王永輝,楊瓊,徐輝明,高維強(qiáng)
(1上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬仁濟(jì)醫(yī)院,上海200217;2上海交通大學(xué)Med-X臨床干細(xì)胞研究中心)
?
4種化學(xué)小分子聯(lián)合誘導(dǎo)鼠胚胎成纖維細(xì)胞轉(zhuǎn)化為施旺細(xì)胞效果觀察
王永輝1,2,楊瓊1,2,徐輝明1,2,高維強(qiáng)1,2
(1上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬仁濟(jì)醫(yī)院,上海200217;2上海交通大學(xué)Med-X臨床干細(xì)胞研究中心)
目的觀察轉(zhuǎn)化生長因子-β抑制劑SB431542、骨形態(tài)發(fā)生蛋白抑制劑Noggin、腺苷酸環(huán)化酶抑制劑FSK、 組蛋白去乙?;敢种苿┒∷徕c聯(lián)合誘導(dǎo)鼠胚胎成纖維細(xì)胞(MEF)轉(zhuǎn)化為施旺細(xì)胞的效果。方法將孕13.5 d雌鼠處死后取胎鼠分離MEF細(xì)胞,分為觀察組和對照組;觀察組置于含10 ng/mL堿性成纖維細(xì)胞生長因子、20 ng/mL表皮細(xì)胞生長因子、 20 ng/mL膠質(zhì)細(xì)胞源性神經(jīng)營養(yǎng)因子、 5 μmol/L 全反式維甲酸、10 μmol/L SB431542、200 ng/mL Noggin、10 μmol/L FSK、0.2 mmol/L丁酸鈉的neurobasal培養(yǎng)基中誘導(dǎo)培養(yǎng),隔天換液,共誘導(dǎo)3周,對照組不處理。在倒置相差顯微鏡下觀察并記錄兩組轉(zhuǎn)化細(xì)胞的形態(tài),采用Q-PCR法檢測兩組施旺細(xì)胞標(biāo)志物S100β、人蛋白脂質(zhì)蛋白抗體(PLP)mRNA。結(jié)果誘導(dǎo)培養(yǎng)3周后可見部分MEF細(xì)胞變成梭形,胞體較小,兩側(cè)突起纖長,呈旋渦狀排列。觀察組S100β、PLP mRNA相對表達(dá)量分別為34.100±5.657、18.980±2.031,對照組分別為0.985±0.015、0.995±0.005(P均<0.05)。結(jié)論SB431542、Noggin、Forskolin和丁酸鈉聯(lián)合可誘導(dǎo)鼠胚胎MEF轉(zhuǎn)化為施旺細(xì)胞。
大鼠;胚胎;成纖維細(xì)胞;施旺細(xì)胞;轉(zhuǎn)化生長因子-β;骨形態(tài)發(fā)生蛋白;腺苷酸環(huán)化酶;組蛋白去乙?;?/p>
脊髓損傷是脊柱損傷最嚴(yán)重的并發(fā)癥,可導(dǎo)致?lián)p傷節(jié)段以下肢體嚴(yán)重功能障礙,目前臨床尚無有效治療方法。施旺細(xì)胞是周圍神經(jīng)主要的支持細(xì)胞,具有神經(jīng)傳導(dǎo)、神經(jīng)保護(hù)、神經(jīng)再生及神經(jīng)營養(yǎng)作用[1,2]。最新研究發(fā)現(xiàn),施旺細(xì)胞可促進(jìn)損傷脊髓神經(jīng)細(xì)胞修復(fù)[2~4],但具有再生困難等缺點。自體細(xì)胞直接誘導(dǎo)分化為施旺細(xì)胞是目前的研究熱點[5]。S100β和人蛋白脂蛋白抗體(PLP)是施旺細(xì)胞的特異表達(dá)基因。2014年12月~2015年12月,我們觀察了轉(zhuǎn)化生長因子-β(TGF-β)抑制劑SB431542、骨形態(tài)發(fā)生蛋白(BMP)抑制劑Noggin、腺苷酸環(huán)化酶(cAMP)抑制劑FSK、 組蛋白去乙酰化酶抑制劑丁酸鈉聯(lián)合誘導(dǎo)鼠胚胎成纖維細(xì)胞(MEF)轉(zhuǎn)化為施旺細(xì)胞的情況,旨在為脊髓損傷的細(xì)胞治療提供參考。現(xiàn)報告如下。
1.1材料孕13.5 d的C57B1/6的雌性大鼠5只,體質(zhì)量25~35 g,購自上海斯萊克公司;兔抗S100β單克隆抗體及兔抗PLP多克隆抗體均購自艾美捷公司,TAKARA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒及核酸凝膠染料(SBYR Green)、堿性成纖維細(xì)胞生長因子(bFGF)、表皮細(xì)胞生長因子(EGF)、膠質(zhì)細(xì)胞源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(GDNF),全反式維甲酸(RA)、SB431542、Noggin、FSK、丁酸鈉等材料購自R&D system和Sigma公司,其余儀器購自Applied Biosystems公司, 10 % 胎牛血清(FBS)和1%青霉素-鏈霉素(P-S)購自Life technology公司。
1.2MEF細(xì)胞的分離將孕13.5 d雌鼠處死后取胎鼠,根據(jù)文獻(xiàn)[6]方法分離MEF,去除胎鼠的脊髓以避免殘留的神經(jīng)干細(xì)胞及神經(jīng)元的干擾。用含有10 % FBS和1% P-S的DMEM培養(yǎng)基在37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)至第2代備用。
1.3細(xì)胞誘導(dǎo)培養(yǎng)取適量MEF,當(dāng)細(xì)胞融合至80%~90%時傳代至多聚賴氨酸預(yù)處理的培養(yǎng)皿和圓玻片上,第2天時吸出MEF培養(yǎng)基,PBS沖洗1次,置于含10 ng/mL bFGF、20 ng/mL EGF、 20 ng/mL GDNF、 5 μmol/L RA、10 μmol/L SB431542、200 ng/mL Noggin、10 μmmol/mL FSK、0.2 mmol/L丁酸鈉的neurobasal培養(yǎng)基中,37 ℃、5% CO2環(huán)境下誘導(dǎo)培養(yǎng),隔天換液,共誘導(dǎo)3周。
1.4細(xì)胞特性鑒定
1.4.1細(xì)胞形態(tài)觀察取適量細(xì)胞,用PBS洗3次;4%多聚甲醛固定15 min,3%牛血清白蛋白封閉 1 h,再用一抗4 ℃孵育過夜。PBS洗3~5次,然后用相應(yīng)的二抗室溫避光孵育1 h。PBS洗3~5次,DAPI孵育3 min。封片后在倒置相差顯微鏡下觀察,記錄轉(zhuǎn)化細(xì)胞的形態(tài)。
1.4.2細(xì)胞S100β、PLP mRNA檢測 采用Q-PCR法。取適量誘導(dǎo)3周的MEF細(xì)胞(觀察組)、方法1.2中分離的MEF細(xì)胞(對照組),PBS沖洗1次,提取總RNA,反轉(zhuǎn)錄生成1 μg cDNA,所有操作嚴(yán)格按照使用說明書進(jìn)行。利用ABI PRISM 7900熒光實時定量PCR儀對擴(kuò)增數(shù)據(jù)進(jìn)行收集,并利用ABI公司的SDS2.3軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。以GAPDH為內(nèi)參對照,采用ΔCt法計算兩組細(xì)胞S100β、PLP mRNA相對表達(dá)量,實驗重復(fù)3次。
誘導(dǎo)培養(yǎng)3周后,可見部分MEF細(xì)胞變成梭形,胞體較小,兩側(cè)突起纖長,呈旋渦狀排列。觀察組S100β、PLP mRNA相對表達(dá)量分別為34.100±5.657、18.980±2.031,對照組分別為0.985±0.015、0.995±0.005,觀察組S100β、PLD mRNA相對表達(dá)量均高于對照組,P均<0.05。
神經(jīng)細(xì)胞再生困難,多能干細(xì)胞[包括胚胎干細(xì)胞和誘導(dǎo)型多能干細(xì)胞(iPS)]分化、體細(xì)胞轉(zhuǎn)分化是目前研究熱點。施旺細(xì)胞主要分布在周圍神經(jīng)系統(tǒng)中神經(jīng)元的突起周圍,細(xì)胞形狀不規(guī)則;其是周圍神經(jīng)纖維的鞘細(xì)胞,可反復(fù)包裹周圍神經(jīng)纖維的軸突形成髓鞘。研究發(fā)現(xiàn),施旺細(xì)胞外表面有一層基膜,在周圍神經(jīng)再生中起重要作用[7, 8]。研究發(fā)現(xiàn),脂肪干細(xì)胞[9]、間充質(zhì)干細(xì)胞[10]和iPS[11]均可誘導(dǎo)分化為施旺細(xì)胞,但分化效率低,且iPS具有高致瘤性[12]。Vierbunchon等[6]通過病毒載體表達(dá)轉(zhuǎn)錄因子Ascl1、Brn2和Myt1l成功將MEF轉(zhuǎn)分化為神經(jīng)細(xì)胞,但病毒載體可導(dǎo)致基因組整合,染色體不穩(wěn)定,最終導(dǎo)致細(xì)胞癌變。既往研究發(fā)現(xiàn),化學(xué)小分子可將人體細(xì)胞直接轉(zhuǎn)分化為神經(jīng)元[16]和神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞[5]。Thoma等[5]使用多種化學(xué)小分子成功將成纖維細(xì)胞轉(zhuǎn)化為神經(jīng)嵴細(xì)胞, 然后再進(jìn)一步分化為施旺細(xì)胞。我們前期研究成功將MEF轉(zhuǎn)分化為GABA能神經(jīng)元[12,13]。
在施旺細(xì)胞的發(fā)育過程中,TGF-β會導(dǎo)致施旺細(xì)胞凋亡[17]。有實驗證明,在神經(jīng)元與施旺細(xì)胞共培養(yǎng)的體系中,TGF-β1可抑制樹突與施旺細(xì)胞之間的信號傳導(dǎo),最終抑制施旺細(xì)胞增殖,抑制髓鞘的形成[18]。因此,本研究采用TGF-β抑制劑SB431542來抑制施旺細(xì)胞凋亡、促進(jìn)施旺細(xì)胞增殖及髓鞘形成。而Noggin可通過抑制BMP,促進(jìn)神經(jīng)干細(xì)胞的增殖[19,20]。cAMP在抑制施旺細(xì)胞的增殖和分化成髓鞘細(xì)胞的過程中均起重要作用[21],而FSK可通過抑制其來降低cAMP水平;丁酸鈉是將成纖維細(xì)胞轉(zhuǎn)分化為施旺細(xì)胞誘導(dǎo)培養(yǎng)基中非常重要的成分[5]。另外,我們的培養(yǎng)體系中還添加了生長因子RA,原因是RA在神經(jīng)系統(tǒng)形成、神經(jīng)元的特化以及軸突生長過程中均起重要作用[22]。既往研究發(fā)現(xiàn)施旺細(xì)胞表面存在RA受體,提示RA在病理情況下和軸突的生長及再生發(fā)揮重要作用。此外,bFGF、GDNF和EGF均可促進(jìn)神經(jīng)系統(tǒng)髓鞘形成[23]。
綜上所述,SB431542、Noggin、FSK和丁酸鈉聯(lián)合可誘導(dǎo)鼠胚胎MEF轉(zhuǎn)化為施旺細(xì)胞,但其具體機(jī)制尚有待于進(jìn)一步研究。
[1] Jessen KR, Mirsky R. The origin and development of glial cells in peripheral nerves[J]. Nat Rev Neuro Sci, 2005,6(9):671-682.
[2] Jessen KR, Mirsky R, Lloyd AC. Schwann Cells: Development and Role in Nerve Repair[J]. Cold Spr Har Persp Bio, 2015,7(7):020487.
[3] Zhang SQ, Wu MF,Liu JB, et al. Transplantation of human telomerase reverse transcriptase gene-transfected Schwann cells for repairing spinal cord injury[J]. Neural Rege Res, 2015,10(12):2040-2047.
[4] Namgung U. The role of Schwann cell-axon interaction in peripheral nerve regeneration[J]. Cells Tis Org, 2014,200(1):6-12.
[5] Thoma E, Merkl C, Heckel T, et al. Chemical conversion of human fibroblasts into functional schwann cells[J]. Stem Cell Res, 2014,3(4):539-547.
[6] Vierbunchon T, Ostermeier A, Pang ZP, et al. Direct conversion of fibroblasts to functional neurons by defined factors[J]. Nature, 2010,463(7284):1035-1041.
[7] Faroni A, Smith RJP, Lu L, et al. Human schwannlike cells derived from adiposederived mesenchymal stem cells rapidly dedifferentiate in the absence of stimulating medium[J]. Europ J Neuro Sci, 2016,43(3):417-430.
[8] Gao S, Zheng Y, Cai Q, et al. Different methods for inducing adipose-derived stem cells to differentiate into Schwannlike cells[J]. Arch Med Sci AMS, 2015,11(4):886-892.
[9] Zhu H, Yang A, Du J, et al. Basic fibroblast growth factor is a key factor that induces bone marrow mesenchymal stem cells towards cells with Schwann cell phenotype[J]. Neur Lett, 2013,559(5):82-87.
國家自然科學(xué)基金資助項目(31571399)。
高維強(qiáng)(E-mail: gao.weiqiang@sjtu.edu.cn)
10.3969/j.issn.1002-266X.2016.18.010
R329.2
A
1002-266X(2016)18-0032-03