孫冰沁,秦可欣,王桂榮,何國慶,*

(1.浙江大學(xué)生物系統(tǒng)工程與食品科學(xué)學(xué)院,浙江杭州 310058;2.哈爾濱商業(yè)大學(xué)食品工程學(xué)院,黑龍江哈爾濱 150076;3.杭州市原種場,浙江杭州 311115)

基于油酸誘導(dǎo)的高產(chǎn)三萜靈芝菌絲體發(fā)酵條件優(yōu)化

孫冰沁1,秦可欣2,王桂榮3,何國慶1,*

(1.浙江大學(xué)生物系統(tǒng)工程與食品科學(xué)學(xué)院,浙江杭州 310058;2.哈爾濱商業(yè)大學(xué)食品工程學(xué)院,黑龍江哈爾濱 150076;3.杭州市原種場,浙江杭州 311115)

本文對(duì)油酸促進(jìn)靈芝菌絲體高產(chǎn)靈芝三萜發(fā)酵條件進(jìn)行了優(yōu)化,旨在提高三萜這一具有特殊的生物活性且對(duì)人體有益物質(zhì)的產(chǎn)量。實(shí)驗(yàn)進(jìn)行了碳源、氮源等單因素的篩選,利用CCD實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)對(duì)培養(yǎng)基進(jìn)行優(yōu)化,以及對(duì)發(fā)酵條件單因素進(jìn)行了優(yōu)化。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,促進(jìn)靈芝菌絲體高產(chǎn)靈芝三萜的最優(yōu)結(jié)果為:培養(yǎng)基成分為可溶性淀粉3.4%、魚蛋白胨0.72%、KH2PO40.3%、MgSO40.15%、VB10.005%(m/v),pH5.5,在發(fā)酵培養(yǎng)第0 d加油酸4.38%(v/v);裝液量為100 mL,接種量為10%(v/v),發(fā)酵天數(shù)為9 d,胞內(nèi)三萜產(chǎn)量達(dá)到(282.75±3.76)mg/100 mL。該方法不僅大幅度提高了三萜產(chǎn)量,對(duì)于靈芝的工業(yè)化生產(chǎn)也有重要意義。

靈芝菌絲體,三萜,發(fā)酵條件,響應(yīng)面

靈芝(Ganodermalucidum)是一種大型藥用真菌,具有重要的保健和藥用價(jià)值,在我國有著悠久的應(yīng)用歷史[1]。現(xiàn)代研究表明,靈芝中含有較多的功效成分,包括多糖類、三萜類、核苷類、幽醇類、生物堿類、吠喃衍生物、氨基酸多肽類、微量元素、脂肪酸等物質(zhì)[2-6]。而靈芝三萜則是靈芝中主要的生物活性成分[7]。靈芝三萜具有保肝、抗腫瘤、抗HIV-Ⅰ、HIV-Ⅱ病毒酶活性、抑制組胺釋放、抑制膽固醇合成[8-12]等生物活性,因此靈芝三萜的生產(chǎn)研究具有重要的意義[13]。

目前研究表明,茉莉酸甲酯、苯巴比妥、阿司匹林、銅離子和鈣離子都能夠誘導(dǎo)靈芝三萜合成[14]。但是靈芝產(chǎn)品作為一種食品,必須考慮其安全性和經(jīng)濟(jì)性。而油酸作為一種單不飽和脂肪酸,存在于動(dòng)植物體內(nèi),具有食用安全性[15],不僅可以誘導(dǎo)靈芝三萜合成,而且價(jià)格低廉,是一個(gè)良好的選擇[16]。本研究在添加油酸誘導(dǎo)靈芝三萜產(chǎn)生的前提下,優(yōu)化發(fā)酵條件,大幅提高靈芝三萜產(chǎn)量,有利于高產(chǎn)三萜靈芝菌絲的工業(yè)化生產(chǎn)。

本文對(duì)油酸促進(jìn)靈芝菌絲體高產(chǎn)靈芝三萜發(fā)酵條件進(jìn)行了優(yōu)化,實(shí)驗(yàn)進(jìn)行了碳源、氮源等單因素的篩選,利用central composite design(CCD)實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)對(duì)培養(yǎng)基進(jìn)行優(yōu)化,以及對(duì)發(fā)酵條件單因素進(jìn)行了優(yōu)化。其中CCD實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)的優(yōu)點(diǎn)有:實(shí)驗(yàn)所得的信息量大且直觀,適合于探索性的實(shí)驗(yàn)研究;所需要的實(shí)驗(yàn)次數(shù)與費(fèi)用并不大,有較高的實(shí)驗(yàn)精度,不僅具有篩選作用還具有預(yù)測指導(dǎo)作用,在實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)中更具優(yōu)勢。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

美國靈芝(赤芝) 由浙江大學(xué)農(nóng)業(yè)與生物技術(shù)學(xué)院陳再鳴教授饋贈(zèng);葡萄糖、磷酸二氫鉀、無水硫酸鎂、維生素B1、瓊脂、蔗糖、乳糖、可溶性淀粉、牛肉浸膏、酵母浸出粉、冰醋酸、高氯酸、氫氧化鈉 均為分析純,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;香草醛 Sigma-Aldrich,USA;魚蛋白胨 江蘇南通東海龍生生物制品有限公司;牛骨蛋白胨 生工生物工程(上海)股份有限公司;齊墩果酸(purity≥98%) 阿拉丁試劑(上海)有限公司;斜面培養(yǎng)基 PDA 4.5%,瓊脂1.7%,KH2PO40.3%,MgSO40.15%,VB10.005%(m/v);種子培養(yǎng)基:PDB 3.5%,蛋白胨0.5%,酵母浸出粉0.3%,KH2PO40.3%,MgSO40.15%,VB10.005%(m/v),pH5.5。

MULTISKAN GO新一代全波長酶標(biāo)儀 Thermo,USA;JY96-IIN超聲波細(xì)胞粉碎機(jī) 寧波新芝生物科技股份有限公司;離心機(jī)DD-5M 湘儀離心機(jī)儀器有限公司;超聲波清洗器JP-040S 深圳市潔盟清洗設(shè)備有限公司;全溫度恒溫?fù)u床ZHWY-2102 上海智城分析儀器制造有限公司;超凈工作臺(tái)SW-CJ-1D 蘇州蘇潔凈化設(shè)備公司。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 菌種培養(yǎng) 取經(jīng)試管斜面培養(yǎng)的菌株,挑取4～5塊1cm2菌絲塊接種到種子培養(yǎng)基中,種子培養(yǎng)基裝在容量為250 mL的錐形瓶中,每瓶內(nèi)裝100 mL,置28 ℃搖床,180 r/min振蕩培養(yǎng)8 d[17],供實(shí)驗(yàn)作種子用[18]。然后按10%(v/v)接種量將種子液接種到發(fā)酵培養(yǎng)基中(裝液量同種子培養(yǎng)基),并在發(fā)酵初期添加一定體積分?jǐn)?shù)的油酸,于28 ℃,180 r/min培養(yǎng)6 d。

1.2.2 菌絲生物量(Mycelia Biomass)的測定 將菌株按照上述培養(yǎng)方法進(jìn)行發(fā)酵培養(yǎng),發(fā)酵6 d后,取適量菌絲加水混勻后進(jìn)行抽濾,分離菌絲體和發(fā)酵液,再將獲得的菌絲體于60 ℃干燥至恒重,計(jì)算各菌株的生物量(以菌絲體干重g/100 mL發(fā)酵液計(jì))[19]。

1.2.3 靈芝菌株液體發(fā)酵過程中胞內(nèi)三萜(Intracellular Triterpenoids IT)產(chǎn)量的測定 采用超聲波提取方法:將靈芝菌絲用95%(v/v)乙醇清洗,去除上面附著的油酸,離心,收集菌絲,取適量菌絲按1 g/50 mL加入95%(v/v)乙醇并用細(xì)胞破碎儀破碎4 min,再置于超聲波清洗機(jī)中,60 ℃,400 W下提取1 h,并重復(fù)一次,合并上清液,定容后待測[20]。其三萜含量采用香草醛-高氯酸方法測定。

三萜產(chǎn)量(mg/100 mL)=每克菌絲胞內(nèi)三萜含量(mg/g)×菌絲生物量(g/100 mL)

(1)

香草醛-高氯酸測定方法:取待測樣品溶液或樣品稀釋液0.1 mL于試管中,70℃加熱揮干溶劑,再加入5%(m/v)香草醛冰醋酸溶液0.2 mL,高氯酸0.5 mL,混勻后于60℃水浴中保溫20 min,取出后置于冷水中10 min,最后加入冰醋酸5 mL,于550 nm下測定吸光值[21]。

1.2.4 靈芝液體發(fā)酵培養(yǎng)基的優(yōu)化 以三萜產(chǎn)量為主要指標(biāo),菌絲生物量為次要指標(biāo),對(duì)靈芝液體發(fā)酵培養(yǎng)基進(jìn)行優(yōu)化。

1.2.4.1 碳源及碳源濃度篩選 首先進(jìn)行單因素篩選。本文選取了葡萄糖,蔗糖,麥芽汁,玉米粉,乳糖,可溶性淀粉6個(gè)碳源進(jìn)行篩選,篩選時(shí)保持其余條件不變,分別為魚蛋白胨0.5%、KH2PO40.3%、MgSO40.15%、VB1 0.005%(m/v),pH5.5,在發(fā)酵培養(yǎng)第0 d加油酸3%(v/v);裝液量為100 mL/250 mL,接種量為10%(v/v),發(fā)酵天數(shù)為6 d。選出最優(yōu)碳源后進(jìn)行濃度篩選,分別選取碳源濃度為1%、2%、3%、4%、5%、6%、7%進(jìn)行篩選,得出最優(yōu)碳源濃度。

1.2.4.2 氮源及氮源濃度篩選 本文選取了豆粕汁,牛肉膏,酵母粉,麩皮汁,魚蛋白胨,牛骨蛋白胨6個(gè)氮源進(jìn)行篩選,篩選時(shí)保持其余條件不變,分別為葡萄糖2%、KH2PO40.3%、MgSO4 0.15%、VB1 0.005%(m/v),pH5.5,在發(fā)酵培養(yǎng)第0 d加油酸3%(v/v);裝液量為100 mL/250 mL,接種量為10%(v/v),發(fā)酵天數(shù)為6d。選出最優(yōu)氮源后進(jìn)行氮源濃度后進(jìn)行濃度篩選,分別選取氮源濃度為0.5%、1%、1.5%、2%、2.5%、3%、3.5%進(jìn)行篩選,得出最優(yōu)氮源濃度。

1.2.4.3 最適pH篩選 再進(jìn)行最適pH的篩選。本文選取了4.5、5、5.5、6、6.5、7、7.5這7個(gè)不同的pH進(jìn)行篩選,篩選時(shí)碳源、氮源為之前篩選出的最優(yōu)值,其余條件不變。

1.2.4.4 油酸添加量與添加時(shí)間篩選 為了確定靈芝液體發(fā)酵過程中油酸最佳的添加時(shí)間與添加量,選取3個(gè)不同的添加時(shí)間:接種當(dāng)天(即發(fā)酵第0 d),發(fā)酵第1 d,發(fā)酵第2 d,選取5種不同體積分?jǐn)?shù)(1%、2%、3%、4%、5%),同時(shí)進(jìn)行不添加油酸的對(duì)照實(shí)驗(yàn),來篩選油酸最佳的添加時(shí)間與添加量。篩選時(shí)碳源、氮源、pH為之前篩選出的最優(yōu)值,其余條件不變。

1.2.4.5 響應(yīng)面法優(yōu)化靈芝液體發(fā)酵培養(yǎng)基 再采用CCD實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)優(yōu)化靈芝液體發(fā)酵培養(yǎng)基,根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果確定各變量的最低、最高水平,CCD實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)因素水平表如表1所示。

1.2.5 靈芝液體發(fā)酵條件的篩選

1.2.5.1 裝液量(通氣量)的篩選 本文選取了50、75、100、125、150 mL 5個(gè)不同的裝液量(通氣量)進(jìn)行篩選,篩選時(shí)培養(yǎng)基配方為1.2.4得出的最優(yōu)配方,接種量為10%(v/v),發(fā)酵天數(shù)為6 d,各條件保持不變。

1.2.5.2 接種量的篩選 本文選取了5%、7.5%、10%、12.5%、15% 5個(gè)不同的接種量進(jìn)行篩選,篩選時(shí)培養(yǎng)基配方同上,裝液量(通氣量)為之前選出的最優(yōu)值,發(fā)酵天數(shù)為6 d,各條件均保持不變。

1.2.5.3 發(fā)酵天數(shù)的篩選 本文對(duì)靈芝接種后發(fā)酵12 d過程中三萜產(chǎn)量與生物量變化進(jìn)行檢測,得出其變化曲線,從而篩選出靈芝發(fā)酵最優(yōu)時(shí)間。

1.3 數(shù)據(jù)處理

使用Origin和Design Expert軟件處理數(shù)據(jù)并進(jìn)行誤差分析。

2 結(jié)果與討論

2.1 靈芝液體發(fā)酵培養(yǎng)基的優(yōu)化

2.1.1 碳源及碳源濃度的篩選 本文選取了葡萄糖、蔗糖、麥芽汁、玉米粉、乳糖、可溶性淀粉作為碳源。由圖1可知,當(dāng)碳源為可溶性淀粉時(shí),靈芝液體發(fā)酵所得胞內(nèi)三萜產(chǎn)量最高,而當(dāng)麥芽汁作為碳源時(shí),靈芝發(fā)酵所得生物量最高,但與可溶性淀粉相比,無明顯差異。由于胞內(nèi)三萜產(chǎn)量為所需要的主要活性物質(zhì),其產(chǎn)量的高低直接影響靈芝菌絲的質(zhì)量,因此,選取可溶性淀粉為靈芝液體發(fā)酵的碳源,胞內(nèi)三萜產(chǎn)量可達(dá)到(141.45±3.02) mg/100 mL。

圖1 最適碳源篩選Fig.1 Optimum carbon sourc screening

由圖2可知,隨著可溶性淀粉質(zhì)量濃度的增加,胞內(nèi)三萜產(chǎn)量有所提高,當(dāng)可溶性淀粉濃度為4%(m/v)時(shí),胞內(nèi)三萜產(chǎn)量達(dá)到最高,但當(dāng)可溶性淀粉濃度為5%(m/v)時(shí),胞內(nèi)三萜產(chǎn)量下降。所以選取4%(m/v)可溶性淀粉作為碳源濃度,胞內(nèi)三萜產(chǎn)量可達(dá)到(173.16±3.92) mg/100 mL。

圖2 碳源濃度篩選Fig.2 Carbon source concentration screening

2.1.2 氮源及氮源濃度篩選 本文選取了豆粕汁、牛肉膏、酵母粉、麩皮汁、魚蛋白胨、牛骨蛋白胨(作為氮源。由圖3可知,當(dāng)?shù)礊轸~蛋白胨時(shí),靈芝液體發(fā)酵所得胞內(nèi)三萜產(chǎn)量最高,而當(dāng)麩皮汁作為氮源時(shí),靈芝發(fā)酵所得生物量最高。因所需的主要活性物質(zhì)為胞內(nèi)三萜,所以選取魚蛋白胨為靈芝液體發(fā)酵的氮源,胞內(nèi)三萜產(chǎn)量可達(dá)到(126.92±2.42) mg/100 mL。

圖3 最適氮源篩選Fig.3 Optimum nitrogen source screening

由圖4可得,隨著魚蛋白胨質(zhì)量濃度的增加,胞內(nèi)三萜產(chǎn)量有所提高,當(dāng)魚蛋白胨濃度為1%(m/v)時(shí),胞內(nèi)三萜產(chǎn)量達(dá)到最高,可達(dá)(195.88±2.17) mg/100 mL,但當(dāng)魚蛋白胨濃度為1.5%(m/v)時(shí),胞內(nèi)三萜產(chǎn)量下降。當(dāng)魚蛋白胨濃度為1.5%(m/v)時(shí),菌絲生物量達(dá)到最高。因所需的主要活性物質(zhì)為胞內(nèi)三萜,所以選取1%(m/v)魚蛋白胨作為氮源濃度,胞內(nèi)三萜產(chǎn)量可達(dá)到(195.88±2.17) mg/100 mL。

圖4 氮源濃度篩選Fig.4 Nitrogen source concentration screening

2.1.3 最適pH的篩選 由圖5可知,當(dāng)發(fā)酵培養(yǎng)基的pH為5.5時(shí),胞內(nèi)三萜產(chǎn)量達(dá)到最高,而當(dāng)pH增大或是減小時(shí),胞內(nèi)三萜產(chǎn)量降低。當(dāng)pH為5時(shí),菌絲生物量達(dá)到最高。因所需的主要活性物質(zhì)為胞內(nèi)三萜,所以選取5.5為靈芝液體發(fā)酵培養(yǎng)基的pH,胞內(nèi)三萜產(chǎn)量可達(dá)到(206.35±2.85) mg/100 mL。

圖5 最適pH篩選Fig.5 Optimum pH screening

2.1.4 油酸添加量與添加時(shí)間的篩選 由圖6可得,添加油酸后靈芝三萜產(chǎn)量大幅度提高,其中發(fā)酵培養(yǎng)第0 d添加油酸最具優(yōu)勢,胞內(nèi)三萜產(chǎn)量與菌絲生物量均高于第1、2 d,因此,選取發(fā)酵培養(yǎng)第0 d為油酸添加時(shí)間。而隨著油酸添加量的增加,胞內(nèi)三萜產(chǎn)量有所提高,當(dāng)?shù)? d油酸添加量為4%(v/v)時(shí),胞內(nèi)三萜產(chǎn)量達(dá)到最高,但當(dāng)油酸添加量繼續(xù)增加時(shí),胞內(nèi)三萜產(chǎn)量下降。菌絲生物量隨油酸添加量的增加而增加。因所需的主要活性物質(zhì)為胞內(nèi)三萜,選取4%(v/v)作為油酸添加量,胞內(nèi)三萜產(chǎn)量達(dá)到(210.52±2.62) mg/100 mL。

圖6 最適油酸添加量與添加時(shí)間的篩選Fig.6 Oleic acid concentration and adding time screening

2.1.5 響應(yīng)面法優(yōu)化靈芝液體發(fā)酵培養(yǎng)基 采用CCD實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)優(yōu)化靈芝液體發(fā)酵培養(yǎng)基,CCD實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果見表2,方差分析結(jié)果見表3。

表2 CCD實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果

表3 方差分析表

由表3可知,對(duì)于胞內(nèi)三萜產(chǎn)量,模型項(xiàng)p值為0.0004≤0.01,顯著,失擬項(xiàng)p值為0.4676≥0.05,不顯著;對(duì)于菌絲生物量,模型項(xiàng)p值<0.0001,顯著,失擬項(xiàng)值為0.9316≥0.05,不顯著;兩者均表明回歸方程關(guān)系顯著,且方程與實(shí)際擬合中非正常誤差所占比例小,實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)能夠很好的反映實(shí)驗(yàn)優(yōu)化。胞內(nèi)三萜產(chǎn)量(Y1)與菌絲生物量(Y2)的多項(xiàng)式回歸方程如下:

Y1=211.30-11.60A-15.67B+6.82C+3.73AB-19.18AC-3.45BC-17.39A2-17.00B2-26.95C2

Y2=4.43+0.099A-0.042B+0.63C-0.058AB-4.500E-0.03AC-0.052BC+2.238E-0.04A2-0.13B2-0.045C2

固定其中一個(gè)變量,研究其他2個(gè)變量的交互作用對(duì)各響應(yīng)值的影響?？扇苄缘矸叟c魚蛋白胨、魚蛋白胨與油酸添加量的交互作用對(duì)胞內(nèi)三萜的產(chǎn)量影響并不顯著?？扇苄缘矸叟c油酸添加量的交互作用影響較為顯著,其對(duì)胞內(nèi)三萜產(chǎn)量影響的曲面圖如圖7所示。由圖7可知,隨著可溶性淀粉濃度和油酸添加量的增加,胞內(nèi)三萜產(chǎn)量會(huì)先隨之增加,再隨之降低。3個(gè)變量兩兩之間的交互作用對(duì)菌絲生物量的影響并不顯著。

圖7 可溶性淀粉與油酸交互作用對(duì)IT產(chǎn)量的影響Fig.7 The contour(a)and surface(b)plots of the combined effects of soluble starch and oleic acid on the IT production

實(shí)驗(yàn)?zāi)Ｐ皖A(yù)測:當(dāng)以重量百分?jǐn)?shù)計(jì),可溶性淀粉濃度為3.40%(m/v),魚蛋白胨濃度為0.72%(m/v),油酸添加量為4.38%(v/v)時(shí),胞內(nèi)三萜產(chǎn)量可達(dá)到220.502 mg/100 mL。將預(yù)測結(jié)果進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)(3次重復(fù)),所得胞內(nèi)三萜產(chǎn)量為(223.73±2.17) mg/100 mL,與預(yù)測值接近,表明該模型對(duì)于優(yōu)化靈芝發(fā)酵培養(yǎng)基具有可行性。因此,最優(yōu)培養(yǎng)基條件為可溶性淀粉3.4%、魚蛋白胨0.72%、KH2PO40.3%、MgSO40.15%、VB10.005%(m/v),pH5.5,并在發(fā)酵培養(yǎng)第0 d添加4.38%(v/v)的油酸。

2.2 靈芝液體發(fā)酵條件的篩選

2.2.1 裝液量(通氣量)的篩選 由圖8可得,隨著裝液量的增加,胞內(nèi)三萜產(chǎn)量隨之增加,當(dāng)裝液量為100 mL時(shí),胞內(nèi)三萜產(chǎn)量達(dá)到最高,但當(dāng)裝液量繼續(xù)增加時(shí),胞內(nèi)三萜產(chǎn)量下降。菌絲生物量隨裝液量的增加而降低。因所需的主要活性物質(zhì)為胞內(nèi)三萜,所以選取裝液量為100 mL,胞內(nèi)三萜產(chǎn)量可達(dá)(225.21±2.23) mg/100 mL。

圖8 裝液量(通氣量)篩選Fig.8 Liquid loading screening

2.2.2 接種量的篩選 由圖9可知,當(dāng)接種量從5%(v/v)增加到10%(v/v)時(shí),胞內(nèi)三萜產(chǎn)量隨接種的增加而增加,而當(dāng)接種量從10%(v/v)增加到15%(v/v)時(shí),胞內(nèi)三萜產(chǎn)量趨于平穩(wěn)并略有下降。菌絲生物量在接種量為7.5%(v/v)時(shí)達(dá)到最大。綜合考慮,選取得接種量為10%(v/v),胞內(nèi)三萜產(chǎn)量可達(dá)(241.01±2.42) mg/100 mL。

圖9 接種量的篩選Fig.9 Inoculum concentration screening

2.2.3 發(fā)酵天數(shù)的篩選 由圖10可知,隨著發(fā)酵天數(shù)的增加,各指標(biāo)均隨之增加。胞內(nèi)三萜產(chǎn)量在發(fā)酵9 d時(shí)達(dá)到最高,可達(dá)(287.67±3.77) mg/100 mL,此時(shí)菌絲生物量達(dá)到(4.755±0.041) g/100 mL;而菌絲生物量在發(fā)酵10 d時(shí)達(dá)到最大,為(4.93±0.043) g/100 mL,其胞內(nèi)三萜產(chǎn)量達(dá)到(282.75±3.76) mg/100 mL。綜合考慮,選擇發(fā)酵時(shí)間為9 d。

圖10 發(fā)酵天數(shù)的篩選Fig.10 Fermentation time screening

3 結(jié)論

通過以上的篩選優(yōu)化,得到油酸促進(jìn)靈芝菌絲體高產(chǎn)三萜的最優(yōu)發(fā)酵條件:培養(yǎng)基成分為可溶性淀粉3.4%、魚蛋白胨0.72%、KH2PO40.3%、MgSO40.15%、VB10.005%(m/v),pH5.5,并在發(fā)酵培養(yǎng)第0 d添加4.38%(v/v)的油酸;裝液量為100 mL/250 mL,接種量為10%(v/v),發(fā)酵天數(shù)為9 d。在此條件下,靈芝菌絲體胞內(nèi)三萜產(chǎn)量可達(dá)282.75 mg/100 mL,而不添加油酸時(shí)胞內(nèi)三萜產(chǎn)量一般只能達(dá)到90～100 mg/100 mL[17]。該發(fā)酵條件可大幅度提高靈芝菌絲中靈芝三萜的產(chǎn)量,提高生產(chǎn)效率,有利于高產(chǎn)三萜靈芝菌絲的工業(yè)化生產(chǎn)。由于現(xiàn)今對(duì)靈芝三萜的生物合成途徑研究較少,油酸是如何誘導(dǎo)靈芝三萜合成這一關(guān)鍵點(diǎn)無從得知。所以,下一步將研究油酸是如何影響靈芝三萜的代謝途徑從而達(dá)到促進(jìn)其產(chǎn)量的提高的效果,根據(jù)探索出的作用機(jī)制改進(jìn)靈芝三萜合成的代謝途徑,從而獲得靈芝三萜的高產(chǎn)。

[1]方慶華. 靈芝真菌發(fā)酵生產(chǎn)靈芝酸和靈芝多糖的研究[D].上海:華東理工大學(xué),2000.

[2]TANG Y J,J J ZHONG. Modeling the kinetics of cell growth and ganoderic acid production in liquid static cultures of the medicinal mushroom Ganoderma lucidum[J]. Biochemical Engineering Journal,2004,21(3):259-264.

[3]WANG X M,M YANG,S H GUAN,et al. Quantitative determination of six major triterpenoids in Ganoderma lucidum and related species by high performance liquid chromatography[J]. J Pharm Biomed Anal,2006,41(3):838-844.

[4]QIAO Y,X M ZHANG,M H QIU. Two novel lanostane triterpenoids from ganoderma sinense[J]. Molecules,2007,12(8):2038-2046.

[5]KEYPOUR S,H RAFATI,H RIAHI,et al. Qualitative analysis of ganoderic acids in Ganoderma lucidum from Iran and China by RP-HPLC and electrospray ionisation-mass spectrometry(ESI-MS)[J]. Food Chemistry,2010,119(4):1704-1708.

[6]林志彬. 靈芝的現(xiàn)代研究[M]. 北京:北京大學(xué)醫(yī)學(xué)出版社,2015:14-29.

[7]余素萍. 靈芝深層發(fā)酵生產(chǎn)生物活性物質(zhì)的研究[D]. 南京:南京農(nóng)業(yè)大學(xué),2004.

[8]Kim H M,S Y Paik,K S Ra,et al. Enhanced production of exopolysaccharides by fed-batch culture of Ganoderma resinaceum DG-6556[J]. Journal of Microbiology,2006,44(2):233-242.

[9]ZHAO W,J W XU,J J ZHONG. Enhanced production of ganoderic acids in static liquid culture of Ganoderma lucidum under nitrogen-limiting conditions[J]. Bioresour Technol,2011,102(17):8185-8190.

[10]KANG D,M MUTAKIN,J LEVITA. Computational Study of Triterpenoids of Ganoderma lucidum with Aspartic Protease Enzymes for Discovering HIV-1 and Plasmepsin Inhibitors[J]. International Journal of Chemistry,2015,7(1):61-62.

[11]TRAN H B,A YAMAMOTO,S MATSUMOTO,et al. Hypotensive Effects and Angiotensin-Converting Enzyme Inhibitory Peptides of Reishi(Ganoderma lingzhi)Auto-Digested Extract[J]. Molecules,2014,19(9):13473-13485.

[12]Fang X,Shi L,Ren A,et al. The cloning,characterization and functional analysis of a gene encoding an acetyl-CoA acetyltransferase involved in triterpene biosynthesis in Ganoderma lucidum[J]. Mycoscience,2013,54(2):100-105.

[13]徐曉蘭. 靈芝三萜和金銀花綠原酸生物合成途徑關(guān)鍵酶基因的挖掘及分析[D]. 北京:北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院,2013.

[14]任昂. 茉莉酸甲酯對(duì)靈芝三萜生物合成的影響及其靈芝應(yīng)答基因的差異表達(dá)研究[D]. 南京:南京農(nóng)業(yè)大學(xué),2012.

[15]劉真,盧義和,宮素芝,等. 我國油酸的生產(chǎn)現(xiàn)狀及展望[J]. 河北化工,2006(9):18-20.

[16]馮杰,張勁松,楊焱,等. 一種提高靈芝液體深層發(fā)酵菌絲體中靈芝三萜含量的方法:中國,CN104017852A[P]. 2014-09-03.

[17]崔美林. 高產(chǎn)三萜靈芝菌株液體發(fā)酵及生物轉(zhuǎn)化大豆異黃酮的研究[D]. 杭州:浙江大學(xué),2015.

[18]高建莉,禹志領(lǐng),李紹平,等. 靈芝三萜類成分研究進(jìn)展[J]. 中國食用菌,2005,4:6-11.

[19]許海燕,侯敏娜,劉劍. 靈芝總?cè)铺崛」に囇芯縖J]. 陜西中醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào),2007,30(3):43-44.

[20]CUI Meilin,HE Guoqing. Optimization of the Submerged Fermentation Conditions of Ganoderma lucidum with High Triterpenoids Production by Response Surface Analysis[J]. Advanced Materials Research,2012,621:259-262.

[21]AHMAD M F,B P PANDA,Z A A AZAD. Simultaneous Bioprospecting of Ganoderma lucidum OE 52 with Ganoderic Acid B and C2 by Submerged Fermentation Process[J]. Advanced Science Focus,2013,1(3):258-261.

Optimization ofGanodermalucidummycelium’s fermentation conditions with high triterpenoids production based on oleic acid induce

SUN Bing-qin1,QIN Ke-xin2,WANG Gui-rong3,HE Guo-qing1,*

(1.College of Biosystems Engineering and Food Science,Zhejiang University,Hangzhou 310058,China; 2.Food Science and Engineering College,Harbin University of Commerce,Harbin 150076,China; 3.Seed Field of Hangzhou,Hangzhou 310058)

We optimize theGanodermalucidummycelium’s fermentation conditions of high triterpenoids production with adding oleic acid,to induce the synthesis of triterpenoids and boost production,which has special biological activity and beneficial to the human body.In this research,we screened the single factors such as carbon source and nitrogen source,and the optimization of the culture medium was optimized by CCD experiment,we also screened the single factors of fermentation conditions. This research shows that the optimal results is:soluble starch 3.4%,fish peptone 0.72%,KH2PO40.3%,MgSO40.15%,VB10.005%(m/v),pH5.5,and adding 4.38%(v/v)of oleic acid at the first day of the fermentation. The liquid loading is 100 mL,the inoculation concentration is 10%(v/v),and the fermentation time is 9 d. And the production of triterpenoids was up to(282.75±3.76)mg/100 mL. This method not only induce the synthesis of triterpenoids and boost production,but also has important significance for the industrial production ofGanodermalucidum.

Ganodermalucidummycelia;triterpenoids;fermentation conditions;response surface

2016-06-15

孫冰沁(1991-)，女，碩士，研究方向：食品微生物,E-mail:sbqyjyjv@sina.cn。

*通訊作者:何國慶(1957-)，男，博士，教授，研究方向：食品生物技術(shù)及發(fā)酵工程，E-mail:gqhe@zju.edu.cn。

TS201.3

A

1002-0306(2016)24-0000-00

10.13386/j.issn1002-0306.2016.24.000