 L，接種量為20%，通氣量為1 vvm，溫度設(shè)定為30 ℃，整個(gè)過(guò)程通過(guò)流加氨水控制pH為6.0，調(diào)節(jié)攪拌轉(zhuǎn)速來(lái)調(diào)節(jié)溶氧在20%以上，當(dāng)溶氧濃度(DO)反彈時(shí)，啟動(dòng)DO-Stat流加程序進(jìn)行甘油流加培養(yǎng)基的流加，當(dāng)通空氣無(wú)法控制DO時(shí)向發(fā)酵罐內(nèi)通入純氧。當(dāng)發(fā)酵液OD600超過(guò)450以上時(shí)，終止流加甘油培養(yǎng)基，饑餓2 h待殘留的甘油以及其他中間代謝產(chǎn)物耗盡后，添加甲醇誘導(dǎo)HSA-GCSFm表達(dá)。

1.5.2甲醇流加策略

策略Ⅰ：誘導(dǎo)溫度為25 ℃，根據(jù)甲醇電極的示數(shù)自動(dòng)調(diào)節(jié)流加速率使甲醇濃度維持在5 g/L左右。甲醇供應(yīng)充足條件下耗氧劇烈，因此誘導(dǎo)過(guò)程全程通純氧將DO控制在10%左右。

策略Ⅱ：誘導(dǎo)溫度設(shè)定為25 ℃，全程通空氣誘導(dǎo)，不使用純氧。將DO設(shè)定為10%，按照下列公式修正甲醇流加速率：

其中：F表示甲醇流加速率(F≥ 0)；F*代表基準(zhǔn)甲醇流加速率，本次實(shí)驗(yàn)中F*=0.7 mL·min-1；控制參數(shù)Kc在實(shí)驗(yàn)中設(shè)定為0.01。

1.6碳消耗速率的計(jì)算

甲醇消耗速率Rmeth(t)(g·L-1·h-1)與山梨醇消耗速率Rsor(t)(g·L-1·h-1)通過(guò)公式(1)與(2)計(jì)算。式中cmeth(t)與csor(t)為離線測(cè)定的甲醇質(zhì)量濃度與山梨醇質(zhì)量濃度，單位為g·L-1；N為2次取樣之間的時(shí)間間隔，單位為h；V為發(fā)酵體積，單位為L(zhǎng)；mmeth(t)與msor(t)為t～(t+N)h之間甲醇的流加量與山梨醇的流加量，單位為g。碳消耗速率Rc(t)(mol·L-1·h-1)由公式(3)計(jì)算得到。其中32.04和182.17分別是甲醇和山梨醇的摩爾質(zhì)量，單位為g·mol-1。

(1)

(2)

(3)

1.7碳流分配計(jì)算

假設(shè)一部分碳源進(jìn)入異化途徑，被完全氧化為CO2，同時(shí)伴隨大量ATP生成，為細(xì)胞生命活動(dòng)和蛋白質(zhì)合成提供能量。其余碳源全部用于合成目標(biāo)蛋白。采用本研究中所提出策略進(jìn)行誘導(dǎo)的發(fā)酵批次中，流向能量代謝途徑以及蛋白合成途徑的碳流量可以通過(guò)計(jì)算得到。首先，t1～t2時(shí)間段內(nèi)碳消耗總量Ctotal(mol·L-1)可由公式(4)計(jì)算

(4)

其次，t1～t2流向能量代謝途徑的碳消耗量Cenergy及流向蛋白合成途徑的碳流量Csynthesis可由公式(5)、(6)計(jì)算

(5)

(6)

2結(jié)果與討論

2.1甲醇濃度對(duì)HSA-GCSFm表達(dá)水平的影響

甲醇濃度是畢赤酵母表達(dá)外源蛋白過(guò)程中的關(guān)鍵環(huán)境因素。因此分別采用前述的甲醇流加策略Ⅰ和策略Ⅱ控制甲醇流加和發(fā)酵液中甲醇濃度，以比較甲醇添加充足和甲醇添加受限條件對(duì)HSA-GCSFm表達(dá)量的影響，結(jié)果如圖1a所示。

(a)

(b)

a：甲醇濃度變化及HSA-GCSFm表達(dá)曲線，■：HSA-GCSFm濃度，▲：甲醇濃度，實(shí)心：甲醇流加策略Ⅰ，空心：甲醇流加策略Ⅱ；b：誘導(dǎo)階段不同時(shí)間發(fā)酵上清液中HSA-GCSFm的SDS-PAGE鑒定，圖中1～12對(duì)應(yīng)誘導(dǎo)時(shí)間分別為4 h、8 h、12 h、16 h、20 h、24 h、28 h、32 h、36 h、40 h、44 h、48 h；M：Protein Marker

圖1甲醇濃度變化及HSA-GCSFm表達(dá)狀況

從圖中可以看出，在誘導(dǎo)期的絕大部分時(shí)間內(nèi)，采用策略Ⅰ的發(fā)酵，其甲醇濃度維持在4 g·L-1～6 g·L-1，而采用策略Ⅱ的發(fā)酵，其甲醇濃度則一直低于1 g·L-1。而目標(biāo)蛋白表達(dá)結(jié)果顯示，采用策略Ⅰ的發(fā)酵批次，HSA-GCSFm的表達(dá)量?jī)H為37 mg·L-1；而將甲醇濃度限制在較低水平，則HSA-GCSFm的表達(dá)量可以達(dá)到239 mg·L-1(圖1a)。由此可見，誘導(dǎo)階段甲醇受限條件更有利于HSA-GCSFm的表達(dá)。因此，之后的試驗(yàn)均采用甲醇流加策略II，將甲醇添加控制在受限水平。

2.2添加胰蛋白胨及山梨醇對(duì)HSA-GCSFm發(fā)酵的影響

蛋白胨含有豐富的有機(jī)氮化合物、氨基酸等營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)，不僅可用做畢赤酵母旳氮源維持其正常生理代謝，還可以作為外源蛋白的競(jìng)爭(zhēng)性底物與蛋白酶結(jié)合來(lái)緩解外源蛋白的降解[13]。有文獻(xiàn)報(bào)道：將BMMY中的蛋白胨去除則測(cè)不出目的蛋白，總蛋白含量也大量減少，并得出氮源的缺乏是造成目標(biāo)蛋白降解的重要原因[14]。畢赤酵母生長(zhǎng)進(jìn)入穩(wěn)定期后，由于發(fā)酵液中代謝產(chǎn)物積累、氮源營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)逐漸耗盡而形成不利于細(xì)胞生存的環(huán)境，進(jìn)而對(duì)外源蛋白的表達(dá)產(chǎn)生不利影響。為提高菌體的代謝活力與HSA-GCSFm表達(dá)水平，在仍然利用甲醇流加策略Ⅱ控制甲醇濃度的基礎(chǔ)上，在誘導(dǎo)階段每12 h添加35 g胰蛋白胨，并通過(guò)OUR與SDS-PAGE圖譜來(lái)考察重組畢赤酵母代謝活力與HSA-GCSFm表達(dá)狀況的變化，結(jié)果見圖2與圖3。

注：采用甲醇流加策略Ⅰ時(shí)以純氧供氧，氧氣分壓超出尾氣分析儀的量程而無(wú)法計(jì)算OUR

圖2不同批次發(fā)酵的OUR的變化

從圖2可以看出，添加胰蛋白胨的批次與對(duì)照批次相比， OUR獲得顯著的提升并趨于穩(wěn)定。有文獻(xiàn)報(bào)道，誘導(dǎo)階段高而穩(wěn)定的OUR是畢赤酵母高效表達(dá)外源蛋白的關(guān)鍵因素[15]。由圖3可知，在誘導(dǎo)階段添加胰蛋白胨后， HSA-GCSFm表達(dá)水平獲得顯著提高，在誘導(dǎo)48 h后表達(dá)量達(dá)到了266 mg·L-1(圖3a)，比對(duì)照批次提高了11.3%，而且66 kDa降解片段有所減少，但是45 kDa降解片段無(wú)明顯減少(圖3c)。

(a)

(b)

(c)

(d)

a：不同批次的HSA-GCSFm的表達(dá)曲線，■：對(duì)照，●：采用甲醇誘導(dǎo)策略Ⅱ、添加胰蛋白胨，▲；采用甲醇誘導(dǎo)策略Ⅱ、添加胰蛋白胨與山梨醇；b：對(duì)照批次發(fā)酵上清液的SDS-PAGE分析；c：采用甲醇誘導(dǎo)策略Ⅱ、添加胰蛋白胨批次發(fā)酵上清液的SDS-PAGE分析；d：采用甲醇誘導(dǎo)策略Ⅱ、添加胰蛋白胨與山梨醇批次發(fā)酵上清液的SDS-PAGE分析；1～12對(duì)應(yīng)誘導(dǎo)時(shí)間分別為4 h、8 h、12 h、16 h、20 h、24 h、28 h、32 h、36 h、40 h、44 h、48 h，M：Protein Marker

圖3不同批次的HSA-GCSFm的表達(dá)情況

在誘導(dǎo)過(guò)程中添加輔助碳源是提高目標(biāo)蛋白表達(dá)水平的有效途徑之一。輔助碳源能夠?yàn)榈鞍缀铣赏緩教峁╊~外的ATP，減輕甲醇的供能壓力，從而緩解甲醇異化途徑代謝中間物甲醛和甲酸對(duì)細(xì)胞的毒害作用[16]。為進(jìn)一步提高HSA-GCSFm的表達(dá)水平，本研究在使用甲醇流加策略Ⅱ限制甲醇濃度和添加胰蛋白胨的基礎(chǔ)上，按照固定體積比流加山梨醇補(bǔ)料培養(yǎng)基(甲醇培養(yǎng)基∶山梨醇培養(yǎng)基=4∶1)，以期獲得HSA-GCSFm高效表達(dá)，結(jié)果見圖3a與圖3d。

從圖3a中可以看出，HSA-GCSFm表達(dá)量在誘導(dǎo)32 h后達(dá)到了424 mg·L-1，較只采用流加策略II的對(duì)照批次提高了93.6%，較只添加胰蛋白胨的發(fā)酵批次也提高了59.4%，并且目標(biāo)蛋白降解獲得有效的控制(圖3d)。同時(shí)誘導(dǎo)階段具有水平較高且較穩(wěn)定的OUR(圖2)。

2.3采用甲醇流加策略Ⅱ各批次的胞外蛋白酶活性

誘導(dǎo)階段形成的不利于細(xì)胞的環(huán)境會(huì)促進(jìn)蛋白酶的活化與分泌，還會(huì)引起菌體自溶而釋放胞內(nèi)蛋白酶，進(jìn)而導(dǎo)致外源蛋白的水解[17]。在本研究中，通過(guò)采用甲醇流加策略Ⅱ并添加胰蛋白胨與山梨醇能有效地控制HSA-GSCFm的降解。為進(jìn)一步探求其抑制降解的原因，分別測(cè)定了對(duì)照批次、添加胰蛋白胨批次、添加胰蛋白胨與山梨醇的各批次的胞外蛋白酶活性，其結(jié)果如圖4所示。

○：對(duì)照(采用甲醇流加策略Ⅱ，不添加胰蛋白胨與山梨醇)；▲：采用甲醇誘導(dǎo)策略Ⅱ，添加胰蛋白胨；◇：采用甲醇誘導(dǎo)策略Ⅱ，添加胰蛋白胨與山梨醇

圖4不同批次誘導(dǎo)階段蛋白酶活性的變化

結(jié)果顯示，對(duì)照批次蛋白酶活性>添加胰蛋白胨批次蛋白酶活性>添加胰蛋白胨與山梨醇批次蛋白酶活性；在誘導(dǎo)48 h放罐后，添加胰蛋白胨批次、添加胰蛋白胨與山梨醇批次的胞外蛋白酶活性與對(duì)照批次相比分別下降了17.9%、54.3%。這表明添加胰蛋白胨與山梨醇可以減少胞外蛋白酶的分泌，進(jìn)而控制HSA-GCSFm的降解。

2.4采用甲醇流加策略Ⅱ各批次碳流分配比較

計(jì)算對(duì)照批次、添加胰蛋白胨批次、添加胰蛋白胨與山梨醇批次的誘導(dǎo)48 h的碳流分配，結(jié)果如圖5所示。

圖5　不同批次碳流分配分析

從圖5中可以看出，同時(shí)添加胰蛋白胨與山梨醇，碳消耗總量為5.45 mol·L-1，分別是只添加胰蛋白胨和對(duì)照批次的1.1和1.6倍，其中有55.1%流入蛋白合成途徑，高于對(duì)照批次和只添加胰蛋白胨的批次(分別為49.2%和46.2%)。同時(shí)添加胰蛋白胨與山梨醇，不僅改善了細(xì)胞的代謝活性，提高了細(xì)胞碳代謝速率，而且改變了細(xì)胞內(nèi)碳代謝流向，更多的碳源用于HSA-GCSFm合成，使得該批次中HSA-GCSFm的表達(dá)水平明顯高于其他批次。

3結(jié)論

綜上所述，本研究建立了一套適用于畢赤酵母GS115表達(dá)HSA-GCSFm融合蛋白的誘導(dǎo)工藝。該工藝通過(guò)采用控制溶解氧濃度間接限制甲醇流加速率的甲醇流加策略，同時(shí)補(bǔ)加胰蛋白胨與山梨醇，增強(qiáng)了細(xì)胞代謝活性，提高了碳消耗總量和用于蛋白合成途徑的碳流分配量，同時(shí)降低了胞外蛋白酶活性，緩解了HSA-GCSFm的降解，從而保證了HSA-GCSFm的高效表達(dá)。

參考文獻(xiàn)

[1]Hill CP, Osslund TD, Eisenberg D. The structure of granulocyte-colony-stimulating factor and its relationship to other growth factors[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1993, 90(11): 5167-5171.

[2]Layton JE, Shimamoto G, Osslund T,etal. Interaction of granulocyte colony-stimulating factor (G-CSF) with its receptor-evidence that Glu19of G-CSF interacts with Arg288of the receptor[J]. Journal of Biological Chemistry, 1999, 274(25): 17445-17451.

[3]Anderlini P, Przepiorka D, Champlin R,etal. Biologic and clinical effects of granulocyte colony-stimulating factor in normal individuals[J]. Blood, 1996, 88(8): 2819-2825.

[4]Vainstein V, Ginosar Y, Shoham M,etal. The complex effect of granulocyte colony-stimulating factor on human granulopoiesis analyzed by a new physiologically-based mathematical model[J]. Journal of Theoretical Biology, 2005, 234(3): 311-327.

[5]Wittman B, Horan J, Lyman GH. Prophylactic colony-stimulating factors in children receiving myelosuppressive chemotherapy: A meta-analysis of randomized controlled trials[J]. Cancer Treatment Reviews, 2006, 32(4): 289-303.

[6]朱書峰. 計(jì)算機(jī)輔助HSA-hGCSF融合蛋白的分子改造[D]. 無(wú)錫: 江南大學(xué), 2008.

[7]Wu D, Yu XW, Wang TC,etal. High yield Rhizopus chinenisis prolipase production inPichiapastoris: Impact of methanol concentration[J]. Biotechnology and Bioprocess Engineering, 2011, 16(2): 305-311.

[8]Kobayashi K, Kuwae S, Ohya T,etal. High-Level Expression of Recombinant Human Serum Albumin from the Methylotrophic YeastPichiapastoriswith Minimal Protease Production and Activation[J]. Journal of Bioscience & Bioengineering, 2000, 89(1): 55-61.

[9]Ding J, Zhang C, Gao M,etal. Enhanced porcine circovirus Cap protein production byPichiapastoriswith a fuzzy logic DO control based methanol/sorbitol co-feeding induction strategy[J]. Journal of Biotechnology, 2014, 177(7): 35-44.

[10]Jin H, Zheng Z, Gao M,etal. Effective induction of phytase inPichiapastorisfed-batch culture using an ANN pattern recognition model-based on-line adaptive control strategy[J]. Biochemical Engineering Journal, 2007, 37(1): 26-33.

[11]Sinha J, Plantz BA, Inan M,etal. Causes of proteolytic degradation of secreted recombinant proteins produced in methylotrophic yeastPichiapastoris: Case study with recombinant ovine interferon-τ[J]. Biotechnology & Bioengineering, 2005, 89(1): 102-112.

[12]汪家政. 蛋白質(zhì)技術(shù)手冊(cè)[M]. 北京: 科學(xué)出版社, 2000. 79-90.

[13]Werten MWT, van den Bosch TJ, Wind RD,etal. High-yield secretion of recombinant gelatins byPichiapastoris[J]. Yeast, 1999, 15(11): 1087-1096.

[14]鄒敏, 方曙光, 黃立等. 重組畢赤酵母表達(dá)瑞替普酶(Reteplase)過(guò)程中的降解控制[J]. 工業(yè)微生物, 2006, 36(2): 7-11.

[15]金虎, 高敏杰, 徐俊等. 多變量在線測(cè)量條件下的豬α干擾素高效表達(dá)[J]. 過(guò)程工程學(xué)報(bào), 2009, 9(3): 563-567.

[16]Xie J, Zhou Q, Du P,etal. Use of different carbon sources in cultivation of recombinantPichiapastorisfor angiostatin production[J]. Enzyme & Microbial Technology, 2005, 36(2): 210-216.

[17]van den Hazel HB, KiellandBrandt MC, Winther JR. Review： Biosynthesis and function of yeast vacuolar proteases [J]. Yeast, 1996, 12(1): 1-16.

Study on induction method ofPichiapastorisexpressing HSA-GCSFm

LI Qing-liang1, ZHOU Yue-han1, DING Jian1, DUAN Zuo-ying1, JIN Jian2, LI Hua-zhong1

1. Key Laboratory of Industrial Biotechnology, Ministry of Education, Jiangnan University, Wuxi, 214122, Jiangsu, China；2. School of Pharmaceutical Science，Jiangnan University，Wuxi, 214122, Jiangsu, China

AbstractThe effects of methanol feeding control, adding tryptone and methanol/sorbitol co-feeding induction on the expression of HSA-GCSFm in Pichia pastoris GS115/pPIC9K-HSA-GCSFm were discussed. The results showed that the concentration of HSA-GCSFm was only 37 mg·L-1when supply of methanol was sufficient, but the concentration of HSA-GCSFm increased to 239 mg·L-1when methanol was supplied restrictedly. Adding tryptone with methanol supplied restrictedly could increase concentration of HSA-GCSFm to 266 mg·L-1; and feeding sorbitol as auxilary carbon source simultaneously, the concentration of HSA-GCSFm increased to 424 mg·L-1. After analyzing OUR, extracellular protease activity and carbon distribution, it could be concluded that restricting methanol concentration at low level and adding tryptone and sorbitiol properly could improve metabolic activity of cells and increase carbon flux in protein synthesis route and reduce activity of extracellular protease. Therefore, this induction method enhancing expression and inhibiting degration of HSA-GCSFm was optimal for Pichia pastoris to express HSA-GCSFm with high performance.

Key wordsPichia pastoris; HSA-GCSFm; methanol feeding strategy; sorbitol； tryptone

doi:10.3969/j.issn.1001-6678.2016.02.002

基金項(xiàng)目：國(guó)家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(30970029); 江蘇省優(yōu)勢(shì)學(xué)科建設(shè)工程資助項(xiàng)目。

作者簡(jiǎn)介：李清亮(1989～)，男，碩士。E-mail: xiaobanchao@sina.com。