鄧 瑩,羅 雯
(南昌師范學(xué)院生物系,江西南昌 330032)
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意大利生菜組織培養(yǎng)體系的建立
鄧 瑩,羅 雯*
(南昌師范學(xué)院生物系,江西南昌 330032)
摘要[目的]建立意大利生菜組織培養(yǎng)體系。[方法]以意大利生菜(LactucasativaL. var.ramosaHort.)種子為試驗(yàn)材料,用不同有效氯含量(0、0.5%、1.0%、2.0%、4.0%)的漂白水滅菌,于MS培養(yǎng)基上培養(yǎng)無(wú)菌苗。取4~5 d苗齡的無(wú)菌幼苗子葉,在添加不同濃度激素的MS培養(yǎng)基上誘導(dǎo)愈傷組織,并進(jìn)一步誘導(dǎo)生芽、生根,篩選最佳誘導(dǎo)激素配比及激素濃度。[結(jié)果]意大利生菜種子經(jīng)有效氯含量1.0%的漂白水處理,于MS培養(yǎng)基上培養(yǎng)可獲得意大利生菜無(wú)菌苗。無(wú)菌幼苗子葉在MS+0.5 mg/L 6-BA+0.20 mg/L NAA+30 g/L蔗糖+7 g/L瓊脂的培養(yǎng)基上,可以得到理想的意大利生菜愈傷組織;在MS+0.25 mg/L 6-BA+0.20 mg/L NAA+30 g/L蔗糖+7 g/L瓊脂的培養(yǎng)基上,最有利于意大利生菜愈傷組織不定芽的發(fā)生且對(duì)后期生根有良好的誘導(dǎo)作用。[結(jié)論]配合使用一定濃度的6-BA和NAA可有效建立意大利生菜組織培養(yǎng)再生體系,為進(jìn)一步建立意大利生菜遺傳轉(zhuǎn)化體系奠定基礎(chǔ)。
關(guān)鍵詞意大利生菜;子葉;組織培養(yǎng)
生菜屬于菊科Compostiae萵苣屬Lactuca,是一種含有多種營(yíng)養(yǎng)元素,不經(jīng)加工即可食用的蔬菜[1]。同時(shí),生菜組培再生率和轉(zhuǎn)化率均較高,可以作為一種良好的植物生物反應(yīng)器[2-3]。借助轉(zhuǎn)基因技術(shù),能將生菜開(kāi)發(fā)成一種有利的功能性蔬菜[4]。轉(zhuǎn)基因生菜最早于1987年獲得,而建立高效的生菜轉(zhuǎn)基因遺傳轉(zhuǎn)化體系的前提條件是建立生菜組織培養(yǎng)再生體系[5]。筆者以生長(zhǎng)周期更短的意大利生菜(LactucasativaL.var.ramosaHort.),為試驗(yàn)材料,對(duì)其愈傷組織誘導(dǎo)和不定芽發(fā)生的最適激素配比進(jìn)行了篩選,建立意大利生菜組織培養(yǎng)體系,為進(jìn)一步建立意大利生菜遺傳轉(zhuǎn)化體系奠定基礎(chǔ)。
1材料與方法
1.1材料意大利生菜種子廣西橫縣子龍種業(yè)有限公司。
1.2試劑藍(lán)月亮漂白水(有效氯含量4.0%);植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)激素6-BA、NAA(國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司產(chǎn)品);MS培養(yǎng)基。
1.3方法
1.3.1無(wú)菌苗培養(yǎng)條件的篩選。將適量的意大利生菜種子用75%乙醇消毒30 s,無(wú)菌蒸餾水沖洗2次,每次3 min。將種子分別放入不同濃度的漂白水(有效氯含量分別為0、0.5%、1.0%、2.0%、4.0%)消毒15 min,再用無(wú)菌蒸餾水沖洗3次,每次3~4 min,瀝干水分后點(diǎn)種于MS培養(yǎng)基上,于光照培養(yǎng)室中培養(yǎng),溫度(25±1)℃,光照強(qiáng)度2 000 lx,光照周期16 h/d,5 d后觀察種子萌發(fā)情況。
1.3.2愈傷組織誘導(dǎo)條件的篩選。愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基為MS基本培養(yǎng)基,添加30 g/L蔗糖,7 g/L瓊脂及不同濃度配比的6-BA和NAA,pH 5.8,121 ℃滅菌30 min。6-BA濃度分別為0.1、0.2、0.3、0.4、0.5 mg/L,NAA濃度分別為0.05、0.10、0.15、0.20 mg/L。取苗齡5 d的生菜無(wú)菌苗,沿分生點(diǎn)處切取生菜的兩片子葉,分別接種于附加不同濃度激素的愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基上,葉片正面朝上,保證切口與培養(yǎng)基充分接觸,于光照培養(yǎng)室中培養(yǎng),溫度(25±1)℃,光照強(qiáng)度2 000 lx,光照周期16 h/d,14 d后記錄愈傷組織形成情況并統(tǒng)計(jì)其誘導(dǎo)率。
1.3.3愈傷組織分化產(chǎn)生不定芽的誘導(dǎo)條件篩選。挑選健康的愈傷組織從外植體上切下,轉(zhuǎn)移至不定芽誘導(dǎo)培養(yǎng)基上。誘導(dǎo)培養(yǎng)基為MS基本培養(yǎng)基,添加30 g/L蔗糖,7 g/L瓊脂及不同濃度配比的6-BA和NAA,pH 5.8,121 ℃滅菌30 min。6-BA濃度分別為0.15、0.25、0.35、0.45 mg/L,NAA濃度分別為0.10、0.15、0.20 mg/L。不定芽誘導(dǎo)在光照培養(yǎng)室中進(jìn)行,溫度(25±1)℃,光照強(qiáng)度2 000 lx,光照周期16 h/d,14 d后統(tǒng)計(jì)不定芽數(shù)目和誘導(dǎo)率。
1.3.4再生苗生根培養(yǎng)。將長(zhǎng)勢(shì)良好的再生芽接種于MS基本培養(yǎng)基上,于光照培養(yǎng)室中培養(yǎng),溫度(25±1)℃,光照強(qiáng)度2 000 lx,光照周期16 h/d。6~12 d后觀察意大利生菜再生苗生根情況。
2結(jié)果與分析
2.1無(wú)菌苗培養(yǎng)條件由表1可知,意大利生菜種子萌發(fā)率隨著漂白水有效氯含量的升高先升高后降低。當(dāng)有效氯含量低于1.0%時(shí),由于消毒不徹底,雜菌的污染也會(huì)抑制種子的萌發(fā)。當(dāng)有效氯含量高于1.0%時(shí),有效氯含量越高對(duì)種子萌發(fā)的抑制作用越明顯。因此,使用有效氯含量為1.0%的漂白水處理種子,消毒效果良好且無(wú)雜菌生長(zhǎng),種子的萌發(fā)率最高(達(dá)10.7%)。
表1培養(yǎng)5 d后意大利生菜無(wú)菌苗生長(zhǎng)情況
Table 1The growth of lettuce aseptic seedlings after 5 days of culture
漂白水(有效含氯量)Bleach(availablechlorine)∥%萌發(fā)率Seedlingrate∥%無(wú)菌苗Asepticseedlinggrowth雜菌Mixedbacteriagrowth012.8++++0.548.7+++1.070.7+++-2.060.7+-4.051.3+-
注 :-無(wú)生長(zhǎng);+生長(zhǎng)數(shù)量較少; ++生長(zhǎng)數(shù)量中等 ;+++生長(zhǎng)數(shù)量較多。
Note: -,+,++,+++ stand for no growth,small growth quantity,medium growth quantity and more growth quantity,respectively.
2.2愈傷組織誘導(dǎo)條件由表2可知,當(dāng)6-BA濃度為0.5 mg/L、NAA濃度為0.20 mg/L時(shí),愈傷組織出愈率達(dá)100.0%,愈傷組織高等發(fā)生,無(wú)褐化和玻璃化現(xiàn)象,是愈傷組織誘導(dǎo)的最適培養(yǎng)基。部分愈傷組織誘導(dǎo)結(jié)果見(jiàn)圖1。
2.3愈傷組織分化產(chǎn)生不定芽的培養(yǎng)條件由表3可知,在所選濃度范圍內(nèi),當(dāng)6-BA和NAA濃度較低時(shí),對(duì)不定芽的發(fā)生影響不大,發(fā)生頻率均較低;而含有0.25 mg/L 6-BA和0.20 mg/L NAA的培養(yǎng)基,以及含有0.35 mg/L 6-BA和0.15 mg/L NAA的培養(yǎng)基對(duì)不定芽的誘導(dǎo)作用均較強(qiáng),不定芽的發(fā)生頻率高,生長(zhǎng)迅速,無(wú)玻璃化發(fā)生,是不定芽分化誘導(dǎo)的最適培養(yǎng)基。部分不定芽分化誘導(dǎo)結(jié)果見(jiàn)圖2。
表2不同濃度6-BA和NAA配比對(duì)意大利生菜愈傷組織誘導(dǎo)的影響
Table 2Effects of different concentrations of 6-BA and NAA ratio on lettuce callus
培養(yǎng)基編號(hào)SerialNo.6-BAmg/LNAAmg/L出愈率Recoveryrate∥%愈傷組織Callus褐化Browning玻璃化Vitrification10.10.0580.0++-20.10.1081.8+++++30.10.1583.3+++++40.10.2077.8++-50.20.0541.7++-60.20.1027.3++++++70.20.15100.0++--80.20.2053.8+++-90.30.05100.0+++-100.30.1063.6++--110.30.1541.7++++120.30.2054.5+++-130.40.05100.0++++-140.40.1091.7+++--150.40.1533.3++++160.40.2027.2++++++170.50.0550.0+++++180.50.1050.0++-190.50.1550.0+-+200.50.20100.0+++--
注:-不發(fā)生;+低等發(fā)生;++中等發(fā)生;+++高等發(fā)生。
Note:-,+,++ and +++ stand for no occurrence,low occurrence,medium occurrence and higher occurrence,respectively.
2.4再生苗生根培養(yǎng)條件在MS基本培養(yǎng)基上培養(yǎng)6~12 d后,生根較早、生根數(shù)量較多的是添加0.25 mg/L 6-BA和0.2 mg/L NAA培養(yǎng)基的誘導(dǎo)芽,其次是添加0.35 mg/L 6-BA和0.15 mg/L NAA培養(yǎng)基的誘導(dǎo)芽。說(shuō)明前期芽的誘導(dǎo)培養(yǎng)基激素濃度對(duì)后期生根有一定影響。
圖1 愈傷組織誘導(dǎo)結(jié)果Fig.1 The induction results of callus
培養(yǎng)基編號(hào)SerialNo.6-BAmg/LNAAmg/L不定芽Sprouting玻璃化Vitrification培養(yǎng)基編號(hào)SerialNo.6-BAmg/LNAAmg/L不定芽Sprouting玻璃化Vitrification10.150.10+-70.350.10+-20.150.15+-80.350.15+++-30.150.20+-90.350.20++40.250.10++-100.450.10+-50.250.15++110.450.15++-60.250.20+++-120.450.20+-
注:-不發(fā)生;+低等發(fā)生;++中等發(fā)生;+++高等發(fā)生。
Note:-,+,++ and +++ stand for no occurrence,low occurrence,medium occurrence and higher occurrence,respectively.
圖2 不定芽誘導(dǎo)結(jié)果Fig.2 The induction results of adventitious buds
3結(jié)論與討論
在植物基因轉(zhuǎn)化方式中,以農(nóng)桿菌介導(dǎo)的細(xì)胞核基因轉(zhuǎn)化技術(shù)最為成熟。生菜屬于菊科植物,是農(nóng)桿菌的天然宿主。研究者對(duì)多種基因型生菜進(jìn)行了誘導(dǎo)、分化及成苗最適條件研究。以散葉生菜大速生(LactucasativavarcapatataL.)子葉為試材,不同研究者獲得的最適誘導(dǎo)激素濃度不同,趙吉強(qiáng)等[2]在附加0.10 mg/L 6-BA及0.05 mg/L NAA的MS培養(yǎng)基上獲得了最佳誘導(dǎo)生芽效果;而其他研究者則分別在附加1.5 mg/L 6-BA及0.2 mg/L IAA或0.5 mg/L 6-BA及0.5 mg/L IAA的MS培養(yǎng)基上獲得了最佳誘導(dǎo)生芽效果[1,3]??梢?jiàn),在不同試驗(yàn)條件下,即便是同種基因型的生菜分化誘導(dǎo)的最適激素濃度也會(huì)有明顯差異。與其他基因型生菜相比,意大利生菜具有生長(zhǎng)周期短,一年可收獲四季的優(yōu)點(diǎn)。該研究以意大利生菜為試材,研究了愈傷組織誘導(dǎo)和不定芽發(fā)生的最佳條件,建立了意大利生菜組織培養(yǎng)再生體系,與其他研究獲得的最佳誘導(dǎo)條件顯著不同[5]。該研究表明,意大利生菜愈傷組織誘導(dǎo)激素條件為0.5 mg/L 6-BA及0.20 mg/L NAA;不定芽誘導(dǎo)激素條件為0.25 mg/L 6-BA和0.20 mg/L NAA。在此基礎(chǔ)上,可進(jìn)一步研究農(nóng)桿菌介導(dǎo)葉盤(pán)法轉(zhuǎn)化意大利生菜的最佳條件,為構(gòu)建功能性生菜提供可行途徑。
參考文獻(xiàn)
[1] 朱春燕,雷建軍,周浩,等.優(yōu)化皺葉生菜高頻率再生體系的研究[J].現(xiàn)代預(yù)防醫(yī)學(xué),2008,35(5):870-878.
[2] 趙吉強(qiáng),李霞,李麗霞,等.生菜遺傳轉(zhuǎn)化受體系統(tǒng)的建立及鮭魚(yú)降鈣素基因的導(dǎo)入[J].煙臺(tái)大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)與工程版),2004,17(2):116-121.
[3] 鄧小莉,周巖,常景玲.生菜遺傳轉(zhuǎn)化體系的建立及轉(zhuǎn)基因研究[J].云南植物研究, 2007,29(1):98-102.
[4] 劉思言,姚丹,關(guān)淑艷,等.生菜遺傳轉(zhuǎn)化受體體系的建立[J].吉林蔬菜,2011(6):98-99.
Establishment of Tissue Culture System ofLactucasativaL. var.ramosaHort.
DENG Ying,LUO Wen*(Biology Department,Nanchang Normal University,Nanchang,Jiangxi 330032)
Abstract[Objective] To establish the tissue culture system forLactucasativaL. var.ramosaHort. [Method]LactucasativaL. var.ramosaHort. seeds were disposed with different concentration javelle (0,0.5%,1.0%,2.0%,4.0%)for sterilization,and aseptic seedlings were cultured on MS medium. Taking cotyledons from the 4-5 days of seedlings as explants,the ideal sorts and concentrations of plant hormones were tested for induction of calluses,buds and roots seperately. [Result]LactucasativaL. var.ramosaHort. seeds were disposed with 1.0% available chlorine javelle and aseptic seedlings were gotten on MS culture medium. Taking cotyledons from the 4-5 days of seedlings as explants,the ideal calluses were induced and generated on the medium of MS medium supplied with 0.5 mg/L 6-BA,0.20 mg/L NAA,30 g/L sucrose and 7 g/L agar. The most in favor medium for bud differentiation from calluses were MS medium supplied with 0.25 mg/L 6-BA,0.20 mg/L NAA,30 g/L sucrose and 7 g/L agar,which was also beneficial for rooting subsequently. [Conclusion] The appropriate concentration of 6-BA and NAA was effective forLactucasativatissue culture,and lay a foundation for establishing geetic transformation system ofLactucaSativeL. var.ramosaHort.
Key wordsLactucasativaL. var.ramosaHort.; Cotyledon; Tissue culture
收稿日期2015-12-18
作者簡(jiǎn)介鄧瑩(1992- ),女,江西贛州人,本科生,專(zhuān)業(yè):生物科學(xué)。*通訊作者,教授,博士,從事微生物學(xué)研究。
基金項(xiàng)目江西省自然科學(xué)基金項(xiàng)目(20151BAB205063)。
中圖分類(lèi)號(hào)S 636.2
文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼A
文章編號(hào)0517-6611(2016)02-181-03