溫含葛新發(fā),2龐洪波張力輝
1上海體育學(xué)院運(yùn)動(dòng)人體科學(xué)學(xué)院(上海 200438)2山東體育學(xué)院3天津市殘疾人康復(fù)服務(wù)指導(dǎo)中心4河北港口集團(tuán)有限公司港口醫(yī)院
能量需求改變時(shí)線粒體的適應(yīng)性代償
溫含1葛新發(fā)1,2龐洪波3張力輝4
1上海體育學(xué)院運(yùn)動(dòng)人體科學(xué)學(xué)院(上海 200438)2山東體育學(xué)院3天津市殘疾人康復(fù)服務(wù)指導(dǎo)中心4河北港口集團(tuán)有限公司港口醫(yī)院
作為細(xì)胞能量供應(yīng)中心的線粒體,通過(guò)氧化磷酸化為細(xì)胞提供能量,同時(shí)還參與細(xì)胞凋亡、自噬、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)等生物活動(dòng),故其不僅對(duì)生物體的生長(zhǎng)、發(fā)育、代謝、遺傳有著十分重要的生理意義,也與機(jī)體衰老以及腫瘤、糖尿病、心腦血管疾病等多種病理過(guò)程密切相關(guān)。不同生理、病理狀態(tài)下,機(jī)體會(huì)對(duì)能量產(chǎn)生不同的需求,為適應(yīng)各種不同的能量需要,線粒體從形態(tài)變化、質(zhì)量控制和數(shù)量三個(gè)方面對(duì)機(jī)體能量變化進(jìn)行代償,本文從這三方面對(duì)線粒體在能量需求不同時(shí)產(chǎn)生的適應(yīng)性變化進(jìn)行闡述。
線粒體;線粒體融合-分裂;線粒體自噬;線粒體發(fā)生;信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)
線粒體是真核生物的能量站,直接影響機(jī)體新陳代謝、生長(zhǎng)發(fā)育、細(xì)胞凋亡以及衰老等生物過(guò)程,同時(shí)還參與機(jī)體多種生理病理過(guò)程,故線粒體數(shù)量、形態(tài)以及質(zhì)量的變化對(duì)機(jī)體健康起到了至關(guān)重要的作用[1-4]。線粒體的狀態(tài)并非靜止不變,在細(xì)胞分裂處于不同時(shí)相、不同生理環(huán)境中、不同外界刺激下時(shí),線粒體作為極為敏感的細(xì)胞器,在數(shù)量、形態(tài)和質(zhì)量上會(huì)發(fā)生動(dòng)態(tài)的改變。現(xiàn)有研究表明,在細(xì)胞能量需求增加或者能量供應(yīng)不足時(shí),作為能量供應(yīng)中心的線粒體自身結(jié)構(gòu)與功能都會(huì)產(chǎn)生積極的適應(yīng)性反應(yīng)。本文從線粒體分裂-融合變化、線粒體自噬及線粒體發(fā)生三個(gè)角度對(duì)在ATP供應(yīng)不足、氧化應(yīng)激、線粒體受損等病理狀態(tài)時(shí)線粒體產(chǎn)生的適應(yīng)性變化機(jī)制進(jìn)行綜述。
線粒體是細(xì)胞能量供應(yīng)中心,其形態(tài)不斷變化,通過(guò)分裂、融合進(jìn)而形成獨(dú)特的網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)[5]。而線粒體分裂、融合運(yùn)動(dòng)是一個(gè)動(dòng)態(tài)平衡的變化過(guò)程,若該平衡一旦被打破,其形態(tài)會(huì)朝著其中一個(gè)方向進(jìn)行。如若線粒體融合受到抑制(或分裂興奮),會(huì)導(dǎo)致平衡模式向分裂方向進(jìn)行并出現(xiàn)片段化線粒體,相反則將促進(jìn)線粒體融合,導(dǎo)致線粒體形成高度融合的網(wǎng)絡(luò)狀態(tài)[6]。線粒體的這種變化不僅只是線粒體形態(tài)和功能改變的直觀表現(xiàn),該過(guò)程還與細(xì)胞的諸多生理功能有密切的關(guān)系[7]。有學(xué)者認(rèn)為,線粒體的網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)可能在能量和信息在不同線粒體中的傳遞和溝通過(guò)程中發(fā)揮了重要作用,有利于膜電位在不同線粒體間迅速傳遞,也為線粒體內(nèi)容物和線粒體基因組(mtDNA)充分交換和互補(bǔ)提供了重要途徑[8]。有研究指出,細(xì)胞衰老過(guò)程中,線粒體mtDNA發(fā)生突變并會(huì)積累下來(lái),線粒體的網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)可使突變基因組進(jìn)行互補(bǔ)、合并來(lái)對(duì)缺陷線粒體進(jìn)行有效的修復(fù),以保證線粒體正常的生理功能,進(jìn)而保證細(xì)胞功能穩(wěn)定,但常態(tài)下融合對(duì)線粒體DNA起到選擇性的排外作用而并非修復(fù)[9]。但線粒體的分裂也并非只是消極因素,有學(xué)者認(rèn)為分裂過(guò)程有助于細(xì)胞內(nèi)不同區(qū)域線粒體執(zhí)行各自的功能。Dorn等[10]在敲除果蠅心管線粒體融合相關(guān)基因后發(fā)現(xiàn)線粒體融合受到抑制,而核編碼的線粒體相關(guān)基因表達(dá)明顯增加,該結(jié)果證明線粒體分裂可能與線粒體再生能力關(guān)系密切,這對(duì)于線粒體的數(shù)量和質(zhì)量的維持有重要意義。在細(xì)胞分裂過(guò)程中,線粒體分裂可使新線粒體被均勻地分配到子代細(xì)胞中,這也很好解釋了G1期細(xì)胞線粒體成網(wǎng)絡(luò)狀,而S期則呈現(xiàn)片斷化的現(xiàn)象。對(duì)于線粒體在細(xì)胞分裂過(guò)程中的分配現(xiàn)象,也有人認(rèn)為線粒體在細(xì)胞內(nèi)的定位和運(yùn)動(dòng)與細(xì)胞骨架(微管、微絲、中間纖維)關(guān)系緊密,猜測(cè)微管與微絲參與影響了線粒體的移動(dòng)速度與距離,當(dāng)然在細(xì)胞分裂周期的不同時(shí)相細(xì)胞骨架的這種影響作用可能有所差異[11]。線粒體分裂也與細(xì)胞凋亡關(guān)系密切,或反過(guò)來(lái)說(shuō)細(xì)胞凋亡與線粒體融合的缺失或抑制有關(guān)。細(xì)胞凋亡早期線粒體往往出現(xiàn)顯著的片斷化改變,也有實(shí)驗(yàn)證明了一些凋亡調(diào)控因子(如細(xì)胞色素C)也會(huì)參與線粒體的形態(tài)片段化過(guò)程[12,13]。
相對(duì)平衡的線粒體融合與分裂速度是線粒體網(wǎng)絡(luò)化程度的決定性因素,相比處于靜態(tài)的線粒體,形態(tài)高
度動(dòng)態(tài)平衡的線粒體更具功能優(yōu)勢(shì)。現(xiàn)有研究證實(shí),這種線粒體形態(tài)和結(jié)構(gòu)上的動(dòng)態(tài)變化不僅參與線粒體正常生理功能的保持,在細(xì)胞層面也對(duì)能量代謝、凋亡、衰老等生命活動(dòng)以及一些疾病發(fā)生過(guò)程產(chǎn)生明顯影響[14,15]。
線粒體移動(dòng)相關(guān)基因(Miro1/2)的動(dòng)態(tài)表達(dá)已被證明是形態(tài)相關(guān)基因表達(dá)發(fā)生變化的先導(dǎo),并與分裂融合相關(guān)基因協(xié)同應(yīng)對(duì)機(jī)體不同部位能量需求急劇變化產(chǎn)生快速應(yīng)答。有研究提出[16],在負(fù)荷遞增的急性運(yùn)動(dòng)中和恢復(fù)期,掌管大鼠骨骼肌線粒體形態(tài)的融合蛋白mfnl/2和分裂蛋白fisl mRNA表達(dá)量變化趨勢(shì)截然相反,即隨機(jī)體能量需求增加,線粒體分裂基因表達(dá)也迅速增加,融合基因表達(dá)則明顯降低;在運(yùn)動(dòng)后恢復(fù)過(guò)程中,融合基因表達(dá)則逐漸升高,恢復(fù)甚至超過(guò)安靜水平,分裂基因表達(dá)量也逐漸下降至安靜水平。上述這種方向相逆的形態(tài)變化提示:在機(jī)體進(jìn)行急性運(yùn)動(dòng)時(shí),線粒體形態(tài)變化相關(guān)基因(分裂/融合相關(guān)基因)的動(dòng)態(tài)表達(dá)可能積極參與線粒體應(yīng)對(duì)細(xì)胞能量需求急劇增加的適應(yīng)性調(diào)節(jié),而該調(diào)節(jié)機(jī)制可能是線粒體形態(tài)的動(dòng)力學(xué)變化與線粒體呼吸功能的關(guān)系的直觀反映。線粒體融合-分裂的動(dòng)態(tài)變化與運(yùn)動(dòng)能量代謝需求相適應(yīng),也同樣參與影響線粒體自身功能和細(xì)胞能量代謝調(diào)控。
自噬廣泛存在于真核細(xì)胞內(nèi),是一種依賴溶酶體的蛋白、細(xì)胞器降解途徑,該途徑的降解目標(biāo)主要是長(zhǎng)壽命蛋白質(zhì)和受損的細(xì)胞器[17,18]。目前的共識(shí)認(rèn)為,細(xì)胞利用自噬與泛素-蛋白酶體系統(tǒng)[19]兩個(gè)途徑來(lái)承擔(dān)細(xì)胞內(nèi)蛋白質(zhì)合成與降解以及細(xì)胞器更新的責(zé)任,損壞蛋白和細(xì)胞器的及時(shí)清除對(duì)于維持細(xì)胞的生理狀態(tài)具有重要意義。線粒體自噬的概念是由Lemasters[20]提出的,是指在活性氧(ROS)攻擊、營(yíng)養(yǎng)不足、衰老等內(nèi)外環(huán)境變化下,線粒體外膜電位改變發(fā)生去極化而出現(xiàn)線粒體損傷,損傷的線粒體被包裹并與溶酶體融合,從而完成對(duì)損傷線粒體的降解,損壞細(xì)胞器的清除對(duì)于維持細(xì)胞的正常生理功能有至關(guān)重要的意義。
Goldman[21]又將線粒體自噬分兩類,一是與應(yīng)激或者細(xì)胞分化相關(guān)的自噬,二是維持型自噬。前者是指在病理狀況時(shí),線粒體自噬被激活,及時(shí)降解受損線粒體;后者是指在細(xì)胞生理情況下,在細(xì)胞結(jié)構(gòu)和正常功能的分化過(guò)程中發(fā)揮重要作用。除了與細(xì)胞自噬其關(guān)的mTOR、PI3K、AMPK等因子調(diào)控線粒體自噬外,線粒體自身相關(guān)基因也參與線粒體自噬的調(diào)節(jié)[22-24]。有觀點(diǎn)認(rèn)為線粒體融合-分裂與線粒體自噬關(guān)系密切[25-28],而二者相關(guān)的真正機(jī)制仍不清楚。目前關(guān)于自噬途徑是如何清除損傷的線粒體及其與相關(guān)信號(hào)通路間的相互作用機(jī)制的研究很多,但尚存爭(zhēng)議。有觀點(diǎn)認(rèn)為是由于ROS的產(chǎn)生而誘導(dǎo)線粒體的清除[29]。線粒體通過(guò)氧化磷酸化為細(xì)胞供能,是細(xì)胞耗氧的主要細(xì)胞器。線粒體依賴于充足的氧才能正常行使功能,在供養(yǎng)不足的情況下,線粒體電子傳遞鏈因?yàn)槿鄙俪渥愕腛2充當(dāng)電子的最終受體進(jìn)而發(fā)生傳遞鏈的紊亂,電子傳遞鏈通過(guò)復(fù)合體Ⅰ(NADH脫氫酶)、復(fù)合體Ⅱ(琥珀酸脫氫酶)和復(fù)合體Ⅲ(細(xì)胞色素c還原酶)產(chǎn)生大量的ROS。ROS可直接激活低氧誘導(dǎo)因子1(hypoxia-inducible factor1,HIF-1),而活化的HIF-1可調(diào)控細(xì)胞死亡相關(guān)蛋白質(zhì):BNIP3(Bcl-2 and adenovirusE1B 19 kDa-interacting protein 3)和BNIP3L(BNIP3-like),二者均為Bcl-2家族,且為該家族中只含BH3結(jié)構(gòu)域(The Bcl-2 homology domain 3-only,BH3-only)亞家族中的成員[30],BNIP3和BNIP3L也可誘導(dǎo)線粒體自噬的發(fā)生。Zhang等發(fā)現(xiàn)在低氧條件可通過(guò)BNIP3誘導(dǎo)線粒體自噬發(fā)生[31]。另外,BNIP3依賴HIF-1才可被激活且在線粒體自噬發(fā)生中不可缺少,磷酸化的BNIP3易于與LC3、GABARAP結(jié)合,由此促進(jìn)線粒體自噬的發(fā)生[32]。Sandoval等[33]在對(duì)紅細(xì)胞的研究中發(fā)現(xiàn),BNIP3L與BNIP3相似可引發(fā)線粒體自噬并且在紅細(xì)胞分化過(guò)程中必不可少。在BNIP3/BNIP3L介導(dǎo)的線粒體自噬通路中Beclin-1起到了重要作用。Atg6是酵母中自噬相關(guān)基因,而B(niǎo)eclin-1是Atg6在哺乳動(dòng)物中的同源物,其在激活自噬前體結(jié)構(gòu)中發(fā)揮重要作用,參與自噬體形成的調(diào)控。Beclin-1蛋白具有BH3結(jié)構(gòu)域,因此可通過(guò)BH3結(jié)構(gòu)域與Bcl-2或者Bcl-XL結(jié)合,而同樣具有BH3結(jié)構(gòu)域的BNIP3與BNIP3L可與Beclin-1競(jìng)爭(zhēng)性地和Bcl-2或者Bcl-XL結(jié)合。當(dāng)BNIP3和BNIP3L表達(dá)升高時(shí),Beclin-1被BNIP3和BNIP3L競(jìng)爭(zhēng)性地從Bcl-2/Beclin-1或Bcl-XL/Beclin-1復(fù)合物中釋放出來(lái),游離的Beclin-1與多種蛋白質(zhì)結(jié)合成Ⅲ型磷脂酰肌醇-3-激酶(PI3K)復(fù)合體,通過(guò)PI3K/Akt途徑來(lái)調(diào)節(jié)下游多種自噬相關(guān)的Atg蛋白在自噬前體結(jié)構(gòu)中的定位,從而啟動(dòng)線粒體自噬[15]。
線粒體的分裂融合同時(shí)又與線粒體自噬關(guān)系密切,但二者相關(guān)聯(lián)的具體機(jī)制并不清楚。Parone等[27]研究發(fā)現(xiàn),敲除Drp1后的Hela細(xì)胞的線粒體呼吸功能喪失,ATP濃度顯著下降,細(xì)胞周期縮短,部分mtDNA缺失,而LC3-Ⅱ的表達(dá)卻明顯增加了,作者認(rèn)為該結(jié)構(gòu)可能是由于ROS濃度大量增加所引起的,該結(jié)果表明在敲除了Drp的Hela細(xì)胞中線粒體自噬被抑制。同屬于線粒體融合蛋白之一的OPA1表達(dá)降低,首先誘導(dǎo)線粒體發(fā)生去極化,線粒體外膜的去極化是線粒體自噬發(fā)生的先導(dǎo);相反,當(dāng)OPA1過(guò)表達(dá),發(fā)現(xiàn)自噬小體中僅存在小部分線粒體,故猜測(cè)OPA1在這個(gè)線粒
體自噬過(guò)程中可能起到信號(hào)分子的作用。因線粒體分裂融合是動(dòng)態(tài)平衡的過(guò)程,在敲除Fis1后自噬作用也會(huì)明顯減少。有觀點(diǎn)認(rèn)為,線粒體分裂可能是線粒體自噬所必須的,Gomes等[25]發(fā)現(xiàn)無(wú)論過(guò)表達(dá)的Fisα1(Fis1的同源物)的突變型還是野生型均可促進(jìn)線粒體自噬。上述研究都提示,線粒體的分裂可能是線粒體吞噬前發(fā)生的前提步驟,這也證明了線粒體分裂融合的變化與線粒體自噬聯(lián)系密切。雖然目前關(guān)于慢性疾病以及運(yùn)動(dòng)過(guò)程中產(chǎn)生的線粒體形態(tài)與線粒體自噬之間的關(guān)系報(bào)道較多,但并未真正闡明線粒體分裂融合是通過(guò)哪些通路調(diào)節(jié)線粒體自噬的。據(jù)上述原因可知,在機(jī)體能量供應(yīng)不足或氧化應(yīng)激狀態(tài)下,產(chǎn)生大量ROS,ROS影響線粒體分裂-融合的平衡使得線粒體從形態(tài)上進(jìn)行代償;同時(shí)ROS的增高、線粒體分裂-融合變化促進(jìn)線粒體自噬的發(fā)生,清除功能障礙、受損的線粒體,達(dá)到保持細(xì)胞平衡、抑制活性氧的作用。
5′單磷酸腺苷活化蛋白激酶(AMP-activated protein kinase,AMPK)是敏感的細(xì)胞能量感受器,可調(diào)節(jié)細(xì)胞能量代謝,無(wú)論在正常細(xì)胞還是在癌細(xì)胞中均發(fā)揮重要的生物功能,AMPK被激活后利于糾正代謝紊亂,使細(xì)胞代謝趨向生理平衡。作為體內(nèi)能量調(diào)劑器的AMPK可被AMP或ADP/ATP比值增高而被激活[34],AMPK又可以通過(guò)PGC-1α調(diào)節(jié)線粒體的發(fā)生[35]。越來(lái)越多的研究表明,線粒體與AMPK的活性可相互調(diào)節(jié),線粒體能對(duì)AMPK活性產(chǎn)生影響,同時(shí)活化的AMPK也通過(guò)多方面對(duì)線粒體進(jìn)行調(diào)節(jié),線粒體相關(guān)疾病大多與AMPK的調(diào)節(jié)有著密切的關(guān)系。在真核生物中AMPK是一種高度保守的蛋白激酶,由三個(gè)亞單位組成,一個(gè)催化亞單位α,兩個(gè)調(diào)節(jié)亞單位分別為β和γ[36]。AMPK是高度保的蛋白,能感受細(xì)胞能量變化的感受器,對(duì)ADP/ATP和AMP/ATP比率的改變極為敏感,在代謝應(yīng)激或細(xì)胞能量失衡時(shí),ATP產(chǎn)生不足,ADP/ATP或AMP/ATP比率升高,進(jìn)而激活A(yù)MPK,活化的AMPK可激活過(guò)氧化物酶體增殖物激活受體γ輔激活因子-1α(peroxisomeproliferatoractivated receptor gamma co-activation,PGC-1α)。PGC-1α是重要的代謝相關(guān)轉(zhuǎn)錄活化輔助因子,在線粒體和成、發(fā)生以及骨骼肌快慢纖維類型間的相互轉(zhuǎn)換等生理過(guò)程中發(fā)揮重要作用,同時(shí),PGC-1α還參與調(diào)節(jié)線粒體的分裂-融合過(guò)程。Sorizano研究L6E9肌細(xì)胞時(shí)發(fā)現(xiàn),在PGC-1α和雌激素相關(guān)受體α(ERR)共同作用下,Mfn2(線粒體融合蛋白)表達(dá)增高,PGC-1α、ERRα與mfn2基因啟動(dòng)子結(jié)合后激活其轉(zhuǎn)錄活性[31]。國(guó)內(nèi)學(xué)者發(fā)現(xiàn),一次遞增負(fù)荷運(yùn)動(dòng)就可誘導(dǎo)PGC-1α基因和蛋白表達(dá),并啟動(dòng)其下游信號(hào)級(jí)聯(lián)反應(yīng)促進(jìn)線粒體的生物合成[37]?,F(xiàn)有研究表明,PGC-1α能夠調(diào)控許多細(xì)胞核編碼的線粒體基因表達(dá),通過(guò)PGC-1α-NRFs-Tfam途徑啟動(dòng)線粒體的生物發(fā)生,其次來(lái)調(diào)控線粒體發(fā)生[38]。疾病、供氧不足、損傷等情況下,可能造成線粒體損傷導(dǎo)致有氧氧化能力下降,產(chǎn)生大量ROS,隨著ROS的積累增多,ROS攻擊線粒體膜促進(jìn)線粒體自噬的同時(shí),可能通過(guò)p38MAPK-PGC-1α-NRFs-Tfam途徑啟動(dòng)線粒體的生物發(fā)生,保證線粒體在質(zhì)量上向正常水平靠攏,以此彌補(bǔ)ATP的不足,從而抑制ROS對(duì)細(xì)胞產(chǎn)生的破壞作用。
AMPK還與線粒體自噬有著極為密切的關(guān)系,被激活的AMPK可通過(guò)Atg1和ULK途徑促進(jìn)線粒體自噬的發(fā)生[35]。酵母細(xì)胞中激活后的AMPK可抑制TORC1復(fù)合物,而后者可直接磷酸化Atg1來(lái)阻止自噬的發(fā)生;因此,AMPK可以通過(guò)抑制TORC1而促進(jìn)自噬[39],這一作用同樣存在于哺乳動(dòng)物,哺乳動(dòng)物細(xì)胞中Atg1的相應(yīng)保守蛋白為ULK1,AMPK可直接磷酸化反應(yīng)作用于ULK1(hATG1)的Ser555、Thr574和Ser637這三個(gè)位點(diǎn),形成非常穩(wěn)定的ULK1和AMPK復(fù)合物[40],后者引起線粒體自噬[41],在營(yíng)養(yǎng)缺失條件下AMPK對(duì)ULK1的磷酸化是線粒體體內(nèi)平衡和線粒體自噬所必需的[42];同時(shí),AMPK還可抑制mTOR,mTOR被抑制后能促進(jìn)線粒體自噬的發(fā)生,因此活化的AMPK可以通過(guò)促進(jìn)線粒體自噬來(lái)清除受損的線粒體,從而維持細(xì)胞的正常生理狀態(tài)。
作為對(duì)能量供應(yīng)及氧濃度最為敏感的細(xì)胞器,線粒體與大量代謝相關(guān)疾病有著非常緊密的聯(lián)系。在低氧、運(yùn)動(dòng)、疾病、損傷的內(nèi)外界因素刺激下,線粒體從形態(tài)、質(zhì)量控制和數(shù)量三方面產(chǎn)生相應(yīng)的改變,使得線粒體數(shù)量和線粒體質(zhì)量得到保障和恢復(fù),起到積極代償?shù)淖饔?,因此在今后代謝相關(guān)疾病的研究中,線粒體的適應(yīng)性變化可能對(duì)于疾病的治療及恢復(fù)、運(yùn)動(dòng)處方的制定具有重要意義。
[1]Rubinsztein DC,Marino G,Kroemer G.Autophagy and aging [J].Cell,2011,146(5):682-695.
[2]Levine B,Mizushima N,Virgin HW.Autophagy in immunity and inflammation[J].Nature,2011,469(7330):323-335.
[3]Meschini S,Condello M,Lista P,et al.Autophagy:Molecular mechanisms and their implications for anticancer therapies [J].Curr Cancer Drug Targets,2011,11(3):357-379.
[4]XilouriM,StefanisL.Autophagyinthecentralnervous system:implications for neurodegenerative disorders[J].CNS Neurol Disord Drug Targets,2010,9(6):701-719.
[5]Shutt TE,McBride HM.Staying cool in difficult times:Mito-
chondrial dynamics,quality control and the stress response [J].Biochim Biophys Acta,2013,1833(2):417-424.
[6]Richard J,Youle,Alexander M,Bliek.Mitochondrial Fission,F(xiàn)usion,and Stress[J].Science,2012,337(6098): 1062-1065.
[7]Picard M,Gentil BJ,McManus MJ,et al.Acute exercise remodels mitochondrial membrane interactions in mouse skeletal muscle[J].J Appl Physiol,2013,115(10):1562-1571.
[8]Tam ZY,Gruber J,Halliwell B,et al.Mathematical modeling of the role of mitochondrial fusion and fission in mitochondrial DNA maintenance[J].PLoS One,2013,8(10): 157-169.
[9]Benedikt W,Biochimica,et al.Bioenergetic role of mitochondrial fusion and fission[J].Biophysica Acta,2012,1817:1833-1838.
[10]Dorn GW 2nd,Clark CF,Eschenbacher WH,et al.MARF and Opa1 control mitochondrial and cardiac function in Drosophila[J].Circ Res,2011,108(1):12-17.
[11]Francis R,Xu X,Park H,et al.Connexin43 modulates cell polarity and directional cell migration by regulating microtubule dynamics[J].PLoS One,2011,6(10):e26379.
[12]Zhou W,Chen KH,Guo XM,et al.Mutation of the protein kinase A phosphorylation site influences the anti-proliferation activity of mitofusin 2[J].Atherosclerosis,2010,2011(1):216-23.
[13]Shen T,Zheng M,Gao CM,et al.Mitofusin-2 is a major determinant of oxidative strss-mediated heart muscle cell apoptosis[J].J Biol Chem,2007,282(8):23354-61.
[14]Dorn GW.Mitochondrial dynamism and cardiac fate--a personal perspective[J].Circ J,2013,77(6):1370-1379.
[15]Youle RJ,Karbowski M.Mitochondrial fission in apoptosis [J].Nat Rev Mol Cell Biol,2005,6(8):658-663.
[16]Picard M,Gentil BJ,McManus MJ,et al.Acute exercise remodels mitochondrial membrane interactions in mouse skeletal muscle[J].J Appl Physiol,2013,115(10):1562-1571.
[17]MinibayevaF,Dmitrieva S,Ponomareva A.Oxidative stress induced autophagy in plants:the role of mitochondria[J]. Plant Physiology and Biochemistry,2012,59:11-19.
[18]Ashrafi G,Schwarz TL.The pathways of mitophagy for quality control and clearance of mitochondria[J].Cell Death Differ,2013,20(1):31-42.
[19]Ciechanover A.The ubiquitin-proteasome pathway:on protein death and cell life[J].EMBO J,1998,17(24):7151-7160.
[20]Lemasters JJ..Selective mitochondrial autophagy,or mitophagy,as a targeted defense against oxidative stress,mitochondrial dysfunction,and aging[J].Rejuvenation Res,2005,8(1):3-5.
[21]Goldman SJ,Taylor R,Zhang Y,et al.Autophagy and the degradation of mitochondria[J].Mitochondrion,2010,10(4): 309-315.
[22]Kim I,Rodriguez-Enriquez S,Lemasters JJ.Selective degradation of mitochondria by mitophagy[J].Arch Biochem Biophys,2007,462(2):245-253.
[23]Rodriguez-Enriquez S,Kim I,Currin RT,et al.Tracker dyes to probe mitochondrial autophagy(mitophagy)in rat hepatocytes[J].Autophagy,2006,2(1):39-46.
[24]Twig G,Elorza A,Molina AJ,et al.Fission and selective fusion govern mitochondrial segregation and elimination by autophagy[J].EMBO J,2008,27(2):433-446.
[25]Gomes LC,Scorrano L.High levels of Fis1,a pro-fission mitochondrial protein,trigger autophagy[J].Biochim Biophys Acta,2008,1777(7-8):860-866.
[26]Stiles L,Shirihai OS.Mitochondrial dynamics and morphology in beta-cells[J].Best Pract Res Clin Endocrinol Metab,2012,26(6):725-738.
[27]Parone PA,DaCruz S,Tondera D,et al.Preventing mitochondrial fission impairs mitochondrial function and leads to loss of mitochondrial DNA[J].PLoS ONE,2008,3 e3257.
[28]Tam ZY,Gruber J,Halliwell B,et al.Mathematical modeling of the role of mitochondrial fusion and fission in mitochondrial DNA maintenance[J].PLoS One,2013,8(10): 157-169.
[29]Bhatia-Kissova I,Camougrand N.Mitophagy:a process that adapts to the cell physiology[J].Int J Biochem Cell Biol,2013,45:30-33.
[30]Paul A,Ney.Mitochondrial autophagy:Origins,significance,and role of BNIP3 and NIX[J].Biochimica et Biophysica Acta,2015,BBAMCR-17519;No.of pages:9;4C:3,4,5.
[31]Zhang H,Bosch-Marce M,Shimoda L A,et al.Mitochondrial autophagy is an HIF-1-dependent adaptive metabolic response to hypoxia[J].J Biol Chem,2008,283(16):10892-10903.
[32]Zhu Y,Massen S,Terenzio M,et al.Modulation of serines 17 and 24 in the LC3-interacting region of Bnip3 determines pro-survival mitophagy versus apoptosis[J].J Biol Chem,2013,288(2):1099-1113.
[33]Skurvydas A,Brazaitis M,Venckūnas T,et al.The effect of sports specialization on musculus quadriceps function after exercise-induced muscle damage[J].Appl Physiol Nutr Metab,2011,36(6):873-80.
[34]Adachi Y,Kanbayashi Y,Harata I,et al.Petasin activates AMP-Activatedproteinkinaseandmodulatesglucose metabolism[J].J Nat Prod,2014,77(6):1262-1269.
[35]王艷,黃德強(qiáng),羅志軍.AMPK對(duì)線粒體功能的調(diào)節(jié)[J].中國(guó)細(xì)胞生物學(xué)學(xué)報(bào),2013,35(10):1434-1443.
[36]Zhou X,Tan M,Stone Hawthome V,et al.Activation of the Akt/mammalian target of Rapamycin/4E-BP1 pathway by ErbB2 overexpression predicts tumor progression in breast cancers[J].Clin Cancer Res,2004,10(20):6779-6788.
[37]李潔,張耀斌.不同低氧訓(xùn)練模式對(duì)大鼠力竭運(yùn)動(dòng)后骨骼肌線粒體抗氧化能力及呼吸鏈酶復(fù)合體活性的影響[J].生理學(xué)報(bào),2011,63(1):55-61.
[38]Novak I,Kirkin V,McEwan DG,et al.Nix is selective autophagy receptor for mitochondrial clearance[J].EMBO Rep,2010,11(1):45-51.
[39]Kamada Y,Yoshino K,Kondo C,et al.Tor directly controls the Atg1 kinase complex to regulate autophagy[J].Mol Cell Biol,2010,30(4):1049-1058.
[40]Behrends C,Sowa ME,Gygi SP,et al.Network organization of the human autophagy system[J].Nature,2010,466(7302): 68-76.
[41]Hardie DG.AMPK and autophagy get connected[J].EMBO J,2011,30(4):634-635.
[42]OkamotoK,Kondo-OkamotoN.Mitochondriaand autophagy:Critical interplay between the two homeostats[J]. Biochim Biophys Acta,2012,1820(5):595-600.
2015.12.04
山東省自然科學(xué)基金項(xiàng)目(ZR2012CMO13);運(yùn)動(dòng)健身科技省部共建教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室(上海體育學(xué)院)資助項(xiàng)目
葛新發(fā),Email:gexinfa@163.com
中國(guó)運(yùn)動(dòng)醫(yī)學(xué)雜志2016年4期