申東梅，方毅敏，申雁鳴，劉國標，姚亞男，賴小敏

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結核特異性多肽E6、E7和C14對單核-巨噬細胞亞型極化的影響

申東梅，方毅敏，申雁鳴，劉國標，姚亞男，賴小敏

【摘要】

目的運用流式細胞術檢測單核-巨噬細胞極化亞型 M1 （CD14+CD16+）及 M2（CD14+CD163+），探討結核特異性多肽對單核-巨噬細胞極化分型的影響。

方法以 3 種結核特異性多肽 E6、E7 和 C14 作為刺激物，刺激人急性白血病單核細胞株（THP-1 細胞）、結核病患者胸水單個核細胞及外周血單個核細胞（PBMC），用流式細胞術檢測刺激物不同時間點對單核-巨噬細胞極化表面標記表達的影響。

結果結核特異性多肽 E6 刺激 THP-1 24 + 0 h、24 + 24 h、24 + 48 h、24 + 72 h 后，CD16/CD163 陽性率分別為16.85%/13.78%、19.59%/15.68%、18.14%/14.19%、13.61%/ 11.47%。E7 刺激效果與 E6 相似，C14 對 THP-1 的CD16/CD163 表達影響不如前兩種多肽強。結核特異性多肽E6 刺激結核患者胸水或血標本單核細胞 19 h 后，CD14+CD16+陽性率（1# 患者：1.66%，2# 患者：4.37%）與 CD14+CD163+陽性率（1# 患者：1.76%，2# 患者：2.82%）差異不大，但 CD14+CD16+CD86+陽性率（1# 患者：2.20%，2# 患者：6.16%）大于 CD14+CD163+CD206+陽性率（1# 患者：1.37%，2# 患者：0.92%）。E7 刺激效果與 E6 相似，C14 對結核患者胸水或血標本單核細胞CD14/CD16/CD163 表達影響不如前兩種多肽強。

結論3 種結核特異性多肽特別是 E6、E7 體外刺激單核細胞株 THP-1、結核患者胸水或血標本單核細胞主要向M1 型單核-巨噬細胞極化。

【關鍵詞】肽類；白血病，單核細胞，急性；單核-巨噬細胞系統(tǒng)；極化分型

www.cmbp.net.cn中國醫(yī)藥生物技術, 2016, 11(3):216-223

作者單位：510080 廣州，中山大學中山醫(yī)學院微生物學教研室，熱帶病防治研究教育部重點實驗室，結核病防治研究所，海洋微生物功能分子廣東省高校重點實驗室，廣東省重大傳染病預防和控制技術中心（申東梅、姚亞男、賴小敏）；510095 廣州市胸科醫(yī)院（方毅敏、申雁鳴、劉國標）

結核病是由結核分枝桿菌（mycobacterium tuberculosis，MTB）引起的嚴重威脅人類健康的慢性傳染病，是我國重點防治疾病之一。

MTB 屬于胞內寄生菌，在體內主要寄居于單核-巨噬細胞中。單核-巨噬細胞是一種異質性細胞群體，不同組織甚至同一組織的巨噬細胞在表型和功能方面存在較大的差異。而巨噬細胞根據表型和分泌因子不同可分為經典活化 M1 型及選擇活化M2 型［1-2］。M1 型經典的表面標記有 CD16/CD86/ HLA-DR 等［3-4］，M2 型經典的表面標記有 CD163/ CD206/CD209/CD36 等［5-7］。

本研究采用 3 種結核特異性多肽 E6、E7 和C14 刺激人急性白血病單核細胞株 THP-1、結核患者胸水及外周血單個核細胞，用流式細胞術檢測分析不同刺激時間、刺激物對單核細胞株表面標記CD16、CD163 等表達的影響。

1　材料與方法

1.1材料

1.1.1標本人急性單核細胞白血病單核細胞株THP-1 由中山大學中山醫(yī)學院黃曦教授惠贈。結核患者胸水及外周血等標本來自廣州市胸科醫(yī)院，用于分離單個核細胞。

1.1.2主要材料與試劑12 孔板為加拿大杰特生化制品國際有限公司產品；3 種結核特異性多肽為本實驗室前期自行研發(fā)，包括多肽 E6（中國發(fā)明專利公開號：201110130364.8）、E7（中國授權發(fā)明專利號：200810220523.1）和 C14，委托西安華辰生物科技有限公司合成，純度 ≥ 98%，其中 E6、E7 來源于 MTB 特異性分泌蛋白 ESAT-6，C14來源于另一種特異性分泌蛋白 CFP-10；對照刺激劑 LPS（大腸埃希菌 055：B5）為美國 Sigma 公司產品；人重組 IFN-γ、IL-4、IL-13 均為美國 PeproTech 公司產品；流式抗體鼠抗人 CD14-FITC、CD16-APC-eFluor 780、CD163-PerCP-eFluor 710、CD206-eFluor 450 均購自美國 eBioscience 公司；鼠抗人 CD163-PerCP-Cy5.5 購自美國 Biolegend公司；鼠抗人 CD86-APC 購自美國 BD 公司；細胞培養(yǎng)基 RPMI 1640、胎牛血清和青霉素/鏈霉素雙抗混合液均為美國 Gibco BRL 公司產品。

1.1.3儀器流式細胞儀 FACS Gallios 為美國Beckman Coulter 公司產品。

1.2方法

1.2.1THP-1 細胞株培養(yǎng)用 RPMI 1640 完全培養(yǎng)基（含10% 胎牛血清 FBS、100 U/ml 青霉素、100 mg/ml 鏈霉素）于 37 ℃、5% CO2恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

1.2.2THP-1 的體外刺激將處于對數期的THP-1 細胞按密度為（6 ～ 8）× 105/ml 鋪于 12 孔細胞培養(yǎng)板中，實驗分組如下：組 1（陰性對照組）：RPMI 1640 培養(yǎng) THP-1 細胞 24 h；組 2（陽性對照組 1）：LPS（1 μg/ml）和 IFN-γ（20 ng/ml）共刺激培養(yǎng)；組 3（陽性對照組 2）：IL-4（20 ng/ml）和 IL-13（20 ng/ml）共刺激培養(yǎng)；組 4：E6 （20 μg/ml）刺激培養(yǎng)；組 5：E7（20 μg/ml）刺激培養(yǎng)；組 6：C14（20 μg/ml）刺激培養(yǎng)。各組對應刺激劑刺激培養(yǎng) THP-1 24 h（培養(yǎng)基不含血清及雙抗），半量換液后再加 1 ml 完全培養(yǎng)基，培養(yǎng) 0、24、48、72 h，以上 4 個時間點（24 + 0 h、24 + 24 h、24 + 48 h、24 + 72 h）分別收集細胞作流式細胞分析。

1.2.3結核患者胸水及血液標本中單個核細胞的體外刺激用淋巴細胞分離液分離胸水及外周血得到單個核細胞，按細胞密度為 3 × 105/ml 鋪于12 孔細胞培養(yǎng)板中，實驗分組如下：組 A（陰性對照組 1）：未刺激、未培養(yǎng)；組 B（陰性對照組 2）：未刺激、RPMI 1640 培養(yǎng)（含 IL-2）19 h；組 C（陽性對照組 1）：LPS（1 μg/ml）和 IFN-γ （20 ng/ml）刺激培養(yǎng)；組 D（陽性對照組 2）：IL-4 （20 ng/ml）和 IL-13（20 ng/ml）刺激培養(yǎng)；組 E：E6（20 μg/ml）刺激培養(yǎng)；組 F：E7（20 μg/ml）刺激培養(yǎng)；組 G：C14（20 μg/ml）刺激培養(yǎng)，各刺激組均加入 IL-2。各刺激劑分別刺激培養(yǎng)細胞19 h 后收集細胞作流式細胞分析。

1.2.4流式細胞術檢測細胞表面標記將收集到的細胞離心，2% 小牛血清 PBS 洗滌 1 次，用50 μl 染色緩沖液重懸細胞，按說明書加鼠抗人CD14-FITC、CD16-APC-eFluor 780、CD163-PerCP-eFluor 710 或 CD163-PerCP-Cy5.5 抗體，經體外刺激的胸水及血標本單個核細胞加染鼠抗人CD86-APC、CD206-eFluor 450 抗體，4 ℃ 避光孵育 30 min，2% 小牛血清 PBS 洗去游離的抗體，300 ～ 400 μl 2% 多聚甲醛固定細胞后用流式細胞儀檢測細胞表面 CD14、CD16、CD163、CD86、CD206 等的表達。

1.3統(tǒng)計學處理

采用 SPSS16.0 軟件對數據進行統(tǒng)計分析，根據數據正態(tài)分布以均數、非正態(tài)分布以上四分位間距（P25）、中位數（P50）和下四分位間距（P75）進行統(tǒng)計描述，采用 t 檢驗、Wilcoxon 秩和檢驗和 Kruskal Wallis 檢驗進行統(tǒng)計驗證。P ≤ 0.05 表示差異具有統(tǒng)計學意義。

2　結果

2.1LPS + IFN-γ/IL-4 + IL-13 對 THP-1 表面標記 CD16/CD163 表達的影響

1 μg/ml LPS + 20 ng/ml IFN-γ、20 ng/ml IL-4 + 20 ng/ml IL-13［8］分別作用于 THP-1 細胞 24 h，低濃度的各刺激劑再分別作用 0、24、48、72 h，4 個時間點分別收集細胞，并用 CD16-APC-eFluor 780、CD163-PerCP-eFluor 710 流式抗體進行表面染色。4 次獨立實驗結果顯示，①陽性對照組 1：各時間點 CD16 陽性率分別為 12.86%（陰性對照組13.97%）、16.99%（20.68%）、17.86%（16.67%）、24.98%（12.93%）（與陰性對照組相比 P 均 ＞ 0.05）（圖1B），提示隨著刺激時間延長，CD16 表達呈升高的趨勢（圖2A）；4 個時間點 CD163 陽性率分別為 8.78%（陰性對照組 11.28%）、12.49% （17.51%）、13.83%（13.80%）、13.18%（12.46%）（P 均 ＞ 0.05）（圖1B），提示隨著刺激時間延長，CD163 表達呈先升高后下降的趨勢（圖2B）。②陽性對照組 2：各時間點 CD16 陽性率分別為12.46 %（陰性對照組 13.97%）、12.05%（20.68%）、10.32%（16.67%）、9.19%（12.93%）（P 均 ＞ 0.05）（圖1B），提示隨著刺激時間延長，CD16 表達呈下降的趨勢（圖2A）；4 個時間點 CD163 陽性率分別為 8.98%（陰性對照組 11.28%）、10.48% （17.51%）、7.13%（13.80%）、6.34%（12.46%）（P 均 ＞ 0.05）（圖1B），提示隨著刺激時間延長，CD163 表達呈下降的趨勢（圖2B）。Genin 等［9］用 150 nmol/L PMA 作用于 THP-1 細胞 24 h，再用 20 ng/ml IL-4 + 20 ng/ml IL-13 刺激，實驗結果顯示隨著刺激時間的延長 CD163 表達不斷升高，與我們的結果有所不同。

圖1　無刺激物或陽性刺激物刺激培養(yǎng) THP-1 細胞后 CD16和CD163 表達情況［A：THP-1 細胞未刺激、培養(yǎng) 24 + 48 h 的流式表面染色結果；B：LPS（1 μg/ml）+ IFN-γ（20 ng/ml）、IL-4（20 ng/ml）+ IL-13（20 ng/ml）分別刺激 THP-1 后 CD16/CD163的表達情況］Figure 1　The expressions of CD16 and CD163 on THP-1 cells after cultivation with no-irritant or the positive irritants ［A： The results of flow cytometry of THP-1 cells which was unstimulated and cultured for 24 + 48 h； B： The expression of CD16/CD163 on THP-1 cells after stimulation with LPS （1 μg/ml） + IFN-γ （20 ng/ml）， or IL-4（20 ng/ml） + IL-13（20 ng/ml）］

2.2多肽對 THP-1 表面標記 CD16/CD163 表達的影響

20 μg/ml 結核特異性多肽 E6 刺激 THP-1細胞 24 + 0 h、24 + 24 h、24 + 48 h、24 + 72 h，各時間點 CD16 陽性率分別為 16.85%（陰性對照組13.97%）、19.59%（20.68%）、18.14%（16.67%）、13.61%（12.93%）（P 均 ＞ 0.05）（圖3），提示隨著刺激時間延長，CD16 表達呈先升高后下降的趨勢，在刺激 24 + 24 h 達到峰值（圖2A）；各時間點 CD163 陽性率分別為 13.78%（陰性對照組11.28%）、15.68%（17.51%）、14.19%（13.80%）、11.47%（12.46%）（P 均＞ 0.05）（圖3），提示隨著刺激時間延長，CD163 表達同樣呈先升高后下降的趨勢，在刺激 24 + 24 h 達到峰值（圖2B）。E7、 C14 多肽 CD16、CD163 表達趨勢與 E6 基本相同。值得注意的是 C14 對表面標記的影響，除刺激 24 + 72 h，CD163 稍微比陰性對照組低，其他時間點 CD16 與 CD163 表達都比陰性對照組高（P ＞ 0.05）（圖2 和圖3）。

圖2　THP-1 細胞刺激前后 CD16/CD163 隨時間的變化趨勢Figure 2　The expressions of CD16/CD163 on THP-1 cells before and after stimulation

圖3　結核特異性多肽 E6、E7 和 C14 刺激 THP-1 細胞后 CD16和CD163 表達結果Figure 3　The expressions of CD16 and CD163 on THP-1 cells after stimulation with the MTB-specific peptides

2.3LPS + IFN-γ/IL-4 + IL-13 對結核患者標本表面標記 CD14/CD16/CD163 表達的影響

1# 結核患者胸水單個核細胞，各刺激劑作用19 h 后，收集細胞流式表面染色。結果顯示，①LPS + IFN-γ 刺激組：CD14 陽性率為 1.39%（兩個陰性對照組：組 A 和組 B 分別為 11.75%、7.24%），CD14+CD16+（M1 型單核-巨噬細胞）陽性率為0.12%（組 A 11.06%/組 B 6.30%），CD14+CD163+（M2 型單核-巨噬細胞）陽性率為 0.22%（組A 11.31%/組 B 6.32%）?？梢?M1 型與 M2 陽性率差異不大，后者稍多于前者。2# 結核患者胸水及血標本分析結果顯示 M1 型（陽性率 1.86%）稍少于 M2 型（陽性率 3.5%），且差異較大。M1/M2 兩群細胞分別增加一個表面標記后，CD14+CD16+CD86+（M1' 型單核-巨噬細胞）陽性率為 0.85%（組 A 10.49%/組 B 6.71%），CD14+CD163+CD206+（M2' 型單核-巨噬細胞）陽性率 0.72%（組 A 3.57%/組 B 5.44%），可見 M1'型占優(yōu)勢。2# 結核患者胸水及血標本顯示也是M1' 型占優(yōu)勢。②IL-4 + IL-13 刺激組，與組 A/組 B比較，CD14+、CD14+CD16+、CD14+CD163+、CD14+CD16+CD86+陽性率均降低，M1 型與 M2陽性率差異不大，后者稍多于前者，2# 患者則為 M1 型稍多；M1/M2 各增加一個表面標記后，1# 與 2# 患者結果都顯示 M1' 占優(yōu)勢（表1 ～表3）。

2.4多肽對結核患者標本表面標記 CD14/CD16/ CD163 表達的影響

表1　1# 結核患者胸水單核細胞亞群陽性率（%）Table 1　The positive percentages of monocyte subsets from the No. 1 patient’s hydrothorax （%）

表2　2# 結核患者胸水單核細胞亞群陽性率（%）Table 2　The positive percentages of monocyte subsets from the No. 2 patient’s hydrothorax （%）

1# 結核患者胸水單個核細胞，E6 刺激 19 h后，CD14 陽性率為 2.83%（組 A 11.75%/組 B 7.24%），CD14+CD16+（M1 型單核-巨噬細胞）陽性率為 1.66%（兩個陰性對照組：組 A 和組 B 分別為 11.06%、6.30%），CD14+CD163+（M2 型單核-巨噬細胞）陽性率為 1.76%（組 A 11.31%/組 B 6.32%），可見 M1 型與 M2 陽性率差異不大，后者稍多于前者。2# 結核患者胸水顯示 M1 型（陽性率 4.37%）多于 M2 型（陽性率 2.82%），且差異較大。1# 結核患者 M1/M2 兩群細胞分別增加一個表面標記后，CD14+CD16+CD86+（M1′ 型單核-巨噬細胞）陽性率為 2.20%（組 A 10.49%/組 B 6.71%），CD14+CD163+CD206+（M2' 型單核-巨噬細胞）陽性率為 1.37%（組 A 3.57%/組 B 5.44%），可見 M1' 型占優(yōu)勢。2# 結核患者胸水顯示也是M1' 型占優(yōu)勢。E7 與 E6 結果幾乎一致。值得注意的是 C14 刺激組，1# 結核病本胸水單個核細胞，相比于組 A/B，CD14+、CD14+CD16+、CD14+CD163+、CD14+CD16+CD86+、CD14+CD163+CD206+陽性率有增高有降低，而 E6、E7 刺激組，相對于組 A/B 都是降低的。2# 結核患者胸水單個核細胞，C14 刺激組相比于 E6、E7 刺激組，以上各細胞群的陽性率幾乎均最高（表1 ～ 3）。

表3　2# 結核患者外周血標本單核細胞亞群陽性率（%）Table 3　The positive percentages of monocyte substrate from the blood of 2# patient （%）

3　討論

單核-巨噬細胞因所處微環(huán)境的不同，M1、M2兩種亞型可相互轉換。在脂多糖（LPS）和 IFN-γ 或TNF-α 刺激下可分化成 M1 型，在 IL-4 和 IL-13刺激下則可分化成 M2a 型，免疫復合物和 IL-β的微環(huán)境則分化成 M2b 型，IL-10 刺激分化成M2c 型［10］。Boudjeltia 等［11］提出 CD14+CD16+單核細胞，抗原遞呈能力強，產生促炎細胞因子。CD16+單核細胞在 TLR2 配體存在下培養(yǎng) 2 d，會優(yōu)先分化成 CD16+樹突狀細胞，該細胞抗原遞呈能力強［12］，說明 CD14+CD16+單核細胞遷移至組織后更傾向于成為 M1 型巨噬細胞，并且該群細胞產生高水平的促炎性因子 TNF-α 及低水平的抗炎性因子 IL-10［13-14］，這也進一步證實 CD14+CD16+單核細胞傾向于成為 M1 型巨噬細胞。CD163 是表達于單核-巨噬細胞表面的一種膜受體，是清道夫受體家族成員之一。腹主動脈瘤上清中可溶性的CD163 促進巨噬細胞高表達 CD163，低表達HLA-DR，該細胞分泌 IL-10 多，而產生促炎性因子 IL-12 少［15］，可認為 CD163+細胞是 M2 型巨噬細胞。

THP-1 是比較成熟的用于體外研究單核-巨噬細胞功能的細胞株，本文用結核特異性多肽 E6、E7、C14 刺激 THP-1，探討幾種多肽對單核-巨噬細胞 M1/M2 極化的影響。結果發(fā)現(xiàn)，在刺激 24 + 0 h、24 + 24 h、24 + 48 h、24 + 72 h，各時間點都為 CD16+細胞群占優(yōu)勢，即使在加入 CD14 表面標記共染情況下，也得到相似的結果（數據未展示）。說明結核特異性多肽 E6、E7、C14 體外刺激THP-1 型單核細胞更傾向分化 M1 型單核-巨噬細胞。

本文用結核患者胸水和血標本，進一步驗證E6、E7、C14 對單核-巨噬細胞極化亞型的影響，實驗中發(fā)現(xiàn)兩例結核患者胸水單核細胞在受幾種多肽刺激 19 h 后，1# 患者 CD14+CD16+陽性率小于 CD14+CD163+陽性率，2# 患者 CD14+CD16+陽性率大于 CD14+CD163+陽性率，但差異不明顯，可能由個體差異引起。在兩群細胞分別增加CD86（M1 型表面標記［16］）、CD206（M2 型表面標記［7， 16］）標記染色后，2 例患者都顯示CD14+CD16+CD86+細胞群陽性率高于CD14+CD163+CD206+細胞群，即 M1 型單核-巨噬細胞占優(yōu)勢，這與 THP-1 的體外刺激實驗結果相似。

目前數篇文獻報道，應用 MTB 感染純種小鼠或轉基因小鼠試驗模型研究中發(fā)現(xiàn)，早期感染的小鼠組織中存在 M1 型巨噬細胞的極化，而晚期感染的組織或體液如骨髓或支氣管肺泡灌洗液中主要為 M2 型巨噬細胞，推測 M2 型巨噬細胞有助于MTB 的潛伏感染和結核病灶的形成［17-18］。但是，在人類結核病發(fā)生發(fā)展過程中，外周血單核細胞、局部病灶組織或體液（如胸水等）中巨噬細胞，特別是結核抗原特異性單核-巨噬細胞的極化狀態(tài)如何，與機體局部及全身免疫狀態(tài)相關性尚未見文獻報道。THP-1 是目前公認的可用于體外研究單核-巨噬細胞功能的細胞株，用 10 ～ 160 ng/ml 不等濃度的 PMA 刺激不同時間讓 THP-1 分化成M0 型巨噬細胞［9， 16］，再用 LPS 和 IFN-γ 或者IL-4 和 IL-13 分別刺激分化成 M1/M2 型巨噬細胞。機體感染結核菌之后，結核菌首先通過其特異性的抗原物質作用于單核細胞誘導各種免疫反應和炎癥反應。因此，本文試圖用結核特異性多肽直接作用于 THP-1 細胞株、結核患者胸水及血標本單核細胞，探討各刺激劑對 M1/M2 型單核-巨噬細胞極化是否有影響。初步試驗結果顯示，3 種標本得出一致的結果是 M1 型（CD14+/CD16+和CD14+CD16+CD86+）占優(yōu)勢。提示這些多肽或許更偏向于 M1 型誘導。但仍需要更多的試驗驗證。此外，體外的試驗不能完全反應體內真實情況，需進一步用結核患者病理組織 M1/M2 原位染色探討局部病灶中各型細胞數量和比例。

參考文獻

［1］ Krausgruber T， Blazek K， Smallie T， et al. IRF5 promotes inflammatory macrophage polarization and TH1-TH17 responses. Nat Immunol， 2011， 12（3）：231-238.

［2］ Satoh T， Takeuchi O， Vandenbon A， et al. The Jmjd3-Irf4 axis regulates M2 macrophage polarization and host responses against helminth infection. Nat Immunol， 2010， 11（10）：936-944.

［3］ Tanoue S， Chang LY， Li Y， et al. Monocyte-derived dendritic cells from cirrhotic patients retain similar capacity for maturation/activation and antigen presentation as those from healthy subjects. Cell Immunol，2015， 295（1）：36-45.

［4］ Mueller CK， Schultze-Mosgau S. Histomorphometric analysis of the phenotypical differentiation of recruited macrophages following subcutaneous implantation of an allogenous acellular dermal matrix. Int J Oral Maxillofac Surg， 2011， 40（4）：401-407.

［5］ Kasonga AE， Deepak V， Kruger MC， et al. Arachidonic acid and docosahexaenoic acid suppress osteoclast formation and activity in human CD14+ monocytes， in vitro. PLoS One， 2015， 10（4）：e0125145.

［6］ Boss M， Kemmerer M， Brüne B， et al. FABP4 inhibition suppresses PPARγ activity and VLDL-induced foam cell formation in IL-4-polarized human macrophages. Atherosclerosis， 2015， 240（2）：424-430.

［7］ Wynn TA， Barron L， Thompson RW， et al. Quantitative assessment of macrophage functions in repair and fibrosis. Curr Protoc Immunol，2011， Chapter 14：Unit14.22.

［8］ Chanput W， Mes JJ， Savelkoul HF， et al. Characterization of polarized THP-1 macrophages and polarizing ability of LPS and food compounds. Food Funct， 2013， 4（2）：266-276.

［9］ Genin M， Clement F， Fattaccioli A， et al. M1 and M2 macrophages derived from THP-1 cells differentially modulate the response of cancer cells to etoposide. BMC Cancer， 2015， 15：577.

［10］ Laskin DL. Macrophages and inflammatory mediators in chemical toxicity： a battle of forces. Chem Res Toxicol， 2009， 22（8）：1376-1385.

［11］ Boudjeltia KZ， Brohee D， Piro P， et al. Monocyte-platelet complexes on CD14/CD16 monocyte subsets： relationship with ApoA-I levels. A preliminary study. Cardiovasc Pathol， 2008， 17（5）：285-288.

［12］ Azeredo EL， Neves-Souza PC， Alvarenga AR， et al. Differential regulation of toll-like receptor-2， toll-like receptor-4， CD16 and human leucocyte antigen-DR on peripheral blood monocytes during mild and severe dengue fever. Immunology， 2010， 130（2）：202-216.

［13］ Sekerkova A， Krepsova E， Brabcova E， et al. CD14+CD16+ and CD14+CD163+ monocyte subpopulations in kidney allograft transplantation. BMC Immunol， 2014， 15：4.

［14］ Wang X， Kang FB， Wang GP， et al. Research progress of CD14+CD16+ subtypes monocytes. Immunol J， 2012， 28（10）：910-913. （in Chinese）王鑫， 康富標， 王桂平， 等. CD14+CD16+亞型單核細胞的研究進展. 免疫學雜志， 2012， 28（10）：910-913.

［15］ Rubio-Navarro A， Amaro Villalobos JM， Lindholt JS， et al. Hemoglobin induces monocyte recruitment and CD163-macrophage polarization in abdominal aortic aneurysm. Int J Cardiol， 2015，201：66-78.

［16］ Wei J， Besner GE. Besner M1 to M2 macrophage polarization in heparin-binding epidermal growth factor-like growth factor therapy for necrotizing enterocolitis. J Surg Res， 2015， 197（1）：126-138.

［17］ Schreiber T， Ehlers S， Heitmann L， et al. Autocrine IL-10 induces hallmarks of alternative activation in macrophages and suppresses antituberculosis effector mechanisms without compromising T cell immunity. J Immunol， 2009， 183（2）：1301-1312.

［18］ Redente EF， Higgins DM， Dwyer-Nield LD， et al. Differential polarization of alveolar macrophages and bone marrow-derived monocytes following chemically and pathogen-induced chronic lung inflammation. J Leukoc Biol， 2010， 88（1）：159-168.

Author Affiliations: Department of Microbiology， Zhongshan School of Medicine， Sun Yat-sen University， Ministry of Education Key Laboratory of Tropical Disease Control， Institute of Tuberculosis Control， Guangdong Provincial Department of Education Key Laboratory of Functional Molecules from Marine Microorganisms， Guangdong Provincial Research Center for Severe Infectious Disease Prevention and Control Technology， Guangzhou 510080， China （SHEN Dong-mei， YAO Ya-nan， LAI Xiao-min）；Guangzhou Chest Hospital， Guangzhou 510095， China （FANG Yi-min， SHEN Yan-ming， LIU Guo-biao）

www.cmbp.net.cnChin Med Biotechnol, 2016, 11(3):216-223

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The influence of the Mycobacterium tuberculosis （MTB）-specific peptides E6， E7 and C14 on the monocyte-macrophage polarization

SHEN Dong-mei， FANG Yi-min， SHEN Yan-ming， LIU Guo-biao， YAO Ya-nan， LAI Xiao-min

【Abstract】

ObjectiveTo explore the influence of Mycobacterium tuberculosis （MTB）-specific peptide to monocyte-macrophage polarizationby utilizing flow cytometry to investigate the expression of CD14/CD16/CD163 of the cells.

MethodsThe expressions of M1 （CD14+CD16+）/M2 （CD14+CD163+） of the monocytes （THP-1， and the monocytes from the hydrothorax and peripherial blood from tuberculosis （TB） patients） were detected by flow cytometry with 3 MTB-specific peptides as stimulants at the different time.

ResultsThe positive percentages of CD16/CD163 of THP-1 cell line treated with the MTB peptide E6 at the times 24 + 0 h， 24 + 24 h， 24 + 48 h， and 24 + 72 h were 16.85%/13.78%， 19.59%/15.68%， 18.14%/14.19%， 13.61%/11.47%， respectively. The MTB peptide E7 exerted effect similar to E6， but the MTB peptide C14 showed a less effect. After treated with E6 at 19 h， the positive percentages of CD14+CD16+of the monocytes of hydrothorax from 2 TB patients were 1.66% （No. 1 patient） and 4.37% （No. 2 patient）， as well as CD14+CD163+were 1.76% （No. 1 patient） and 2.82% （No. 2 patient）. The difference between the two types of cells was not very remarkable， but the difference seemed to be significant when addedanother detection mark CD86 to CD14+CD16+， and CD206 to CD14+CD163+， respectively. E7 and C14 had the similar corresponding effects on the polarization of monocytes of hydrothorax and peripherial blood as observed at THP-1 cell line.

Conclusion3 MTB-specific peptides， especially E6 and E7， can mainly induce THP-1 and the monocytes of hydrothorax and peripherial blood from TB patients towards the M1 macrophage polarization.

【Key words】Peptide；Leukemia， monocytic， acute；Mononuclear phagocyte system；Polarization

DOI：10.3969/j.issn.1673-713X.2016.03.004

基金項目：國家自然科學基金面上項目（81271779）；“十二五”防治傳染病科技重大專項分任務（2012ZX10004903-004-002）；廣東省自然科學基金（2014A030313725）；廣州市科創(chuàng)委產學研協(xié)同創(chuàng)新重大專項（2060404）

通信作者：賴小敏，Email：laixm@mail.sysu.edu.cn

收稿日期：2016-01-22

Corresponding Author:LAI Xiao-min， Email： laixm@mail.sysu.edu.cn